Manual Laboratorio Cordados

8/20/2019 Manual Laboratorio Cordados

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UNIVERSIDAD AUTÓNOMA DE CIUDAD JUÁREZ

INSTITUTO DE CIENCIAS BIOMÉDICAS

DEPARTAMENTO DE CIENCIAS QUÍMICO-BIOLÓGICAS

PROGRAMA DE BIOLOGÍA

MANUAL DE PRÁCTICAS

MORFOFISIOLOGÍA DE CORDADOS


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MANUAL DE PRÁCTICAS DE MORFOFISIOLOGIA DE CORDADOS

COMPILADORES:

Principal: Abraham Aquino Carreño

Revisado por: Ana Gatica Colima

Ciudad Juárez, Chihuahua

Universidad Autónoma de Ciudad Juárez

2009

p. 142

Complemento práctico del curso Morfofisiología de Cordados del Programa de Biología


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M. en C. S.P. Abraham Aquino Carreño

Coordinador de la Academia de Biología

D. Ph. Antonio de la Mora Covarrubias

Coordinador del Programa de Biología

Dr. Alejandro Martínez Martínez

Jefe del Departamento de Ciencias Químico-Biológicas

M.C. Hugo Staines Orozco

Director del Instituto de Ciencias Biomédicas

Comité editorial

M. en C. S. P. Abraham Aquino Carreño

M. en C. Ana Gatica Colima

M. en C. Guillermo Bojórquez Rangel

Dra. Helvia Rosa Pelayo Benavides


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INDICE

PRESENTACIÓN ................................................................................................ 2

PRÁCTICA 1. DESARROLLO EMBRIONARIO .................................................. 3

PRÁCTICA 2. TÉCNICA HISTOLÓGICA ............................................................ 9

PRÁCTICA 3. SISTEMA TEGUMENTARIO (Peces) ........................................ 21

PRÁCTICA 4. SISTEMA TEGUMENTARIO (Anfibios) ..................................... 27

PRÁCTICA 5. SISTEMA TEGUMENTARIO (Reptiles) ..................................... 33

PRÁCTICA 6. SISTEMA TEGUMENTARIO (Aves) .......................................... 39

PRÁCTICA 7. SISTEMA TEGUMENTARIO (Mamíferos) ................................. 45

PRÁCTICA 8. SISTEMA MUSCULAR (Músculo estriado) ................................ 52

PRÁCTICA 9. SISTEMA MUSCULAR (Músculo liso) ....................................... 58

PRÁCTICA 10. CONTRACCION MUSCULAR ................................................. 62

PRÁCTICA 11. ESQUELETICO (Peces Óseos y Cartilaginosos) ..................... 68

PRÁCTICA 12. ESQUELETICO (Cráneo de anfibios) ...................................... 75

PRÁCTICA 13. ESQUELETICO (Cráneo de reptiles) ....................................... 81

PRÁCTICA 14. ESQUELETICO (Cráneo de aves) ........................................... 89

PRÁCTICA 15. ESQUELETICO (Mamíferos) ................................................... 95

PRÁCTICA 16. COLUMNA VERTEBRAL ....................................................... 102

PRÁCTICA 17. TÉCNICAS DE REGISTRO GRÁFICO .................................. 110

PRÁCTICA 18. ACTIVIDAD DEL MIOCARDIO .............................................. 118

PRÁCTICA 19. CORAZON DE LA RANA ....................................................... 127

PRÁCTICA 20. CICLO CARDIACO EN TORTUGA ........................................ 133


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PRESENTACIÓN

La materia de Morfofisiología de Cordados (MFC) es una asignatura obligatoria

de la carrera de Biología de la Universidad Autónoma de Cd. Juárez (UACJ).

Esta materia involucra tanto aspectos teóricos como prácticos, por lo cual el

Manual de Prácticas de Morfofisiología de Cordados, surge como una respuesta

a la necesidad de reforzar los aspectos vistos en clase, con metodologías

prácticas de laboratorio aplicables a cada uno de los aspectos del contenido

temático del propio curso, presentados de una manera fácil y accesible para el

estudiante de Biología.

El Manual de Prácticas de Morfofisiología de Cordados, no pretende ser un texto

exhaustivo sobre los temas aquí tratados, sino una contribución a la formación

profesional de los alumnos, como una herramienta didáctica y de consulta para

algunos de los muchos y muy diversos aspectos de la anatomía y fisiología

animal.

Para lograr lo anterior, y dado que la materia es una asignatura integradora de

conocimientos, es deseable que el estudiante cuente con bases de Zoología

General, Embriología, Anatomía e Histología principalmente, así como observar

una actitud analítica de observación crítica y sobre todo participativa.

Este trabajo no hubiera sido posible sin el apoyo decidido del Departamento de

Ciencias Básicas del Instituto de Ciencias Biomédicas (ICB). Fue fundamental el

apoyo recibido por parte de la coordinación de la carrera de Biología, así como

de los comentarios y sugerencias de los maestros de la academia de Biología.


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PRÁCTICA 1. DESARROLLO EMBRIONARIO

Introducción

En general los organismos del reino animal son multicelulares, sus células

forman tejidos y estos a su vez forman órganos especializados para una función

o conjunto de funciones determinadas en un arreglo coordinado por sistemas y

aparatos. Son heterótrofos, son diploides, se pueden reproducir sexual y

asexualmente pero en sus ciclos de vida siempre incluyen un periodo de

desarrollo embrionario. La característica fundamental de los organismos

vivientes es su metabolismo especializado.

El desarrollo embrionario conlleva un conjunto de movimientos de partes del

embrión joven (movimientos morfogenéticos) y tiene como finalidad el esbozar

los órganos del embrión. De manera que al final hay un embrión con tres capas

de células perfectamente diferenciadas. Se desplazan los blastómeros. Dan

órganos ectodérmicos (de la superficie), mesodérmicos (porción intermedia) y

endodérmicos (en el interior). Todos estos procesos incluyen las siguientes

características:

La reordenación de las células por movimientos morfogenéticos.

Aumenta el ritmo de división celular.

Poco o nulo crecimiento (las células se segmentan pero no crecen mucho).

Se modifica el metabolismo, aumentando la oxidación. Aumenta la actividad de los núcleos para controlar los procesos que se dan

en las células embrionarias.

Comienza la síntesis de nuevas proteínas.


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Objetivos

1. El alumno conocerá las principales capas embrionarias de los cordados.

2. Identificará los principales tipos de tejidos en etapa embrionaria de los

animales.

3. Reconocerá los reagrupamientos celulares en estadios tempranos.

Materiales

1. Laminillas de cortes de diferentes tejidos embrionarios de Cordados

2. Laminillas de ovocitos en etapas de desarrollo temprano

3. Microscopio óptico (aceite de inmersión)4. Microscopio estereoscópico

Procedimiento

a) Observe y maneje cuidadosamente el material proporcionado

b) Observe las laminillas al microscopio óptico iniciando del menor al mayor

aumento.

c) Realice un dibujo de cada una de ellas utilizando diferentes aumentos y

anotando las estructuras observadas.

d) Determine el aumento y justifique

Bibliografía

Torrey, T. W. 1983. Morfogénesis de los Vertebrados. 3ª ed. Limusa. México,

México.

Weichert, Ch. K. Y W. Presch. 1981. Elementos de anatomía de los

cordados. McGraw-Hill. México.Ziswiler , V. 1978. Zoología especial. Vertebrados. Tomo I. Amniotas.

Omega. Barcelona.

Ziswiler , V. 1978. Zoología especial. Vertebrados. Tomo II. Amniotas.

Omega. Barcelona.


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Resultados

Esquematice lo observado en el microscopio (en objetivos de 40x y 100x)

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Cuestionario

1.- Describa los diferentes Subphyllum de Cordados y anote sus características.

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2.- Defina los siguientes términos: Neurulación, Segmentación espiral,

Segmentación radial, Diploide, Partenogénesis y Metazoario.

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3.- Defina los conceptos de animales protostomados y deuterostomados y de

ejemplos de cada uno de ellos.

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4.- Define los siguientes términos: Ontogenia y Filogenia. Una vez definidos,

¿consideras que la Ontogenia es una repetición de la Filogenia y por qué?

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Conclusiones

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Bibliografía consultada

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PRÁCTICA 2. TÉCNICA HISTOLÓGICA

Introducción

Los tejidos animales adquieren su forma inicial cuando la blástula, originada a

partir del óvulo fecundado, se diferencia en tres capas germinales: ectodermo,

mesodermo y endodermo. A medida que las células se van diferenciando

(histogénesis), determinados grupos de células dan lugar a unidades más

especializadas para formar órganos que se componen, en general, de varios

tejidos formados por células con la misma función.

Se pueden distinguir cuatro tipos básicos de tejidos:

1. Tejido Epitelial

2. Tejido Conjuntivo

3. Tejido Muscular

4. Tejido Nervioso

Preparación de tejidos para análisis histológicos

Fijación: es el tratamiento del tejido con sustancias químicas que retarden las

alteraciones tisulares subsecuentes a la muerte conservando su configuración

normal. Los más utilizados son la formalina amortiguada y el fijador de Bouin.

Deshidratación y aclaramiento: Debido a que una gran parte del tejido está

constituido por agua es necesario su remoción, para lo cual se utilizan cambios

graduales y paulatinos de alcohol etílico, iniciando con una concentración de

70% hasta llegar al 100% (deshidratación). A continuación el tejido se trata con

un solvente miscible en parafina fundida, los mas utilizados son el xileno,tolueno, benceno y cloroformo. A esta fase se le conoce también como

aclaramiento. Por último el tejido es impregnado en dos baños de parafina

fundida.


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Inclusión, corte y montaje: La inclusión consiste en colocar el tejido en un medio

rígido que permita obtener secciones delgadas (3 – 10 micras) para lo cual se

coloca en el molde de inclusión se rellena con parafina, se enfría y se desmolda.

Lo anterior para obtención de cortes con el microtomo rotatorio. Recordar que el

grosor del corte dependerá del tipo de tejido como de la finalidad del mismo y el

tipo de estructuras celulares que se desee observar.

Una vez realizados los cortes, estos son pasados al baño de flotación a

temperatura constante (45 – 50 ºC) para ser colocados en las laminillas.

(Recordar colocar grenetina en el baño de flotación para que el tejido se adhiera

al portaobjeto).

Coloraciones

Es de todos conocido que las imágenes que dan las preparaciones coloreadas

son más fáciles de interpretar que las imágenes con preparaciones incoloras. Es

por lo anterior que la técnica histológica de coloración tiene una gran importancia

para el estudio morfológico de células y tejidos.

Es conveniente recalcar la importancia de las observaciones en estado fresco y

sin tinción; tampoco olvidamos la facilidad con que se llegan a observar y

diferenciar muchas estructuras, por medio de colorantes, así como se puedepresentar el peligro de interpretar erróneamente los cortes.

Las coloraciones no son lo más importante en la Histología y que el papel del

histólogo no consiste en ser un buen teñidor, sino más bien en saber observar y

obtener de sus observaciones una correcta interpretación.

Objetivos

1. Aprender y poner en práctica los procedimientos básicos de la técnica

histológica para preparación de laminillas permanentes.

2. Aprender las técnicas básicas de tinción de tejidos.


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Procedimiento

1.- DISECCION DE ORGANISMOS (roedores y peces de agua dulce)

(Charola de disección, estuche de disección con navajas nuevas de bisturí,

cloroformo para anestesiar en caso de usar roedores).

2.- FIJACION Vasos o frascos con tapa-rosca donde quepan los cassettes

portatejidos con capacidad de 500 ml.

3.- PREPARACION DE FIJADORES

Formol neutro amortiguado o Formalina Buffer

(Recipiente de 1 litro)

Formol Q.P.------------------------------------------------100 cc

Agua destilada--------------------------------------------900 cc

Fosfato de Sodio Monobásico---------------------------4 g

(Cristal NaH2PO4.H2O)

Fosfato de Sodio Bibásico------------------------------6.5 g

(Cristal Na2HPO4)

Solución Bouin

(Calcular para recipiente de 1 litro)

Solución saturada de Ácido Pícrico al 10%----------75cc

Formol Q.P.---------------------------------------------------25cc

Ácido acético glacial---------------------------------------- 5cc

4.- DESHIDRATACION

Utilización del Histoquinette digital

Instrucciones para su programación


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RUTINA PARA MOLUSCOS Y PECES

Jarra 1 ------------------------------- Alcohol Etílico al 70% (volumen aprox. 4 cm

antes de llenarse)

Jarra 2 -------------------------------- Alcohol Etílico al 96% (volumen aprox. “)




Jarra 6 -------------------------------- Alcohol Etílico-Benceno (volumen aprox. “)

Jarra 7 -------------------------------- Benceno (volumen aprox. “)



Jarra 10 ------------------------------- Benceno (volumen aprox. “)

Jarra 11 ------------------------------- Parafina-Benceno (volumen aprox. “)

Jarra 12 ------------------------------- Parafina (volumen aprox. “)

*La jarras tienen que tener el volumen dicho, (de no ser así no funciona elaparato).

RUTINA PARA TÉCNICA DESHIDRATACIÓN HUMANOS

Si la muestra ha sido fijada durante 48 horas, pasar directo al alcohol del 50%.

1.- Alcohol del 50%-------------------------------1 hora

2.- Alcohol del 70%-------------------------------1 hora

3.- Alcohol del 80%-------------------------------1 hora

4.- Alcohol del 96%-------------------------------1 hora

5.- Alcohol del 96%-------------------------------1 hora

6.- Alcohol absoluto-------------------------------1 hora


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7.- Alcohol absoluto-------------------------------1 hora

8.- Acetona ------------------------------- 5 min.

9.- Acetona xileno --------------------------------5 min.

10.- Xileno -------------------------------- 5 min.

11.- Parafina xileno ------------------------------ de 15 a 30 min.

12.- Parafina -------------------------------- de 1 a 1.30 hrs.

TÉCNICA DE DESHIDRATACIÓN

1.- Lave con agua de la llave durante 1 a 12 horas.

2.- Alcohol del 70%---------------------------- 1 hora3.- Alcohol del 70%---------------------------- 1 hora

4.- Alcohol del 96%--------------------------- 2 horas

5.- Alcohol del 96%---------------------------- 2 horas

6.- Alcohol del l00%--------------------------- 2 horas

7.- Alcohol del l00%--------------------------- 2 horas

8.- Alcohol Xileno ----------------------------- 15 min.

9.- Xileno ----------------------------- 15 min.

10.- Parafina xileno---------------------------- 15 min.

11.- Parafina I ----------------------------- 2 horas

12.- Inclusión en parafina

NOTA: Los tiempos de deshidratación pueden variar. El histólogo conoce estas

variaciones que tienen que ver desde con qué tipo de organismo y órgano se

trabaja, el tamaño de la pieza, tipo de fijador utilizado, duración en el fijador,

hasta las marcas y concentraciones de los reactivos.


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5.- INCLUSION

Utilización del incluidor de parafina

2 -4 Kg de Parafina para procesamiento histológico

10 Moldes para bloques de parafina

6.- OBTENCION DE CORTES CON MICROTOMO

Utilización del microtomo

Bloques previamente incluidos en el paso anterior

Baño de flotación

Placa térmica para portaobjetos

Termómetro de 100 grados ºC

3 litros de agua destilada

5-10 gramos de gelatina grado reactivo

Un par de agujas de disección

Un pincel grueso y uno fino

50 Portaobjetos con extremo esmerilado

300 ml de Alcohol etílico al 30%

2-3 goteros

Rejilla metálica para colocar portaobjetos (capacidad 30 piezas)

Estufa incubadora calibrada a 65 grados ºC

7.-DESPARAFINACION E HIDRATACION

Termoplato cuadrado

3 cajas de vidrio para coloración (donde cabe la rejilla de 30 piezas)

Asa metálica para la rejilla


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1 litro de Xileno sin usar

300 ml de Alcohol etílico al 100% (*)


300 ml de Alcohol etílico al 7 0% (*)


300 ml de agua destilada

* Se requiere una caja para coloración o un recipiente con tapa de forma

cuadrada tipo toperware para sándwich.

8.- TINCIÓN CITOLÓGICA H-E

1.-Agua destilada -----------------------------------------

2.-Hematoxilina -----------------------------------------

3.-Alcohol ácido -----------------------------------------

4.-Agua corriente ----------------------------------------

5.-Agua amoniacal ----------------------------------------

6.-Agua destilada ----------------------------------------

7.-Alcohol etílico 96% -----------------------------------

8.-Eosina --------------------------------------

9.-Alcohol etilico 96% ----------------------------------

10.-Alcohol absoluto 96% --------------------------

11.- Alcohol absoluto 100% -------------------------

12.- Alcohol absoluto 100% -----------------------

13.- Alcohol absoluto-xileno-----------------------------

14.- Xileno --------------------------------------

15.- Xileno --------------------------------------


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* Si se quiere montar, limpiar muy bien y cubrir con resina.

Núcleos ------------------------------------------------------------ azules

Citoplasma -------------------------------------------------------- rosa ó naranja

PREPARACION DE REACTIVOS

HEMATOXILINA DE HARRIS

Hematoxilina cristalizada -------------------------------------- 1.0 gr.

Alcohol etílico absoluto ----------------------------------------- 10.0 ml.

Alumbre de Aluminio y potasio ------------------------------- 20 gr.

Oxido rojo de mercurio ----------------------------------------- 0.5 gr.

Agua destilada --------------------------------------------------- 200 ml.

*Calcular para 500 ml

Se disuelve la hematoxilina en el alcohol y el alumbre en el agua caliente; se

mezclan ambas soluciones. Se lleva la mezcla a ebullición y se agrega

rápidamente el óxido mercúrico. Cuando la mezcla toma color rojo púrpura se

retira del fuego y se enfría. Filtre antes de usar varias veces.

PREPARACION DE LA EOSINA

Solución acuosa al 1% de Eosina y/o

Solución alcohólica de Eosina y

Agregue una pizca de Orange G.

MONTAJE PERMANENTE DE CORTES

Se puede usar bálsamo de canadá previamente preparado o bien resina

sintética (cytoseal 60), la cual es de secado rápido y transparente ya que tiene el

mismo índice refracción del cristal del portaobjeto.


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Cubreobjetos grandes 22 X 40 mm.

Un rollo de papel secante

Un par de agujas de disección

Nota: Es conveniente realizar el proceso de montaje de preparaciones

permanentes en la campana de extracción para evitar cualquier contaminación

de la muestra.

Bibliografía

Junqueira L. C., y Carneiro J., Histología Básica, 3ª. Edición, Salvat Editores,

Barcelona, España, 1984.

Hildebrand, M. - Analysis of Vertebrate Structure. Ed. Wiley. Ed. Limusa.

Kardong, K. V. - Vertebrados. Anatomía Comparada, Función, Evolución. Ed.

McGraw-Hill.Interamericana.

Olivia Tapia Vázquez, Elías Torres Balcázar, Eva A. Inda Presichi, Juan Manuel

Álvarez Favela y Juan Manuel López Villalobos. Manual para el Curso Teórico

Práctico de Histología. Facultad de Ciencias, Universidad Autónoma de baja

California. Enero de 2002.

Rebeca Vásquez Yeomans y notas de Histología del Laboratorio de Biología y

Patología de Organismos Acuáticos de CICESE. Enero de 1998.


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Resultados

Anote sus observaciones del análisis microscópico por tipo de tejido.

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Cuestionario

1.- Anota y describe en qué consiste la técnica de coloración Tricómica de

Masson

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2.- Describe en qué consisten y para que se usan las técnicas argénticas de

coloración.

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3. Investiga cuales son los tiempos de deshidratación de tejidos nervioso y ,

en mamíferos.

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Conclusiones

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PRÁCTICA 3. SISTEMA TEGUMENTARIO (Peces)

Introducción

El tegumento (o piel) es un órgano compuesto. La epidermis se encuentra en la

superficie, por debajo de ella la dermis y entre ambas se sitúa la membrana

basal; (lamina basal y lamina reticular). La epidermis deriva del ectodermo y

genera la lámina basal. La dermis se desarrolla a partir del mesodermo y el

mesénquima y produce la lámina reticular. Entre el tegumento y la musculatura

profunda del cuerpo hay una región subcutánea transitoria formada por un tejido

conjuntivo muy laxo y por tejido adiposo. El tegumento es uno de los órganos

mayores del organismo, alcanza cerca del 15% del peso del cuerpo humano.

Juntas, epidermis y dermis forman una de las estructuras más variadas que se

encuentran en los vertebrados.

La dermis de muchos vertebrados produce directamente placas de hueso

mediante osificación intra membranosa. Debido a su fuente embrionaria y a la

posición inicial dentro de la dermis, estos huesos se denominan huesos

dérmicos. Son notables en los peces ostracodermos, pero aparecen

secundariamente incluso en grupos derivados, como algunas especies de

mamíferos.

El componente más conspicuo de la dermis es el tejido conjuntivo fibrosos

compuesto principalmente por fibras de colágeno. Estas pueden estar

entretejidas en diversos estratos denominados capas. La dermis del anfioxo, un

protocordado, muestra una distribución del colágeno especialmente ordenada

dentro de cada capa. A su vez, las capas tiene una disposición laminar con una

orientación muy regular pero alterna.

La epidermis de muchos vertebrados produce moco para humedecer la

superficie de la piel. En los peces, el moco parece proporcionar cierta protección


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contra las infecciones bacterianas y ayuda a asegurar el flujo laminar de agua a

lo largo de la superficie del cuerpo.

Objetivos

1.- El alumno conocerá los principales componentes de la piel de los peces.

2.- Identificará los derivados dérmicos de los peces.

3.- Identificará los diferentes tipos de escamas en los peces óseos y

cartilaginosos.

Materiales

1.- Ejemplares en fresco de peces óseos y cartilaginosos

2.- Laminillas de cortes de piel de peces

3.- Laminillas de tipos de escamas de peces

4.- Microscopio óptico y estereoscópico

5.- Bálsamo de Canadá, citospray (fijador en aerosol)

6.- Aceite de inmersión

Procedimiento

1.- Realice la toma de muestras de escamas de los peces proporcionados

2.- Observe y maneje cuidadosamente el material proporcionado

3.- Observe las laminillas al microscopio óptico iniciando del menor al mayor

aumento.

4.- Realice un dibujo de cada una de ellas. Determine el aumento y justifique.


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Bibliografía

Grassé, P. P. & Devillers, Ch.. - Zoología. Tomos III y IV. Ed. Toray-Masson.

Hickman, C.P., Roberts, L.S. y Larson, A. 2002. Zoología. Principios generales.

Ed. Interamericana McGraw-Hill.

Hildebrand, M. - Analysis of Vertebrate Structure. Ed. Wiley. Ed. Limusa.



Resultados

Esquematice lo observado, anote las estructuras y justifique sus anotaciones(objetivos de 40x y 100x):


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Cuestionario

1.- Describa cuatro de las principales funciones de la piel en los peces marinos y

de agua dulce.

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2.- Defina los siguientes términos: a) Membrana basal, b) Cromatóforo,

c) Melanina, d) Queratinocito, e) Célula glandular.

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3.- Describa en qué consiste la línea lateral de los peces y en que estrato de la

piel se encuentra.

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Conclusiones

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PRÁCTICA 4. SISTEMA TEGUMENTARIO (Anfibios)

Introducción

Al invadir el medio terrestre los cordados se enfrentaron al problema de la

desecación o pérdida de humedad. En los anfibios, el moco probablemente

cumple funciones de protección contra la desecación e impide que la piel se

seque durante la estancia del animal en tierra.

La piel que cubre el cuerpo de los vertebrados terrestres forma con frecuencia

una capa queratinizada o cornificada, el estrato corneo. Por divisiones mitóticasse forman nuevas células epidérmicas, principalmente en el estrato basal

profundo. Estas nuevas células epidérmicas empujan a las menos profundas

hacia la superficie, donde, de manera ordenada, tienden a la autodestrucción. Al

morir, acumulan diversos productos proteicos y con ellos forman queratina en un

proceso denominado queratinización. Así, la queratina es una clase de proteína

producida durante la queratinización, y en las células epidérmicas específicas

que participan son queratinocitos. El estrato corneo superficial resultante es una

capa muerta que sirve para reducir la perdida de agua a través de la piel en

medios terrestres secos.

Para evitar daños mecánicos en las zonas del cuerpo donde el roce es

frecuente, como las palmas de las manos o las palmas de los pies, el estrato

cornificado puede formar una gruesa capa protectora o callo. El estrato corneo

puede diferenciarse en pelos, pezuñas o vainas de cuerno u otras estructuras

cornificadas especializadas.

Objetivos

1. El alumno conocerá los principales componentes de la piel de los

Anfibios.


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2. Identificará los derivados epidérmicos y dérmicos de la piel de los

Anfibios.

3. Identificará los melanocitos epidérmicos y glándulas de veneno en la piel

de Anfibios.

Materiales

1. Material fresco de piel de salamandra o de rana

2. Laminillas de cortes de piel de anfibios

3. Microscopio óptico y estereoscópico

Procedimiento

Observe y maneje cuidadosamente el material proporcionado

Observe las laminillas al microscopio óptico iniciando del menor al mayoraumento.

Identifique las capas de la piel realizando un corte transversal

Observe las células pigmentadas de la epidérmis

Realice un dibujo de cada una de ellas. Determine el aumento y justifique.

Bibliografía



Pough, F. H.; Janis, C. H. & Heiser, J. B. - Vertebrate Life. Ed. Prentice-Hall.

Romer, A. & Parsons, T. - Anatomía Comparada. Ed. Interamericana.


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29

Resultados

Esquematice lo observado (en objetivo 40x y 200x):

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

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________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

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Cuestionario

1.- Describa las principales características celulares de la piel de anfibios.

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

2.- Defina los siguientes términos:

a) Glándula de veneno

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________ ________________________________________________________________

b) Cromatóforo

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

b) Melanóforo

________________________________________________________________

________________________________________________________________


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________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

c) Células de Leydig

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

3.- Describa en qué consiste el proceso de metamorfosis en Anfibios.

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________ ________________________________________________________________

4. Anote y describa al menos dos derivados epidérmicos y dos dérmicos de la

piel de anfibios.

_______________________________________________________________

_______________________________________________________________

_______________________________________________________________

_______________________________________________________________

_______________________________________________________________

_______________________________________________________________

_______________________________________________________________


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5.- Realice una tabla comparativa de los derivados epidérmicos en las subclases

de Anfibios.

Conclusiones

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________


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PRÁCTICA 5. SISTEMA TEGUMENTARIO (Reptiles)

Introducción

Por lo general la escama de los reptiles carece de hueso de soporte o de

cualquier otra contribución estructural significativa de la dermis. En su lugar, la

escama es un repliegue de la superficie epidérmica. La unión entre escamas

epidérmicas adyacentes es una bisagra flexible. Si la escama epidérmica es

grande y en forma de lámina, se la denomina escudo. Además, las escamas

epidérmicas pueden modificarse en crestas, espinas o salientes que semejan

cuernos.

Los huesos que soportan la epidermis se denominan osteodermos, placas de

hueso dérmico localizadas bajo las escamas epidérmicas. Se encuentran

osteodermos en los cocodrilos, algunos lagartos y ciertos reptiles extinguidos.

Algunos huesos de caparazón de la tortuga probablemente sean osteodermos

modificados.

La dermis de la piel de los reptiles está compuesta por tejido conjuntivo fibroso.

La epidermis generalmente presenta tres regiones delimitadas: estrato basal,

granulosos y corneo.

En unión con otros sistemas, el tegumento contribuye a la regulación osmótica, a

la circulación y al movimiento alternativo de los gases e iones.

La piel acumula el calor necesario, o irradia el exceso, y aloja a los órganos

sensoriales. Tiene plumas para la locomoción, pelos para el aislamiento y

cuernos para la defensa. Los pigmentos de la piel bloquean la dañina luz solar y

exhiben colores brillantes durante el cortejo.

Objetivos

1. El alumno identificará los principales tipos de escamas de la piel de los

reptiles

2. Identificará los componentes derivados epidérmicos de los reptiles


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Resultados

Realice sus dibujos de las partes de los tipos de escamas


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Esquematice lo observado, justifique anotando los nombres de las estructuras

(en objetivos 40x y 100x):

________________________________________________________________

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________________________________________________________________ ________________________________________________________________

Cuestionario

1.- Describa las principales funciones de la piel de reptiles.

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

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a) Estrato intermedio

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b) Glándula odorífera en Quelonios

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c) Osteodermos

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________________________________________________________________

________________________________________________________________

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d) Glándula sebácea en reptiles ________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

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3.- Describa en qué consiste el proceso de queratinización en la piel de reptiles

________________________________________________________________

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Conclusiones

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PRÁCTICA 6. SISTEMA TEGUMENTARIO (Aves)

Introducción

La dermis de la piel de las aves, especialmente cerca de los folículos plumosos,

esta ricamente provista de vasos sanguíneos, terminaciones nerviosas

sensoriales y músculos lisos. Durante la época de cría, la dermis del pecho de

algunas aves se vuelve muy vascularizada, formando un «terreno» incubador en

el que la sangre caliente puede estar en estrecha asociación con los huevos

incubados.

La piel de las aves tiene pocas glándulas. La glándula uropigial, localizada en la

base de la cola secreta un producto lipoprotéico que las aves recogen con los

laterales del pico y luego untan en sus plumas. La otra glándula es la glándula

de la sal, que se localiza en la cabeza de algunas aves y está bien desarrollada

en las aves marinas. La glándula de la sal excreta el exceso de sal obtenido

cuando estas aves ingieren alimento marino y agua de mar.

Las plumas distinguen a las aves de otros vertebrados. Pueden ser

estructuralmente complejas y mostrar formas variadas. Son derivados de la piel,

sin elementos vasculares ni nerviosos, principalmente de la epidermis y del

sistema queratinizado. Están situadas en la superficie del cuerpo a lo largo de

tramos diferentes denominados pterilas.

Embriológicamente se desarrollan a partir de folículos plumosos, invaginaciones

de la epidermis que se introducen en la dermis adyacente. La raíz del folículo

plumoso en asociación con la cavidad de la pulpa dérmica, comienza a formar la

pluma. Esta crece hacia fuera dentro de un estuche o cubierta. En el interior del

estuche el eje central se divide en dos partes: un raquis distal, que lleva barbas

con conexiones que se enganchan denominadas bárbulas y un cálamo proximal

que se fija al cuerpo.


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40

Las plumas de vuelo de las alas, remiges o remeras, se caracterizan por tener

un raquis largo y una prominente bandera o vexilo. Aunque estas plumas poseen

alguna utilidad como aislantes, su función primaria es la locomoción. La mayoría

de las plumas reciben estímulos sensoriales y llevan colores para la exhibición o

el cortejo. En la epidermis hay cromatóforos y sus pigmentos son transportados

a las plumas para darle color, Así mismo la refracción de la luz en las barbas y

bárbulas de la pluma. También crea ciertos tipos de colores iridiscentes.

Objetivos

1. El alumno identificará los principales tipos de plumas de la piel de las aves

2. Identificará los componentes de las plumas y sus derivados epidérmicos

Materiales

1. Material fresco de piel de aves

2. Plumas de diferentes partes del cuerpo de una ave

3. Laminillas permanentes de plumas

4. Microscopio óptico y estereoscópico

Procedimiento

1. Observe y maneje cuidadosamente el material proporcionado

2. Observe las laminillas al microscopio óptico iniciando del menor al mayoraumento.

3. Realice una preparación permanente de una filopluma y un plumón

4. Realice un dibujo de cada una de ellas. Identifique las partes de las plumas

Determine el aumento y justifique.

Bibliografía



Pough, F. H.; Janis, C. H. & Heiser, J. B. - Vertebrate Life. Ed. Prentice-Hall.

Romer, A. & Parsons, T. - Anatomía Comparada. Ed. Interamericana.


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Resultados

Esquematice lo observado (en objetivos 40x y 100x):

________________________________________________________________ ________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

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Cuestionario

1.- Describa en qué consiste el proceso de formación de las plumas de las aves

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________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

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2.- Investigue como se explica el origen de las plumas de las aves a partir de

escamas de reptiles ancestrales

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________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

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________________________________________________________________

________________________________________________________________

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3.- Realice una tabla comparativa de las funciones de los tipos de plumas

presentes en las aves de presa.

TIPO DE PLUMA FUNCION


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Conclusiones

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________ ________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

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PRÁCTICA 7. SISTEMA TEGUMENTARIO (Mamíferos)

Introducción

La epidermis de los mamíferos puede estar localmente especializada como

pelos, uñas, o glándulas. Las células queratinizadas superficiales son

continuamente exfoliadas y sustituidas por células que proceden básicamente de

la capa más profunda de la epidermis, el estrato basal. Las células basales se

dividen mitóticamente, y de las células resultantes unas quedan para mantener

la población de células troncales y otras son empujadas hacia la superficie.

Los queratinocitos constituyen el principal tipo celular de la epidermis. Se

reconocen otros tipos, aunque sus funciones son menos conocidas. Las células

de Langerhans son células estrelladas que se encuentran dispersas solo en la

parte superior del estrato espinoso. En la actualidad existen evidencias que

sugieren que tienen un importante papel en las acciones de intervención celular

del sistema inmunitario. Las células de Merkel, originadas en las crestas

neurales y asociadas con los nervios sensoriales cercanos, se cree que

responden a la estimulación táctil (mecanoreceptores).

Además de estos tipos celulares, otro tipo celular destacado y que

secundariamente se asocia a la epidermis es el cromatóforo. Los cromatóforos

provienen de células de la cresta neural embrionaria y la mayoría puede

encontrarse en cualquier parte del cuerpo.

La dermis de los mamíferos es una capa doble. La más externa, o capa papilar,

emite salientes digitales en la epidermis superior, denominados papilas

dérmicas. La capa reticular, más profunda, incluye tejido conjuntivo fibroso

irregularmente distribuido y que fija la dermis a la fascia subyacente. Vasos

sanguíneos, nervios y músculo liso ocupan la dermis pero no alcanzan la

epidermis.


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46

El origen filogenético del pelo permanece especulativo. Una de las teorías

supone que el pelo se origino inicialmente como una superficie de aislamiento

reteniendo el calor del cuerpo en los mamíferos primitivos endotermos. Una

teoría alternativa es la que propone que el pelo evolucionó primero como

diminutas varillas que se extendían entre las ranuras de las escamas, y que

sirvieron como mecanismos táctiles.

Objetivos

1. El alumno conocerá los principales componentes de la piel de mamíferos

2. Identificará los derivados epidérmicos y dérmicos de la piel de mamíferos

Materiales

1. Material fresco de piel de mamíferos2. Laminillas de pelos de diferentes mamíferos

3. Microscopio óptico y estereoscopio

Procedimiento


2. Observe las laminillas al microscopio óptico iniciando del menor al mayor

aumento.

3. Realice un dibujo de cada una de ellas.4. Identifique las partes.

5. Determine el aumento y justifique.

Bibliografía

Eckert R., Randall, D. & Augustine G. 1994. adaptaciones, 3ª. Ed.,

Interamericana-McGraw-Hills, México. 683 pp.

Romer, A.S., y T. S.Parsons. 1981. Anatomía Comparada. Quinta Edición.Interamericana, México.

Hildebrand, M. 1982. Anatomía y embriología de los vertebrados. Limusa,

México. Limusa México.


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Resultados

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________ ________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

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Cuestionario

1.- Anote y describa cuatro de las principales funciones de la piel de mamíferos.

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a) Glándulas céreas

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________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

b) Glándulas del Meibomio

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________________________________________________________________

c) Glándulas sudoríparas

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________________________________________________________________

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d) Glándulas sebáceas.

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3.- Describa en qué consiste el proceso de formación de garras y uñas.

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4.- Mencione la diferencia entre cuernos y astas.

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Esquematice y justifique anotando las estructuras observadas en objetivos 40x y

100x):

Resultados

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PRÁCTICA 8. SISTEMA MUSCULAR (Músculo estriado)

Introducción

Visto con un microscopio, el músculo esquelético parece tener bandas

transversales o estriaciones que resultan de su estructura fundamental. El M.E.

también está bajo control voluntario y generalmente se encuentra asociado con

huesos y cartílagos. Sus células son multinucleadas, con muchos núcleos

distribuidos por su citoplasma. Las células individuales generalmente son

menores de 5 cm. de largo, unidad por los extremos para formar fibras

compuestas más largas. Internamente, cada célula muscular esquelética está

formada por un paquete de unidades alargadas llamadas miofibrillas.

Cada miofibrilla está formada por sarcómeros, que a su vez están formados por

miofilamentos de dos clases: filamentos finos y gruesos. Al microscopio

electrónico, los filamentos finos y gruesos aparecen altamente ordenados y su

diseño se repite en cada sarcómero, dando estos un modelo diferenciado a

bandas. Las miofibrilas se alinean ordenadamente, el efecto total da un patrón

totalmente estriado, visible incluso con el microscopio lumínico.

Los músculos esqueléticos suministran la fuerza que mueve el esqueleto. La

parte carnosa de un músculo es el vientre (gaster), y los extremos que se unen

al esqueleto u órganos adyacentes forman las inserciones. El músculo bíceps

braquial, del brazo, está compuesto de células musculares empaquetadas, como

todos los músculos esqueléticos. Cada célula muscular esta ligeramente

envuelta por una capa de tejido conjuntivo, el endomisio.

Los grupos de células musculares están envueltas en un perimisio. El músculo

completo está rodeado por una capa externa de tejido conjuntivo, el epimisio. Un

fascículo se refiere a un paquete de células musculares definido por su perimisio

particular.


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Objetivos

1. Identificar las estructuras más importantes del músculo esquelético

2. Diferenciar los componentes del sistema muscular

3. Reconocer las características celulares del músculo esquelético.Materiales

1. Microscopio óptico

2. Disección de tejido muscular estriado

3. Estuche de disección

4. Laminillas histológicas

Procedimiento

1. Observe y maneje cuidadosamente el material proporcionado2. Observe las laminillas al microscopio óptico iniciando del menor al mayor

aumento.

3. Realice un dibujo de cada una de ellas. Identifique las partes. Determine el

aumento y justifique.

Bibliografía

Silverstein A., y V. B. Silverstein. 1972. The Muscular SystemHow livingcreatures move. Prentice Hall.


cordados. McGraw-Hill. México.


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Resultados

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________ ________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

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Esquematice y justifique lo observado (en objetivos 40x y 100x):


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Cuestionario

1.- Describe el origen embrionario del tejido muscular en cordados

________________________________________________________________

________________________________________________________________ ________________________________________________________________

________________________________________________________________

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2.- Define los siguientes términos:

a) Sarcómero ________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

________________________________________________________________

b) Miofibrilla

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________________________________________________________________

________________________________________________________________

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________________________________________________________________

c) Bandas Z

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3.- Describe en qué consiste el proceso de contracción muscular.

________________________________________________________________

________________________________________________________________

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________________________________________________________________

4.- Describe en qué consiste el proceso de tetanía

________________________________________________________________

________________________________________________________________

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Conclusiones

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PRÁCTICA 9. SISTEMA MUSCULAR (Músculo liso)

Introducción

Como su nombre lo indica, “liso”, este músculo carece de estriaciones, se

relaciona casi completamente con las funciones viscerales: tracto digestivo,

vasos sanguíneos, pulmones, de manera que también es un tipo de músculo

visceral.

La actividad del músculo liso esta fuera del control voluntario. De forma

característica las contracciones son lentas y sostenidas comparadas con las

contracciones rápidas del músculo esquelético. Por consiguiente, el músculo liso

es adecuado para esfínteres, donde la fatiga podría significar una inoportuna

pérdida de control. Cada célula muscular lisa es mononucleada, corta yfusiforme. Todas tienen un tamaño aproximado

Las células del músculo liso están unidas unas a otras mediante uniones

especializadas para formar capas. Estas capas están enrolladas alrededor de

los órganos sobre los que ejercen un control mecánico. El mecanismo molecular

de contracción no es también conocido como el del músculo estriado, pero

generalmente se acepta que está basado en un mecanismo de deslizamiento de

los filamentos.

Objetivos

1. Identificar las estructuras más importantes del músculo liso.

2. Diferenciar los componentes del músculo liso

Materiales

1. Microscopio



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Procedimiento


2. Observe las laminillas al microscopio óptico iniciando del menor al mayor

aumento.3. Realice un dibujo de cada una de ellas. Identifique las partes. Determine el

aumento y justifique.

Bibliografía

Romer, A.S., y T. S.Parsons. 1981. Anatomía Comparada. Quinta Edición.

Interamericana, México.

Silverstein A., y V. B. Silverstein. 1972. The Muscular SystemHow living

creatures move. Prentice Hall.


cordados. McGraw-Hill. México.

Resultados

Esquematice y justifique lo observado (en objetivos 40x y 100x):


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Cuestionario

1.- Describe el origen embrionario del músculo liso de cordados

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2.- Describe en donde se ubican los principales sitios donde se ubica el músculo

liso de los cordados

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________________________________________________________________

________________________________________________________________

3.- Realiza un esquema de las células del músculo liso.


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Conclusiones

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________________________________________________________________

________________________________________________________________

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PRÁCTICA 10. CONTRACCION MUSCULAR

Introducción

Un músculo esta relajado o en un estado de reposo, cuando no recibe

estimulación nerviosa. El músculo de un órgano en estado de reposo es blando,

y las fibras de colágeno que rodean al músculo mantienen su forma durante esta

fase. El músculo no genera fuerza y si se le aplica una fuerza tensora, se alarga

la resistencia a la fuerza tensora procede de las fibras de colágeno. Cuando los

nervios estimulan a un músculo a su nivel umbral, produce una contracción y

genera una fuerza tensora que constituye el estado activo de un músculo. El

hueso al que el músculo se fija y la masa que debe mover, representan una

resistencia externa denominada carga. En todo caso, un músculo que realmente

se acorta por concentración depende del equilibrio relativo entre la fuerza

tensora de contracción y la carga que tiene que mover.

Las contracciones musculares son activas y producen fuerza, pero no pueden

estirarse para separar sus lugares de fijación. La química subyacente de la

contracción muscular se basa en filamentos deslizantes de proteínas musculares

que se deslizan entre sí para acorta el músculo. En el músculo esquelético, la

contracción implica la existencia de puentes transversales químicos que se

forman y vuelven a formar entre los filamentos gruesos y finos para que estos

filamentos se deslicen entre sí, el efecto de su deslizamiento es para acortar el

sarcómero del cual forman parte.

El sarcolema (membrana celular) se invagina dentro de la célula muscular a

intervalos regulares y en asociación con el retículo sarcoplasmático. El extremo

de la neurona inervante, conocido como la palca motora, inicia las ondaseléctricas de despolarización del sarcolema. El sarcolema amplia el estimulo de

propagación a todas partes de célula muscular. Dentro de la fibra muscular, esta

onda eléctrica de despolarización estimula los eventos químicos locales, lo que

produce el deslizamiento de los filamentos musculares.


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63

Debido a que la contracción tiene lugar simultáneamente a través de todos los

sarcómeros, el resultado total es que los sarcómeros de la cadena se acortan

juntos, lo que encoge la fibra muscular que a su vez genera una fuerza tensora.

Objetivos1. Identificar los mecanismos de la contracción muscular.

2. Relacionar las características morfológicas y fisiológicas propias de la

contracción muscular.

Materiales

1. Microscopio óptico

2. Disección de tejido muscular estriado de ratón

3. Solución ringer (fisiológica)4. Estuche de disección


Procedimiento

1. Es deseable que el organismo (mamífero, reptil o anfibio) se sacrifique por

descerebración

2. Realizar disección del músculo gastrocnemio

3. Medir longitud inicial (antes del estimulo) y longitud final (despué

Documents

Manual Laboratorio Cordados