i  

UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR

FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA

CARRERA DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA

INDUCCIÓN DE SUPEROVULACIÓN EN COBAYAS PRIMERIZAS,

USANDO GONADOTROPINA SÉRICA CON TRES DOSIS

DIFERENTES

Trabajo de Grado presentado como requisito parcial para optar el

título de MEDICO VETERINARIO ZOOTECNISTA Grado

Académico de Médico Veterinario Zootecnista

MARÍA CAROLINA BARAHONA PAUTA

ORLANDO MAURICIO QUISHPE ERAZO

TUTOR

DR. FRANCISCO LEÓN ARROBA

QUITO, julio, 2012

ii  

DEDICATORIA

Ahora al culminar mi carrera quiero agradecer primero a Diosito, por ser

quien me ha acompañado en cada instante de mi vida, a mis papitos por

la confianza depositada en mi, el apoyo y sobre todo la paciencia, dedico

a ellos mi esfuerzo, por ser mi ejemplo a seguir. A mi hijito bello, quien es

ahora mi motor y mi razón para superarme cada día. A mis hermanos que

son un espejo en el cual siempre querré reflejarme, por su ejemplo de

superación.

A mis cuñados, tíos, primos y amigos, que han compartido conmigo

buenos y malos momentos.

A todos gracias.

Ma. Carolina Barahona P

iii  

DEDICATORIA

A mi Madre que ya partió a la presencia del Altísimo, dedicarle esta tesis,

quien incondicionalmente me apoyó con su espíritu alentador,

contribuyendo a lograr mis metas y todos mis objetivos propuestos, quien

al brindarme su amor y ejemplo de perseverancia me impulsó a

conseguirlo.

A mis hermanas que me acompañaron a lo largo del camino,

brindándome la fuerza y el ánimo necesario para continuar adelante, de

igual forma ayudándome en todo lo que fuera posible, para conseguir lo

alcanzado hasta hoy.

Orlando M. Quishpe Erazo

iv  

AGRADECIMIENTO

Un agradecimiento muy especial al Dr. Fernando Díaz, quien ha sabido

con su paciencia impartirnos sus conocimientos, brindarnos ayuda y ser

un guía incondicional en el desarrollo de nuestro trabajo.

Al Dr. Francisco León, por compartir su tiempo y conocimientos en la

guianza del desarrollo de nuestra tesis.

Al Dr. Richard Rodríguez, por su dedicación y empeño. Por haber ejercido

presión y a la vez ayudarnos, para que nuestro trabajo se desarrolle de la

manera correcta.

A los Doctores, Julio Soria, Miguel Jumbo, Cesar Obando y Gilberto

Villacis, por habernos permitido compartir con ustedes, un paso muy

importante en nuestras vidas y formar parte de un sueño cumplido, desde

nuestro primer día en la facultad, hasta nuestra salida.

v  

vi  

INFORME DE APROBACIÓN DEL TUTOR

En mi carácter de Tutor del Trabajo de Grado, presentado por la señorita

María Carolina Barahona Pauta y el señor Orlando Mauricio Quishpe

Erazo para optar el Título o Grado de Médico Veterinario Zootecnista,

cuyo título es de Inducción de superovulación en cobayas primerizas,

usando Gonadotropina Sérica con tres dosis diferentes.

Considero que dicho trabajo reúne los requisitos y méritos suficientes para

ser sometido a la presentación pública y evaluación por parte del jurado

examinador que se designe.

En la ciudad de Quito a los 16 de julio del mes de julio del 2012.

Dr. Francisco León Arroba.

Cd. N° 170327273-0

Firma

vii  

APROBACIÓN DEL TRABAJO/TRIBUNAL

INDUCCIÓN DE SUPEROVULACIÓN EN COBAYAS PRIMERIZAS,

USANDO GONADOTROPINA SÉRICA CON TRES DOSIS

DIFERENTES

El Tribunal constituido por:

Dr. Francisco León Arroba, Dr. Julio Soria, Dr. Miguel Jumbo, Dr. Cesar

Obando, Dr. Richard Rodríguez, Dr. Gilberto Villacis.

Luego de receptar la presentación del trabajo previo a la obtención del

título o grado de MEDICO VETERINARIO ZOOTECNISTA, presentado

por la Srta. María Carolina Barahona Pauta y el Sr. Orlando Mauricio

Quishpe Erazo.

Con el título: INDUCCIÓN DE SUPEROVULACIÓN EN COBAYAS PRIMERIZAS, USANDO GONADOTROPINA SÉRICA CON TRES DOSIS DIFERENTES

Ha emitido el siguiente veredicto: Declarar como aprobado, posterior a su respectiva defensa de tesis

Fecha: 16 de julio del 2012

Para constancia de lo actuado:

Dr. Francisco León Arroba

Director de Tesis

Dr. Julio Soria

Presidente

Dr. Miguel Jumbo

Vocal Principal

Dr. Cesar Obando

Vocal Principal

Dr. Richard Rodríguez

Biometrista

Dr. Gilberto Villacis

Vocal Suplente

viii  

CONTENIDO

Pág.

INTRODUCCIÓN 1

OBJETIVOS 3

CAPÍTULO I

REVISIÓN LITERARIA 4

Generalidades 4

Origen del cuy 4

Descripción zoológica 5

Tipo de cuyes 5

Clasificación según la conformación 6

Tipo A 5

Tipo B 6

Clasificación según el pelaje 6

Tipo 1 6

Tipo 2 6

Tipo 3 6

Tipo 4 6

Clasificación según la coloración del pelaje 7

Pelaje Simple 8

Pelaje Compuesto 9

Reproducción 10

Aparato reproductor de la hembra 10

ix  

Ovarios 10

Oviducto 11

Útero 11

Vagina 11

Vulva 12

Glándulas mamarias 12

Aparato reproductor del macho 12

Testículos 12

Epidídimo 13

Glándulas vesiculares 13

Próstata 13

Glándulas bulbo uretrales 13

Pene 13

Manejo de reproductores 14

Pubertad 14

Ciclo estral 14

Proestro 14

Estro 15

Metaestro 15

Diestro 15

Ovulación y Fecundación 16

Empadre o acoplamiento 16

Edad del empadre 17

x  

Densidad de crías 18

Densidad de empadre 19

Sistemas de empadre 20

Empadre continuo, intensivo o posparto 21

Empadre semi intensivo, posdestete o técnico 22

Empadre controlado 22

Diagnóstico de preñez 24

Método clínico 24

Método de laboratorio 24

Factores que impiden la fecundidad 24

Consanguinidad 24

Alimentación 24

Coito infecundo 24

Frigidez de la hembra 25

Pseudo preñez 25

Gestación 25

Parto 26

Lactancia 28

Curva de lactancia en cuyes 28

Características de los lactantes 29

Destete 30

Alimentación 30

Hormonas 32

xi  

Gonadotropinas pituitarias FSH-LH 32

Estructura química y síntesis 33

Acciones fisiológicas 34

Mecanismo de acción 35

Control de la secreción 35

Gonadotropina no hipofisiarias 37

Gonadotropina de suero de yegua preñada (PMSG) 37

Gonadotropina coriónica humana (hCG) 39

Superovulación 39

CAPÍTULO II

MATERIALES Y METODOS 41

Materiales 41

Animales 41

Materiales de campo 41

Métodos 42

Características de las unidades experimentales 42

Hembras 42

Machos 42

Características del área del experimento 42

Ubicación 42

Geográficas 43

Ecológicas 43

Manejo del experimento 43

xii  

CAPÍTULO II

RESULTADOS Y DISCUSIÓN 48

CAPÍTULO IV

CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES 96

CAPÍTULO V

LITERATURA CITADA 98

CAPÍTULO VI

ANEXOS 100

xiii  

ÍNDICE DE ANEXOS

Anexo A. Registro número de crías al nacimiento 100

Anexo B. Registro número de crías a la semana 100

Anexo C. Registro número de crías al destete 101

Anexo D. Registro de fertilidad y concepción por grupo 101

Anexo E. Determinación del porcentaje de concepción por cada

tratamiento 102

Anexo F. Número de gazapos al nacimiento vivos muertos y momificados

103

Anexo G. Mortalidad de gazapos al nacimiento, semana y destete 104

Anexo H. Peso gazapos al nacimiento, semana y destete del T 105

Anexo I. Peso gazapos al nacimiento, semana y destete del E1 106

Anexo J. Peso gazapos al nacimiento, semana y destete del E2 107

Anexo K. Peso gazapos al nacimiento, semana y destete del E3 108

Anexo L. Fórmulas para obtener fertilidad y concepción 109

Anexo M. Costos totales 110

Anexo N. Registro semanal de consumo de alimento Testigo 111

Anexo Ñ. Registro semanal de consumo de alimento

Experimental 1 112

Anexo O. Registro semanal de consumo de alimento

Experimental 2 113

Anexo P. Registro semanal de consumo de alimento

Experimental 3 114

Anexo Q. Limpieza y desinfección de las pozas 115

xiv  

Anexo Q1. Limpieza y desinfección de las pozas 115

Anexo Q2. Limpieza y desinfección de las pozas 115

Anexo Q3. Limpieza y desinfección de las pozas 115

Anexo R. Identificación de las pozas 116

Anexo S. Selección y pesaje de las hembras 116

Anexo S1. Selección y pesaje de las hembras 116

Anexo S2. Selección y pesaje de las hembras 116

Anexo S3. Selección y pesaje de las hembras 116

Anexo T. Distribución de las hembras en las pozas 117

Anexo T1. Distribución de las hembras en las pozas 117

Anexo T2. Distribución de las hembras en las pozas 117

Anexo U. Inoculación de la PMSG vía SC 117

Anexo U1. Inoculación de la PMSG vía SC 117

Anexo U2. Inoculación de la PMSG vía SC 117

Anexo V. Selección del macho reproductor probado 118

Anexo W. Pesaje de alimento 118

Anexo W1. Pesaje de alimento 118

Anexo W2. Pesaje de alimento 118

Anexo X. Hembras preñadas 119

Anexo X1. Hembras preñadas 119

Anexo X2. Hembras preñadas 119

Anexo Y. Nacimiento de crías 119

Anexo Y1. Nacimiento de crías 119

xv  

Anexo Y2. Nacimiento de crías 119

Anexo Z. Pesaje e identificación de crías 120

Anexo Z1. Pesaje e identificación de crías 120

Anexo Z2. Pesaje e identificación de crías 120

Anexo Z3. Pesaje e identificación de crías 120

xvi  

ÍNDICE DE CUADROS

Cuadro № 1 Finura del pelo de los cuyes según los diferentes tipos... 8

Cuadro № 2 Ciclo estral de la cuya.………..…………………………… 15

Cuadro № 3 Parámetros Reproductivos……….……….……… 26

Cuadro № 4 Consumo de alimento 46

Cuadro № 5 Composición del balanceado……..….…………………… 47

Cuadro № 6Resumen de datos reproductivos obtenidos en el

experimento. 48

Cuadro № 7 Medidas de tendencia central, número de crías al

nacimiento. 51

Cuadro № 8 ANADEVA número de crías al nacimiento.. 52

Cuadro № 9 DUNCAN al 5% número de crías al nacimiento……… ….53

Cuadro № 10 DUNCAN al 1% número de crías al nacimiento.......... .54

Cuadro № 11 Medidas de tendencia central número de crías semana 57

Cuadro № 12 ANADEVA número de crías a la semana……………… 58

Cuadro № 13 DUNCAN al 5% número de crías a la semana…...….… 59

Cuadro № 14 DUNCAN al 1% número de crías a la semana....………. 60

Cuadro № 15 Medidas de tendencia central número de crías al destete.62

Cuadro № 16 ANADEVA número de crías al destete…………….… …..63

Cuadro № 17 DUNCAN al 5% número de crías al destete………… 64

Cuadro № 18 DUNCAN al 1% número de crías al destete………… 65

Cuadro № 19 Medidas de tendencia central pesos al nacimiento….….. 67

Cuadro № 20 ANADEVA pesos al nacimiento……...………………… …68

xvii  

Cuadro № 21 DMS al 5% pesos al nacimiento…………….…………… 70

Cuadro № 22 DMS al 1% pesos al nacimiento……………….……… …71

Cuadro № 23 DUNCAN al 5% pesos al nacimiento…….…….………. 72

Cuadro № 24 DUNCAN al 1% pesos al nacimiento 73

Cuadro № 25 Medidas de tendencia central pesos a la semana…. 76

Cuadro № 26 ANADEVA pesos a la semana……..………………… … 77

Cuadro № 27 DMS al 5% pesos a la semana………………… 79

Cuadro № 28 DMS al 1% pesos a la semana……………………… 80

Cuadro № 29 DUNACAN al 5% pesos a la semana………………… 81

Cuadro № 30 DUNACAN al 1% pesos a la semana………………… …82

Cuadro № 31 Medidas de tendencia central pesos al destete…………85

Cuadro № 32 ANADEVA pesos al destete………………………………..86 Cuadro № 33 DMS al 5% pesos al destete…...…………………………..88

Cuadro № 34 DMS al 1% pesos al destete………………………...……..89

Cuadro № 35 DUNCA al 5% pesos al destete…………………………....90

Cuadro № 36 DUNCA al 1% pesos al destete……………………………91

Cuadro № 37 Costo parcial de las crías por tratamiento…...………...…94

xviii  

ÍNDICE DE GRÁFICOS

Gráfico № 1 Curva de lactación en cuyes………………….……………29

Gráfico № 2 Disposición de los tratamientos 45

Gráfico № 3 Número de crías al nacimiento…………………………… 56

Gráfico № 4 Número de crías a la semana……… 61

Gráfico № 5 Número de crías al destete..…….. 66

Gráfico № 6 Promedio de pesos al nacimiento……..…………………. 75

Gráfico № 7 Promedio de pesos a la semana……..……..……………..84

Gráfico № 8 Promedio de pesos al destete…………….……………..…93

xix  

UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR

FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA

CARRERA DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA

INDUCCIÓN DE SUPEROVULACIÓN EN COBAYAS PRIMERIZAS, USANDO

GONADOTROPINA SÉRICA CON TRES DOSIS DIFERENTES

Autores: Ma. Carolina Barahona - Orlando M. Quishpe

Tutor: Dr. Francisco León Arroba

Fecha: 17 de Julio del 2012

RESUMEN

La superovulación podría contribuir con un mayor número de crías y así

incrementar la producción de cobayos. El objetivo de este estudio fue estimular

superovulación en cobayas, usando Gonadotropina Coriónica Equina (eCG). Se

incluyeron 16 cobayas primerizas de 12 semanas de edad, con un peso

aproximado de 1200g y un macho reproductor de 1500g, distribuidos en 4

grupos: Experimental 1(E1) con 10UI de la hormona, E2 con 20UI, E3 con 30UI y

el control, todos recibieron alimentación y manejo idénticos. El diagnostico de

gestación se realizó por examen clínico de palpación. Se registró, número de

crías y pesos al nacimiento, semana y destete. La concepción y fertilidad entre

tratamientos tuvo una marcada diferencia, por falta de concepción de algunas

hembras. El E3 tuvo un mayor número de crías al nacimiento, dando un 0,53%

de probabilidad de que éste sea un mejor tratamiento, aunque estadísticamente

no fue significativo. Al nacimiento no todas las crías llegaron al peso promedio,

muriendo a pocos días, mientras otros superaron el peso promedio, llegando al

destete con 284 gramos, superando el peso promedio de 232,6 gramos.

PALABRAS CLAVES:

REPRODUCCION / COBAYAS / GONADOTROPINA CORIONICA EQUINA / SUPEROVULACION.

xx  

SUPEROVULATION INDUCTION ON GUINEA PIGS IN THE FIRST PERIOD

OF PREGNANCY, USING SERUM GONADOTROPIN WITH THREE

DIFFERENT DOSES

SUMMARY 

Superovulation could contribute to a greater number of offspring and thus

increase the production of guinea pigs. The aim of this study was to stimulate

superovulation in guinea pigs by the use of equine chorionic gonadotropin (eCG).

In total, the study included 16 guinea pigs of 12 weeks old with a weight between

1200g and 1500g, divided into 4 groups: Experiment 1 (E1) with 10UI of the

hormone, with 20UI E2, E3 and control 30UI all received identical feeding and

management. Pregnancy diagnosis was performed by clinical examination

palpation. Joined, progeny and birth weight, weaning week. The conception and

fertility between treatments was a marked difference, for lack of understanding of

some females. The E3 had a higher number of newborns, giving a 0.53%

probability that this is a better treatment, but was not statistically significant. At

birth all pups not reached the average weight, dying a few days, while others

exceeded the average weight, weaning coming with 284 grams, exceeding the

average weight of 232.6 grams.

KEYWORDS

REPRODUCTION / GUINEA PIGS / EQUINE CHORIONIC GONADOTROPIN /

SUPEROVULATION.

 

1  

INTRODUCCIÓN

Las ventajas de la crianza de cuyes incluyen: su calidad de especie

herbívora, su ciclo reproductivo corto, la facilidad de adaptación a

diferentes ecosistemas y su alimentación versátil que utiliza insumos no

competitivos con la alimentación de otros monogástricos.

Las investigaciones realizadas en el Perú han servido de marco de

referencia para considerar a esta especie como productora de carne. Los

trabajos de investigación en cuyes se iniciaron en el Perú en la década

del 60, en Colombia y Ecuador en la década del 70, en Bolivia en la

década del 80 y en Venezuela en la década del 90. El esfuerzo conjunto

de los países andinos está contribuyendo al desarrollo de la crianza de

cuyes en beneficio de sus pobladores.

Entre las especies utilizadas en la alimentación del hombre andino, sin

lugar a dudas el cuy constituye el de mayor popularidad. Este pequeño

roedor está identificado con la vida y costumbres de la sociedad indígena,

es utilizado también en medicina y hasta en rituales mágico-religiosos.

Después de la conquista fue exportado y ahora es un animal casi

universal. En la actualidad tiene múltiples usos (mascotas, animal

experimental), aunque en los Andes sigue siendo utilizado como un

alimento tradicional. (Chauca, 2007).

El cuy constituye un importante complemento en la alimentación de la

población rural de las zonas interandinas de Ecuador, Perú y Bolivia, y es

consumido también en la parte sur de Colombia y al norte de Argentina.

En años recientes, existe un creciente interés por explotar industrialmente

a la carne de cuy, sobre todo en países del área Andina. Esto se debe sin

duda al costo reducido para iniciar un criadero, a la facilidad del cuidado

y los esfuerzos desarrollados por los centro educativos de nivel superior y

de investigación agropecuaria en cada uno de los países, destacándose

en nuestro país el INIAP y la Universidad Central, la ESPOCH y la

Universidad Nacional Agraria La Molina, Perú. (Cadena, 2000).

 

2  

Constantes Fisiológicas

Las constantes fisiológicas normales del cuy son las siguientes:

Temperatura rectal: De 38-39� C

Respiración promedio: 80-92 respiraciones/minuto

Mínimo: 69

Máximo: 104

Ritmo cardíaco

Promedio: 230-280 pulsaciones/minuto

Mínimo: 225 pulsaciones/minuto

Máximo: 400 pulsaciones/minuto

Número de cromosomas: 64

Tiempo de vida

Promedio: 4-6 años

Máximo: 8 años

Peso del adulto

Macho: 800-1500g

Hembra: 700-1200g

Fuente: Cadena López

Elaboración: Los Autores

 

3  

OBJETIVOS

Objetivo General:

Evaluar el efecto de la gonadotropina en cobayas primerizas para

producir superovulación.

Objetivos Específicos:

Evaluar la fertilidad y concepción

Incrementar el número de crías al parto

Reducir el costo parcial de crías al parto

 

4  

CAPÍTULO I

REVISIÓN LITERARIA

Generalidades

Origen del cuy

El cuy (cobayo o curí) es un mamífero roedor originario de la zona andina

de Bolivia, Colombia, Ecuador y Perú.

En los países andinos existe una población estable de más o menos 35

millones de cuyes. La distribución de la población de cuyes en el Perú y el

Ecuador es amplia; se encuentra en la casi totalidad del territorio,

mientras que en Colombia y Bolivia su distribución es regional y con

poblaciones menores.

Por su capacidad de adaptación a diversas condiciones climáticas, los

cuyes pueden encontrarse desde la costa o el llano hasta alturas de 4 500

metros sobre el nivel del mar y en zonas tanto frías como cálidas.

(Chauca, 2007).

Fue domesticado por los aborígenes en los tiempos pre incásicos, mucho

tiempo antes de la llegada de los españoles.

Las variedades modernas son posiblemente descendientes de un

precursor desconocido, ya extinto, que se cree que habitaba en la costa

oriental de Brasil. De éste provendrían los cuyes silvestres (Cavia

Tschundi, Cavia Cluteris) mencionados en la literatura científica como los

antecesores directos del cuy doméstico moderno. Este último, el Cavia

Porcellus, no se halla en estado silvestre, y todas sus variedades y razas

son resultado de la domesticación y cruces a lo largo de milenios.

(Cadena, 2000).

 

5  

Descripción zoológica

En la escala zoológica (Orr, 1966, citado por Moreno, 1989) se ubica al

cuy dentro de la siguiente clasificación zoológica:

Orden: Rodentia

Suborden: Hystricomorpha

Familia: Caviidae

Género: Cavia

Especie: Cavia aperea aperea Erxleben

Cavia aperea apereaLich tenstein

Cavia cutleriKing

Cavia porcellusLinn aeus

Cavia cobaya

Tipo de cuyes

Para el estudio de los tipos y variedades se les ha agrupado a los cuyes

de acuerdo a su conformación, forma y longitud del pelo y tonalidades de

pelaje.

Clasificación según la conformación

Tipo A: Corresponde a cuyes «mejorados» que tienen una

conformación enmarcada dentro de un paralelepípedo, clásico en

las razas productores de carne.

La tendencia es producir animales que tengan una buena longitud,

profundidad y ancho. Esto expresa el mayor grado de desarrollo

muscular, fijado en una buena base ósea. Son de temperamento

tranquilo, responden eficientemente a un buen manejo y tienen

buena conversión alimenticia.

 

6  

Tipo B: Corresponde a los cuyes de forma angulosa, cuyo cuerpo

tiene poca profundidad y desarrollo muscular escaso. La cabeza es

triangular y alargada.

Tienen mayor variabilidad en el tamaño de la oreja. Es muy

nervioso, lo que hace dificultoso su manejo.

Clasificación según el pelaje

Tipo 1: Es de pelo corto, lacio y pegado al cuerpo, es el más

difundido y caracteriza al cuy peruano productor de carne. Puede o

no tener remolino en la frente. Se encuentran de colores simples

claros, oscuros o combinados. Es el que tiene el mejor

comportamiento como productor de carne.

Tipo 2: Es de pelo corto, lacio pero forma rosetas o remolinos a lo

largo del cuerpo, es menos precoz. Está presente en poblaciones

de cuyes criollos, existen de diversos colores. No es una población

dominante, por lo general en cruzamiento con otros tipos se pierde

fácilmente. Tiene buen comportamiento como productor de carne.

Tipo 3: Es de pelo largo y lacio, presenta dos subtipos que

corresponden al tipo I y 2 con pelo largo, así tenemos los cuyes del

subtipo 3-1 presentan el pelo largo, lacio y pegado al cuerpo,

pudiendo presentar un remolino en la frente. El subtipo 3-2

comprende a aquellos animales que presentan el pelo largo, lacio y

en rosetas. Está poco difundido pero bastante solicitado por la

belleza que muestra. No es buen productor de carne, si bien

utilizado como mascota.

Tipo 4: Es de pelo ensortijado, característica que presenta sobre

todo al nacimiento, ya que se va perdiendo a medida que el animal

se desarrolla, tornándose en erizado. Este cambio es más

prematuro cuando la humedad relativa es alta. Su forma de cabeza

y cuerpo es redondeado, de tamaño medio. Tiene una buena

 

7  

implantación muscular y con grasa de infiltración, el sabor de su

carne destaca a este tipo. La variabilidad de sus parámetros

productivos y reproductivos le da un potencial como productor de

carne.

Clasificación según la coloración del pelaje

Existen dos tipos de pigmentos que dan coloración al pelaje de los cuyes,

estos son: el granular y el difuso.

Pigmento granular: tiene tres variantes: rojo, marrón y negro; los dos

últimos se encuentran también en la piel dándole un color oscuro.

Pigmento difuso: se encuentra entre el color amarillo pálido a marrón

rojizo, estos pigmentos fueron encontrados en la capa externa del pelo, se

encuentra completamente formados y siempre en asociación con

pigmentos granulados. Los cambios de tonalidades de color como

consecuencia de cambios de temperatura en cuyes se aprecia en

animales jóvenes, a medida que se acentúa el frío, los colores se

oscurecen. Hay que notar una característica muy particular en el pelo del

cuy y es que la base del pelo tiene un color blanco en el caso de los

pelajes claros y un poco gris en el caso de pelajes oscuros. Conforme se

llega a la punta la coloración del pelo se va acentuando y comienza a

aparecer el color que va a presentar la capa del animal. También se

observa que la fibra de la capa externa del animal es más gruesa que la

capa interna.

El pelo del cuy está compuesto por una capa externa o cutícula la cual es

fina y la corteza que es medular. La finura es irregular debido al alto grado

de variación del diámetro, lo cual determina su baja condición textil,

asimismo no resiste a las tensiones debido a su gran contenido medular.

La longitud es variable de acuerdo al tipo. Los tipos I y 2 tienen fibras

cortas y lacias, sin embargo sus características de suavidad y brillo son

 

8  

cualidades sobresalientes. La finura del pelo de los diferentes tipos de

cuyes, se muestra en el Cuadro № 1.

Cuadro № 1: Finura del pelo de los cuyes según los diferentes tipos

Tipo Finura de pelo

Tipo 1 56,92 ± 3,88 µ

Tipo 2 53,93 ± 3,72 µ

Tipo 3 41,05 ± 2,91 µ

Fuente: Chauca 1972

Elaboración: Los Autores

La clasificación de acuerdo al color del pelaje se ha realizado en función a

los colores simples, compuestos y a la forma como están distribuidos en

el cuerpo (Chauca, 1972; Zaldívar, 1976).

Pelaje simple: Lo constituyen pelajes de un solo color, entre los que

podemos distinguir:

Blanco

Blanco mate

Blanco claro

Bayo (amarillo)

Bayo claro

Bayo ordinario

Bayo oscuro

Alazán (rojizo)

Alazán claro

Alazán dorado

Alazán cobrizo

Alazán tostado

Violeta

Violeta claro

Violeta oscuro

 

9  

Negro

Negro brillante

Negro opaco

Pelaje compuesto: Son tonalidades formadas por pelos que tienen dos o

más colores.

Moro

Moro claro: más blanco que negro

Moro ordinario: igual blanco que negro

Moro oscuro: más negro que blanco

Lobo

Lobo claro: más bayo que negro

Lobo ordinario: igual bayo que negro

Lobo oscuro: más negro que bayo

Ruano

Ruano claro: más alazán que negro

Ruano ordinario: igual alazán que negro

Ruano oscuro: más negro que alazán

Overos: Son combinaciones de dos colores, con siempre presente el

moteado blanco, que puede ser o no predominante. En la denominación

se nombra el color predominante.

Overo

Overo bayo (blanco amarillo)

Bayo overo (amarillo blanco)

Overo alazán (blanco rojo)

Alazán overo (rojo blanco)

 

10  

Overo moro (blanco moro)

Moro overo (moro blanco)

Overo negro (blanco negro)

Negro overo (negro blanco)

Fajados: Tienen los colores divididos en secciones o franjas de diferentes

colores.

Combinados: Presentan secciones en forma irregular y de diferentes

colores.

Particularidades en el cuerpo

Presentan manchas dentro de un manto de color claro.

Nevado: Pelos blancos salpicados

Mosqueado pelos negros salpicados

Particularidades en la cabeza

Luceros: presentan manchas en la cabeza. (Salinas, 2002).

Reproducción

El cuy es una especie poliéstrica anual; a diferencia de otras especies de

roedores, en las que el parto se realiza en un estado casi fetal de

desarrollo de las crías, en el cuy las crías nacen con desarrollo físico y

fisiológico completo y los ojos abiertos. Las crías inician la alimentación

inmediatamente, con poca dependencia de la madre (Chauca 1996).

Aparato Reproductor de la hembra

El aparato reproductor de la hembra está conformado por:

Los ovarios

Son órganos ovoides intrabdominales, recubiertos por una membrana

seroso o bolsas ováricas, miden de 0.3-0.6cm X 0.2-0.4cm están

ubicados en la parte craneal de los cuernos uterinos.

 

11  

Cada ovario esta irrigado por vasos sanguíneos provenientes de la

arteria ovárica y la arteria uterina, redes de vasos linfáticos y nervios

simpáticos y parasimpáticos.

Los ovarios en las cuyas están en una etapa dinámica que se inicia en

la pubertad y continua durante todos los ciclos reproductivos.

Los oviductos

También son llamadas trompas uterinas, son dos tubos flexuosos que

establecen comunicación entre los ovarios y el útero, el oviducto se

divide en tres partes: el infundíbulo, ampolla e istmo. La función de

estos es transporta el ovulo hasta el cuerno uterino, es aquí en donde

se realiza la fecundación de los óvulos.

El útero

La hembra de esta especie presenta útero bicorne, en forma de V. Los

cuernos uterinos miden de ancho en su parte media 6mm y de longitud

37mm, tanto el cuerno uterino como el cuerpo del útero, se encuentran

sostenidos por el ligamento ancho, el cual fija la pared sublumbar de la

cavidad abdominal y al borde anterior de la cavidad pélvica.

Las paredes internas de los cuernos uterinos están revestidos por la

mucosa llamada endometrio que es la encarda de secretar sustancias

nutritivas para alimentar al huevo o cigoto hasta que se transforme en

feto. El cuerpo uterino mide 7mm de ancho y 13mm de largo.

La vagina

Es un tubo de músculo fibroelástico, su longitud es de 3cm X 1cm de

ancho, se encuentra ubicado en la cavidad pelviana. La pared interna

presenta un pliegue transversal dorsal y dos longitudinales. Su función

es la recepción del pene del macho durante la cópula y el pasaje del

feto durante el parto.

 

12  

La vulva

Es la abertura en forma de V o Y que se ve en la parte externa de la

hembra. En su porción ventral presenta una escotadura que forma dos

pequeños labios en cuyo fondo se halla el meato urinario. En posición

dorsal presenta el clítoris.

Las glándulas mamarias

La cuya posee dos glándulas mamarias ubicadas en la parte ventral

de la región inguinal, cada una consta de un pezón que está formado

por un anillo musculoso o esfínter, un canal lácteo y una cisterna que

está conectado con la cisterna de la ubre.

El desarrollo de la glándula mamaria se realiza en varias etapas, la

prenatal, la prepuberal, puberal, gestación, lactación.

La unidad funcional de la glándula mamaria es el alveolo mamario que

al unirse entre varios de ellos forman los lóbulos mamarios; cada

alveolo tiene un canal primario que desemboca en un canal

secundario y este en la cisterna de la glándula.

La lactopoliesis en la cuya, es debido a la conjugación de factores

hormonales y un proceso de síntesis y filtración de los componentes

sanguíneos.

Aparato Reproductor Del Macho

El aparato reproductor del macho está formado por:

Los testículos

Está ubicado en la cavidad abdominal a ambos lados de la vejiga, su

forma es ovoide, miden 22mm de largo X 18mm de ancho y su peso va

desde 2.5- 4g. Lo característico de los cuyes es la falta de escroto.

Cuando el macho se excita, los testículos descienden a la región inguinal,

a un saco, en este saco ciego se encuentra una porción del musculo

 

13  

cremaster que es el que permite la migración de los testículos a la región

abdominal.

Los testículos presentan: la túnica albugínea en la cual se encuentran los

túbulos seminíferos encargados de producir los espermatozoides. Entre

los túbulos se encuentran diseminadas las células de Leydig que

producen las hormonas de la reproducción. Además, se encuentran las

células de Sertoli que se encargan de alimentar a los espermatozoides

hasta la madurez. Luego la llamada red de Testi o mediastino del cual

salen los conductos deferentes que llegan al epidídimo.

El epidídimo

Es un conducto sinuoso que tiene las siguientes partes: cabeza, cuerpo y

cola, su función es el transporte, maduración y concentración de

espermatozoides. De la cola del epidídimo continua el conducto

deferente. Los conductos deferentes junto con las glándulas vesicales,

desembocan en la uretra pélvica.

Glándulas vesiculares

Son dos glándulas alargadas, tienen 12cm de largo y 6mm de diámetro en

su parte media. La parte líquida del semen es proporcionada por las

vesículas seminales.

Próstata

Es de forma lobular y mide 19mm de largo y 9mm de ancho.

Glándulas bulbo uretrales

Tienen forma de arveja y segregan la sustancia mucilaginosa.

Pene

Órgano copulador del macho, sus medidas son 4cm de longitud y 5mm de

diámetro. El glande presenta forma de cono truncado con un orificio en la

parte ventral que es el orificio uretral.

 

14  

Manejo de reproductores

Para manejar con eficiencia a las reproductoras y mejorar su fertilidad,

prolificidad y la supervivencia de las crías, es necesario conocer el

comportamiento de los animales antes y durante su etapa reproductiva.

Pubertad

La edad de la pubertad se presenta independientemente a la presencia o

no del macho, a diferencia de otras especies y es aparente que el peso

corporal es el parámetro determinante de la pubertad, con mayor efecto

que la edad en su determinación.

Las hembras bajo condiciones normales de manejo, alcanzan su pubertad

entre los 55 y 70 días de edad, se puede acoplar a una menor edad,

siempre y cuando la alimentación sea de alta calidad ya que origina un

crecimiento más acelerado. En caso de los machos a los 70 días se tiene

una producción uniforme de espermatozoides.

La edad y el peso óptimo considerado para el inicio de la vida

reproductiva en los cuyes de la línea mejorada son: para las hembras a

los tres meses, con un peso de 650g; para los machos a los 4meses y un

peso de 750g. En la línea criolla para las hembras a los cuatro o cinco

meses, con un peso de 800-900g. (Chauca1996).

Ciclo estral

El cuy es una especie poliéstrica. El ciclo estral es de 16 días, con una

variación de 13 a 19 días. En este ciclo se presenta cuatro fases bien

definidas:

Proestro: Dura 13.9 horas; es la fase previa al celo, en la cual los

órganos reproductores de la hembra se preparan para aceptar al

macho; aumenta el volumen del útero, cambia la coloración de la

 

15  

vagina y se puede presentar secreción sanguinolenta. En la

mucosa vaginal se presentan células nucleadas.

Estro: Dura 8.3horas; es el fenómeno en el cual la hembra acepta

sin inconveniencia al macho. Externamente, la vulva está

aumentada de tamaño y presenta color rosáceo; internamente se

abre el cérvix uterino para dar paso a la eyaculación del macho. El

64% de los celos se inician entre las 18 a las 6 horas, cuando las

hembras se mantienen en la oscuridad. El celo se presenta en

cualquier momento sin existir variación es este, ni en la longitud del

ciclo.

Existe también celo posparto que es el que se produce entre los 30

minutos a dos horas después del parto, dura 3.5horas, las hembras

que se aparean con este celo obtendrán un mayor número de

partos al año.

Metaestro: Dura 20.4horas; sucede al estro. La hembra rechaza

vigorosamente al macho a cada intento de monta.

Diestro: Dura 14.7dias es la llamada fase de reposo o descanso

reproductivo, su tiempo de duración es más largo que otras fases.

Cuadro № 2. Ciclo estral de la cuya

ETAPA DURACIÓN

Proestro 14 horas

Estro 8-9 horas

Metaestro 18-24 horas

Diestro 13-16 días

Fuente: Cadena 2006

Elaboración: Los Autores

 

16  

Ovulación y Fecundación

La ovulación se produce aproximadamente 10 horas después de haberse

iniciado el celo, sin ser ésta inducida por el macho, sino espontanea

después de dos a tres horas de concluido el estro. Si no ocurrió la monta,

simplemente los óvulos producidos no son fecundados y se expulsan por

la vagina más tarde.

Si ha ocurrido la monta, el cuy macho ha depositado el semen que

permanece en el tracto genital femenino.

Los espermatozoides han ingresado a la cavidad uterina dos horas antes

de la ovulación, tienen alrededor de 13 horas críticas para fecundar los

óvulos, que descienden por los oviductos luego de concluido el estro.

También se produce una ovulación en el celo posparto, que ocurre de dos

a cuatro horas después de concluido el parto y no dura más de 1.5 horas,

luego de las cuales la hembra rechaza al macho. Se trata por tanto de un

estro corto en comparación con el estro regular, que dura alrededor de 8

horas. La probabilidad de fecundación de este celo posparto es de 70 al

80%.

Empadre o acoplamiento

La monta por el macho se realiza solamente si la hembra se encuentra en

periodo de celo. En la copula el macho deposita el semen dentro de la

vagina.

El semen está formado por una parte liquida, que contiene esperma y

otros más espesas que coagulan dentro de la vagina bajo la acción de la

enzima llamada coagulasa, esto da lugar a la formación del tapón vaginal,

que es una masa gelatinosa que sella la matriz. Esto permite mantener el

nivel de pH adecuado para la supervivencia de los espermatozoides y

forma una barrera para el retroceso del esperma.

 

17  

Edad del empadre

La precocidad es una característica que permite disminuir los intervalos

generacionales.

El peso de la madre es una variable más importante en la edad para

iniciar el empadre.

Influye en los pesos que alcanzaran las madres al parto y al destete, se

logra un mejor tamaño de la camada y peso de las crías al nacimiento y al

destete. Las hembras pueden iniciar su apareamiento cuando alcanzan

un peso de 542g pero no menores de 2 meses (Zaldívar, 1986). El peso

que alcanzan las hembras a una determinada edad, depende del genotipo

de los cuyes en estudio. La edad recomendada varía entre 10 semanas

en la costa y 13 semanas en la sierra, el peso mínimo recomendado es de

500g (Guevara, 1989).

En machos el primer empadre debe iniciarse a los 4 meses, a esta edad

el reproductor se ha desarrollado no solo en tamaño sino en madurez

sexual. Su peso es superior a 1.1kg, tiene más peso que las hembras

(34%), lo que le permite tener un dominio sobre el grupo y así mantener

una relación de empadre de 1:7. Al mes de empadre alcanzan pesos

superiores a 1.4kg y aún sigue desarrollándose hasta cumplir un año de

edad.

Los cuyes machos de 5 meses pueden soportar empadres con 7

(área/animal: 1875cm), 8 (área/animal: 1667cm), 9 (área/animal: 1500cm),

hembras con comportamiento similar en cuanto a intervalos entre

empadre – parto, numero de crías nacidas y destetadas, mortalidad de

lactantes e incrementos de peso de las madres, del empadre al destete

(Gamarra et al, 1990).

Al inicio del empadre se debe hacer siempre con macho probados, de

esta manera se evita mermas en la producción por no haberse detectado

la infertilidad del macho. Los reproductores seleccionados a los tres

meses deben ubicarse individualmente en pozas de 0.5 x 1.0 x 0.45m y

empadrarlos con dos o tres hembras durante un mes y chequear

 

18  

preñeces al cabo de este tiempo, así como el crecimiento del reproductor.

Con este control, se realiza los empadres con machos de 4 meses de

edad. El reproductor se lo ubica en la poza donde se haya agrupado 7

hembras, para evitar introducciones posteriores que produzcan peleas,

efecto que tiene incidencia sobre la fertilidad. Trabajar con líneas

mejoradas permite utilizar mayor densidad de empadre, por tratarse de

animales más mansos.

El sistema de crianza en pozas ha permitido mejorar la producción del

sistema familiar y familiar – comercial. Las hembras han producido y

logrado más crías al compararlo con el sistema tradicional (Higaoma et

al., 1989). El mejor manejo reproductivo, menor mortalidad de lactantes y

mayor racionalidad en el manejo de la alimentación, son las ventajas que

ofrece el sistema de crianza con núcleos de empadre en pozas de 1.5 x

1.0 x 0.5m.

El crecimiento entre el empadre – parto es estimulado por la actividad

reproductiva. El crecimiento de la madre, más la producción en crías hace

económica la crianza intensiva de cuyes, basada en una alimentación

suplementada (Chauca et al., 1986).

Densidad de crías

La densidad en que se mantienen los animales en las pozas, tanto en

reproducción como en recría y engorde influye de manera determinante

en los resultados.

En reproducción, una baja densidad redunda en una baja productividad

por poza. Una densidad excesiva ocasiona abortos y alta mortalidad en

gazapos.

En recría y engorde, una baja densidad redunda en una subutilización del

área cubierta del galpón. Una densidad excesiva ocasiona principalmente

una baja conversión alimenticia, un mayor costo por kilo de carne

producido y una mayor permanencia de los animales en el galpón.

 

19  

Cuando se engordan macho no castrados en densidades altas, hay una

mayor tendencia a las peleas y a las lesiones causadas por ellas. Los

animales deben disponer de un espacio vital adecuado a sus

necesidades. Este espacio será diferente para cada tipo de animal,

considerando su sexo, edad, tamaño y clase.

Las densidades recomendadas para las diferentes etapas de crianza son

las siguientes:

Reproducción:

Animales con pesos de 1.0 - 1.2 kg 8 animales/m2

1.2 – 1.8 kg 6 animales/m2

1.8 – 2.5 kg 5 animales/m2

Recría:

De acuerdo a los pesos, se distribuye alrededor de 15kg/m2.

Engorde:

De acuerdo a los pesos, se distribuye alrededor de 10kg/m2.

Densidad de empadre

La densidad de empadre y la capacidad de carga en machos deben

manejarse conjuntamente, para tomar la decisión del manejo que debe

tener la explotación de cuyes. Inicialmente se recomendó una densidad

de empadre de 1:10 por m2, esto en función a las recomendaciones dadas

en el manejo de cuyes en beaterios. El desarrollo de la crianza de cuyes,

como productores de carne, buscaba el crecimiento de los animales que,

por tanto, debía disponer de un área mayor por animal.

Un concepto valido es empadrar de acuerdo al tamaño. Así, para la

crianza comercial, (Moncayo, 1992) recomienda áreas que van entre 5 y 8

cuyas reproductoras por m2, lo que depende del peso de las mismas.

 

20  

Otra variable a considerarse es la capacidad de carga que deben tener

los cuyes machos.

Un cuy macho adulto, sobre los 6 meses puede mantener en empadre

hasta 14 hembras, las mismas que pueden manejarse en dos pozas

consecutivas, alternando el empadre cada mes. Es una buena alternativa

para disminuir el mantenimiento de los machos reproductores pero no

requiere de un manejo más intensivo al ir reagrupando a las hembras para

parto. No siempre el problema es la capacidad de carga, sino el área

requerida por la hembra más sus crías. También los pesos bajos y la alta

mortalidad de lactantes son consecuencia de la mala distribución del

alimento (Chauca, 1996).

Un manejo práctico que se realiza es el inicio del empadre con 1:10 con

áreas por animal de 1364cm2 y para parición 1:7 (1875cm2).

Sistemas de empadre

Los sistemas de empadre se basan el aprovechamiento o no del celo

posparto. Debe considerarse que el cuy es una especie poliéstrica y que,

dependiendo de las líneas genéticas, entre el 55 y 80% de las hembras

tienen la capacidad de presentar celo post parto (Chuaca et al., 1992).

El celo posparto es de corta duración (3.5 horas), siempre asociado con la

ovulación. Al aprovechar la fecundación de esta ovulación, el intervalo

entre partos es igual al tiempo de una gestación. De no aprovechar este

celo, el intervalo entre partos tiene una duración de la gestación más el

tiempo que transcurre para lograr la ovulación fertilizada (Asdell, 1964).

El manejo de los machos reproductores es un factor determinante para

tomar una decisión sobre el sistema de empadre que debe proponerse en

una granja sea familiar, familiar – comercial o comercial. En todos los

casos debe buscarse maximizar los ingresos del productor de cuyes.

A los cuyes machos después del empadre no se los puede juntar, por

mostrar mucha agresividad entre ellos. Sacarlos de empadre implica tener

 

21  

pozas pequeñas para ubicarlos o de lo contrario mantenerlos

alternadamente con dos grupos de hembras en empadre. Esta modalidad

si bien permite incrementar la carga de machos, exige un mayor manejo

además del riesgo de disminuir la opción de preñez de algunas hembras.

Los sistemas de empadre utilizados en la crianza de cuyes son los que

aprovechan el empadre posparto o empadre continuo y el empadre pos

destete; los otros sistemas descrito son ligeras variaciones de estos dos

sistemas principales.

Empadre continuo, intensivo o posparto

Los resultados de este sistema de empadre dependen mucho del

ambiente en el cual se encuentran expuestas las hembras reproductoras.

Cuando reciben una buena alimentación las hembras desarrollan todo su

potencial productivo. Se incrementa la concepción, la fertilidad,

fecundidad, prolificidad, sobrevivencia de crías y el peso de las mismas al

nacimiento.

Este sistema facilita el manejo porque iniciada la etapa reproductiva se

mantiene el plantel en empadre durante la vida reproductiva de las

reproductoras. El único movimiento que se realiza es el retiro de los

gazapos al destete. Se rota a los macho para mejorar la fertilidad en las

hembras.

Ventajas:

Se aprovecha el celo pos parto con el que se logra un mayor

número de partos/año.

Facilidad del sistema, ya que se requiere poco manejo.

Desventajas:

Mayor mortalidad de gazapos en el período entre el nacimiento y el

destete.

 

22  

Dificultad para detectar hembras infértiles, pues en una poza

existen hembras en diferente estado de gestación.

Empadre semi intensivo, posdestete o técnico

Se deja que las hembras reproductoras paran en pozas de empadre sin

macho, por lo que se tiene que agrupar a las hembras con preñez

avanzada y ubicarlas en pozas para parición individual o colectiva.

Genera un manejo intensivo de hembras preñadas, con el riesgo de

provocar abortos por manipulación. Otra alternativa es movilizar a las

hembras paridas para ubicarlas en pozas de lactancia colectiva. Puede

utilizarse en crianza familiar y familiar comercial.

Ventajas:

Baja mortalidad de gazapos en el periodo de lactancia.

Permite el control de la productividad individual de las madres.

Facilita la evaluación de resultados en cruzamientos

experimentales.

Desventajas:

Utiliza mucho espacio, lo que implica el uso de pozas individuales

para los machos.

Empadre controlado.

Empadre controlado

Se maneja los empadres por trimestres, dejando expuestas al empadre a

las hembras durante 34 días. Se espera cuatro pariciones al año. El

empadre controlado se realiza para disminuir el suministro de concentrado

a la mitad, ya que se suministra solo durante el empadre y 15 días antes

del mismo.

 

23  

La mortalidad durante la lactancia no necesariamente es por efecto del

empadre, sino como consecuencia del manejo de las madres y los

lactantes. La hembra en la lactancia es más susceptible a una deficiencia

alimentaria que inclusive durante la misma lactación.

El periodo del empadre es determinante para asegurar las preñeces. Los

periodos evaluados 35 días (Moncayo, 1992), 34 días (Aliaga et al.,

1984), 30 a 20 y 10 días (Gonzales, 1991), no muestran diferencias en los

intervalos de empadre y parto en hembras primerizas y con más de un

parto. Los ciclos estrales son cada 16 días. Podría considerarse que para

periodos menores la presencia del cuy macho sincroniza los celos. Para

este efecto se ubicaron machos en pazos contiguas de malla para que

sea percibidas por las hembras y así evaluar el efecto sobre el periodo de

empadre – parto, se han registrado que con la presencia del macho se

puede acortar hasta 5.17 días (Aliaga et al., 1984).

Ventajas:

Se utilizan un menor número de machos, lo que permite usar

machos de mejor calidad.

Permite identificar y eliminar a las hembras infértiles.

Al no aprovechar el celo posparto se permite un descanso a la

madre y una mayor productividad.

Se reduce la mortalidad de gazapos durante la lactancia.

En los criaderos comerciales permite programar la producción.

Desventajas:

Implica un mayor manejo.

Se debe llevar un control de los programas de empadre.

 

24  

Diagnostico de preñez

El diagnóstico de preñez es un método importante y práctico; para

confirmar si la hembra está o no gestante. Existen varios métodos para

diagnosticar la preñez: método científico clínico, método de laboratorio,

ecosonográfico y por registros.

Método clínico: Incluye La exploración externa, se realiza una

observación general del animal, en especial del abdomen y de los

pezones, hembra gestante presenta el abdomen abultado y las

ubres aumentadas de tamaño. Es posible observar movimiento de

los fetos en forma de sacudidas, también se puede palpar el feto a

través de la pared abdominal.

Método de laboratorio: Consiste en el análisis físico químico de la

orina, mucus cervical, el estudio histológico de la vagina y la

dosificación hormonal (de progesterona por RIA o Micro Elisa).

Este es un método que no es posible aplicarlo en los métodos de

producción, ya que requiere de laboratorio y equipos especiales.

Factores que impiden la fecundidad

Consanguinidad: No es otra cosa que el apareamiento entre

animales emparentados, es decir entre hermanos, por lo tanto a

medida que avanza el problema de la consanguinidad los animales

tienden a volverse estériles.

Alimentación: Factor importante principalmente cuando se supera

el 50% de la gestación. Al suministrar una dieta completamente

pobre en nutrientes, tanto en la calidad como en la cantidad, puede

ser determinante para que se produzca una reabsorción fetal y por

lo tanto no haya el parto respectivo.

Coito infecundo: Se produce cuando los animales, tanto machos

como hembras han entrado muy prematuramente al empadre; en el

caso de los machos su acoplamiento se ha realizado con

espermatozoides inmaduros, tiernos o con defectos patológicos.

 

25  

Frigidez de la hembra: Se relaciona a que una hembra no puede

presentar calores debido al mal funcionamiento del sistema

reproductor, por lo tanto, como no hay celo tampoco existirá

ovulación y el salto del macho será infructuoso.

Pseudo preñez: No es otra cosa que una falsa gestación que se

observa en las reproductoras y se debe a un hábito que han

adquirido los animales como producto de que sus progenitores han

tenido idénticas caracterices.

Gestación

El periodo de gestación es el tiempo que transcurre desde que la hembra

queda preñada hasta cuando se produce el parto. Un promedio

proporcionado por diferentes autores es de 67 días, aunque este varía a

diferentes factores, entre ellos, el número de fetos portados por la

hembra, quienes determinan una relación inversa. (Goy et al, 1987).

Se registran períodos de gestación que van desde los 58 a los 72 días;

(Labhsetwar y Diamond, 1970). El intervalo entre partos para hembras

apareadas después del parto fue de 67.9+/-0.16 días.

El período de gestación varia ligeramente entre líneas, hay una

correlación positiva entre la duración de la gestación y el tamaño de las

crías (Lane, 1963).

La frecuencia de gestaciones posparto varía con la línea genética. La

frecuencia es menor en las líneas cuyas características seleccionadas es

la velocidad de crecimiento (Perú 54.6 % e Inti 57.95%). Existe una

correlación positiva entre la duración de la gestación y el tamaño de las

crías y una relación inversa entre número de fetos y el periodo de

gestación.

El tamaño de la camada varía con las líneas genéticas y las prácticas de

manejo; igualmente depende del número de folículos, porcentaje de

implantación, porcentajes de supervivencia y reabsorción fetal. Todo esto

 

26  

es influenciado por factores genéticos de la madre y el feto, así como las

condiciones de la madre por efectos de las condiciones ambientales. Las

condiciones climáticas de cada año afectan marcadamente la fertilidad,

viabilidad y crecimiento.

El tamaño de la madre tiene gran influencia en el tamaño de la camada

(Wagner y Mannig, 1976).

La capacidad que tienen las madres para soportar gestaciones de

múltiples crías es una excelente característica de esta especie. El peso

total de la camada al nacimiento representa entre el 23.6 y 49.2 % del

peso de la madre; el menor porcentaje se registra para camadas de una

cría y el mayor porcentaje cuando nacen camadas de 5 crías (Chauca et

al, 1995). Partos con mayor tamaño de la camada registran porcentajes

mayores.

Cuadro № 3. Parámetros Reproductivos

ETAPA DURACIÓN

Gestación 68 días

Parición 0.2 horas o menos

Celo pos-parto 2 horas

Fuente: Cadena 2006

Elaboración: Los Autores

Parto

Concluida la gestación se presenta el parto, por lo general en la noche, y

demora entre 10 y 30 minutos con intervalos de 7 minutos entre crías

(Fluctuación de 1-16 minutos). La edad al primer parto está influenciada

directamente por la edad al empadre. Las hembras empadradas entre la

octava y decima semana de edad quedan preñadas fácilmente en el

 

27  

primer celo después de ser expuestas al reproductor. (Chauca et al.,

1999).

El parto no presenta problemas, sin embargo en ocasiones se presentan

partos distócicos, ocasionando la muerte de las crías, debido a que los

isquiones de la madre están poco abiertos, esto ocurre cuando las

hembras han sido empadradas tardíamente (5 meses), o son hembras

pequeñas con macho muy grandes. (Chauca et al., 1995).

Las crías nacen maduras debido al largo período de gestación de las

madres. Nacen con los ojos y oídos funcionales, provistos de incisivos y

provistos de pelo. Pueden desplazarse al poco tiempo de nacidos. La

madre limpia y lame a sus crías favoreciendo la circulación y

proporcionándoles su calor. Las crías inician su lactancia al poco tiempo

de nacidas. El número y tamaño de crías nacidas varían de acuerdo con

las líneas genéticas y el nivel nutricional al cual ha estado sometida la

madre.

Con el parto se puede evaluar la prolificidad de las madres que por lo

general, tienen de 4 a 5 camadas por año. El número de crías por parto

puede ser de 1 a 6 crías, excepcionalmente hasta 8, con un promedio de

2.5 a 3.5 crías por cada madre. El peso al nacimiento puede variar entre

los 60 a 120 gramos. Los gazapos que nacen con pesos inferiores a 50

gramos, tienen alta probabilidad de morir poco después de nacer. Con

madres mejoradas y bien alimentadas se ha obtenido crías de 130 y 140

gramos de peso (La Molina,1995).

Es importante tener en cuenta que el sobrealimentar a las madres puede

dar lugar a un gran desarrollo de los fetos, que puede llegar a pesar hasta

250gramos, por ende producen partos distócico que conllevan no solo la

muerte de las crías, sino también de la madre (Chauca et al., 1995).

El período entre dos partos continuos influye sobre el peso de las crías al

nacimiento, el efecto del ambiente, el clima y el manejo de la

alimentación puede apreciarse en la producción de las cuyas hembras a

través de diferentes años (Aliaga, 1985).

 

28  

La mortalidad se incrementa conforme aumenta el tamaño de la camada.

Las camadas al nacimiento están conformadas por crías de ambos sexos,

no existe una tendencia definida en lo referente a frecuencia de sexos

dentro de una camada. Las crías pueden ser independientemente machos

o hembras, el porcentaje de machos y hembras en una población tiende a

igualarse (La Molina, 1980).

Lactancia

Las crías nacen en un estado avanzado de maduración por lo que no son

tan dependientes de la leche materna como otro mamíferos. Durante el

inicio de la lactancia la leche materna dispone de calostro para darle

inmunidad y resistencia a las enfermedades (La Molina, 1996).

Durante la lactancia se han encontrado muchos limitantes que han

determinado que la crianza, en muchos casos, sea improductiva. La

mortalidad registrada es alta pudiendo llegar a 38% en crianzas familiares,

pudiendo ser aún mayores.

El desconocimiento del comportamiento de los recién nacidos durante la

lactancia, no permitía encontrar alternativas de solución a las limitantes

existentes en esta etapa productiva. La caracterización de ésta etapa

induce a observar el comportamiento del lactante desde que nace y

compararlo con otras especies. Experimentando diferentes alternativas se

ha podido logras resultados que permitieron disminuir la mortalidad.

Si se realiza un destete brusco a las pocas horas de nacidas las crías se

registra un 54% de mortalidad. Su grado de desarrollo al nacimiento la

hace dependiente solo hasta el séptimo día, al octavo día el 100% de las

crías comen alimentos sólidos. Un porcentaje mínimo inicia el consumo de

concentrados al cuarto día de nacidos (Chauca et al., 1995).

Curva de lactación en cuyes

Los cuyes hembras inician su producción láctea con 20 gramos en el

primer día posparto, incrementando el volumen producido rápidamente: el

 

29  

pico de producción se da entre el día 5 y 8 con aproximadamente

65gramos/día, luego la producción disminuye y deja de haber secreción

láctea entre los 18 y 23 días (Mepham y Beck, 1980).

Gráfico № 1. Curva de lactación en cuyes

Fuente: Centro Experimental Uyumbicho

Elaboración: Los Autores

Características de los lactantes

Durante la lactancia como cualquier especie es exigente en protección,

alimento y calor. Se presentan los más altos porcentajes de mortalidad,

que pueden ir, en crianzas familiares en 38 al 56%, disminuye la

mortalidad en crianzas tecnificadas al 23%. Las crías duplican su peso

durante la lactancia, 15 días, logran incrementos equivalentes al 95% de

su peso al nacimiento. Se puede afirmar que los cuyes duplican su peso

del nacimiento a los 14 días y lo triplican a los 28 días. A mayor camada

menor son los peso individuales (Ordoñez, 1999).

A partir del día 10 el animal estabiliza su consumo en relación con su

peso vivo, se estabiliza en 3.4 – 3.5% hasta el final de la lactancia. De

igual manera los incrementos se vuelven constantes y se podría decir que

el animal ha logrado un equilibrio (Ordoñez, 1997).

 

30  

Destete

Es la separación de los gazapos de sus respectivas madres, lo mismo que

se realiza en función del tamaño de la camada. Cuando se tenía un

menor conocimiento de la crianza, en las décadas del 60-70, el destete se

realizaba a las 4 semanas de edad, con altos porcentajes de mortalidad.

Esto aparentemente producido por un mal manejo en la alimentación y

alta densidad que tenían que soportar las pozas de empadre. Otro

inconveniente del destete tardío era la posibilidad de tener preñeces

prematuras.

Para mejorar la sobrevivencia de los lactantes, el destete debe realizarse

precozmente. Este se realiza a las dos semanas de edad, se puede hacer

a la semana, sin detrimento del crecimiento del lactante (Chauca et al.,

1984).

Puede generarse en las madres mastitis por la mayor producción láctea

presente hasta 11 días después del parto. El número de crías por camada

influye en el peso y supervivencia de los lactantes. La edad de destete

tiene efecto sobre el peso a los 93 días, los destetados precozmente,

alcanzan pesos mayores. Los destetes realizados a los 7, 14 y 21 días

muestran crecimientos iguales hasta el destete, a los 93 días el peso

alcanzado por los destetados a los 7 días es de 724g, mientras que los

destetados a los 14 y 21 días alcanzan 727g y 635g respectivamente

(Aliaga, 1976).

Para realizar el destete debe considerarse el efecto del ambiente, en

lugares de climas fríos se retrasa una semana para que las madres les

proporcionen calor. Esto para el caso de crianza familiares o familiar –

comercial desarrolladas en climas fríos (Zaldivar et.,1990).

Alimentación

Aunque las necesidades nutricionales de los animales para la

reproducción en general son considerablemente menos críticas que las

que se presentan durante el crecimiento rápido, sin duda, son más críticas

que las de mantenimiento.

 

31  

Si las necesidades de nutrientes se presentan antes de la gestación,

pueden dejar estériles a los animales o producir índices de fertilidad bajos

o fallas para establecer o mantener la preñez. Se ha demostrado muchas

veces que la subalimentación (energía, proteínas) durante el crecimiento

produce una demora en la madurez sexual, y que la subalimentación o

sobrealimentación suele reducir la fertilidad en comparación con animales

alimentados de forma moderada. Las necesidades energéticas de las

cobayas y de la mayoría de las especies durante la preñez son más

críticas durante el último tercio de la gestación, debido a un mayor

desarrollo del feto durante esta etapa.

La nutrición inadecuada de la madre durante la preñez puede tener

resultados variables, según el grado de desnutrición, del nutriente que se

trate y el estado de la gestación. En una deficiencia moderada, los tejidos

fetales tienden a tener prioridad sobre los tejidos de la madre, por lo tanto

las reservas corporales de la madre son utilizadas para nutrir al feto. Una

deficiencia muy severa puede producir un agotamiento parcial de los

tejidos maternos y efectos perjudiciales como reabsorción embrionaria,

abortos, malformaciones en el producto o mortinatos, productos débiles o

de menor tamaño, los nutrientes que se secretan en el calostro también

son bajos, las producción de leche puede ser nula y la supervivencia del

animal joven puede estar en riesgo.

La lactación es probable que produzca más estrés nutricional en los

animales maduros que cualquier otra función productiva.- Todas las

necesidades nutricionales aumentan durante la lactación porque los

componentes de la leche se adquieren directamente por la vías

sanguínea o se sintetizan en la glándula mamaria, por lo que se deriva de

los tejidos del animal o más directamente del alimento que consume.

Todos los nutrientes reconocidos que se secretan en algún grado en la

leche son: grasa, proteína y lactosa, con cantidades sustanciales de

cenizas, en especial calcio y fosforo. Los efectos de las deficiencias

severas de nutrientes durante la lactación con frecuencia repercuten en la

preñez (Martínez, 2006).

 

32  

Es importante conocer la cantidad de alimento requerida por el animal y

evitar desperdicios, ya que estos causan problemas de humedad de

camas, su descomposición que da lugar a la producción de gases tóxicos

(metano).

El consumo tanto de forraje como de balanceado en los cuyes está

determinado en relación con su peso vivo: el consumo de forraje en

estado de reproducción tiene una medios de 30% de su peso vivo, en la

etapa de recría tiene una media de 35% de su peso vivo por días.

El consumo de balanceado son restricción de forraje en la etapa de

reproducción tiene una media de 1.8% de su peso vivo, en la etapa de

recría tiene una media de 2.5% de peso vivo por día. Como ejemplo un

cuy que pesa mil gramos consumiría 350 gramos de forraje y 25 gramos

de balanceado al día.

La frecuencia de suministro del alimento más recomendable es en el caso

del forraje de dos veces por día en un mismo horario; donde en la

mañana se administra el 40% del total del forraje y en la tarde el 60%

restante. En el caso del balanceado se administra una sola vez al día

mejor en la mañana, para evitar el consumo por parte de roedores en la

noche.

En el caso de suministrar agua, esta debe ser potable y dependiente del

tipo de bebederos, se debe cambiar todos los días para evitar el

desarrollo de bacterias (Martínez, 2006).

Hormonas

Gonadotropinas Pituitarias FSH - LH

Las gonadotropinas pituitarias juegan un papel central en los procesos

reproductivos de los mamíferos. Se sintetizan en los gonadotropos

hipofisiarios y se fijan a receptores localizados en las gónadas, testículos

y ovarios, en donde promueven su desarrollo y sus funciones endócrinas

y exócrinas. Debido a que estas hormonas son responsables de la

 

33  

maduración sexual y de las funciones reproductivas normales, la

regulación de su síntesis y secreción es esencial para la preservación de

las especies. Las gonadotropinas hipofisiarias son hormonas

químicamente muy complejas; solo en los últimos años se ha avanzado

mucho en el conocimiento de su síntesis, gracias al uso de los medios

que proporciona la biología molecular.

Estructura química y síntesis

Las gonadotropinas hipofisiarias se sintetizan el lóbulo anterior de la

hipófisis por acción de la hormona hipotalámica liberatoria GnRH. Las

gonadotropinas hipofisiarias son dos: la gonadotropina foliculoestimulante

(FSH), también denominada Folitropina, y la gonadotropina Luteinizante

(LH), o Lueteotropina, también denominado Hormona estimulante de las

células intersticiales (ICSH). La FSH y la LH se sintetizan en la célula

gonadotrópica común que representa del 5-9% de células hipofisiarias.

Los gránulos secretorios de las gonadotropinas son basófilos.

La FSH y LH son miembros de una familia de hormonas glucoproteínicas

que comparten muchas similitudes estructurales. Los otros miembros de

esta familia son la TSH y otras hormonas de origen placentario, La

gonadotropina coriónica humana (HCG) y la gonadotropina de suero de

yegua preñada (PMSG). (Hernández, 1994).

El gasto hipofisiario de la FSH se halla bajo control hipotalámico e influye

en un mecanismo de retroalimentación en el que participan hormonas

gonadales. (Mc Donald, 1971).

La FSH tiene una vida plasmática media de 170 minutos

aproximadamente y la LH tiene una vida plasmática inferior a la FSH de

tan solo 30 minutos. La vida media plasmática de la FSH es más

prolongada debido a su contenido en ácido siálico y la captación hepática

de FSH es menor que para la LH. (Hernández, 1994).

La LH es una glucoproteina químicamente distinta en las diversas

especies, así como varia el contenido hipofisiario de la LH según la

especie. (Mc Donald, 1971).

 

34  

Acciones fisiológicas

La FSH actúa indirectamente estimulando la gametogénesis en ambos

sexos. En el mamífero hembras la acción principal es inducir la

maduración de los folículos primordiales hasta que alcancen el estado de

vesículas de Graff. Esta acción se ejerce sobre las células granulosas, las

únicas que poseen receptores específicos para captarlas y conducirlas al

interior del núcleo celular y producir la proliferación mitótica de las células

granulosas. En estas células también da lugar a la síntesis de

polisacáridos necesarios para la formación de líquido folicular y de la zona

pelúcida del ovocito. En las células tecales se sintetizan andrógenos, por

procesos de aromatización, favorecen la transformación de esos

esteroides en estrógenos, sobre todo estradiol. Otra función de la FSH de

aumentar en las células granulosas los receptores que fijan LH.

En el mamífero macho la FSH es primordialmente una hormona

gametogénica. Es la responsable para el mantenimiento de la integridad

anatómica de los túbulos seminíferos, bajo su influencia se cumplen los

diferentes estadios complejos de la gametogénesis hasta la producción de

espermatozoides. Propicia la síntesis proteínica al actuar sobre los

espermatocitos primarios.

La hormona luteinizante LH o estimulante de las células intersticiales es

la misma; la denominación solo depende en el sexo del animal en que

actúa. La LH probablemente no produce efectos independientes o

previos a la acción concomitante de la FSH. En el mamífero hembra es

captada por receptores específicos existentes en las células granulosas,

en las células tecales, en las del estroma y cuerpo amarillo.

Contribuye a la maduración folicular en sus etapas finales y favorece la

ovulación, para luego estimular la conversión del folículo roto en cuerpo

amarillo. Su acción fundamental en la esteroideogénesis es inducir la

síntesis de andrógenos, la secreción de estrógenos en las células tecales,

así como la secreción de progesterona en las células granulosas ya

transformadas en cuerpo amarillo.

 

35  

En el mamífero macho la LH o ICSH estimula la diferenciación de las

células intersticiales de los testículos en células de Leydig y su

subsecuente secreción de andrógenos, los cuales actúan sobre todo el

organismo y, en consecuencia, van a ejercer un efecto directo sobre los

tubos seminíferos.

Mecanismo de acción

Los receptores específicos para las gonadotropinas existen solo en el

tejido gonadal. La FSH se fija a receptores existentes en la superficie de

las pequeñas células granulosas del folículo en el ovario y de las células

del Sertoli en los testículos .La LH se fija a receptores de superficie de las

células tecales, del cuerpo lúteo y de las células granulosas grandes de

los folículos. Tanto los receptores de LH como de FSH activa la

adenilatociclasa, por medio de la asociación al nucleótido regulador

guanina (Gs), produciendo un incremento intracelular de AMPc, el cual

implementa las enzimas mitocondriales oxidativas que escindirán la

cadena lateral del colesterol, reacción que constituye un paso importante

en la conversión de colesterol a pregnenolona.

Control de la secreción

La Adenohipofisis almacena cantidades elevadas de gonadotropinas, lo

que ha servido para el empleo de la glándula como fuente de extracción

de gonadotropinas para uso terapéutico. La secreción de LH y FSH está

determinada primariamente por la secreción periódica de la hormona

liberadora de gonadotropinas (LHRH o GnRH), lo que se traduce en el

patrón de secreción de FSH y LH, que se realiza en forma de picos sobre

todo en el periodo pre-ovulatorio.

Normalmente ocurren picos plasmáticos de LH cada 1-2 horas como

consecuencia de la secreción pulsátil de GnRH. Los picos de FSH son

 

36  

menos evidentes porque la vida media plasmática de esta hormona es

más prolongada.

Se ha demostrado que los estrógenos tienen efectos tanto estimulatorios

como inhibitorios en la síntesis y secreción de gonadotropinas, sus

efectos dependen del tiempo y de la dosis. Los ciclos reproductivos de los

roedores constituyen ejemplos claros de los efectos negativos y positivos

de los estrógenos en los procesos reproductivos.

En los primates y la rata los estrógenos ejercen su efecto negativo de

retroalimentación sobre el hipotálamo, donde producen cambios en el

contenido hipotalámico del ARNm para GnRH. El estradiol puede ejercer

un efecto inhibitorio directamente sobre la glándula pituitaria, lo cual

produciría cambio en los receptores de GnRH y alteraría la respuesta de

las gonadotropinas a la GnRH.

La acción regulatoria de retroalimentación positiva de los estrógenos

sobre la secreción de LH es bien conocida. La administración de estradiol

puede producir una acción inicial, seguida de una masiva descarga de LH.

En la rata la administración de estradiol sin progesterona, resulta en un

incremento diario de LH, que ocurre en las tardes y dura por semanas. El

sitio de acción de este efecto regulatorio positivo de los estrógenos se

realiza a nivel de la pituitaria. Se ha demostrado que los estrógenos

incrementan la síntesis del ARNm para la subunidad beta de la LH e

incrementan la secreción de LH inducida por acción de la GnRH. Sin

embargo, hay evidencias de que el estradiol puede ejercer una

retroalimentación positiva también en el hipotálamo.

Los efectos inhibitorios de la progesterona sobre la secreción de

gonadotropinas son menos espectaculares que de los estrógenos. Se ha

demostrado en monos, seres humanos y ovejas una disminución de la

frecuencia de la secreción pulsátil de LH durante la fase luteal, tiempo en

que la secreción de progesterona es máxima. El efecto inhibitorio de la

progesterona se realiza sobre el hipotálamo; en la oveja ejerce un efecto

sobre la pituitaria, reduciendo la secreción de FSH.

 

37  

La progesterona administrada en forma aislada carece de acción sobre la

liberación pulsátil de GnRH. Si se la administra luego del tratamiento

previo con estradiol, se comprueba que tiene una acción sinérgica; El

resultado de la administración de ambos esteroides es una mayor

inhibición en la liberación de gonadotropinas.

Los andrógenos tienen efectos diferentes en la inhibición por

retroalimentación sobre la secreción de LH y FSH. La administración de

testosterona en animales castrados incrementa la concentración pituitaria

de FSH, pero reduce la de LH. Existen diferentes evidencias para

asegurar que los andrógenos ejercen sus efectos inhibitorios sobre la

secreción de LH y FSH, tanto a nivel de la pituitaria como del hipotálamo.

La administración prolongada de testosterona conduce a la supresión de

la respuesta de la hipófisis a la GnRH, e inhibe la secreción de LH y FSH

y la producción de material espermático.

Gonadotropinas No Hipofisiarias

Son dos glicoproteínas que no se originan en la pituitaria y que tienen

actividad gonadotrópica; la gonadotropina de suero de yegua preñada

(PMSG) y la gonadotropina coriónica humana (hCG).

Gonadotropina de Suero de Yegua Preñada (PMSG)

Se llama también gonadotropina equina. Es la glucoproteína con peso

molecular de 68000 y con vida media de 26 horas, es secretada por las

cúpulas endometriales del útero de yegua preñada; se encuentra en la

sangre de la yegua gestante entre los 40 y 141 días de gestación,

alcanzando valores máximos entre los 60 y 110 días. La acción fisiológica

de esta hormona es principalmente de tipo de hormona pituitaria FSH,

aunque tiene algunas acciones a la LH; por tanto, a tal hormona se la

califica como hormona FSH. Dado el peso molecular de la hormona, no se

elimina en la orina y su extracción se realiza del plasma de yegua

 

38  

gestante. Dicha característica es la responsable del largo período de

acción de esta hormona, en el propio cuerpo de la yegua gestante va a

actuar sobre los ovarios maternos, produciendo desarrollo folicular y hasta

ovulaciones múltiples, aunque el animal ya se encuentre en estado de

gestación. La gonadotropina en suero de yegua preñada puede inducir

desarrollo de los folículos en los ovarios de animales experimentales,

ovarios seniles y prepuberales. (Hernández, 1994)

La administración de esta hormona puede estimular la actividad de los

ovarios inactivos que permanecen en estado de latencia funcional por

razones diversas. Cabe inducir superovulación en el animal receptor si se

administra en cantidad suficiente. (Mc Donald, 1971).

La eCG se ha utilizada en muchas especies a modo experimental y para

producir mayor fertilidad dentro de un rebaño ya que se han instaurado en

métodos produciendo ovulaciones múltiples en animales. Se ha utilizado

en: Pavos (Dhont y col, 1978), cabras (Kummer y col, 1980), bovinos

(Saumande y Chupin, 1981), ovinos (Kim y col, 1987), Hamsters (Peter y

Menezes, 1984), Ratones (Taruel, Catalano, Cabodevila, 2005), entre

otros. Al comenzar un tratamiento con gonadotrofina coriónica equina se

debe evaluar los posibles efectos secundarios que se describen, tales

como crecimiento folicular disperso, afectan la calidad embrionaria,

además de procesos inmunitarios que hacen necesarios, en tratamientos

posteriores, emplear una mayor dosis para lograr el mismo efecto.

(Cabodevilla y Torquati, 2001) Bindon y Piper (1977) utilizaron por primera

vez un suero anti-PMSG para de esta manera eliminar efectos

indeseables de esta hormona, posteriormente a la superovulación. Dentro

de las investigaciones, los resultados coinciden en señalar que la

administración de este suero Anti-PMSG produce una mejora en la

respuesta superovulatoria a través del número de ovocitos recolectados,

así como aumentar las tasas de ovulación y fertilidad.(González, Wang,

Carruthers;1994). Además se ha comprobado una menor duración del

celo y una mayor normalidad de esteroideo-génesis folicular. No obstante

existen casos de reportes en que rebaños tratados con suero anti-PMSG

no ocurrió ningún efecto.

 

39  

La dosificación de eCG se deberá evaluar a través de un médico

veterinario:

Rata - Ratón: Superovulación: 5-20 (UI/dosis).

Sincronización de celo: 5-10(UI/dosis).

Baeza, C. 2009

Gonadotropina Coriónica Humana (hCG)

Es una glucoproteína con peso molecular de 30000 y vida media de 8 a

12 horas. La hormona tiene una actividad fisiológica de tipo LH, aunque

con alguna actividad de FSH. Su estructura química es diferente a la LH

hipofisiaria. La fuente de esta hormona es el citotrofoblasto de las

vellosidades coriónicas de la placenta humana, alcanza su máxima

concentración a los 50 días de embarazo y dado su peso molecular se

elimina por la orina. La hCG posee muchas propiedades de la hormona

luteinizante. Al inyectarse en conejas no gestantes va inducir ovulación en

presencia de un folículo maduro, lo cual constituye la base la prueba

biológica de Friedman para el diagnóstico del embarazo. La hCG

estimulas las células de Leydig y puede aumentar la producción de

andrógenos.

Superovulación

La inducción de la superovulación en animales domésticos generalmente

está regulada por el empleo de hormonas foliculoestimulantes, siendo una

fuente muy práctica las gonadotropinas del suero de yegua preñada

(PMS). La administración de PMS produce aumento del crecimiento

folicular, especialmente al fin del ciclo estrual o después de la eliminación

del cuerpo amarillo. Es importante regular bien la dosis para evitar

estimulación excesiva de los ovarios. PMS posee gran actividad folículo

estimulante, pero carece de actividad ovulatoria en la mayor parte de las

 

40  

especies, y en consecuencia suele ser necesaria la administración de la

hormona LH inductora de la ovulación. La fuente de LH más comúnmente

disponible es la gonadotropina coriónica humana (HCG) que posee

muchas cualidades de tipo LH. Con la combinación de estas dos

hormonas generalmente se puede inducir superovulación aunque es difícil

controlar el número de huevos expulsados.

En la mayor parte de especies, con excepción del conejo, se ha logrado

fecundación in vitro, y en consecuencia es mejor aparear o inseminar a

la hembra superovulada durante el estro que acompaña a la ovulación.

Cabe esperar que los oviductos contengan estos cigotos durante 3-6 días.

El uso repetido de PMSG produce una reacción secundaria indeseable en

al animal con base inmunológica ya que PMSG es una proteína extraña

que provoca reacción antígeno – anticuerpo. Durante los ciclos estruales

subsiguientes la respuesta ovárica a las inyecciones de PMSG es cada

vez menor a medida que aumentan las concentraciones de anticuerpos.

La respuesta es tan limitada que obliga a suspender el proceso. Además,

con frecuencia se observa en el animal inyectado reacciones

anafilactoides graves con síntomas generales. Esto puede evitarse en

alguna medida incrementando el intervalo entre tratamientos hormonales

y utilizando gonadotropinas derivadas de la misma especie tratada.

 

41  

CAPITULO II

MATERIALES Y MÉTODOS

Materiales

Animales

16 cobayas primerizas Tipo A1, de 12 semanas de edad, con un

peso promedio de 1200g.

Materiales de campo

Gonadotropina sérica (eCG).

Instalaciones: 4 pozas para reproducción de 1,20 metros de largo,

1,30 metros de ancho.

Hojas de registro

Jeringuillas

Agujas

Balanceado

Forraje

Comederos

Pozas

Balanza

Materiales de limpieza y desinfección

Materiales de oficina

 

42  

Métodos

Características de las unidades experimentales

Hembras

Número de hembras:

Grupo testigo: T1: 4 hembras

Grupo experimental: E1: 4 hembras

E2: 4 hembras

E3: 4 hembras

Tipo: A1

Edad: 12 semanas

Peso: 1200g

Macho

Número de macho: Un reproductor probado que se incorporará

en cada grupo.

Tipo: A1

Peso: 1500g

Características del área del experimento

Ubicación

Lugar: CENTRO EXPERIMENTAL UYUMBICHO

Parroquia: Uyumbicho

Cantón: Mejía

Provincia: Pichincha

 

43  

Geográficas

Altitud: 2735msnm

Longitud: 38� 31̀`Oeste

Latitud: 0� 24̀ Sur

Cuenca Hidrográfica: Cuenca del Rio Esmeraldas y

Subcuenca del Rio San Pedro.

Suelo: Franco con pH: de 6.5-6.6. Pertenece al

bosque húmedo montano bajo.

Topografía: 92% de la superficie es pendiente y el

8% es plano.

Ecológicas

Clima: Temperatura máxima: 26 � C.

Temperatura mínima: 5� C.

Precipitación Anual: 1238 mm de lluvia.

Heliofonía: Los mayores meses son: Julio, Agosto,

Septiembre, con un valor de 1579 horas luz/año.

Humedad: 77-82%

Vientos: Velocidad de 1.6m/seg. Mayor incidencia de

norte a sur.

Fuente: INAMI

Elaboración: Los Autores

Manejo del experimento

Los animales sujetos a experimento son cobayas de 12 semanas de

edad, con un peso promedio de 1200g.

Se seleccionaron 16 hembras primerizas, conformando grupos de 4

hembras. Las cuales fueron distribuidos al azar y en forma uniforme

en cada una de las pozas.

 

44  

Se escogió un macho reproductor probado con un peso aproximado

de 1500g, el que fue incorporado a cada una de las pozas

tratamiento en forma aleatoria, a 48 horas de inoculada la hormona a

las hembras, dejándolo tres días para empadre y dándole siete días

de descanso antes de incorporarlo a otro grupo tratamiento.

El macho y las hembras fueron seleccionados de una misma línea

genética, edad y pesos.

Para el trabajo experimental se aplicó la gonadotropina coriónica

equina a dosis de 10-20-30UI vía SC, a cobayas primerizas.

La alimentación que recibieron los animales fue a base de forraje

(mezcla forrajera) y balanceado de acuerdo a una tabla establecida.

(Ver Cuadro 4.)

 

45  

DISPOSICIÓN DE LOS TRATAMIENTOS

Gráfico № 2. Disposición de los tratamientos

Fuente: C.E.U

Elaboración: Los Autores

1 Macho y 4 Hembras

Area  de 1.56 m2

1 Macho y 4 Hembras

Area  de 1.56 m2

1 Macho y 4 Hembras

Area  de 1.56 m2

1 Macho y 4 Hembras

Area  de 1.56 m2

Testigo  Experimental  3 Experimental  2 Experimental  1 

1.30 

1.20 

1.30 

1.20  1.20 1.20 

1.30 1.30 

 

46  

CONSUMO DE ALIMENTO

Cuadro № 4. Consumo de alimento

Semanas

Mezcla forrajera (Raygrass y

Alfalfa) BALANCEADO

(g/día/animal) (g/día/animal)

1 300 30

2 300 30

3 300 30

4 400 40

5 400 40

6 400 40

7 500 50

8 500 50

9 500 50

10 500 50

Fuente: Centro Experimental Uyumbicho

Elaboración: Los Autores

 

47  

COMPOSICIÓN DEL BALANCEADO

Cuadro № 5. Composición del balanceado

Ingredientes Cantidad Unidad

Maíz 28,74 %

Palmiste 14,47 %

Cebada Molida 14,97 %

Afrecho de Trigo 14,97 %

Pasta De Soya 20,95 %

Sal Mineral 0,49 %

Vitamina C 0,49 %

Lucetacil 0,19 %

Luctamol 0,14 %

Grasa Vegetal 1,49 %

Melaza 2,84 %

Lisina 0,09 %

Metionina 0,09 %

Fuente: Centro Experimental Uyumbicho

Elaboración: Los Autores

 

48  

CAPÍTULO III

RESULTADOS Y DISCUSIÓN

RESULTADOS

Cuadro № 6. Resumen de datos reproductivos obtenidos en el

experimento.

CONCEPTO TESTIGO EXPERIMENTAL

1

EXPERIMENTAL

2

EXPERIMENTAL

3

# HEMBRAS

EMPADRADAS 4 4 4 4

# HEMBRAS PREŇADAS

3 4 2 3

% FERTILIDAD 75% 100% 50% 75%

% CONCEPCION 75% 100% 50% 75%

# GAZAPOS NACIDOS VIVOS

8 12 7 15

PROMEDIO DE GAZAPOS NACIDOS/MADRE

2 3 1,75 5

# GAZAPOS DESTETADOS

5 12 2 8

% DE MORTALIDAD DE GAZAPOS HASTA EL DESTETE

37,50% 0% 71,43% 46,67%

PROMEDIO DE PESOS POR CAMADA AL NACIMIENTO

390 656,73 254,48 714,3

PESO PROMEDIO POR CRIA AL NACIMIENTO

195 218,91 145,42 142,86

COSTO PARCIAL POR CRIA AL NACIMIENTO

8,08 5,42 9,35 4,39

COSTO PARCIAL POR CRIA AL DESTETE

12,93 5,42 32,72 8,23

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

49  

DISCUSIÓN

La inducción de la superovulación, como cita Hafez (2000) está regulada

por el empleo de hormonas foliculoestimulantes, como la Gonadotropina

de Suero de Yegua Preñada (PMSG). Esta hormona ha sido utilizada en

la mayoría de de animales con el objetivo de producir superovulación y

por ende un mayor número de crías al parto.

En el Centro Experimental Uyumbicho (CEU) hay un promedio de 2,5

crías/madre al primer parto (Conversación Personal Díaz 2012), el

objetivo de nuestro estudio es el uso de PMSG para producir

superovulación en cobayas primerizas, para incrementar el número de

crías al primer parto. Los resultados que se obtuvieron con la aplicación

de ésta hormona fueron en un promedio de 2 crías en el grupo Testigo, 3

en Experimental 1, 1,75 en Experimental 2 y 5 en Experimental 3. (Ver

Cuadro № 6.)

Según López, (1993), la fertilidad y concepción de las cuyas es del 80-

90%, en nuestro estudio con el uso de la hormona PMSG, los

porcentajes de fertilidad y concepción fueron 75% en el grupo testigo,

100% en experimental 1, 50% en experimental 2 y 75% en experimental

3. La variación de porcentaje entre los grupos tratamiento, se pudo deber

a que no todas las hembras se hayan encontrado en la misma etapa del

ciclo estral, siendo un factor que no se lo puede controlar con certeza, aun

habiendo trabajado con hembras de la misma edad, pesos y línea

genética. También se pudo deber por diferentes patologías de aspecto

reproductivo como: infantilismo, quistes ováricos, metritis, reabsorción

fetal por estrés excesivo etc.

Desafortunadamente no se han encontrado otras publicaciones sobre la

fertilidad y concepción con el uso de hormonas en cuyes.

Existe una marcada diferencia en el número de crías entre los

tratamientos, al destete, siendo el Experimental 1 el de mayor número,

dado a que las 4 hembras del grupo se preñaron, con un promedio de 3

crías al nacimiento, llegando todas vivas hasta el destete.

 

50  

La diferencia del número de crías al nacimiento y al destete se debe al

nacimiento de gazapos débiles, que a pocos días de nacidos murieron,

aún dándoseles el mismo manejo y alimentación. Se debe tomar en

cuenta, que el experimentó se llevó a cabo en época de invierno, siendo

las lluvia y el frío un factor determinante en la sobrevivencia de los

gazapos, afectándose además su principal fuente de alimento, la mezcla

forrajera, presentando excesiva humedad, predisponiendo a los gazapos

a problemas de timpanismo.

 

51  

NÚMERO DE CRÍAS AL NACIMIENTO

RESULTADOS

MEDIDAS DE TENDENCIA CENTRAL

Cuadro № 7. Medidas de tendencia central, número de crías al

nacimiento

T E1 E2 E3

3 3 3 5

3 4 4 6

2 2 4

3

SUMATORIA 8 12 7 15

PROMEDIO 2,67 3 3,5 5

DESVIACIÓN ESTANDAR 0,58 0,81 0,71 1

ERROR ESTANDAR 0,33 0,41 0,5 0,58

COEFICIENTE DE VARIACIÓN 22 27 20 20

RANGO 1 2 1 2

INTERVALO DE CONFIANZA 0,5 1 0,5 1

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

52  

ANADEVA

Cuadro № 8. ANADEVA número de crías al nacimiento

T E1 E2 E3

3 3 3 5

3 4 4 6

2 2 4

3

∑ 8 12 7 15

X 2,67 3 3,5 5

FC= 147

gl SC CM FC

Ft

5% 1%

TRATAMIENTO 3 9,83 3,28 5,05 4,07 7,59

ERROR 8 5,17 0,65

TOTAL 11 15

FC Ft

5,05 > 4,07 DS

< 7,59 DNS

5% 1%

H0 T= E1 = E2 = E3 Rechazo H0 T= E1 = E2 = E3 Acepto

H1 T ≠ E1 ≠E2 ≠ E3 Acepto H1 T ≠ E1 ≠E2 ≠ E3

Rechazo

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

53  

DUNCAN

ERROR TÍPICO DE MEDIA

S� = 0,24

RANGO MINIMO DUNCAN 5%

Cuadro № 9. DUNCAN al 5% número de crías al nacimiento

RMD 5% 2 3 4

3,26 3,39 3,47

RMS 0,8 0,81 0,83

T E1 E2 E3

2,67 3 3,35 5

E3 vs T 5 – 2,67 2 ,33 > 0,83 DS

E3 vs E1 5 – 3 2 > 0,81 DS

E3 vs E2 5 – 3,5 1,5 > 0,8 DS

E2 vs T 3,5 – 2,67 0,83 > 0,81 DS

E2 vs E1 3,5 – 3 0,5 < 0,8 DNS

E1 vs T 3 – 2,67 0,33 < 0,8 DNS

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

54  

RANGO MINIMO DUNCAN 1%

Cuadro № 10. DUNCAN al 1% número de crías al nacimiento

RMD 1% 2 3 4

4,74 5,00 5,14

RMS 1,14 1,2 1,23

E3 vs T 5 – 2,67 2 ,33 > 1,23 DS

E3 vs E1 5 - 3 2 > 1,2 DS

E3 vs E2 5 – 3,5 1,5 > 1,14 DS

E2 vs T 3,5 – 2,67 0,83 < 1,2 DNS

E2 vs E1 3,5 - 3 0,5 < 1,14 DNS

E1 vs T 3 – 2,67 0,33 < 1,14 DNS

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

55  

DISCUSIÓN

En la prueba de ANADEVA para el número de crías al nacimiento, al 5%,

existe diferencia significativa del 0,98%, aceptando por esto la H1 y

rechazando la H0, lo cual indica que la prueba realizada es favorable a la

práctica, pero estadísticamente no existe una diferencia importante entre

los tratamientos.

Al 1% no existe diferencia significativa, aceptamos la H0, sin ser aplicable

los tratamientos. (Ver Cuadro № 8).

En DUNCAN al 5%, existe diferencia significativa del E3 en relación a los

demás tratamientos, debido a que éste presentó el mayor número de crías

al nacimiento, siendo éste de 15 crías, tres madres, seguido de E2, con 7

crías, dos madres, dándonos promedios altos con relación al E1 y T, entre

los cuales no hubo diferencia significativa, lo que indica que estos dos

tratamientos son similares, sin obtener mejor resultado con el uso de

10UI.

(Ver Cuadro № 9).

Al comparar los grupos experimentales y testigo al 1% con la prueba de

DUNCAN, determinamos que existe una diferencia significativa de E3 con

relación a E1, 2 y a T.

Mientras que las demás combinaciones de tratamientos no representan

una diferencia significativa.

De acuerdo con los resultados obtenidos, hubo un mayor número de crías

en las madres del grupo experimental 3, en quienes se inoculó la mayor

dosis de Gonadotropina Coriónica Equina (30 UI).

Es importante tomar en cuenta el número de madres que quedan

preñadas en cada tratamiento, así en el caso del E1 hay un número de

crías al nacimiento de 12, en cuatro madres, mientras que en E2, solo hay

7 crías, pero en dos madres, lo que indica que existe un mayor promedio

de crías por grupo. El hecho de que dos hembras no se hayan preñado,

es algo totalmente independiente a la inoculación de la hormona,

 

56  

pudiendo deberse al estado del ciclo estral en el que se encontraban las

cobayas en el momento de la incorporación del macho al grupo.

Gráfico № 3. Número de crías al nacimiento

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

57  

NÚMERO DE CRÍAS A LA SEMANA

RESULTADOS

MEDIDAS DE TENDENCIA CENTRAL

Cuadro № 11. Medidas de tendencia central número de crías a la

semana

T E1 E2 E3

3 3 1 5

2 4 3 3

2

3

SUMATORIA 5 12 4 8

PROMEDIO 2,5 3 2 4

DESVIACIÓN ESTANDAR 0,71 0,82 1,41 1,41

ERROR ESTANDAR 0,50 0,41 1 1

COEFICIENTE DE VARIACIÓN 28 27 71 35

RANGO 1 2 2 2

INTERVALO DE CONFIANZA 0,5 1 1 1

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

58  

ANADEVA

Cuadro № 12. ANADEVA número de crías a la semana

T E1 E2 E3

3 3 1 5

2 4 3 3

2

3

∑ 5 12 4 8

� 2,5 3 2 4

gl SC CM FC Ft

5% 1%

TRATAMIENTO 3 4,4 1,47 1,36 4,76 9,78

ERROR 6 6,5 1,08

TOTAL 9 10,9

FC Ft

1,36 < 4,76 DNS

< 9,78 DNS

H0 T= E1 = E2 = E3 Acepto

H1 T ≠ E1 ≠E2 ≠ E3 Rechazo

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

59  

DUNCAN

ERROR TÍPICO DE MEDIA

S� = 0,39

RANGO MINIMO DUNCAN 5%

Cuadro № 13. DUNCAN al 5% número de crías a la semana

RMD 5% 2 3 4

3,46 3,58 3,64

RMS 1,35 1,4 1,42

E2 T E1 E3

2 2,5 3 4

E3 vs E2 4 – 2 2 > 1,42 DS

E3 vs T 4 – 2,5 1,5 > 1,4 DS

E3 vs E1 4 – 3 1 < 1,35 DNS

E1 vs E2 3 – 2 1 < 1,4 DNS

E1 vs T 3 – 2,5 0,5 < 1,35 DNS

T vs E2 2,5 – 2 0,5 < 1,35 DNS

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

60  

RANGO MINIMO DUNCAN 1%

Cuadro № 14. DUNCAN al 1% número de crías a la semana

RMD 1% 2 3 4

5,24 5,51 5,65

RMS 2,04 2,15 2,20

E3 vs E2 4 – 2 2 < 2,20 DNS

E3 vs T 4 – 2,5 1,5 < 2,15 DNS

E3 vs E1 4 – 3 1 < 2,4 DNS

E1 vs E2 3 – 2 1 < 2,15 DNS

E1 vs T 3 – 2,5 0,5 < 2,04 DNS

T vs E2 2,5 – 2 0,5 < 2,04 DNS

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

61  

DISCUSIÓN

Aplicando ANADEVA para el número de crías a la semana, no existió una

diferencia significativa entre los tratamientos, dado que hubo una

mortalidad considerable, de 7 crías, en el Experimental 3, habiendo sido

el grupo con mayor número de crías al nacimiento, esto se debe a que

nacieron con pesos bajos y débiles. Por tal razón aceptamos la H0 que

indica que todos los tratamientos son iguales y rechazamos la H1. (Ver

Cuadro № 12).

Con la prueba de DUNCAN al 5% hay diferencia significativa entre el E3 y

eE2 del 0,06%, lo cual no es representativo al 1%, sin presentarse

diferencia significativa.

Entre los demás tratamiento no existe diferencia significativa a la

aplicación de DUNCAN. (Ver Cuadros № 13-14). Al no obtener diferencia

significativa entre los tratamientos, podríamos indicar que no es una

prueba aplicable, debido a la disminución del número de crías,

principalmente en el E3 y E2, que fueron los tratamientos con promedios

de crías mayores al nacimiento, pudiendo deberse éstas pérdidas a los

pesos bajos de algunas crías, lo que los volvió débiles, y menos capaces

de alimentarse, en comparación con las crías de camadas más pequeñas

en las que tenían pesos mayores.

Gráfico № 4. Número de crías a la semana

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

62  

NÚMERO DE CRÍAS AL DESTETE

RESULTADOS

MEDIDAS DE TENDENCIA CENTRAL

Cuadro № 15. Medidas de tendencia central numero de crías al

destete

T E1 E2 E3

3 3 1 5

2 4 1 3

2

3

SUMATORIA 5 12 2 8

PROMEDIO 2,5 3 1 4

DESVIACIÓN ESTANDAR 0,71 0,82 0 1,41

ERROR ESTANDAR 0,50 0,41 0 1

COEFICIENTE DE VARIACIÓN 28 27 0 35

RANGO 1 2 0 2

INTERVALO DE CONFIANZA 0,5 1 0 1

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

63  

ANADEVA

Cuadro № 16. ANADEVA número de crías al destete

T E 1 E 2 E 3

3 3 1 5

2 4 1 3

2

3

Σ 5 12 2 8

� 2,5 3 1 4

Gl SC CM FC FT

5% 1%

TRATAMIENTO 3 9,6 3,2 4,27 4,76 9,78

ERROR 6 4,5 0,75

TOTAL 9 14,1

FC Ft

4,27 < 4,76 DNS

< 9,78 DNS

H0 T= E1 = E2 = E3 Acepto

H1 T ≠ E1 ≠E2 ≠ E3 Rechazo

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

64  

DUNCAN

ERROR TÍPICO DE MEDIA

S� = 0,33

RANGO MINIMO DUNCAN 5%

Cuadro № 17. DUNCAN al 5% número de crías al destete

RMD 5% 2 3 4

3,46 3,58 3,64

RMS 1,14 1,18 1,20

E2 T E1 E3

1 2,5 3 4

E3 vs E2 4 – 1 3 > 1,20 DS

E3 vs T 4 – 2,5 1,5 > 1,18 DS

E3 vs E1 4 – 3 1 < 1,14 DNS

E1 vs E2 3 – 1 2 > 1,18 DS

E1 vs T 3 – 2,5 0,5 < 1,14 DNS

T vs E2 2,5 – 1 1,5 > 1,14 DS

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

65  

RANGO MINIMO DUNCAN 1%

Cuadro № 18. DUNCAN al 1% número de crías al destete

RMD 1% 2 3 4

5,24 5,51 5,65

RMS 1,73 1,81 1,86

E3 vs E2 4 – 1 3 > 1,86 DS

E3 vs T 4 – 2,5 1,5 < 1,81 DNS

E3 vs E1 4 – 3 1 < 1,73 DNS

E1 vs E2 3 – 1 2 > 1,81 DS

E1 vs T 3 – 2,5 0,5 < 1,73 DNS

T vs E2 2,5 – 1 1,5 < 1,73 DNS

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

66  

DISCUSIÓN

Al la aplicación de ANADEVA al 5 y 1% a los datos obtenidos de el

número de crías al destete, se determino, que no existe diferencia

significativa entre los tratamientos. Y en el planteamiento de hipótesis

donde H0 Acepto y H1 Rechazo. (Ver Cuadro № 16).

El que no exista diferencia significativa entre los tratamiento de debe a la

gran pérdida de cría en el E2 al llegar al destete, lo que hizo que no haya

una varianza entre los tratamiento y las hipótesis 1 planteada no sea

aceptada.

A la aplicación de DUNCAN al 5% no hay diferencia significativa entre

tratamientos, únicamente entre el E2 y E1, mientras que al 1% no hay

diferencia significativa entre tratamientos. (Ver Cuadros № 17-18).

Gráfico № 5. Número de crías al destete

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

67  

PESOS DE LOS GAZAPOS AL NACIMIENTO

RESULTADOS

MEDIDAS DE TENDENCIA CENTRAL

Cuadro № 19. Medidas de tendencia central pesos al nacimiento

T E1 E2 E3

125 209 155 134

120 206 120 136

122 191 115 144

233 204 166 147

284 203 194 112

271 191 195 110

207 208 73 107

198 187 100

224 104

272 98

294 87

238 221

221

215

207

SUMATORIA 1560 2627 1018 2143

PROMEDIO 195 218,91 145,42 142,86

RANGO 164 107 122 134

DESVIACION ESTANDAR ± 66,70 ± 33,41 ± 44,99 ± 48,89

ERROR ESTANDAR 23,58 9,64 17,00 12,62

COEFICIENTE DE VARIACION 34,20 15,26 30,93 34,22

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

68  

ANADEVA

Cuadro № 20. ANADEVA pesos al nacimiento

T E1 E2 E3

125 209 155 134

120 206 120 136

122 191 115 144

233 204 166 147

284 203 194 112

271 191 195 110

207 208 73 107

198 187 100

224 104

272 98

294 87

238 221

221

215

207

∑ 1560 2627 1018 2143

� 195 218,91 145,42 142,86

FC= 1285550,09

Gl SC CM FC

Ft

5% 1%

TRATAMIENTO 3 47953,54 15984,51 6,82 2,88 4,41

ERROR 38 89052,37 2343,48

TOTAL 41 137005,91

FC Ft

6,82 > 2,88 DS

> 4,41 DS

 

69  

5%

H0 T= E1 = E2 = E3 Rechazo

H1 T ≠ E1 ≠E2 ≠ E3 Acepto

1%

H0 T= E1 = E2 = E3 Rechazo

H1 T ≠ E1 ≠E2 ≠ E3 Acepto

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

70  

DMS

Cuadro № 21. DMS al 5% pesos al nacimiento

5%

Sd = 34,23

``t``(gl error 5%) x Sd = 69,48

E1 T E 2 E 3

218,91 195 145,42 142,86

Comparación 5%

E1 vs T 218,91 – 195 = 23,91 < 69,48 DNS

E1 vs E2 218,91 – 145,42 = 73,49 > 69,48 DS

E1 vs E3 218,91 – 142,86 = 76,05 > 69,48 DS

T vs E2 195 - 145,42 = 49,58 < 69,48 DNS

T vs E3 195 - 142,86 = 52,14 < 69,48 DNS

E2 vs E3 145,42 – 142,86 = 2,56 < 69,48 DNS

Conclusión 5%

Exp1 Primero

T Segundo

Exp 2 Tercero

Exp 3 Cuarto

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

71  

Cuadro № 22. DMS al 1% pesos al nacimiento

1%

``t``(gl error 1%) x Sd = 93,34

E1 T E 2 E 3

218,91 195 145,42 142,86

Comparación 1%

E1 vs T 218,91 – 195 = 23,91 < 93,34 DNS

E1 vs E2 218,91 - 145,42 = 73,49 < 93,34 DNS

E1 vs E3 218,91 – 142,86 = 76,05 < 93,34 DNS

T vs E2 195 - 145,42 = 49,58 < 93,34 DNS

T vs E3 195 - 142,86 = 52,14 < 93,34 DNS

E2 vs E3 145,42 – 142,86 = 2,56 < 93,34 DNS

Conclusión 1%

Exp1 Primero

T Segundo

Exp 2 Tercero

Exp 3 Cuarto

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

72  

DUNCAN

PESOS AL NACIMIENTO

ERROR TÍPICO DE MEDIA

S� = 24,20

RANGO MINIMO DUNCAN 5%

Cuadro № 23. DUNCAN al 5% pesos al nacimiento

RMD 5% 2 3 4

2,875 3,025 3,11

RMS 69,57 73,20 75,26

E3 E2 T E1

142,86 145,42 195 218,91

Comparación 5%

E1 vs E3 218,91 –142,86 = 76,05 > 75,26 DS

E1 vs E2 218,91 – 145,42 = 73,49 > 73,2 DS

E1 vs T 218,91 – 195 = 23,91 < 69,57 DNS

T vs E3 195 – 142,86 = 52,14 < 73,2 DNS

T vs E2 195 – 145,42 = 49,58 < 69,57 DNS

E2 vs E3 145,42 – 142,86 = 2,56 < 69,57 DNS

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

73  

RANGO MINIMO DUNCAN 1%

Cuadro № 24. DUNCAN al 1% pesos al nacimiento

RMD 1% 2 3 4

3,855 4,025 4,13

RMS 93,29 97,40 99,94

Comparación 1%

E1 vs E3 218,91 – 142,86 = 76,05 < 99,94 DNS

E1 vs E2 218,91 – 145,42 = 73,49 < 97,4 DNS

E1 vs T 218,91 – 195 = 23,91 < 93,29 DNS

T vs E3 195 – 142,86 = 52,14 < 97,4 DNS

T vs E2 195 – 145,42 = 49,58 < 93,29 DNS

E2 vs E3 145,42 – 142,86 = 2,56 < 93,29 DNS

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

E3 E2 T E1

142,86 145,42 195 218,91

 

74  

DISCUSIÓN

Posterior al análisis estadístico de los datos obtenidos durante el

desarrollo de la investigación, se obtiene los siguientes resultados y

discusión.

El promedio de pesos al nacimiento de los gazapos según Díaz 2011, es

de 165 gramos en el C.E.U; a través del trabajo práctico obtuvimos crías

con pesos promedio de 195 en el Testigo, 218,92 en E 1, 145,42 en E 2 y

142,86 en E 3. (Ver Cuadro № 19).

Estas diferencias en promedio de pesos se debe a que el grupo E1

obtuvo un menor número de crías por madre, naciendo crías con pesos

superiores a diferencia de los demás tratamientos, logrando así un mayor

peso promedio, por ende tuvieron mayor disponibilidad de balanceado,

forraje, espacio.

Al la aplicación de ANADEVA al 5 y 1% a los datos obtenidos de pesos de

gazapos al nacimiento, se determino haber diferencia significativa al 5% y

1%, y en el planteamiento de hipótesis donde H0 Rechazo y H1 Acepto.

Esto indica que el mejor tratamiento es el E1 con relación a los pesos de

las crías, pero hay que tomar en cuenta que la diferencia se debe a que

por madre hay un menor número de crías con mayores pesos, y a que las

cuatro madres se preñaron. (Ver Cuadro № 19).

Tomando en cuenta que E3 tiene un mayor número de crías por madre

con pesos menores, el T y E2 con menor número de crías y pesos

menores.

A la aplicación de DMS al 5 y 1% se llego a la conclusión de que al 5 %

no hubo diferencia significativa entre tratamientos a excepción de que si

hay diferencia significativa entre E1 vs E2 y E1 vs E3, debido a que hay

que tomar en cuenta que el número de animales no son iguales entre los

tratamientos. Y DMS al 1% no hubo diferencia significativa entre

tratamientos. (Ver Cuadros № 21-22).

 

75  

A la aplicación de DUNCAN al 5% y 1%, se llego a la conclusión de que al

5 % no hubo diferencia significativa entre tratamientos a excepción de que

si hay diferencia significativa entre E1 vs E3 y E1 vs E2, debido a que hay

que tomar en cuenta que el número de animales no son iguales entre los

tratamientos. Y DUNCAN al 1% no hubo diferencia significativa entre

tratamientos. (Ver Cuadros № 23-24).

Gráfico № 6. Promedio de pesos al nacimiento

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

76  

PESOS DE GAZAPOS A LA SEMANA

RESULTADOS

MEDIDAS DE TENDENCIA CENTRAL

Cuadro № 25. Medidas de tendencia central pesos a la semana

T E1 E2 E3

249 346 230 177

292 314 187 182

295 308 208 188

240 252 238 195

228 262 141

240 238

265 245

283 233

344

316

336

254

SUMATORIA 1304 3520 863 1599

PROMEDIO 260,8 293,3 215,75 199,87

RANGO 67 106 51 104

DESVIACION ESTANDAR ± 30,78 ± 38,50 ± 22,98 ± 35,97

ERROR ESTANDAR 13,76 11,11 11,49 12,71

COEFICIENTE DE VARIACION 11,80 13,12 10,65 17,99

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

77  

ANADEVA

Cuadro № 26. ANADEVA pesos a la semana

T E1 E2 E3

249 346 230 177

292 314 187 182

295 308 208 188

240 252 238 195

228 262 141

240 238

265 245

283 233

344

316

336

254

∑ 1304 3520 863 1599

� 260,8 293,33 215,75 199,87

FC= 1830544,69

Gl SC CM FC

Ft

5% 1%

TRATAMIENTO 3 47864,21 15954,73 12,97 2,99 4,68

ERROR 25 30745,1 1229,80

TOTAL 28 78609,31

FC Ft

12,97 > 2,99 DS

> 4,68 DS

 

78  

5%

H0 T= E1 = E2 = E3 Rechazo

H1 T ≠ E1 ≠E2 ≠ E3 Acepto

1%

H0 T= E1 = E2 = E3 Rechazo

H1 T ≠ E1 ≠E2 ≠ E3 Acepto

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

79  

DMS

Cuadro № 27. DMS al 5% pesos a la semana

5%

Sd = 24,79

``t``(gl error 5%) x Sd = 51,06

E1 T E 2 E 3

293,33 260,8 215,75 199,87

Comparación 5%

E1 vs T 293,33 – 260,8 = 32,53 < 51,06 DNS

E1 vs E2 293,33 – 215,75 = 77,58 > 51,06 DS

E1 vs E3 293,33 – 199,87 = 93,46 > 51,06 DAS

T vs E2 260,8 - 215,75 = 45,05 < 51,06 DNS

T vs E3 260,8 - 199,87 = 60,93 > 51,06 DS

E2 vs E3 215,75 – 199,87 = 15,88 < 51,06 DNS

Conclusión 5%

Exp1 Primero

T Segundo

Exp 2 Tercero

Exp 3 Cuarto

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

80  

Cuadro № 28. DMS al 1% pesos a la semana

1%

``t``(gl error 1%) x Sd = 68,91

E1 T E 2 E 3

293,33 260,8 215,75 199,87

Comparación 1%

E1 vs T 293,33 – 260,8 = 32,53 < 68,91 DNS

E1 vs E2 293,33 – 215,75 = 77,58 > 68,91 DS

E1 vs E3 293,33 – 199,87 = 93,46 > 68,91 DS

T vs E2 260,8 - 215,75 = 45,05 < 68,91 DNS

T vs E3 260,8 - 199,87 = 60,93 < 68,91 DNS

E2 vs E3 215,75 – 199,87 = 15,88 < 68,91 DNS

Conclusión 1%

Exp1 Primero

T Segundo

Exp 2 Tercero

Exp 3 Cuarto

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

81  

DUNCAN

PESOS A LA SEMANA

ERROR TÍPICO DE MEDIA

S� = 17,53

RANGO MINIMO DUNCAN 5%

Cuadro № 29. DUNACAN al 5% pesos a la semana

RMD 5% 2 3 4

2,915 3,065 3,145

RMS 51,09 53,72 55,13

E3 E2 T E1

199,87 215,75 260,8 293,33

Comparación 5%

E1 vs E3 293,33 – 199,87 = 93,46 > 55,13 DAS

E1 vs E2 293,33 – 215,75 = 77,58 > 53,72 DS

E1 vs T 293,33 – 260,8 = 32,53 < 51,09 DNS

T vs E3 260,8 – 199,87 = 60,93 > 53,72 DS

T vs E2 260,8 – 215,75 = 45,05 < 51,09 DNS

E2 vs E3 215,75 – 199,87 = 15,88 < 51,09 DNS

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

82  

RANGO MINIMO DUNCAN 1%

Cuadro № 30. DUNACAN al 1% pesos a la semana

RMD 1% 2 3 4

3,945 4,125 4,225

RMS 69,15 72,31 74,06

Comparación 1%

E1 vs E3 293,33 – 199,87 = 93,46 > 74,06 DS

E1 vs E2 293,33 – 215,75 = 77,58 > 72,31 DS

E1 vs T 293,33 – 260,8 = 32,53 < 69,15 DNS

T vs E3 260,8 – 199,87 = 60,93 < 72,31 DNS

T vs E2 260,8 – 215,75 = 45,05 < 69,15 DNS

E2 vs E3 215,75 – 199,87 = 15,88 < 69,15 DNS

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

E3 E2 T E1

199,87 215,75 260,8 293,33

 

83  

DISCUSIÓN

Posterior al análisis estadístico de los datos obtenidos durante el desarrollo de la investigación, se obtiene los siguientes resultados y discusión.

El promedio de pesos a la semana de los gazapos según Ordoñez

(1997), es de 188.15 gramos en el C.E.U; a través del trabajo práctico

obtuvimos crías con pesos promedio de 260.8 en el testigo, 293.33 en E1,

215.75 en E2 y 199.87 en E3.

Estas diferencias en promedio de pesos se debe a; que el grupo E1

obtuvo un menor número de crías por madre, naciendo crías con pesos

superiores a diferencia de los demás tratamientos, logrando así un mayor

peso promedio, por ende tuvieron mayor disponibilidad de balanceado,

forraje, espacio.

Al la aplicación de ANADEVA al 5 y 1% a los datos obtenidos de pesos de

gazapos a la semana, se determino haber diferencia significativa al 5% y

1%, y en el planteamiento de hipótesis donde H0 Rechazo y H1 Acepto.

Esto indica que el mejor tratamiento es el E1 con relación a los pesos de

las crías, pero hay que tomar en cuenta que la diferencia se debe a que

por madre hay un menor número de crías con mayores pesos, y a que las

cuatro madres se preñaron y que a mayor peso al nacimiento mayor

viabilidad de gazapos a la semana. (Ver Cuadro № 26).

Tomando en cuenta que E3 tiene un mayor número de crías por madre

con pesos menores, el T y E2 con menor número de crías y pesos

menores.

A la aplicación de DMS al 5 y 1% se llego a la conclusión de que al 5 %

no hubo diferencia significativa entre tratamientos a excepción de que si

hay diferencia significativa entre E1 vs E2, E1 vs E3 y T vs E3, debido a

que hay que tomar en cuenta que el número de animales no son iguales

entre los tratamientos. Y DMS al 1% no hubo diferencia significativa entre

tratamientos a excepción de que si hay diferencia significativa entre E1 vs

 

84  

E2 y E1 vs E3, debido a que hay que tomar en cuenta que el número de

animales no son iguales entre los tratamientos. (Ver Cuadros № 27-28).

A la aplicación de DUNCAN al 5% y 1%, se llego a la conclusión de que al

5 % no hubo diferencia significativa entre tratamientos a excepción de que

si hay diferencia significativa entre E1 vs E3, E1 vs E2 y T vs E3, debido a

que hay que tomar en cuenta que el número de animales no son iguales

entre los tratamientos. Y DUNCAN al 1% no hubo diferencia significativa

entre tratamientos a excepción de que si hay diferencia significativa entre

E1 vs E3 y E1 vs E2, debido a que hay que tomar en cuenta que el

número de animales no son iguales entre los tratamientos. (Ver Cuadros

№ 29-30).

Gráfico № 7. Promedio de pesos a la semana

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

85  

PESOS DE GAZAPOS AL DESTETE

RESULTADO

MEDIDAS DE TENDENCIA CENTRAL

Cuadro № 31. Medidas de tendencia central pesos al destete

T E1 E2 E3

406 451 357 261

420 417 395 282

433 414 296

358 330 330

340 350 231

355 397

408 404

355 350

434

364

396

325

SUMATORIA 1957 4599 752 2551

PROMEDIO 391,4 383,25 376 318,86

RANGO 93 126 38 173

DESVIACION ESTANDAR ± 40,37 ± 41,91 ± 26,87 ± 62,56

ERROR ESTANDAR 18,05 12,09 18,99 22,11

COEFICIENTE DE VARIACION 10,31 10,93 7,14 19,61

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

86  

ANADEVA

Cuadro № 32. ANADEVA pesos al destete

T E1 E2 E3

406 451 357 261

420 417 395 282

433 414 296

358 330 330

340 350 231

355 397

408 404

355 350

434

364

396

325

∑ 1957 4599 752 2551

� 391,4 383,25 376 318,86

FC= 3599995,59

Gl SC CM FC

Ft

5% 1%

TRATAMIENTO 3 24743,09 8247,69 0,55 3,03 4,76

ERROR 23 346453,32 15063,19

TOTAL 26 371196,41

FC Ft

0,55 < 3,03 DNS

< 4,76 DNS

 

87  

5%

H0 T= E1 = E2 = E3 Acepto

H1 T ≠ E1 ≠E2 ≠ E3 Rechazo

1%

H0 T= E1 = E2 = E3 Acepto

H1 T ≠ E1 ≠E2 ≠ E3 Rechazo

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

88  

DMS

Cuadro № 33. DMS al 5% pesos al destete

5%

DMS

Sd = 86.78

``t``(gl error 5%) x Sd = 178.76

T Exp 1 Exp 2 Exp 3

391,4 383,25 376 318,86

Comparación 5%

T vs E 1 391,4 – 383,25 = 8,15 < 178,76 DNS

T vs E2 391,4 - 376 = 15,4 < 178,76 DNS

T vs E3 391,4 – 318,86 = 72,54 < 178,76 DNS

E1 vs E2 383,25 - 376 = 7,25 < 178,76 DNS

E 1 vs E3 383,25 – 318,86 = 64,39 < 178,76 DNS

E2 vs E3 376 – 318,86 = 57,14 < 178,76 DNS

Conclusión

5%

T Primero

Exp 1 Segundo

Exp 2 Tercero

Exp 3 Cuarto

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

89  

Cuadro № 34. DMS al 1% pesos al destete

1%

``t``(gl error 1%) x Sd = 242.98

T Exp 1 Exp 2 Exp 3

391,4 383,25 376 318,86

Comparación 1%

T vs Exp 1 391,4 – 383,25 = 8,15 < 242,98 DNS

T vs Exp 2 391,4 - 376 = 15,4 < 242,98 DNS

T vs Exp 3 391,4 – 318,86 = 72,54 < 242,98 DNS

Exp 1 vs Exp 2 383,25 - 376 = 7,25 < 242,98 DNS

Exp 1 vs Exp 3 383,25 – 318,86 = 64,39 < 242,98 DNS

Exp 2 vs Exp 3 376 – 318,86 = 57,14 < 242,98 DNS

Conclusión

1%

T Primero

Exp 1 Segundo

Exp 2 Tercero

Exp 3 Cuarto

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

90  

DUNCAN

PESOS AL DESTETE

ERROR TÍPICO DE MEDIA

S� = 61,36

RANGO MINIMO DUNCAN 5%

Cuadro № 35. DUNCA al 5% pesos al destete

RMD 5% 2 3 4

2,925 3,075 3,16

RMS 179,47 188,68 193,89

E3 E2 E1 T

318,86 376 383,25 391,4

Comparación 5%

T vs E3 391,4 – 318,86 = 72,54 < 193,89 DNS

T vs E2 391,4 – 376 = 15,4 < 188,68 DNS

T vs E1 391,4 – 383,25 = 8,15 < 179,47 DNS

E1 vs E3 383,25 – 318,86 = 64,39 < 188,68 DNS

E1 vs E2 383,25 - 376 = 7,25 < 179,47 DNS

E2 vs E3 376 – 318,86 = 57,14 < 179,47 DNS

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

91  

RANGO MINIMO DUNCAN 1%

Cuadro № 36. DUNCA al 1% pesos al destete

RMD 1% 2 3 4

3,975 4,155 4,26

RMS 243,90 254,95 261,39

E3 E2 E1 T

318,86 376 383,25 391,4

Comparación 1%

T vs E3 391,4 – 318,86 = 72,54 < 261,39 DNS

T vs E2 391,4 – 376 = 15,4 < 254,95 DNS

T vs E1 391,4 – 383,25 = 8,15 < 243.9 DNS

E1 vs E3 383,25 – 318,86 = 64,39 < 254,95 DNS

E1 vs E2 383,25 - 376 = 7,25 < 243,9 DNS

E2 vs E3 376 – 318,86 = 57,14 < 243,9 DNS

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

92  

DISCUSIÓN

Posterior al análisis estadístico de los datos obtenidos durante el desarrollo de la investigación, se obtiene los siguientes resultados y discusión.

El peso promedio de los gazapos al destete, según Chauca y Zaldivar

(1998) es de 232,6 ±20,8 gramos. Con el trabajo práctico obtuvimos

promedios de 391,4 g en el testigo, 383,25g en el experimental 1, 376 g

en el experimental 2 y 318,86 en experimental 3, siendo el promedio ideal

en el C.E.U de 290 gramos.

Estas diferencias en promedio de pesos se debe a; que el Testigo obtuvo

un menor número de crías por madre a la semana, a diferencia de los

demás tratamientos, logrando así un mayor peso promedio al destete, por

ende tuvieron mayor disponibilidad de espacio, menos estrés y

alimentarse de manera optima.

Al la aplicación de ANADEVA al 5 y 1% a los datos obtenidos de pesos de

gazapos al destete, se determino no haber diferencia significativa entre

tratamientos, y en el planteamiento de hipótesis tanto al 5% y al 1%, en

donde Ho Acepto y H1 Rechazo. (Ver Cuadro № 32). Que no haya

Diferencia Significativa se debe a que durante el destete, todas las crías

llegan a un equilibrio en los pesos, formando grupos con pesos

homogéneos, hasta llegar al día 93 donde las crías que tuvieron mayores

pesos al nacimiento, incrementaran su peso, marcándose nuevamente las

diferencias de pesos.

A la aplicación de DMS al 5 y 1% se llego a la conclusión de que no hubo diferencia significativa entre tratamientos. (Ver Cuadros № 33-34). A la aplicación de DUNCAN al 5% y 1%, no hay diferencia significativa entre tratamientos. (Ver Cuadros № 35-36).

 

93  

Gráfico № 8. Promedio de pesos al destete

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

94  

COSTO PARCIAL DE LAS CRÍAS POR TRATAMIENTO

RESULTADO

Cuadro № 37. Costo parcial de las crías por tratamiento

DETALLE TESTIGO EXPERIMENTA

L 1 EXPERIMENTA

L 2 EXPERIMENTA

L 3

HORMONA 0 0,39 0,79 1,19

HEMBRAS 44 44 44 44

MACHO 15 15 15 15 BALANCEADO

2,62 2,62 2,62 2,62

FORRAJE 3,02 3,02 3,02 3,02

TOTAL 64,64 65,03 65,43 65,83

 TESTIGO 

EXPERIMENTAL 1 

EXPERIMENTAL 2 

EXPERIMENTAL 3 

TOTAL 64,64 65,03 65,43 65,83

NÚMERO DE CRÍAS AL

NACIMIENTO 8 12 7 15

COSTO 8,08 5,42 9,35 4,39

NÚMERO DE CRÍAS A LA

SEMANA 5 12 4 8

COSTO 12,93 5,42 16,36 8,23

NÚMERO DE CRÍAS AL DESTETE

5 12 2 8

COSTO 12,93 5,42 32,72 8,23

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

95  

DISCUSIÓN

Se debe tomar en cuenta que el único valor que difiere entre los

tratamiento es el de la hormona, según las diferentes dosis que se usaron

para cada uno, el resto de valores son constantes, ya que se trabajó con

un igual número de hembras por tratamiento, un solo macho y recibieron

iguales proporciones de alimento. Tomando en cuenta el total de estos

gastos, tenemos una relación lineal de costo/tratamiento, como es claro

de suponer. Así, entre el Testigo y E3, hay una diferencia de 1.19 dólares.

Para determinar el costo por cría, tomamos en cuenta el número de crías

de cada tratamiento, siendo el más conveniente el Experimental 3, aun

habiendo sido en el que más hormona se gastó, pero así también es el

tratamiento con mayor número de crías. Dándonos el costo más bajo con

una diferencia de 3.69 dólares con relación al Testigo en el que no se

gastó en hormona. (Ver Cuadro № 37).

 

96  

CAPITULO IV

CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES

CONCLUSIONES

De los resultados obtenidos se concluyó lo siguiente:

La concepción y fertilidad entre los tratamientos tuvo una marcada

diferencia, por la falta de concepción de algunas hembras,

pudiendo deberse a: diferencia del estado del ciclo estral en el que

se encontraban, infantilismo, presencia de quistes ováricos,

metritis, etc.

Con respecto al número de gazapos nacidos en los diferentes

tratamientos, podemos determinar que existe una probabilidad del

0,53% de que E3 sea un mejor tratamiento, dado que en la práctica

fue el tratamiento con mayor número de crías al nacimiento, pero

estadísticamente no existe diferencia significativa entre los

tratamientos.

En cuanto a los pesos de los gazapos al nacimiento, no todos

alcanzaron el peso promedio mayor, siendo crías débiles que a los

pocos días murieron. Pero así también nacieron crías con pesos

superiores al promedio, llegando a pesos al destete de hasta 284

gramos, superando el peso promedio que es de 232,6 gramos.

Con los resultados, determinamos, que no es aplicable

estadisticamente, el uso de PMSG en las dosis de 10, 20 y 30 UI,

debido a la mortalidad de crías entre los dos grupos más

representativos, aun habiendo recibido todos el mismo tipo de

alimentación y manejo.

 

97  

RECOMENDACIONES

Recomendamos el uso de Gonadotropina Sérica Equina en

cobayas a partir del segundo parto, para tener un control del ciclo

estral, inoculándose la hormona en el día 14 luego del parto.

Se recomienda realizar ensayos complementarios usando dosis

comprendidas entre 20 a 30 UI de gonadotropinas, dado que con

estas dosis se obtuvo en mayor número de crías.

 

98  

CAPÍTULO V

LITERATURA CITADA

BIBLIOGRAFÍA

1. CHAUCA, L. (1997), Producción de Cuyes Estudio. Producción y

Sanidad Animal 138, Lima – Perú, FAO

2. CHAUCA, L. (2007), Producción de Cuyes Estudio, Lima – Perú.

3. ESQUIVEL, J. (2006), Fisiología de la Reproducción del Cuy, Segunda

Edición, Cuenca – Ecuador.

4. HERNANDEZ, M. (1994), Endocrinología y Fisiología General,

Editorial Universitaria, Primera Edición, Pág. 139 – 148, Quito –

Ecuador.

5. HAFEZ, E.S.E.B. (2002), Reproducción e Inseminación Artificial en

Animales Domésticos, Editorial Mc Graw Hill. Interamericana, Séptima

Edición, Pág. 421, México DF – México.

6. LOPEZ CADENA, S. (2000), Crianza casera y comercial de cuyes,

Cuarta edición, Quito – Ecuador.

7. Mc DONALD, (1971). Reproducción y Endocrinología Veterinaria,

Primera edición, Pág. 28-30, 264-266, México DF – México.

8. SALINAS, (2002), Manual, Crianza y Comercialización de Cuyes,

Editorial Ripalme, Primera edición, Pág. 15-18, Lima – Perú.

 

99  

NETGRAFÍA

1. CHAUCA, L. (2007), Recuperado el 1 de enero del 2012, UCE, Pagina

web de servicios profesionales:

www.scribd.com/doc/3911425/Produccion-de-cuyes-Lilia-Chauca-de-

Zaldivar

2. CHAUCA, L. (1996), Recuperado el 1 enero del 2012, UCE, Pagina

web de servicios profesionales: www.redmujeres.org/biblioteca

digital/produccion_cuyes.pdf

3. BAEZA, C. (2009), Hormona gonadotrofina coriónica equina (eCG),

2009. Universidad Pedro de Valdivia, Facultad de Ciencias

Agropecuarias Escuela Medicina veterinaria, Recuperado el 1 de enero

del 2012: http://es.scribd.com/doc/52533980/eCG

 

100  

CAPITULO VI

ANEXOS

REGISTRO NÚMERO DE CRÍAS AL NACIMIENTO

Anexo A. Registro número de crías al nacimiento

MADRE № DE CRIAS AL NACIMIENTO

TESTIGO EXPERIMENTAL 1 EXPERIMENTAL 2 EXPERIMENTAL 3

1 3 3 0 5

2 3 4 3 6

3 0 2 4 4

4 2 3 0 ----

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

REGISTRO NÚMERO DE CRÍAS A LA SEMANA

Anexo B. Registro número de crías a la semana.

MADRE № DE CRIAS A LA SEMANA

TESTIGO EXPERIMENTAL 1 EXPERIMENTAL 2 EXPERIMENTAL 3

1 0 3 0 5

2 3 4 1 0

3 0 2 3 3

4 2 3 0 ---

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

101  

REGISTRO NÚMERO DE CRÍAS AL DESTETE

Anexo C. Registro número de crías al destete.

MADRE № DE CRIAS AL DESTETE

TESTIGO EXPERIMENTAL 1 EXPERIMENTAL 2 EXPERIMENTAL 3

1 0 3 0 5

2 3 4 1 0

3 0 2 1 3

4 2 3 0 ----

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

REGISTRO DE FERTILIDAD Y CONCEPCIÓN POR GRUPO

Anexo D. Registro de fertilidad y concepción por grupo

TRATAMIENTOS № COBAYAS SERVIDAS № DE COBAYAS

PARIDAS

Testigo 4 3

Experimental 1 4 4

Experimental 2 4 2

Experimental 3 4 3

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

102  

DETERMINACIÓN DEL PORCENTAJE DE CONCEPCIÓN POR CADA

TRATAMIENTO

Anexo E. Determinación del porcentaje de concepción por cada

tratamiento

TRATAMIENTOSCONCEPCION

% FERTILIDAD %

Testigo 75 75

Experimental 1 100 100

Experimental 2 50 50

Experimental 3 75 75

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

103  

NÚMERO DE GAZAPOS AL NACIMIENTO VIVOS MUERTOS Y

MOMIFICADOS

Anexo F. Número de gazapos al nacimiento vivos muertos y

momificados

GRUPO MADRE NUMERO DE CRIAS NACIDAS

VIVOS MUERTOS MOMIFICADOS

TESTIGO

1 3 0 0

2 3 0 0

3 0 0 0

4 2 0 0

EXPERIMENTAL

1

1 3 0 0

2 4 0 0

3 2 0 0

4 3 0 0

EXPERIMENTAL

2

1 0 0 0

2 3 0 0

3 4 0 0

4 0 0 0

EXPERIMENTAL

3

1 5 00 0

2 6 0 6

3 4 0 0

4 -----

Murió

preñada 0

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

104  

MORTALIDAD DE GAZAPOS AL NACIMIENTO, SEMANA Y

DESTETE

Anexo G. Mortalidad de gazapos al nacimiento, semana y destete

TRATAMIENTO MADRE NUMERO CRIAS

AL NACIMIENTO

MORTALIDAD

NACIMIENTO SEMANA DESTETE

TESTIGO

1 3 0 3

2 3 0 0 0

3 0

4 2 0 0 0

EXPERIMENTAL

1

1 3 0 0 0

2 4 0 0 0

3 2 0 0 0

4 3 0 0 0

EXPERIMENTAL

2

1 0

2 3 0 2 0

3 4 0 1 2

4 0

EXPERIMENTAL

3

1 5 0 0 0

2 6 0 6

3 4 0 1 0

4 0

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

105  

PESO GAZAPOS AL NACIMIENTO, SEMANA Y DESTETE DEL

TESTIGO

Anexo H. Peso gazapos al nacimiento, semana y destete del T

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

MADRE # CRIA PESOS

NACIMIENTO SEMANA 15 DIAS

1 1 125 X X

2 120 X X

3 122 X X

2 1 233 249 406

2 284 292 420

3 271 295 433

3 0 0 0 0

4 1 207 240 358

2 198 228 340

 

106  

PESO GAZAPOS AL NACIMIENTO, SEMANA Y DESTETE DEL

EXPERIMENTAL 1

Anexo I. Peso gazapos al nacimiento, semana y destete del E1

MADRE # CRIA PESOS

NACIMIENTO SEMANA 15 DIAS

1 1 209 346 451

2 206 314 417

3 191 308 414

2 1 204 252 330

2 203 262 350

3 191 240 355

4 208 265 408

3 1 187 283 355

2 224 344 434

4 1 272 316 364

2 294 336 396

3 238 254 325

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

107  

PESO GAZAPOS AL NACIMIENTO, SEMANA Y DESTETE DEL

EXPERIMENTAL 2

Anexo J. Peso gazapos al nacimiento, semana y destete del E2

MADRE # CRIA PESOS

NACIMIENTO SEMANA 15 DIAS

1 0 0 0 0

2 1 155 230 357

2 120 X X

3 115 X X

3 1 166 187 X

2 194 208 X

3 195 238 395

4 73 X X

4 0 0 0 0

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

108  

PESO GAZAPOS AL NACIMIENTO, SEMANA Y DESTETE DEL

EXPERIMENTAL3

Anexo K. Peso gazapos al nacimiento, semana y destete del E3

MADRE # CRIA PESOS

NACIMIENTO SEMANA 15 DIAS

1 1 134 177 261

2 136 182 282

3 144 188 296

4 147 195 330

5 112 141 231

2 1 110 X X

2 107 X X

3 100 X X

4 104 X X

5 98 X X

6 87 X X

3 1 221 238 397

2 221 245 404

3 215 223 350

4 207 X X

4 --- --- --- ---

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

109  

FÓRMULAS PARA OBTENER FERTILIDAD Y CONCEPCIÓN

Anexo L. Fórmulas para obtener fertilidad y concepción

Número de hembras preñadas

Concepción = X 100

Número de hembras empadradas

Número de hembras paridas

Fertilidad = X 100

Número de hembras empadradas

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

110  

COSTOS TOTALES

Anexo M. Costos totales

Concepto

Unidad de

medida

Precio Unitario

USD Cantidad

Costo total

USD

1 Animales

a) Machos Animales

Machos $15 1 15

b) Hembra Hembras $ 11 16 176

2 Pozas Poza $ 15 4 60

3 Materiales

a) Aserrín Saco 0,38 20 7.60

4 Sanidad

a) Desinfectante CID 40 Litro 5 1/2 2.5

5 Medicamentos

a) Folligon Frascos 9.92 4 39.68

5 Alimentos

a) Balanceado Kg 0,26 57,12 14,8512

b)Forraje

Alfalfa Kg 0,02 286,3 5,726

king Grass Kg 0,01 286,3 2,863

6 Varios

a)Movilización Días 2 360 720

b) Alimentación Almuerzos 1,50 360 540

c) Uso del Computador Horas 0.80 576 460.80

d) Impresiones Hojas 0.05 650 32.50

e) Internet Horas 0.60 576 345.6

f ) Materiales de Oficina Unidades 20 20

g )Materiales de Campo Unidades 35 35

Total 2,478.12

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

111  

Anexo N. Registro semanal de consumo de alimento Testigo

REGISTRO SEMANAL DE CONSUMO DE ALIMENTO

TESTIGO

SEMANA FECHA

ALIMENTO gr

FORRAJE BALANCEADO

OFRECIDO OFRECIDO/DÍA RESIDUO CONSUMO

REAL OFRECIDO OFRECIDO/DÍA RESIDUO

CONSUMO

REAL

1 4 - 10 Dic 8400 1200 1900 6500 840 120 190 650

2 11-17 Dic 8400 1200 1860 6540 840 120 185 655

3 18-24 Dic 8400 1200 1810 6590 840 120 176 664

4 25-31 Dic 11200 1600 1779 9421 1120 160 169 951

5 1 - 7 Enero 11200 1600 1756 9444 1120 160 158 962

6 8 - 14 Enero 11200 1600 1710 9490 1120 160 149 971

7 15 -21 Enero 14000 2000 1696 12304 1400 200 138 1262

8 22 - 28 Ene 14000 2000 1681 12319 1400 200 127 1273

9 29 Ener - 4 Feb 14000 2000 1674 12326 1400 200 121 1279

10 5 - 11 Febrero 14080 2011,43 1669 12411 1480 211,43 119 1361

11 12 - 18 Febr 14075 2010,71 1658 12417 1450 207,14 111 1339

12 19 - 25 Febr 14100 2014,29 1649 12451 1450 207,14 100 1350

TOTAL 143055 20436,43 20842 122213 14280 2065,71 1743 12717

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

112  

Anexo Ñ. Registro semanal de consumo de alimento Experimental 1

REGISTRO SEMANAL DE CONSUMO DE ALIMENTO

Experimental 1

SEMANA FECHA

ALIMENTO gr

FORRAJE BALANCEADO

OFRECIDO OFRECIDO/DI

A RESIDUO

CONSUMO

REAL OFRECIDO

OFRECIDO/

DIA RESIDUO CONSUMO REAL

1 3 - 9 Nov 8400 1200 560 7840 840 120 145 695

2 10-16 Nov 8400 1200 556 7844 840 120 130 710

3 17-23 Nov 8400 1200 543 7857 840 120 119 721

4 24-30 Nov 11200 1600 400 10800 1120 160 105 1015

5 1 - 7 Dic 11200 1600 389 10811 1120 160 99 1021

6 8 - 14 Dic 11200 1600 365 10835 1120 160 90 1030

7 15 -21 Dic 14000 2000 298 13702 1400 200 80 1320

8 22 - 28 Dic 14000 2000 276 13724 1400 200 75 1325

9 29 Dic-4 Enero 14000 2000 266 13734 1400 200 60 1340

10 5 - 11 Enero 14120 2017,14 249 13871 1520 217,14 55 1465

11 12 - 18 Enero 14180 2025,71 232 13948 1520 217,14 49 1471

12 19 - 25 Enero 14240 2034,29 200 14040 1520 217,14 35 1485

TOTAL 143340 20477,14 4334 139006 14640 2091,43 1042 13598

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

113  

Anexo O. Registro semanal de consumo de alimento Experimental 2

REGISTRO SEMANAL DE CONSUMO DE ALIMENTO Experimental 2

SEMANA FECHA

ALIMENTO gr

FORRAJE

OFRECID

O

OFRECIDO/

DIA RESIDUO

CONSUMO

REAL OFRECIDO OFRECIDO/DIA

RESIDUO CONSUMO REAL

1 13 -19 Nov 8400 1200 2000 6400 840 120 180 660

2 20-26 Nov 8400 1200 1980 6420 840 120 175 665

3 27Nov-3 Dic 8400 1200 1880 6520 840 120 166 674

4 4-10 Dic 11200 1600 1796 9404 1120 160 158 962

5 11 -17 Dic 11200 1600 1760 9440 1120 160 149 971

6 18 -24 Dic 11200 1600 1730 9470 1120 160 137 983

7 25Nov- 31 Dic 14000 2000 1715 12285 1400 200 129 1271

8 1-7 Enero 14000 2000 1680 12320 1400 200 109 1291

9 8 -14 Enero 14000 2000 1677 12323 1400 200 97 1303

10 15-21 Ener 14070 2010 1650 12420 1470 210 87 1383

11 22-28 Enero 14060 2008,57 1558 12502 1440 205,71 77 1363

12 29 Ene -4 Feb 14040 2005,71 1510 12530 1420 202,86 72 1348

TOTAL 142970 20424,29 20936 122034 14410 2058,57 1536 12874

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

114  

Anexo P. Registro semanal de consumo de alimento Experimental 3

REGISTRO SEMANAL DE CONSUMO DE ALIMENTO

Experimental 3

SEMANA FECHA

ALIMENTO gr

FORRAJE

OFRECIDO OFRECIDO/

DIA RESIDUO CONSUMO REAL OFRECIDO OFRECIDO/DIA RESIDUO CONSUMO REAL

1 24-30 Oct 8400 1200 500 7900 840 120 160 680

2 31 Oct-6 Nov 8400 1200 492 7908 840 120 159 681

3 7-13 Nov 8400 1200 450 7950 840 120 144 696

4 14-20 Nov 11200 1600 410 10790 1120 160 132 988

5 21-27 Nov 11200 1600 399 10801 1120 160 120 1000

6 28 Nov - 4 Dic 11200 1600 380 10820 1120 160 109 1011

7 5 - 11 Dic 14000 2000 375 13625 1400 200 95 1305

8 12-18 Dic 14000 2000 369 13631 1400 200 84 1316

9 19-25 Dic 14000 2000 352 13648 1400 200 80 1320

10 26 Dic -1 Enero 14150 2021,43 342 13808 1520 217,14 77 1443

11 2-8 Enero 14120 2017,14 336 13784 1480 211,43 69 1411

12 9 -15 Enero 14160 2022,86 320 13840 1480 211,43 60 1420

TOTAL 143230 20461,43 4725 138505 14560 2080 1289 13271

Fuente: Investigación Directa

Elaboración: Los Autores

 

115  

Anexo Q. LIMPIEZA Y DESINFECCIÓN DE LAS POZAS

Anexo Q1

Anexo Q2

Anexo Q3

 

116  

Anexo R. IDENTIFICACIÓN DE LAS POZAS

Anexo S. SELECCIÓN Y PESAJE DE LAS HEMBRAS

Anexo S1 Anexo S2

Anexo S3

 

117  

Anexo T. DISTRIBUCION DE LAS HEMBRAS EN LAS POZAS

Anexo T1 Anexo T2

Anexo U. INOCULACION DE LA PMSG VÍA SC

Anexo U1 Anexo U2

 

118  

Anexo V. SELECCIÓN DEL MACHO REPRODUCTOR PROBADO

Anexo W. PESAJE DE ALIMENTO

Anexo W1 Anexo W2

 

119  

Anexo X. HEMBRAS PREŇADAS

Anexo X1 Anexo X2

Anexo Y. NACIMIENTO DE CRÍAS

Anexo Y1 Anexo Y2

 

120  

Anexo Z. PESAJE E IDENTIFICACION DE CRIAS

Anexo Z1 Anexo Z2

Anexo Z3