Upload
dodang
View
225
Download
7
Embed Size (px)
Citation preview
RIDA®GENE Parasitic Stool Panel II
(Parasitik Dışkı Paneli II) real-time PCR
Art. Nr.: PG1725
100 Reaksiyon
In vitro diagnostik kullanım için
-20 °C
R-Biopharm AG, An der neuen Bergstraße 17, D-64297 Darmstadt, Germany
Tel.: +49 (0) 61 51 81 02-0 / Telefax: +49 (0) 61 51 81 02-20
RIDAGENE Parasitic Stool Panel II 13-10-02 2
1. Kullanım amacı
In vitro diagnostic kullanım içindir. RIDA®GENE Parasitic Stool Panel II, insan dışkı
numunlerinde, Giardia lamblia, Cryptosporidium parvum ve Entamoeba histolytica’nın
doğrudan kalitatif tespiti ve ayrımı için, multipleks real-time PCR'dır. RIDA®GENE
Parasitic Stool Panel II real-time PCR, parazitlerin neden olduğu mide-bağırsak
enfeksiyonu teşhisinde yardımcı olarak kullanılmak üzere tasarlanmıştır.
2. Test açıklaması
Giardia lamblia, Cryptosporidium parvum ve Entamoena histolytica, diyareye sebep
olan en önemli protozoalardır.
Giardia lamblia (synonym G. intestinalis ve G. duodenales) diyarenin en önemli
nedenlerinden biridir. CDC (Hastalık Kontrol Merkezi) ‘ne göre, gelişmiş ülkelerdeki
çocukların yaklaşık %6-8’i ile yetişkinlerin %2, gelişmekte olan ülke insanlarının
yaklaşık üçte biri giardiasis1 ile enfektedir. CDC, ABD’de2 her yıl yaklaşık 77.000
giardiasis vak’ası olduğunu tahmin etmektedir. G. lamblia ile enfeksiyon, kontamine
gıda ve içme suyudaki kistlerin yenilip içilmesiyle ya da insandan insana fekal-oral yolla
meydana gelir. Kuluçka süresi 1 ila 3 haftadır. Giardiasis (lambliasis) semptomları, akut
veya kronik ishaldir, ancak asemptomik eliminasyonla da gerçekleşir. Akut semptomlar,
sulu ishal, iştah kaybı, bulantı, karın krampları ve kilo kaybıdır. 1 Cryptosporidium
parvum, insanda cryptosporidiosis'in neden olduğu yaygın Cryptosporidium cinsinin,
farklı türlerinden biridir. Cryptosporidium, sağlıklı bireylerde %2'ye kadar ve gelişmiş
ülkelerdeki diyareli hastaların yaklaşık %2'sinde tespit edilmiştir. Gelişmekte olan
ülkelerde ise görülme sıklığı % 9 kadar yükselmiştir.
Cryptosporidium, asemptomik HIV hastalarını %5'e kadar enfekte etmişken, bu oran
diyareli HIV hastalarında %14-24 olarak tespit edilmiştir. 3,4 1993'te ABD, Milwaukee
salgını sırasında, 400,000 'den fazla kişi hastalanmıştır. 5 ABD’de, her yıl yaklaşık
748,000 cryptosporidiosis vak’asının görüldüğü tahmin edilmektedir. 6 Enfeksiyon,
kontamine su ve gıdaların içindeki oositlerin alınmasından sonra, ayrıca insandan
insana fekal-oral yolla gerçekleşir. Immunokompetan kişilerde, mide bulantısı, karın
ağrısı ve kilo kaybının da eşlik edebileceği, 2-10 gün kadar devam ettikten sonra
kendiliğinden kaybolan sulu ishalden sonra, kendini gösterebilir.
Bağışıklığı baskılanmış kişilerde ise, çoğu kez ciddi, kronik ve bazen ölümcül hastalıklar
gelişir. 2,5 Entamoeba histolytica, sadece Entamoeba'nın insan potojenik cinsi ve
amoebiasis etkenidir. E. histolytica ile enfeksiyon, kontamine gıda ve içme suyudaki
kistlerin yenilip içilmesiyle ya da insandan insana fekal-oral yolla meydana gelir. E.
histolytica enfeksiyonlarının çoğu, asemptomik kolonizasyon olarak kendini gösterir.
Vak'aların %10'unda enfeksiyon, çoğunlukla karaciğer (amip karaciğer apsesi) için,
amipli kolit ve nadir durumlarda ekstraintestinal amibiyazis'e yol açar. Intestinal
RIDAGENE Parasitic Stool Panel II 13-10-02 3
amebiazisli ile ilişkili klinik semptomlar, mide ağrısı ve kanlı ve sümüksü dışkı ile şiddetli
diyaredir. WHO, her yıl 100,000 ölümle sonuçlanan dünyada yaklaşık 50 milyon kişinin
amibiyazisden muzdarip olduğunu tahmin etmektedir.2,7
Klasik olarak, G. lamblia, C. parvum Entamoeba türlerinin teşhisi, kişisel deneyim
gerektiren kişiler tarafından dışkı örneklerinin mikroskopik incelenmesiyle elde edilir.
RIDA®GENE Parasitic Stool Panel II multiplex real-time PCR, dışkı örneklerinin testi
için yeni ve ilgi çekici bir alternatiftir ve diyareye neden olan en önemli üç parazitin (G.
lamblia, C. parvum ve E. histolytica) eş zamanlı saptanması için, son derece hassas
ve spesifik olduğu kanıtlanmıştır.
3. Test prensibi
The RIDA®GENE Parasitic Stool Panel II, insan dışkı örneklerinde Giardia lamblia,
Cryptosporidium parvum ve Entamoeba histolytica’nın doğrudan ayırt edilmesi ve
kalitatif tespiti için multipleks real-time PCR'dır. DNA izolayonundan sonra, Giardia
lamblia, Cryptosporidium parvum ve Entamoeba histolytica için spesifik (18s-ITS,
mevcutsa) gen fragmanlarının amplifikasyonları meydana gelir.
Giardia lamblia, Cryptosporidium parvum ve Entamoeba histolytica için amplifiye
hedefler, bir ucu quencher ile, diğer ucu floresan reporter boya (florofor) ile etiketlenmiş
olan hidroliz problarıyla tespit edilir. Hedef varlığında, problar amplikonları hibridize
eder. Uzatma aşaması esnasında Taq-polimeraz, reporter-quencher yakınlığını kırar.
Raportör, real-time PCR cihazının optik birimi tarafından tespit edilen bir floresan
sinyal yayar. Bu floresan sinyal, oluşan amplikonların miktarıyla artar.
RIDA®GENE Parasitic Stool Panel II test i , örnek hazırlama prosedürünün internal kontrolü olarak ve olası PCR-inhibisyonunu belirlemek amacıyla bir Internal Control DNA (ICD) içerir.
RIDAGENE Parasitic Stool Panel II 13-10-02 4
4. Sunulan reaktifler Tab.1: Sunulan reaktifler (Kit içindeki reaktifler 100 tespit için yeterlidir)
Kit Kodu Reaktif Miktar Kapak Rengi
1
Reaction Mix 2x 1100 µl sarı
2
Taq-Polymerase 1x 11 µl kırmızı
D
Internal Control DNA 2x 1800 µl turuncu
N
PCR Water 1x 500 µl beyaz
P
Positive Control 1x 200 µl mavi
5. Saklama Talimatları
- Tüm reaktifleri ışıktan koruyun ve -20°C de saklayın. Tüm reaktifler son kullanma
tarihine kadar kullanılabilir. Son kullanma tarihinden sonra kalite garantisi artık
geçerli değildir.
- Reaktifleri kullanmadan önce tamamen çözün ve dikkatlice eritin (örn.
Buzdolabında 2 - 8 °C).
- Reaktifler tahlil performansını etkilemeden, 5 defa donma/çözülmeye kadar
dayanabilir (örn: ilk çözdürme sonrası alikotlarına ayırın ve hemen dondurun).
- PCR hazırlığı esnasında tüm reaktifler uygun şekilde soğukta saklanmalıdır (2 -
8 °C).
RIDAGENE Parasitic Stool Panel II 13-10-02 5
6. İlave gerekli reaktifler ve gerekli ekipman
- DNA-Extraction kit (örn. RIDA® Xtract) veya
DNA-Extraction system (örn. Maxwell® 16 (Promega), NucliSENS easy®MAG™
(bioMérieux))
- Real-time PCR cihazı:
Roche: LightCycler 480II
Cepheid: SmartCycler
Applied Biosystems: ABI 7500
Abbott: m2000rt
Stratagene: Mx3005P
QIAGEN: Rotor-Gene Q
Bio-Rad: CFX96™
Not: Rotor-Gene Q (QIAGEN) da sadece 0.1 ml ‘lik tüpler kullanın.
- RIDAGENE Color Compensation Kit I (PG0001), LightCycler 480II (Roche)
ile kullanım içindir.
- Real-time PCR sarf malzemeleri (plakalar, tüpler, folyo)
- Reaksiyon şişeleri için rotorlu santrifüj
- Vortexer
- Pipetler (0.5 – 20 µl, 20 – 200 µl, 100 – 1000 µl)
- Filtre uçları
- Pudrasız-tek kullanımlık eldivenler
7. Kullanıcı önlemleri
- Sadece in vitro Diagnostic kullanım için.
- Ekstraksiyon, PCR hazırlama ve PCR çalışması çapraz-kontaminasyonları önlemek
için farklı odalarda ayrılmalıdır
- Bu test, sadece moleküler biyoloji yöntemlerinde eğitimli laboratuvar personeli
tarafından çalışılmalıdır.
- Kesinlikle çalışma talimatlarını izleyin.
- Numunelerle çalışırken, atılabilir eldiven giyin. Test çalışması bittikten sonra
ellerinizi yıkayın.
- Örneklerin veya test reaktiflerinin kullanıldığı alanlarda sigara içmeyin, bir şey
yemeyin veya içmeyin.
- Örnekler ve örneklere maruz kalan reaktifler ve materyaller, olası bulaşıcı olarak
işlenmelidir ve ulusal güvenlik düzenlemelerine göre kullanılmalıdır
- Son kullanma tarihinden sonra kiti kullanmayın.
- Rotor-Gene Q (QIAGEN) da sadece 0.1 ml ‘lik tüpler kullanın.
RIDAGENE Parasitic Stool Panel II 13-10-02 6
8. Test prosedürü
8.1 Numune Hazırlama İnsan dışkı numunelerinin DNA izolasyonu için, mevcut ticari DNA izolasyon kiti (örn.
RIDA® Xtract) veya DNA ekstraksiyon sistemi kullanılır (örn. Maxwell® 16 (Promega)).
Üreticinin talimatlarına göre DNA yı ekstrakte edin.
Dışkı numunelerinin ekstraksiyon öncesi, su ile 1:3 oranında dilüe edilmesini öneririz.
Dilüe dışkı numunelerini kuvvetlice vorteksleyin ve 30sn.1000xg’de santrifüjleyin.
Süpernatantan, üreticinin talimatlarına göre uygun hacimde kullanın.
RIDA®GENE Parasitic stool panel II real-time PCR kiti, nükleik asit ekstrasiyonunun
yeterli olduğunu doğrulayan ve reaktif bütünlüğünü gözleyen, PCR inhibasyonunu tespit
eden bir internal kontrol (ICD) içerir.
Eğer ICD sadece PCR inhibasyon kontrolü olarak kullanılıyorsa, Master-Mix'e 1 µl ICD
eklenmelidir (Bakınız Tab. 3).
Eğer ICD, PCR inhibasyon kontrolü ve numune hazırlama prosedüründe bir
ekstraksiyon kontrolü olarak kullanılıyorsa, 20µl ICD, ekstraksiyon prosedürü
esnasında eklenmiş olmalıdır. ICD her zaman numune/lysis tampon karışımına
eklenmeli, kesinlikle örneğe doğrudan eklenmemelidir.
8.2 Master-Mix hazırlığı
Gereken toplam PCR reaksiyon sayısını (numune ve kontrol reaksiyonları) hesaplayın.
Her tahlil çalışmasının içinde, mutlaka bir pozitif ve negatif kontrolün olması gereklidir.
Pipetlemenin tam olarak karşılanması için, %10 ilave hacim hesaplanmasını tavsiye
ederiz (bakınız Tab. 2, Tab. 3). Kullanmadan önce, Reaction Mix, Taq-Polymerase,
Positive Control, PCR Water ve ICD’yı çözün, nazikçe karıştırın ve kısa bir süre
santrifüjleyin. Çalışma aşaması esnasında, reaktifleri uygun soğuklukta (2 - 8 °C)
muhafaza edin.
Tab.2: Hesaplama ve pipetleme, örneğin 10 Master-Mix reaksiyonu için
(Ekstraksiyon ve PCR inhibasyonu olarak ICD)
Kit kodu Master-Mix bileşenleri Reaksiyon başına hacim
10 reaksiyon (ekstra %10 )
1 Reaction Mix 19.9 µl 218.9 µl
2 Taq-Polymerase 0.1 µl 1.1 µl
Toplam 20.0 µl 220 µl
Master-Mix bileşenlerini yavaşça kısa süreliğine aşağıya döndürerek karıştırın.
RIDAGENE Parasitic Stool Panel II 13-10-02 7
Tab.3: Hesaplama ve pipetleme, örneğin 10 Master-Mix resksiyonu için
(ICD, sadece PCR inhibasyon kontrolü olarak)
Kit kodu
Master-Mix bileşenleri
Reaksiyon başına hacim
10 reaksiyon
(ekstra %10)
1 Reaction Mix 19.9 µl 218.9 µl
2 Taq-Polymerase 0.1 µl 1.1 µl
D Internal Control DNA 1.0 µl 11 µl
Total 21.0 µl 231.0 µl
Master-Mix bileşenlerini yavaşça kısa süreliğine aşağıya döndürerek karıştırın.
8.3 PCR-Mix hazırlanması
Her bir reaksiyon şişesine (tüp veya plaka) 20 Master-Mix pipetleyin.
Negatif Kontrol: Önceden pipetlenen Master-Mix’e, negative kontrol olarak 5 µl PCR Water ekleyin.
Not: Eğer ICD, PCR inhibasyon kontrolü ve numune hazırlama prosedüründe ekstraksiyon
kontrolü olarak kullanılırsa, negatif kontrol PCR Mix'e 1 µl ICD ilave edilmesini öneririz.
Örnek: Önceden pipetlenen Master-Mix'e 5 µl DNA-Extract ekleyin. Pozitif Kontrol: Önceden pipetlenen Master-Mix'e 5 µl Pozitif kontrol ekleyin.
Not: Eğer ICD, PCR inhibasyon kontrolü ve numune hazırlama prosedüründe PCR inhibasyon
kontrolü olarak kullanılırsa, pozitif kontrol PCR Mix'e 1 µl ICD ilave edilmesini öneririz.
Tüpleri veya plakayı kapatın. Aşağıya döndürün ve real-time PCR cihazına yerleştirin.
PCR reaksiyonu, PCR cihaz ayarlarına göre başlatılmalıdır (bakınız Tab. 4, Tab. 5).
Not: Rotor-Gene Q (QIAGEN) da sadece 0.1 ml ‘lik tüpler kullanın.
RIDAGENE Parasitic Stool Panel II 13-10-02 8
8.4 PCR Cihaz Ayarları
Tab.4: for LightCycler 480II, SmartCycler, Rotor-Gene Q için Real-time PCR profili
İlk Denatürasyon
Cycles
Denatürasyonu
Sertleştirme/Uzatma
1 dk, 95 °C
45 Cycles
10 sn 95 °C
15 sn, 60 °C
PCR
Sıcaklık Geçiş Hızı / Ramp Oranı
Maksimum
Not: Not: Sertleşme ve uzatma aynı aşamada meydana gelir.
Not: Manual Tresh Flour Ünitelerini SmartCycler® (Cepheid)'da, Kanal 1 için 30.0'a,
Kanal 2 için 2 ila 4'e ayarlayın. Farklı cycler’lar arasındaki değişiklikler nedeniyle,
Manual Thresh Fluor unitelerinin kanal 1 için ayrı adaptesi gerekebilir.
Tab.5: Mx3005P, ABI7500, m2000rt and CFX96™ için Real-time PCR profili
Ilk Denatürasyon
Cycles
Denatürasyonu
Sertleştirme/Uzatma
1 dk, 95 °C
45 Cycles
15 sn, 95 °C
30 sn, 60 °C
PCR
Sıcaklık Geçiş Hızı / Ramp Oranı
Maksimum
Not: Sertleşme ve uzatma aynı aşamada meydana gelir.
RIDAGENE Parasitic Stool Panel II 13-10-02 9
8.5 Tespit Kanalı Ayarı Tab.6: Uygun tespit kanallarını seçin.
Real-time PCR Cihazı
Tespit Tespit Kanalı
Giardia lamblia 465/510
Not
Roche
LightCycler480II
ICD 533/580
Entamoeba histolytica 533/610
Cryptosporidium parvum 618/660
RIDA GENE Color Compensation Kit I (PG0001)
gereklidir
Cepheid
SmartCycler
Giardia lamblia Kanal 1
ICD Kanal 2
Entamoeba histolytica Kanal 3
Cryptosporidium parvum Kanal 4
Manual Tresh Flour Unitelerinin Kanal 1
için 30.0 ‘e, Kanal 2 ila 4 için 5.0’e ayarlanmış
olduğunu kontrol edin
ABI 7500
Giardia lamblia FAM
ICD VIC
Entamoeba histolytica ROX
Cryptosporidium parvum Cy5
ROX pasif referans opsiyonunun
olmadığını kontrol edin.
Giardia lamblia FAM
Abbott m2000rt
ICD VIC -
Entamoeba histolytica ROX
Cryptosporidium parvum Cy5
Stratagene Mx3005P
Giardia lamblia FAM
ICD HEX
Entamoeba histolytica ROX
Cryptosporidium parvum Cy5
Referans boyasının olmadığını kontrol edin.
Qiagen Rotor-Gene Q
Giardia lamblia Yeşil
ICD Sarı
Entamoeba histolytica Turuncu -
Cryptosporidium parvum Kırmızı
9. Sonuç Yorumlama
Numune analizleri, üreticinin talimatlarına göre real-time PCR cihazı yazılımı
tarafından yapılır. Pozitif ve negatif kontroller doğru sonuçları göstermek zorundadır.
RIDAGENE Parasitic Stool Panel II 13-10-02 11
Pozitif kontrol, Cryptosporidium parvum için 103 kopya/ µl ve Giardia lamblia ve
Entamoeba histolytica için 104 kopya / µl konsantrasyonuna sahiptir. Her bir PCR
çalışmasında sırasıyla toplam, 5 x 104 ve 5 x 103 kopya miktarları kullanılır.
Şekil1: LightCycler 480II ‘da pozitif ve negative kontrollerin (Giardia lamblia) doğru çalışması
11 RIDA®GENE Parasitic Stool Panel II 13-10-02
Şekil 2: LightCycler 480II ‘da pozitif ve negative kontrollerin (Entamoeba histolytica) doğru
çalışması
10.955
10.055
9.155
8.25
7.355
0
6.455
., i5.555
j 4.655
3.755
2.855
1.955 '=-=================----- 1.055
10 12 14 16 18 20 22 24 26 28 30 32 34 36 38 40 42 44
Cvcles
12 RIDA®GENE Parasitic Stool Panel II 13-10-02
Şekil 3: LightCycler 480II ‘da pozitif ve negative kontrollerin (Cryptosporidium parvum) doğru çalışması
7.033
6.433
5.833
5.233
4.633
:: 4.033
[
"i 3.433
! 2.833
2.233
1.633
1.033
0.433
10 12 14 16 18 20 22 24 26 28 30 32 34 36 38 40 42 44 Cvcles
RIDAGENE Parasitic Stool Panel II 13-10-02 13
Sonuç yorumlanması Tablo 7'ye göre yapılır.
Tab.7: Numune yorumlama
Hedef Genler
Giardia lamblia
E. histolytica
C. parvum
ICD
Result
Tespit Kanalı
pozitif
negatif
negatif
pozitif/negatif Tepit edilen G. lamblia
Tespit
Kanalı negatif
pozitif
negatif
pozitif/negatif
Tepit edilen E.
histolytica
Tespit
Kanalı negatif
negatif
pozitif
pozitif/negatif
Tepit edilen
C. parvum
Tespit
Kanalı
pozitif
pozitif
negatif
pozitif/negatif
Tepit edilen
G. lamblia and E.
histolytica
Tespit
Kanalı pozitif
negatif
pozitif
pozitif/negatif
Tepit edilen
G. lamblia and C. parvum
Tespit
Kanalı negatif
pozitif
pozitif
pozitif/negatif
Tepit edilen
E. histolytica and C. parvum
Tespit
Kanalı pozitif
pozitif
pozitif
pozitif/negatif
Tepit edilen
G. lamblia, E. histolytica and C.
parvum Tespit
Kanalı negatif
negatif
negatif
pozitif
Hedef genler tespit edilmedi
Tespit
Kanalı
negatif
negatif
negatif
negatif
Geçersiz
Tespit sisteminde, Internal Control DNA (ICD) için bir amplifikasyon sinyali gözleniyorsa
ve numune DNA amplifikasyon sinyali gösterirse, Giardia lamblia, Entamoeba
histolytica ve Cryptosporidium parvum tespit edilir.
Tespit sisteminde, numune DNA amlifikasyon sinyali gösteriyorsa ama Internal Control
DNA (ICD) için bir amplifikasyon sinyali yoksa, Giardia lamblia, Entamoeba histolytica
ve Cryptosporidium parvum tespit edilmez.
Internal Control DNA (ICD) tespiti gerekli değildir, çünkü amlifikasyonun yüksek
konsantrasyonları, internal amplifikasyon kontrolün zayıf ya da olmayan sinyaline
neden olabilir.
RIDAGENE Parasitic Stool Panel II 13-10-02 14
Tespit sisteminde, Internal Control DNA (ICD) için bir amplifikasyon sinyali gözleniyor,
ancak numune DNA aplifikasyon sinyali göstermiyorsa, Giardia lamblia, Entamoeba
histolytica ve Cryptosporidium parvum tespit edilmez.
Ekstraksiyon prosedüründeki hata ya da PCR reaksiyonunun inhibasyonu, Internal
Control DNA (ICD)'nın tespiti ile ekarte edilebilir.
Eğer numune DNA, tespit sisteminde Giardia lamblia, Entamoeba histolytica,
Cryptosporidium parvum ve Internal Control DNA (ICD) amplifikasyon sinyali
göztermezse, numune geçersizdir. Ekstraksiyon prosedüründe ya bir hata oluşmuştur
ya da numune bir PCR inhibütörü içeriyordur. Ekstrakte numunenin PCR Water ile daha
fazla dilüe (1:10) edilip, yeniden amplifiye edilmesi ya da numune izolasyon ve
purifikasyonun geliştirilmesi gerekmektedir.
10. Performans Özellikleri
10.1 Analitik duyarlılık
RIDAGENE Parasitic Stool Panel II multiplex real-time PCR’ın tespit sınırı, sırasıyla
Giardia lamblia, Cryptosporidium parvum ve Entamoeba histolytica için reaksiyon başına
≥ 5 DNA kopyadır (şekil 4, şekil 5, şekil 6’ya bakın).
Şekil 4: LightCycler 480II’da Giardia lamblia (µl başına 105 – 101 DNA kopya) dilüsyon serisi
Şekil 5: LightCycler 480II’da Entamoeba histolytica (IJI başına 105 – 101 DNA kopya) dilüsyon serisi
9.661-
8.861
8.061
7.261-
6.461
o
::i 5.661
.. ;4.861
if 4.061
3.261
2.461
0.861
10 12 14 16 18 20 22 24 26 28 30 32 34 36 38 40 42 44
Cllcles
RIDAGENE Parasitic Stool Panel II 13-10-02 16
Şekil 6: LightCycler 480II’da Cryptosporidium parvum (µl başına 105 – 101 DNA kopya) dilüsyon serisi
Tüm prosedürün tespit limiti, numune matrisine, DNA ekstraksiyonuna ve DNA
konsantrasyonuna bağlıdır.
RIDAGENE Parasitic Stool Panel II 13-10-02 17
10.2 Analitik özgünlük
RIDAGENE Parasitic Stool Panel II multiplex real-time PCR analitik özgünlüğü, Giardia
lamblia, Entamoeba histolytica ve Cryptosporidium parvum için spesifiktir.
Aşağıdaki türler için (Tab.8’e bakın) çapraz reaktivite tespit edilmemiştir.
Tab.8: Çapraz reaktivite testi
Arcobacter butzleri
-
Clostridium perfringens
- Pseudomonas
aeruginosa
-
Adenovirus
(Type 40, 41)
-
Clostridium sordellii
-
Salmonella enteritidis
-
Aeromonas hydrophila
-
Enteropathogenic E. coli
-
Salmonella typhimurium
-
Bacillus cereus
-
Enterotoxigenic E. coli
-
Serratia liquefaciens
-
Bacteroides fragilis
- Enterohemorrhagic
E. coli
-
Shigella flexneri
-
Campylobacter coli
-
Enterobacter cloacae
-
Staphylococcus aureus
-
Campylobacter jejuni
-
Enterococcus faecalis
- Staphylococcus
epidermidis
-
Candida albicans
-
Klebsiella oxytoca
-
Vibrio parahaemolyticus
-
Citrobacter freundii
-
Norovirus
-
Yersinia enterocolitica
-
Clostridium difficile
-
Proteus vulgaris
-
11. Yöntem limitleri
1. Moleküler analiz sonuçları, tanı için yol gösterici olmamalıdır, ancak her zaman
hastanın semptomları ve tıbbi geçmişi bağlamında ele alınmalıdır.
2. Bu tahlil, sadece dışkı numuneleri için onaylanmıştır.
3. Uygunsuz örnek toplama, taşıma , depolama ve işleme veya patojen, analitik
hassasiyetin altındaki numunede, yalancı negatif sonuçlara neden olabilir.
4. PCR inhibitörlerinin varlığı geçersiz sonuçlara neden olabilir.
5. Primer veya prob bağlayıcı bölgelerdeki polimorfizm ya da mutasyonlar, RIDAGENE
Parasitic Stool Panel tahlili ile bir yalancı negatif sonuçta ortaya çıkan yeni türevlerin
tespitini etkileyebilir.
6. In vitro diagnostik testlere dayalı tüm PCR'larda olduğu gibi, tespit sınırı altında (LoD)
hedefin çok düşük seviyeleri tespit edilebilir ancak sonuçların tekrarlanabilirliği
olmayabilir.
RIDAGENE Parasitic Stool Panel II 13-10-02 18
7. Pozitif bir test sonucu, mutlaka canlı organizmaların varlığını işaret etmez. Bununla
birlikte, pozitif sonuç, hedef genlerinin(18s-ITS) mevcudiyeti için bir göstergedir.
12. Literatür
1. Centers for Disease Control and Prevention 2011. Giardia Epidemiology & Risk
Factors, http://www.cdc.gov/parasites/giardia/epi.html. Accessed 10.07.2012.
2. Food and Drug Administration (FDA) 2011. Bad Bug Book 2nd Edition.
http://www.fda.gov/food/foodsafety/foodborneillness/foodborneillnessfoodbornepa
thogensnaturaltoxins/badbugbook/default.htm. Accessed 10.07.2012.
3. Robert Koch Institut 2010. Kryptosporidiose (Cryptosporidium parvum).
RKI-Ratgeber für Ärzte 2004. Accessed 24.07.2012.
4. LEE JK, SONG HJ and Jae-Ran YU JR. Prevalence of diarrhea caused by
Cryptosporidium parvum in non-HIV patients in Jeollanam-do, Korea . Korean J
Parasitol. 2005, 43(3):111-114.
5. Leitch GJ and Qing He. Cryptosporidosis - an overview. J Biomed Res. 2012,
25(1): 1-16.
6. Scallan E et al. Foodborne Illness Acquired in the United States - Major
Pathogens. Emerg Infect Dis. 2011, 17(1): 7-15.
7. Fotedar R et al. Laboratory diagnostic techniques for Entamoeba species. Clin
Microbiol Rev. 2007, 20(3):511-532.