COSSMANNIANA - Freefossile1.free.fr/fossiles/lariey_2001_RG.pdf · 4 Lozouet, Lesport & Renard COSSMANNIANA ABRIDGED ENGLISH VERSION The outcrop of Lariey∗ is located at Saucats,

COSSMANNIANA, Paris, Hors-Série n° 3, Juillet 2001, pp. 1-189, 19 figs, 1 tab., 37 pls – ISSN : 1240-3164

RÉVISION DES GASTROPODA (MOLLUSCA)DU STRATOTYPE DE L'AQUITANIEN (MIOCÈNE INF.) :

SITE DE SAUCATS "LARIEY", GIRONDE, FRANCE

par PIERRE LOZOUET (1), JEAN-FRANÇOIS LESPORT (2) et PHILIPPE RENARD (3)

(1) Muséum national d'Histoire naturelle, 55 rue de Buffon - F-75005 Paris. Email: [email protected](2) 220, allée des Cailles - F-33180 Ste-Hélène. Email: [email protected]

(3) 290 P, avenue Napoléon Bonaparte - F-92500 Rueil-Malmaison. Email: [email protected]

RÉSUMÉ – Le site de Lariey (Réserve Naturelle Géologique de Saucats-La Brède), où se situe la coupeprincipale de l'Aquitanien stratotypique, a livré 314 espèces de gastéropodes, dont 91% ont été nom-mées. 13 espèces nouvelles sont décrites. Ces espèces nouvelles appartiennent aux familles Litiopidae,Caecidae, Stenothyridae, Naticidae, Epitoniidae, Cornirostridae, Hyalogyrinidae (une espèce chacune),Cerithiopsidae (3 espèces) et Pyramidellidae (3 espèces). Comparé au dernier travail exhaustif sur lesfaunes du Miocène inférieur (COSSMANN & PEYROT), près de 60% des espèces sont signalées pour lapremière fois dans ce site.

TITLE – Revision of the Gastropoda (Mollusca) of the stratotype of the Aquitanian stage (Saucats"Lariey" site, Southwestern France, Lower Miocene).

ABSTRACT – The site of Lariey (Geological Nature Reserve of Saucats-La Brède), the main outcrop ofthe Aquitanian Stratotype, has yielded 314 species of gastropods, 91% of which have been named. 13species are described as new. They are included in the families Litiopidae, Caecidae, Stenothyridae,Naticidae, Epitoniidae, Cornirostridae, Hyalogyrinidae (on species in each family), Cerithiopsidae (3species) and Pyramidellidae (3 species). Compared to the last exhaustive revision of the molluscs ofthe Lower Miocene (COSSMANN & PEYROT), about 60% of the species are recorded for the first time inthis site.

2 Lozouet, Lesport & Renard COSSMANNIANA

SOMMAIRE

CADRE SYSTÉMATIQUE

ABRIDGED ENGLISH VERSION ....................................................4INTRODUCTION ET HISTORIQUE ................................................8DESCRIPTION LITHOLOGIQUE ET PALÉOENVIRONNEMENTS ...9SYSTÉMATIQUE .........................................................................15DISCUSSION ET CONCLUSION ...................................................86REMERCIEMENTS......................................................................87RÉFÉRENCES BIBLIOGRAPHIQUES ...........................................89INDEX.......................................................................................184

CADRE SYSTÉMATIQUE

ESPÈCES SIGNALÉES À LARIEY PAR BENOIST .....15

PATELLOGASTROPODA .........................................15ACMAEOIDEA.........................................15

VETIGASTROPODA.................................................16HALIOTIOIDEA........................................16SCISSURELLOIDEA ..................................16FISSURELLOIDEA ....................................17TROCHOIDEA..........................................18

NERITOPSINA .........................................................19NERITOIDEA ...........................................19

ARCHITAENIOGLOSSA ...........................................21AMPULLINOIDEA ....................................21CAMPANILOIDEA ....................................21

SORBEOCONCHA....................................................22CERITHIOIDEA ........................................22VERMETOIDEA .......................................29

HYPSOGASTROPODA..............................................30LITTORINOIDEA ......................................30RISSOOIDEA............................................30STROMBOIDEA .......................................36VANIKOROOIDEA....................................39XENOPHOROIDEA ...................................40CYPRAEOIDEA........................................40LAMELLARIOIDEA...................................42NATICOIDEA...........................................43TONNOIDEA............................................45FICOIDEA................................................46

PTENOGLOSSA .......................................................47TRIPHOROIDEA.......................................47JANTHINOIDEA .......................................51EULIMOIDEA...........................................53

NEOGASTROPODA ................................................. 53MURICOIDEA ......................................... 53OLIVELLIDOIDEA.................................... 66CANCELLARIOIDEA ................................ 67CONOIDEA ............................................. 67

HETEROBRANCHIA ............................................... 71VALVATOIDEA....................................... 71ARCHITECTONICOIDEA .......................... 73RISSOELLOIDEA ..................................... 73OMALOGYROIDEA.................................. 73PYRAMIDELLOIDEA................................ 74

OPISTHOBRANCHIAACTEONOIDEA....................................... 79RINGICULOIDEA ..................................... 80PHILINOIDEA.......................................... 80BULLOIDEA............................................ 81

ANASPIDEA ............................................................ 82AKEROIDEA ........................................... 82APLYSIOIDEA......................................... 82

THECOSOMATA ..................................................... 82EUTHECOSOMATA.................................. 82

SACOGLOSSA ......................................................... 83OXYNOOIDEA ........................................ 83

NOTASPIDEA.......................................................... 84UMBRACULOIDEA.................................. 84

PULMONATA.......................................................... 84SIPHONARIOIDEA ................................... 84ELLOBIOIDEA......................................... 85LYMNAEOIDEA ...................................... 85HELICOIDEA........................................... 85CLAUSILIOIDEA...................................... 86

2001 COSSMANNIANA LE SITE DE LARIEY 3

Fig. 1 – Le site de Lariey: A, les vitrines de la coupe protégée. B, vue de l'escarpement de la rive. C, le ruisseau leSt-Jean-d'Etampes.

Fig. 1 – Lariey site: A, preserved section. B, bank of stream. C, St-Jean-d'Etampes stream.


ABRIDGED ENGLISH VERSION

The outcrop of Lariey∗ is located at Saucats, 15 km south ofBordeaux (Fig. 3). It is an exposure of the upper part of theAquitanian stage. For both the scientific and patrimonial as-pects, it is of great interest. It is the main outcrop of theAquitanian Stratotype and also was the first site of the Geo-logical Nature Reserve of Saucats - La Brède (Fig. 1). Para-doxically, its molluscan fauna is very poorly inventoried,which is particularly regrettable for the stratotype of a stageof which the position was also bitterly and lengthily dis-cussed (DOLLFUS 1909, 1912; REPELIN 1911, 1912), aspointed out by ALVINERIE et al. (1977).

The problem of the duration of the Aquitanian stage, relatedto the definition of Oligocene/Miocene boundary, remains anirritating and still unresolved question. ANGLADA (1978), bymoving the discussion on to the Paleogene/Neogene bound-ary, even as early as 1978, proposed considerably increasingthe age of the Oligocene/Miocene boundary. HARLAND et al.(1982) placed the Oligocene/Miocene limit at 24,6 My whileCAVELIER & POMEROL (1983) retained it at 23.5 My. ODIN

(1994) located it at around 23 My and BERGGREN (1995) to-wards 23.8 My. ODIN et al. (1997) suggested an interval be-tween 23 and 25 My. Recently, GINSBURG et al. (1998) pro-posed to return to a boundary around 25 My. These variousproposals do not affect the position of the profile of Lariey,which is well fixed in the upper part of the Aquitanian stage;according to the rank-dating of GOURINARD et al. (1985) lessthan 500 000 years separate the fauna at Lariey from that atPeloua (the overlying Lower Burdigalian). On the other hand,it is advisable to understand the contents of the Aquitanianstratotype which, if the Oligocene-Miocene boundary is at 25My, appears manifestly incomplete.

MAYER-EYMAR (1858), in his original proposal of the Aqui-tanian stage, distinguished seven principal levels. The de-scription of each of them was accompanied by a very brief listof mollusc species, only intended to characterize the levels.The fauna of Lariey described here corresponds roughly tolevels 6-7 of Mayer-Eymar (see Fig. 4). However, most of thematerial was collected in level 6, which includes the filling ofthe "pot-holes" (erosional depressions; layers 3-5 of our out-crops).

Generally, the various authors who have listed the fauna ofLariey previously did not provide an indication of the originof the fossils. DOLLFUS (1909), in his list which includes 182species of gastropods, did not give any precision; in fact, hiscensus is primarily from a compilation of various papers in-cluding the "Catalogue Synonymique et Raisonné" byBENOIST (1873, 1874a). This explains the numerous problemsof specific identification and the doubtful quotations which

∗ The origin of the name "Lariey" deserves to be specified. Thisword probably comes from the Gascon word arribet, alsospelled "arriut" or "Larribet", which means a little river. Closeforms such as "arribéus" which indicates a river formed by se-veral brooks, can also apply (definition in PALAY 1991).

DOLLFUS (1909) included. COSSMANN & PEYROT (1909-1921), PEYROT (1925-1932), during their work, index 113gastropods from Lariey in various collections. More recentlyEAMES & CLARKE (1967) have, according to Mayer-Eymar'scollection (Naturhistorisches Museum Basel), drawn up aninventory of molluscs of Lariey. It is unfortunately not veryuseful because it contains species which obviously do notcome from the Aquitanian of Saucats (eg.: "Hinia turonensis,Hinia turbinella, Pirenella picta, Streptochetus dispar,Pterynotus delbosianus, Cyllene vulgatissima, Dorsanumveneris"). It appears evident that there is no credible list ofmolluscs of the Aquitanian stratotype.

Among works which have described other fossils fromLariey, are POIGNANT & PUJOL (1976) for the benthic andplanktonic Foraminifera, MÜLLER & PUJOL (1979) for theplanktonic Foraminifera, BEKAERT et al. (1991) for the ostra-cods and CHEVALIER (1961) for the Scleractinaria. The prob-lems of absolute dating were tackled by the method of rank-datings (MAGNÉ et al. 1987; GOURINARD et al. 1987) and,more recently, by strontium isotopes (CAHUZAC et al. 1997).Lastly, GOURINARD & MAGNÉ (1987) defined the position ofthe Aquitanian stratotype compared to the eustatic scale ofVail. (TB 1.5 cycle).

LITHOLOGICAL DESCRIPTION AND PALAEOENVIRONMENTS

TOURNOUËR (1862) and FALLOT (1895) provided a good de-scription of the outcrops of the hamlet of Lariey andMARQUASSUZZAA (1940) described outcrops in the vicinity ofthe currently protected outcrop; this outcrop is presented byLONDEIX (1991) and POIGNANT et al. (1997). This profile isalso commented on in the booklet for the presentation of theReserve (CAHUZAC et al. 1996). The most unusual aspect ofthe outcrops lies in the "pot-holes" dug in the top of consoli-dated sands.

These cylindrical dissolution features (Fig. 2) seem equiva-lent to those described by SALOMON (1986) in the midlittoralzone of Madagascar, where their karstic origin suggests theywere eroded during an emergence, before deposition of theoverlying unit 6.

The hardened surface of these consolidated sands is perfo-rated by many bivalves, which reinforces the assumption of atemporarily emerged environment. In fact, although the spe-cies of hard bottoms are relatively rare, the good preservationof some of them (e.g. Modulus basteroti), attests to the pres-ence of rocky shore assemblages (upper infralittoral andmidlittoral) at one time during deposition of the stratigraphicsequence. It is stressed that the majority of the macrofossilswere collected from the layer that fills the "pot-holes" (whichthe collectors sought actively) where the large forms were tra-pped in these natural wells. This limited and random deposit


Fig. 2 – A, détail du falun du niveau 5, on distingue principalement des bivalves Lucinidae et le gastéropode Gra-nulolabium plicatum. B, détail du falun à Ervilia, couche de remplissage des puits de dissolution. C, vue des puitsde dissolution (niveau des "marmites") [échelle: A-B = 5 mm, C environ 50 cm]Fig. 2 – A, Detail of the level 5 deposit, Lucinidae bivalves and the gastropod Granulolabium plicatum are the commonest spe-cies. B, Detail of the Ervilia deposit infilling the pot-holes. C, Erosional depressions ("Pot-holes" level) [scale: A-B= 5 mm;C, 50 cm]


(the "pot-holes" are not present everywhere) obviously corre-sponds to several types of environments. One finds the ves-tiges of the rocky assemblages of the midlittoral to infralitto-ral zones, but these are preserved among the species of acoarse sand community. The dynamics of the environmentwere in addition sufficient to accumulate lagoonal and someterrestrial species.

In the overlying strata, the fauna is impoverished considera-bly. From an open sea fauna, one passes to a sheltered bay(levels 4 and 5) and the fauna then becomes insulated (6-9).The withdrawal of the sea is marked by deposits of marl andlimestone (levels 10-11) with fluviatile faunas. The faunas oflayers 6 to 11 show similarities with those which we de-scribed at the top of the Stampian succession (euryhaline as-semblage of Ormoy Sands, in GITTON et al. 1986).

Gastropods are largely dominant at Lariey, while it is a smallsuspensivore bivalve of the family Semelidae [Ervilia pusilla(Philippi, 1836)] which constitutes the essence of the biomassin levels 2-5. This type of proliferation is similar to what issometimes observed with another genus of small bivalve,Lentidium. This constitutes populations of dramatic density inthe upper infralittoral zone. In the Mediterranean sea, ac-cording to PÉRÈS (1967), the Upper clean-sand assemblage iscomposed by the species Lentidium mediterraneum (Costa,1839) (exclusive species). The assemblage of Upper clean-sand generally occupies the surf zone of the lower beach. Theecology of Ervilia however is different. Data on the commonspecies of the European temperate province (RODRIGUEZ

BABIO & BONIN 1987; WELLS 1995; MORENO 1996, 1998)show that a true biofacies with Ervilia generally developsin the open sea (whereas Lentidium occurs in lower salini-ties) on a more or less coarse sand substrate, in depths of 5to 30 m and in well-oxygenated water. Under these condi-tions Ervilia specimens are grouped in disjunct banks madeup of enormous populations. This is what MORENO (1996,1998 and pers. comm.) has observed in the area near Alme-ria (Spain) where Ervilia castanea (Montagu, 1803) verylargely predominates the fauna in depths between 10 and 23m. The density of Ervilia is impressive, and their siphonsform a whitish veil at the surface of the sediment (Fig. 6).In a more general way, these sands with Ervilia at Larieyseem to represent a biofacies of the assemblage of coarsesands and fine gravels under strong bottom currents. Thisassemblage is not the climax one, and is unrelated to verti-cal zonation (PÉRÈS 1967). We infer that the layer fillingthe "pot-holes " and level 4 are frankly marine and that thisdeposit consists of an assemblage that lived in a depth of afew meters in well oxygenated water. At this stage of ourreflection, we very accurately analysed the proportion ofErvilia shells in the sediment (with sampling every 10 cm).This made it possible to determine more precisely the vari-ous stages that led to the transformation of the marine envi-ronment and the development of a lagoonal fauna withTympanotonos that caps the freshwater limestones. On theecological level the expected change is from a fauna pre-dominantly of suspensivores to one made up mainly of de-tritivores. The abundance of the detritivores, Potamides andLucinidae, in the highest parts of the outcrop reveals thatthis change has occurred. The faunistic alternations that oneobserves between Potamididae (Terebralia, Tympanotonos)and Batillariidae (Granulolabium) also deserve to be ana-

lyzed. Thus, in certain beds (for example in level 9), theBatillariidae genus Granulolabium is abundant and replacesthe Potamididae (Tympanotonos). The only recent repre-sentative of Granulolabium lives along the coasts of South-ern Australia (LOZOUET 1986b) in the intertidal zone. Newobservations by J.-C. Plaziat (pers. com.) indicate thatGranulolabium diemenensis (Quoy & Gaimard, 1834) livesat low tide in the zone of permanent water flow (Fig. 7);however, it is known that most of Potamididae support atotal emergence. These remarks make more explicit the ob-servations of GITTON et al. (1986) who showed that in thelast marine sequence of the Paris Basin (Oligocene), Po-tamididae (Potamides) replaced Granulolabium with thedevelopment of lagoonal conditions.

SYSTEMATICS

The classification followed is that of BEESLEY et al. (1998),for the arrangement of the families we also used PONDER &WARÉN (1988). Compared to older classifications, (WENZ

1938-1944; ZILCH 1959-1960), we will underline the indi-vidualization of the Patellogastropoda and the concept ofHeterobranchia redefined by HASZPRUNAR (1985). We alsotook account of PONDER (1990a, 1990b, 1991) and WARÉN

et al. (1993), who transferred to Heterobranchia differentgenera or families classified before in Prosobranchs. Wepartly followed HICKMAN & MCLEAN (1990) for the classi-fication of Trochoidea, KANTOR (1995) for Neogastropoda,COOVERT & COOVERT (1995) for Marginelliforms, andTAYLOR et al. (1993) for Conoidea. Lastly, the Pyramidel-loidea were classified following WISE (1996), SCHANDER

(1995) and SCHANDER et al. (1999). Generally we avoidedthe systematic excess of precision which the use of the sub-genera often constitutes in palaeontology. In the same waythe subfamily level has seldom been used except in the caseof recent revisions available or discussed family arrange-ments (e.g., Conoidea; cf. KOHN & MCLEAN 1994).

Abbreviations used

Dmax: maximum diameter of the shellDO: original designationDS: subsequent designationH: Height of the shellM: monotypyMNHN-Paris: National Museum of Natural History, Laboratory of B.I.M.M.SPM : specimen

SPECIES ANNOUNCED FROM LARIEY BY BENOIST

In various papers and in particular in his "Catalogue Rai-sonné", BENOIST (1873, 1874a) indicated, even described,some species from Lariey that we did not find in his collec-tion (Natural History Museum of Bordeaux). Some of thesespecies are characteristic of the Aquitanian and the indica-tions of Benoist are precise enough to allow us to mentionthem:


- Tectarius elegans (Basterot, 1825).- Peasiella reyti (Cossmann & Peyrot, 1917) (?=Risella gi-rondica Benoist, 1874) *- Strombus (Tricornis) trigonus Grateloup, 1834- Varicospira decussata (Basterot, 1825)- Cassis bellardii Michelotti, 1847 (=Semicassis jaubertiCossmann & Peyrot, 1924), (BENOIST 1874a: Cassis elegans)- Cypraecassis subcrumena (d'Orbigny, 1856)- Lyria degrangei Peyrot, 1928 (Voluta subharpula d'Or-bigny, 1856 in Benoist).

BENOIST (1874a) also indicated the species Terebellum subfu-siformis d'Orbigny, 1856. It is a surprising occurrence be-cause the last representative of the subfamily Seraphinaeseems to die out in Europe in the Late Oligocene.

CONCLUSION

This study made it possible to list 314 species from Lariey, ofwhich 3 are terrestrial and 4 strictly fluviatile. Our materialincludes 300 species and 14526 specimens (coll. Lesport, 223species 7292 spm.; coll. Favia & Lozouet, 229 species, 5815spm.; coll. Renard, 175 species, 1950 spm.). The examinationof the collections placed at our disposal finally made it possi-ble to add 14 species. A comparison between the specificrichness of Lariey and other Aquitanian sites is difficult be-cause this study is the first exhaustive revision of the gastro-pods of the Miocene in the Aquitaine basin.

Data extracted from LOZOUET (1997), however, give a betterunderstanding of the richness of this fauna firstly within theregional framework and secondly within the European one.Indeed, certain outcrops in Aquitaine, still incompletely in-ventorized, contain between 400 and 500 species of gastro-pods. This is the case in particular of some sites of UpperOligocene age from the Landes [St-Paul-lès-Dax: Bezoye B:465 species; Estoti: 448 species]. The Aquitanian site ofMeilhan (Vives)

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*REID (1989) gave a synonymy in which he rejects Trochusthorinus Grateloup, 1832 (according to the indications ofCossmann & Peyrot) and Risella girondica Benoist, 1874. Thedescription of this species and the dimensions given by Benoistseem indeed to indicate that it is probably a young specimen ofTrochoidea. In addition Benoist's type was not rediscovered inthe collections of the Natural History Museum of Bordeaux,thus this identification is doubtful.

and the Burdigalian site of St-Paul-lès-Dax (Cabanes) re-spectively yielded 418 and 405 species of gastropods. Con-trasting with these numbers, from the Burdigalian of Saucats"Peloua", LOZOUET (1997) listed only 300 species. However"Peloua" is often regarded as a site of exceptional richness!

The need for a precise inventory thus appears clearly. Incomparison, the layer of Winterswijk-Miste (Lower/MiddleMiocene), which is the richest in northern Europe, yielded350 species of gastropods (A.W. JANSSEN 1984). These fig-ures can be compared with the 500 species of gastropodslisted by DOLIN et al. (1980) for the sand pit of Baron (ParisBasin; Bartonian, Eocene). Although this layer containsrather many reworked fossils from the Lutetian to theThanetian stages, this number of species, although remark-able, is lower that in certain layers of the Lutetian in the ParisBasin. Le Renard (pers. comm.) considers than a rich Lu-tetian outcrop contains between 700 and 800 species of gas-tropods. In the Pliocene of Malaga (Spain), VERA-PELAEZ etal. (1996) listed 531 species of gastropods for some outcropsof the surroundings of Velerin. This rapid presentation ofsome Caenozoic faunas enables us to conclude that with 310listed gastropod species, Lariey is of medium specific rich-ness. It will be underlined again that no other outcrop ofMiocene or Oligocene age from the Aquitanian Basin hasbeen inventoried with such effort.

On the whole, 700 species of gastropods are recorded fromthe Aquitanian stage (LOZOUET 1997). It is thus nearly 44%of the fauna of this stage that we have revised. Our knowl-edge of Aquitanian in its classic area has thus improved con-siderably. However, and it is advisable to insist on this as-pect, the data on the marine stratotype Aquitanian, at leastwith regard to molluscs, come primarily from a thin, veryparticular deposit (the filling of the "pot-holes"). Some of theproblems encountered up until now in the characterisation ofthis stage undoubtedly result from this.

Finally, we will note that the experience gained and the datacompiled for this monographic work, now allow us to moveon to the study of other sites of the Geological Reserve ofSaucats-La Brède, and more generally in the Aquitanian Ba-sin. It becomes indeed imperative to present, within a reason-able time, a palaeontological redefinition of the stratotypes ofthis area, one cannot be satisfied any more with the compila-tion in a work initiated nearly one century ago (COSSMANN &PEYROT 1909...). Is it necessary to recall that in "ConchologieNéogénique de l'Aquitaine" only 113 species, "races" or "va-rieties" of gastropods are quoted from Lariey (which includesSaucats "Route du Son") including 17 terrestrial or fluviatilespecies!

Technical sheetProvinces: Gironde (33); Parish: Saucats, places: Lariey ou L'Ariey.

Stage: Aquitanian.

Status: outcrop of the Stratotype, part of the Geological Natural Reserve of Saucats-La Brède.

Dates and eustatic cycles: 5-7, 21 My (+-0,1), GOURINARD et al. (1987), level 6 of "pot-holes", 21,3 My (+-0,23) (CAHUZAC et al. 1997). Eustatic sea-level Vail: Cycle TB 1.5

Situation: map co-ordinates Lambert III (map IGN-1537O, La Brède Est) X = 386,400; Y = 242,000.


Fiche techniqueDépartement : Gironde (33) ; Commune : Saucats, lieu-dit : Lariey ou L'Ariey.

Étage : Aquitanien.

Statut : coupe du stratotype intégré à la Réserve Géologique de Saucats-La Brède.

Datations et cycles eustatiques : niveaux 5-7, 21 Ma (+-0,1), GOURINARD et al. (1987), niveau 6 dit "des marmites", 21,3 Ma (+-0,23) (CAHUZAC et al. 1997). Niveau eustatique marin de Vail : Cycle TB 1.5.

Situation : coordonnées Lambert III (carte IGN-1537O, La Brède Est) X = 386,400 ; Y = 242,000.

Fig. 3 – Localisation du site de Lariey. Location of the site of Lariey.

INTRODUCTION ET HISTORIQUE

La coupe de Lariey1 montre la partie supérieure del'Aquitanien. Tant sur le plan scientifique que sur leplan patrimonial, elle est d'un grand intérêt. C'est laprincipale coupe du Stratotype de l'Aquitanien maisc'est aussi le premier site aménagé (Fig. 1) de la Ré-serve Naturelle Géologique de Saucats-La Brède. Para-doxalement, sa faune est très mal inventoriée ce qui estparticulièrement regrettable pour le stratotype d'unétage dont la position a été aussi âprement (DOLLFUS

1 NB: l'origine du nom "Lariey" mérite d'être précisée. Ce motprovient vraisemblablement du gascon arribét,orthographiéaussi "arriuét" ou "Larribet" qui signifie ruisselet. Des formesproches comme "arribéus" qui désigne un cours d'eau formépar plusieurs ruisseaux, peuvent aussi s'appliquer (définition inPALAY 1991).

1909, 1912b ; REPELIN 1911, 1912) et longuement dis-cutée, comme le rappellent ALVINERIE et al. (1977). Leproblème de la durée de l'étage Aquitanien, lié à la li-mite Oligocène/Miocène, reste d'ailleurs une irritantequestion toujours irrésolue. ANGLADA, en déplaçant ladiscussion sur la limite Paléogène/Néogène, proposaitmême en 1978 une coupure au sein de l'Oligocène !HARLAND et al. (1982) placent la limite Oligocène/Miocène à 24,6 Ma, tandis que CAVELIER & POMEROL

(1983) retiennent 23,5 Ma. ODIN (1994) la situe autourde 23 Ma et BERGGREN et al. (1995) vers 23,8 Ma.ODIN et al. (1997) suggèrent un intervalle entre 23 et 25Ma. Enfin, tout récemment, GINSBURG et al. (1998)proposent de revenir à une coupure autour de 25 Ma.Ces différentes propositions n'affectent pas la position

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du profil de Lariey qui est bien calé dans la partie supé-rieure de l'étage Aquitanien ; selon la grade-datation deGOURINARD et al. (1985) moins de 500 000 ans sépa-rent la faune de Lariey de celle du Burdigalien du Pe-loua. En revanche, il convient de s'interroger sur lecontenu de l'Aquitanien stratotypique qui, dès lors quel'on admet une coupure vers 25 Ma, apparaît notoire-ment incomplet.

MAYER-EYMAR (1858), dans sa proposition origi-nale d'étage Aquitanien, avait distingué sept niveauxprincipaux. La description de chacun d'entre eux étaitaccompagnée d'une liste d'espèces de mollusques trèssuccincte, seulement destinée à caractériser les niveaux.La faune de Lariey que nous décrivons correspond ap-proximativement aux niveaux 6-7 de Mayer-Eymar(voir Fig. 4). Cependant, l'essentiel de ceux-ci ont étérécoltés dans le niveau 6 qui inclut le remplissage des"marmites" (couches 3-5 de notre coupe). D'une ma-nière générale, les différents auteurs qui ont inventoriéavant nous la faune de Lariey n'ont pas fourni d'indica-tion sur la provenance des fossiles. DOLLFUS (1909),dans sa liste qui compte 182 espèces de gastéropodes,ne donne aucune précision ; en fait, son recensement estfondé essentiellement sur une compilation de diverstravaux dont le "Catalogue Synonymique et Raisonné"de Benoist (1873, 1874a). Ceci explique les nombreuxproblèmes d'identification spécifique et les citations

douteuses qu'elle renferme. COSSMANN & PEYROT

(1909-1921), PEYROT (1925-1932), au fil de leur ou-vrage, répertorient 113 mollusques gastéropodes de La-riey d'après différentes collections. Plus récemmentEAMES & CLARKE (1967) ont, en s'appuyant sur la col-lection Mayer-Eymar, dressé un inventaire des mollus-ques de Lariey. Il est malheureusement peu utilisablecar il renferme des espèces qui manifestement ne pro-viennent pas de l'Aquitanien de Saucats (exemple :"Hinia turonensis, Hinia turbinella, Pirenella picta,Streptochetus dispar, Pterynotus delbosianus, Cyllenevulgatissima, Dorsanum veneris..."). Il est donc certainqu'à ce jour il n'existe pas de liste crédible de l'Aquita-nien stratotypique.

Parmi les travaux décrivant les autres organismesfossiles de Lariey, on peut citer : POIGNANT & PUJOL

(1976 ; 1979) pour les foraminifères benthiques etplanctoniques, MULLER & PUJOL (1979) pour les fora-minifères planctoniques, BEKAERT et al. (1991) pourles ostracodes et CHEVALIER (1961) pour les scléracti-niaires. Les problèmes de datations absolues ont étéabordés par la méthode des grade-datations (MAGNE etal. 1987 ; GOURINARD et al. 1987) et, plus récemment,par les isotopes du strontium (CAHUZAC et al. 1997).Enfin, GOURINARD & MAGNE (1987) ont précisé la po-sition du stratotype aquitanien par rapport à l'échelleeustatique de Vail.

DESCRIPTION LITHOLOGIQUE ET PALÉOENVIRONNEMENTS

TOURNOUER (1862), FALLOT (1895) ont fourni unebonne description des affleurements du hameau de La-riey et MARQUASSUZAA (1940) a relevé une coupe auvoisinage du front actuel protégé qui est présenté parLONDEIX (1991) et POIGNANT et al. (1997). Ce profilest également commenté dans la brochure de présenta-tion de la réserve (CAHUZAC et al. 1996).

La coupe de la figure 4 a été dressée par J.F. Les-port et nous avons représenté (Fig. 5) quelques gastéro-podes caractéristiques des différents niveaux. L'aspectle plus curieux de la coupe de Lariey réside dans les"marmites" creusées au sommet des sables gréseuxconsolidés. Ces figures de dissolution, cylindriques(voir Fig. 2) semblent équivalentes à celles décrites parSALOMON (1986) dans la zone médiolittorale de Mada-gascar dont l'origine karstique suggère une émersion.La surface durcie de ce sable gréseux est perforée parde nombreux bivalves, ce qui renforce l'hypothèse d'unmilieu temporairement exondé. De fait, si les organis-mes de fonds durs sont loin de dominer, la fraîcheur decertains d'entre eux (Modulus basteroti par exemple)atteste cependant de l'existence, à un moment de la sé-quence, d'un environnement rocheux de type infralitto-ral supérieur à médiolittoral. Nos observations sur les

"marmites" restent limitées dans la mesure ou nousn'avons pû observer une section complète de l'une d'el-les.

On soulignera que la plupart des macro-fossiles ontété récoltés dans le sédiment qui remplit les "marmites"(que les collectionneurs ont recherchées activement) oùles grandes formes sont piégées de façon privilégiéedans les puits naturels. Ce dépôt limité et localisé (lesmarmites ne sont pas présentes partout) correspond évi-demment à plusieurs types d'environnements. On y ren-contre les vestiges des communautés rocheuses médio àinfralittorales mais ceux-ci sont noyés parmi les repré-sentants d'un peuplement de sables plus ou moins gros-siers. La dynamique du milieu était par ailleurs suffi-sante pour que se concentrent également des espèceslagunaires et quelques éléments continentaux. Dans lescouches sus-jacentes, la faune s'appauvrit considérable-ment. De la mer ouverte, on passe à une baie abritée(niveaux 4 à 5) puis isolée (6-9). Le retrait de la mer estmarqué par le dépôt de marne et de calcaire (niv. 10-11) à faunes fluviatiles. Les séquences 6 à 11 présententdes similitudes d'assemblages avec celles que nousavons décrites au sommet de la série stampienne (com-munauté euryhaline des Sables d'Ormoy, GITTON et al.1986).


Fig. 4 – Coupe lithostratigraphique du gisement de Lariey.

Fig. 4 – Lithostratigraphic sequence of Lariey

- 21M.a.

------->

4m

5m

6m

7m

2m

1m

?

Sables des Landes.

Marne d'eau douce beige à Charophytes, Mytilopsis, Ostracodes.

Argile rougeâtre à très nombreux Granulolabium.

Argile verdâtre à nodules calcaires, pauvre en mollusques.

Sable beige clair à Lucinidae, Granulolabium, Ervilia;Perna aquitanica forme un banc à la base; faune "in-situ"plus diversifiée vers le sommet (Ocenebra, Dorsanum, Calyptraea, Cardita, Anadara).

Sable fin, beige clair. Outre les Ervilia, quelques raresbivalves fouisseurs en position de vie appartenant au niveau sus-jacent.

Falun jaune à rougeâtre à Ervilia et riche faune roulée. Le falun remplit la partie supérieure des puits naturels où sont piégés de nombreux macro-fossiles dontMadréporaires, Mollusques (Cypraeidae, Campanile,Melongena, Conus, Barbatia), Echinodermes(Amphiope ovalifera).

Grès calcaire, beige, très solide et creusé par des lithophagesau sommet, et passant progressivement à des bancs de grèscalcaire épars, noyé dans les lits de sable ocre à stratificationsobliques. Ce grès est perforé par des puits naturels de 0,5 m dediamètre.

niveau du Ruisseau le Saint-Jean-d'Etampes

Calcaire d'eau douce à Planorbidae et Lymnaeidae

Marne verdâtre à Tympanotonos

Argile verdâtre à huîtres

Falun verdâtre à Miltha incrassata.

niv

eau

de

May

er 1

858

n°7

n°6


Fig. 5 – Coupe lithostratigraphique et principaux gastéropodes de la séquence.

Fig. 5 – Lithographic sequence with main gastropod species.


Fig. 6 – A, détail du falun à Ervilia de Lariey (échelle = 5 mm). B, détail montrant la densité des siphons d'Erviliacastanea à la surface du sédiment, Espagne (Almería, Cabo de Gata, - 23 m) [photo n°629, Diego Moreno]. C,communauté à Ervilia.

Fig. 6 – A, detail of the Ervilia deposit from Lariey [scale bar = 5 mm]. B, detail showing the high density of the Ervilia casta-nea siphons near the surface water, Spain (Almería, Cabo de Gata, - 23 m) [photo n°629, Diego Moreno]. C, Ervilia community.


Alors qu'à Lariey les gastéropodes prédominentlargement en nombre d'espèces, c'est un petit bi-valve suspensivore de la famille des Semelidae,Ervilia pusilla (Philippi, 1836), qui constitue l'es-sentiel de la biomasse, du moins dans les niveauxde base (2-5). Ce type de prolifération rappelle ceque l'on observe parfois chez un autre genre de pe-tit bivalve : Lentidium. Ce dernier forme des po-pulations d'une extrême densité en position infra-littorale supérieure. En Méditerranée, d'aprèsPÉRÈS & PICARD (1964), on distingue une commu-nauté dite des Sables Fins de Haut Niveau(S.F.H.N.), avec comme espèce exclusive Lenti-dium mediterraneum (Costa, 1839). La commu-nauté des S.F.H.N. occupe généralement la partiesupérieure de l'étage Infralittoral, dans la zone dedéferlement des vagues par mauvais temps. L'éco-logie d'Ervilia est toutefois différente.

Les données que nous avons recueillies sur l'espèceactuelle Ervilia castanea (Montagu, 1803) de la pro-vince tempérée européenne (RODRIGUEZ BABIO &BONIN 1987 ; WELLS 1995 ; MORENO 1996, 1998)montrent qu'il existe un véritable biofaciès à Ervilia ;celui-ci se développe généralement en mer ouverte(alors que Lentidium supporte de fortes dessalures) surun substrat de sables plus ou moins grossiers, à desprofondeurs allant de 5 à 30 m ; les eaux bien oxy-génées sont parcourues par des courants. Dans cesconditions les Ervilia s'agrègent en bancs disjointscomposés d'énormes populations. La densité desErvilia est impressionnante et leurs siphons for-ment un voile blanchâtre à la surface du sédiment(Fig. 6). C'est ce que MORENO (1996 ; 1998 etcomm. pers.) a observé dans la région d'Almeria(Espagne) où Ervilia castanea domine très large-ment les autres invertébrés entre 10 et 23 m de pro-fondeur. D'une manière plus générale, ces sables àErvilia apparaissent comme un biofaciès de lacommunauté des SGCF (Sables Grossiers et FinsGraviers sous l'influence des Courants de Fonds).

Cette biocoenose, non climatique, est indépendantede l'étagement (PÉRÈS 1967). On peut donc en dé-duire que la couche de remplissage des "marmites"et le niveau 4 ont un caractère marin franc et que lamalacofaune est pour l'essentiel constituée d'un as-semblage qui a vécu à quelques mètres de profon-deur dans des eaux bien oxygénées.

A ce stade de notre réflexion, il nous apparaît sou-haitable que soit conduite une analyse fine (prélève-ment tous les 10 cm) afin de suivre l'évolution de laproportion d'Ervilia. Sur le plan écologique, la traduc-tion attendue est le passage d'une faune à régime sus-pensivore dominant, à une faune composée principale-ment de détritivores ou assimilés, ainsi que le montrel'abondance des bivalves Lucinidae (Cardiolucina?) etdes taxons Potamides et dès le niveau 5 (voir Fig. 5 c).Un décompte précis permettrait aussi sans doute, dedéterminer plus précisément les différentes étapes quiont conduit au retrait de la mer et au développementdes faunes lagunaires que coiffent les calcaires la-custres. Les relais faunistiques que l'on observeentre les Potamididae (Terebralia, Tympanotonos)et les Batillariidae (Granulolabium) mériteraientd'être analysés. Ainsi, dans certains lits (exempleniveau 9), le Batillariidae Granulolabium abondeet se subsitue aux Potamididae. L'unique représen-tant actuel du genre Granulolabium vit le long descôtes du sud de l'Australie (LOZOUET 1986b) dansla zone des marées. Les observations inédites de J.-C. Plaziat (com. pers.) indiquent que Granulola-bium diemenensis (Quoy & Gaimard, 1834) sta-tionne à marée basse dans des zones d'écoulementsd'eau permanents (voir Fig. 7) ; or, on sait que laplupart des Potamididae supportent -eux- l'émer-sion totale. Ces remarques explicitent les observa-tions de GITTON et al. (1986) qui ont montré quedans la dernière séquence marine de l'Oligocène(Rupélien) du bassin de Paris, les Potamididae(Potamides) succèdent à Granulolabium à mesureque le caractère lagunaire du dépôt s'affirme.

COLLECTIONS EXAMINÉES

Collections publiques :

Faculté des Sciences de Bordeaux-Talence :Coll. Grateloup

Muséum d'Histoire naturelle de Bordeaux :Coll. BenoistColl. Degrange-TouzinColl. Générale

Muséum national d'Histoire naturelle :Coll. de Boury (MNHN-Paris-Malacologie)Coll. Cossmann (MNHN-Paris-Paléontologie)Coll. Favia et Lozouet (MNHN-Paris-Malacologie)Coll. de Sacy, types et figurés (MNHN-Paris-Malacologie)

Collections des auteurs :

Coll. Lesport (Bordeaux)Coll. Renard (Paris)

Collections privées :

Coll. Aubrecht (Bordeaux)Coll. Balauze (Bordeaux)Coll. Daney (Bordeaux)Coll. Dudon (Melun)Coll. Gourgues (Bordeaux)Coll. Marcomini (Paris)Coll. Rocher (Pessac)


Fig. 7 – Milieu à Granulolabium : Australie (Victoria), Shallow Inlet. A-E, Granulolabium diemenensis a fleurd'eau ; F, vue générale à marée basse montrant un écoulement d'eau permanent. La salinité est de 39-40 ‰. [photoet données inédites J-C. Plaziat].

Fig. 7 – Granulolabium biotope from Australia (Victoria), Shallow Inlet. A-E, Granulolabium diemenensis near the water-surface ; F, general view at low tide showing a permanent stream. Salinity is up to 39-40 ‰.


SYSTÉMATIQUE

La classification suivie est celle de BEESLEY et al.(1998) ; pour l'arrangement des familles nous avonsaussi utilisé PONDER & WARÉN (1988). Par rapport auxclassifications plus anciennes (WENZ 1938-1944 ;ZILCH 1959-1960), on soulignera l'individualisation desPatellogastropoda et le concept des Heterobranchia re-défini par HASZPRUNAR (1985). Nous avons aussi tenucompte de PONDER (1990a, 1990b, 1991) et WARÉN etal. (1993), qui ont transféré dans les Heterobranchiadifférents genres ou familles auparavant classés dans lesProsobranches. Nous avons suivi en partie MOORE

(1960) pour la classification des Archaeogastropoda,HICKMAN & McLEAN (1990) pour celle des Trochoi-dea, KANTOR (1995) pour les Neogastropoda, COO-

VERT & COOVERT (1995) pour les Marginelliformes,TAYLOR et al. (1993) pour les Conoidea. Enfin, les Py-ramidelloidea ont été classés en suivant WISE (1996),SCHANDER (1995) et SCHANDER et al. (1999). D'unemanière générale, nous avons évité l'excès de précisionsystématique que constitue souvent, en paléontologie,l'usage des sous-genres. De même le niveau sous-fa-milial n'a généralement pas été appréhendé, sauf lors-qu'il existe des révisions récentes, ou dans le cas d'ar-rangements familiaux qui n'ont pas encore reçu un trèslarge agrément (cas des Conoidea par exemple, cf.KOHN & McLEAN 1994).

Toutes les références primaires et chrésonymiquescitées figurent en bibliographie. La citation des référen-ces de la "Conchologie Néogénique" a été faite en ac-cord avec LOZOUET & LESPORT (1994) et en ne men-tionnant que le seul numéro d'espèce afin de s'affranchirdu problème de double parution.

Abréviations utilisées :Dmax : diamètre maximum de la coquilleDO : désignation originaleDS : désignation subséquenteH : Hauteur de la coquilleM : monotypieMNHN-Paris : Muséum National d'Histoire Naturelle, Laboratoire de B.I.M.M.SPM : spécimen

ESPÈCES SIGNALÉES À LARIEY PAR BENOIST

Dans divers travaux et en particulier dans son "Ca-

talogue Raisonné", BENOIST (1873, 1874a) a indiqué,voire décrit, des espèces de Lariey que nous n'avons pasretrouvées et qui ne sont pas présentes dans sa collec-tion (Muséum d'Histoire naturelle de Bordeaux). Cesespèces sont parfois caractéristiques de l'Aquitanien etles indications de Benoist sont suffisamment précisespour que nous les mentionnions :

- Tectarius elegans (Basterot, 1825)- Peasiella reyti (Cossmann & Peyrot, 1917) (?=Risella gi-

rondica Benoist, 1874)2

- Strombus (Tricornis) trigonus Grateloup, 1834- Varicospira decussata (Basterot, 1825)- Cassis bellardii Michelotti, 1847 (=Semicassis jauberti

Cossmann & Peyrot, 1924), (BENOIST 1874a : Cassiselegans)

- Cypraecassis subcrumena (d'Orbigny, 1856)- Lyria degrangei Peyrot, 1928 (Voluta subharpula d'Orbi-

gny, 1856 d'après Benoist).

BENOIST (1874a) répertorie également Terebellumsubfusiformis d'Orbigny, 1856. C'est une occurrencesurprenante, car le dernier représentant de la sous-famille des Seraphinae semble s'éteindre en Europe àl'Oligocène supérieur.

Classe GASTROPODA Cuvier, 1797

Sous-Classe EOGASTROPODA Ponder & Lindberg, 1996

Super-Ordre PATELLOGASTROPODA Troschel, 1866

Superfamille ACMAEOIDEA Forbes, 1850

Famille ACMAEIDAE Forbes, 1850

Asteracmea Oliver, 1926

Helcioniscus illibrata Verco, 1906 (DO) - Origine : Récent, Sud del'Australie.

Asteracmea acuminata (Grateloup, 1828)Pl. 1 figs 1a-1b

1828a Patella acuminata Grateloup : n°5, 78.1836 Patella acuminata Grateloup - Grateloup : 269, pl. 1 figs 8-9.1847 Patella acuminata Grateloup - Grateloup : pl. 1 figs 8-9-10.1852 Helcion acuminata (Grateloup) - D'Orbigny : n°271, 18.1966 Patella acuminata Grateloup - Vergneau : 163.

Matériel examiné : 4 spm. coll. Lesport ; 17 spm. coll.Favia & Lozouet ; 1 spm. coll. Renard.

Cette espèce est peu discernable de Patella acumi-nata de l'Oligocène inférieur de Gaas, elle-même, très

2 N.B.: REID (1989a) a donné une synonymie dans laquelle ilrejette l'appartenance de Trochus thorinus Grateloup, 1832(d'après les indications de Cossmann & Peyrot) et Risella gi-rondica Benoist, 1874 au genre Peasiella. La description decette dernière espèce et les dimensions données par Benoistsemblent effectivement indiquer qu'il s'agit d'un jeune Tro-choidea; comme par ailleurs le type de Benoist n'a pas été re-trouvé dans les collections du Muséum de Bordeaux, l'identi-fication reste douteuse.


proche de Patella scutatella Lamarck, 1802 (=Patelladelicatula Deshayes, 1864) de l'Eocène moyen du bas-sin de Paris.

COTTON (1959, 307-312 figs 204-208) a rangé dif-férentes espèces sud-australiennes d'Acmaeidae dans legenre Asteracmea. Parmi celles-ci, nous relevons Aste-racmea crebistriata (Verco, 1904) de taille, de galbe etde sculpture identiques à A. acuminata.

A noter que le type de Grateloup a disparu, unHipponyx, très roulé et à test épais lui a été accidentel-lement substitué. Car GRATELOUP (1836), dans sa des-cription de Patella acuminata, mentionne bien un test"très mince, très fragile". VERGNEAU (1966) qui a exa-miné la coll. Grateloup, avant son déménagement à lafaculté de Talence, stigmatise également la minceur dutest de la coquille de Patella acuminata et donne unintervalle de taille identique à nos exemplaires (2 mm -2,5 mm de diamètre).

Tectura Gray, 1847

Patella parva Da Costa, 1778 (DO) - Origine : Récent, Tempéréeeuropéenne.

Tectura sp.

1917 Tectura cf. taurinensis Sacco - Cossmann & Peyrot : n°34, pl.2 figs 47-49.

Matériel examiné : 1 spm. coll. Renard.

Sous-Classe ORTHOGASTROPODA

Ponder & Lindberg, 1995

Super-Ordre VETIGASTROPODA

Salvini-Plawen & Haszprunar, 1987

Superfamille HALIOTOIDEA Rafinesque, 1815

Famille HALIOTIDAE Rafinesque, 1815

Haliotis (Sulculus) Adams & Adams, 1854

Haliotis incisa Reeve, 1854 (DS Cossmann, 1918) - Origine : Ré-cent, Japon.

Haliotis (Sulculus) benoisti Cossmann, 1896Pl. 3 fig. 4

1884 Haliotis michaudi Benoist - du Boucher : 182 (nomen nudum)1896b Haliotis benoisti Cossmann : 22, pl. 5 figs 14-15.1903 Haliotis neuvillei Bial de Bellerade : 196.1917 Haliotis benoisti Cossmann - Cossmann & Peyrot : n°50, pl. 3

figs 7-9, pl. 10 fig. 36.1918 Haliotis benoisti Cossmann - Cossmann : Essais 11, 314, pl. 10

figs 38-39.1999 Haliotis tuberculata volhynica Eichwald - Geiger & Groves :

875.

Matériel examiné : 1 spm. coll. Lesport ; 1 spm. coll.Favia & Lozouet.

GEIGER & GROVES (1999) ont rapporté tous lesHaliotidae des dépôts de l'Oligocène supérieur, duMiocène et du Pliocène européens à H. volhynicaEichwald, 1853 qu'ils considèrent comme une sous-espèce de l'espèce actuelle H. tuberculata (Linné,1758). Cette proposition n'est pas argumentée ; en par-ticulier la séparation entre H. tuberculata tuberculata(récent) et H. tuberculata volhynica (Oligocène à Plio-cène) est arbitraire. C'est pourquoi nous préférons utili-ser le vocable benoisti qui présente l'avantage de s'ap-pliquer de manière précise aux Haliotis de l'Oligocènesupérieur et du Miocène inférieur d'Aquitaine.

Superfamille SCISSURELLOIDEA Gray, 1847

Famille SCISSURELLIDAE (SCISSURELLINAE)Gray, 1847

Scissurella d'Orbigny, 1824

Scissurella costata d'Orbigny, 1824 (DO) - Origine : Récent, Médi-terranée.

Scissurella lamellosa Benoist, 1875Pl. 1 fig. 2 - Pl. 2 figs 2a-2b

1875a Scissurella lamellosa Benoist : 67, pl. 1 fig. 1.1917 Scissurella (Schismope) terquemi (Deshayes) - Cossmann &

Peyrot : n°51, pl. 3 figs 10-14.

Matériel examiné : 10 spm. coll. Favia & Lozouet.

COSSMANN & PEYROT (1917) ont confondu Su-kashitrochus terquemi et Scissurella lamellosa. Lesprincipales différences entre ces deux espèces sont lessuivantes :

- Protoconque : S. terquemi possède une proto-conque lisse ; chez S. lamellosa la protoconque portedes costules radiantes.

- Sélénizone : chez S. terquemi elle débute après 1tour 1/5 ; chez S. lamellosa elle débute juste après le1er tour.

- Sculpture : le treillis est beaucoup plus fin chez S.terquemi.

- Enfin chez Sukashitrochus terquemi il y a ferme-ture de la sélénizone chez l'adulte.

Scissurella cf. transylvanica (Reuss, 1860)Pl. 1 fig. 4 - Pl. 2 figs 3a-3b

1860 Scissurella transylvanica Reuss : 267, pl. 7 fig. 6.1860 Scissurella depressa Reuss : 266, pl. 7 fig. 7.1975 Scissurella (Scissurella) transylvanica Reuss - Baluk : 21, pl. 1

figs 1-2.1998 Reussella depressa (Reuss) - Bandel : 44, pl. 14 fig. 8, pl. 15

figs 1-3.

Matériel examiné : 3 spm. coll. Favia & Lozouet ; 1spm. coll. Renard.

Comparée à Scissurella lamellosa, cette espèce se


distingue par sa sculpture composée de cordons spirauxet de lamelles axiales moins nombreuses ; les lamellesaxiales sont aussi plus développées. La protoconque esttrès semblable chez les deux espèces et montre les mê-mes costules radiales. En revanche, la sélénizone dé-bute un peu avant le premier tour juvénile chez Scissu-rella cf. transylvanica, chez S. lamellosa elle débutejuste après le premier tour juvénile. Ainsi, on compte13 costules axiales entre la collerette qui termine laprotoconque et le début de la cicatrice de la sélénizonechez Scissurella cf. transylvanica, tandis qu'elles sontau nombre de 16 chez S. lamellosa. D'après la figure deREUSS (1860) et BALUK (1974) Scissurella depressa estun jeune individu de Scissurella transylvanica. A noterque BANDEL (1998) a créé pour Scissurella depressa legenre Reussella que nous considérons comme syno-nyme de Scissurella.

Sinezona Finlay, 1927

Scissurella brevis Hedley, 1904 (DO) - Origine : Récent, Nouvelle-Zélande.

Sinezona haliotimorpha (Lozouet in Bandel, 1998)

1986 Sinezona haliotimorpha Lozouet : 129, pl. 2 fig. 11 (nomemnudum).

1998 Ariella haliotimorpha Lozouet, 1986 : Bandel : 63, pl. 22 figs1-4.

1998 Sinezona haliotimorpha Lozouet : 64, fig. 3a-b.


Sinezona praecedens Lozouet, 1998

1998 Sinezona praecedens Lozouet : 64, fig. 3c.


Sukashitrochus Habe & Kosuge, 1964

Scissurella carinata A. Adams, 1862 - Origine : Récent, Japon.

Sukashitrochus terquemi (Deshayes, 1865)Pl. 1 fig. 3 - Pl. 2 figs 1a-1b

1865 Trochotoma terquemi Deshayes : 236, pl. 7 fig. 1.


Superfamille FISSURELLOIDEA Fleming, 1822

Famille FISSURELLIDAE (FISSURELLINAE)Fleming, 1822

Lucapinella Pilsbry, 1891

Clypidella callomarginata Dall, 1872 (DS Pilsbry, 1890) - Origine :Récent, Californie.

Lucapinella clypeata (Grateloup, 1828)Pl. 3 figs 3a-3b

1828a Fissurella depressa Grateloup : n°9, 79 (non Lamarck).1828a Fissurella clypeata Grateloup : n°10, 79.1836 Fissurella depressa Grateloup - Grateloup : 276, pl. 1 fig. 22.1836 Fissurella clypeata - Grateloup : 276, pl. 1 figs. 23-24.1847 Fissurella clypeata - Grateloup : pl. 1 figs 23-24.1852 Fissurella aquensis d'Orbigny : n°1722, 92.1917 Fissurellidea (Pupilia) clypeata (Grateloup) - Cossmann &

Peyrot : n°42, pl. 2 figs 67-73.1917 Fissurellidea (Pupilia) clypeata mut. tapina (de Gregorio) -

Cossmann & Peyrot : n°43, pl. 2 figs 74-75.


GRATELOUP (1828a, 1836) a décrit les exemplairesde l'Oligocène de Gaas sous le nom de clypeata (re-nommés aquensis par d'Orbigny) et ceux du Miocèneinférieur sous celui de depressa. COSSMANN & PEYROT

(1917) ont considéré qu'il s'agissait de la même espèceen arguant de son extrême variabilité.

Famille FISSURELLIDAE (DIODORINAE) Odhner, 1932

Diodora Gray, 1821

Patella apertura Montagu, 1803 (DO) - Origine : Récent, Méditer-ranée.

Diodora subcostaria (d'Orbigny, 1852)Pl. 3 figs 2a-2b

1828a Fissurella costaria Deshayes - Grateloup : n°8, 79.1836 Fissurella costaria Deshayes - Grateloup : 275, pl. 1 figs 20-21.1847 Fissurella costaria Deshayes - Grateloup : pl. 1 figs 20-21.1852 Fissurella subcostaria d'Orbigny : n°1724, 92.1917 Fissurella (Lucapina) subcostaria d'Orbigny - Cossmann &

Peyrot : n°36, pl. 2 figs 50-52.1917 Fissurella (Lucapina) subcostaria var. pustulosa Cossmann &

Peyrot : n°37, pl. 2 figs 53-541917 Fissurella (Lucapina) subcostaria d'Orbigny (monstr.!) -

Cossmann & Peyrot : n°38, pl. 2 figs 55-56.

Matériel examiné : 366 spm. coll. Lesport ; 57 spm.coll. Favia & Lozouet ; 16 spm. coll. Renard.

Famille FISSURELLIDAE (EMARGINULINAE)Gray, 1834?

Emarginula Lamarck, 1801

Emarginula conica Lamarck, 1801 (M) - Origine : Récent, TempéréeEuropéenne.

Emarginula cf. squammata Grateloup, 1836Pl. 3 figs 1a-1b

1836 Emarginula squammata Grateloup : 272, pl. 1 figs 15-16.1847 Emarginula squamata Grateloup - Grateloup : pl. 1 figs 15-16.1917 Emarginula subclathrata Grateloup - Cossmann & Peyrot : 45,

pl. 2 figs 76-79.



L'unique Emarginula que nous avons pu examinerde Lariey est plus aplatie que l'Emarginula squammatade Grateloup et ses côtes forment un réseau de maillesplus larges. Des spécimens identiques sont connus del'Aquitanien de Meilhan. Il est très probable qu'il s'a-gisse d'une nouvelle espèce.

Superfamille TROCHOIDEA Rafinesque, 1815

Famille TROCHIDAE (TROCHINAE) Rafinesque, 1815

Clanculus (Clanculopsis) Monterosato, 1879

Trochus cruciatus Linné, 1758 (DS Sacco, 1896) - Origine : Récent,Méditerranée.

Clanculus (Clanculopsis) araonis (Basterot, 1825)Pl. 4 figs 1a-1c

1825 Monodonta araonis Basterot : 32, pl.1 fig. 17.1832a Monodonta araonis Basterot - Grateloup : 150.1847 Monodonta araonis Basterot - Grateloup : pl. 14 figs. 3-4.1850 Trochus araonis Basterot - Deshayes (1839-1853) : 41, pl. 67

figs. 8-11.1917 Clanculus (Clanculopsis) araonis (Basterot) - Cossmann &

Peyrot : n°58, pl. 3 figs. 39-41, pl. 4 fig. 83.?1917 Clanculus (Clanculopsis) granifer Doberlein - Cossmann &

Peyrot : n°59, pl. 3 figs. 42-43.1918 Clanculus (Clanculopsis) araonis (Basterot) - Cossmann : Es-

sais 11, 191, pl. 6 figs 35-36.


Colliculus Monterosato, 1888

Trochus adansoni Payraudeau, 1827 (DS Bucquoy, Dautzenberg &Dollfus,1898) - Origine : Récent, Méditerranée.

Colliculus aquitanicus (Cossmann & Peyrot, 1917)Pl. 3 figs 5a-5c, 6a-6b

1917 Gibbula (Colliculus) aquitanica Cossmann & Peyrot : n°71, pl.3 figs 77-79, pl. 4 figs 1-2, pl. 6 fig. 56.

1917 Gibbula (Colliculus) aquitanica var. amphibola Cossmann &Peyrot : n°72, pl. 4 figs 10-12.

1917 Gibbula (Colliculus) biangulata (Eichwald) - Cossmann &Peyrot : n°77, pl. 4 figs 20-22.

1918 Gibbula (Colliculus) aquitanica Cossmann & Peyrot - Coss-mann : Essais 11, 232, pl. 8 figs 15-16.


Jujubinus Monterosato, 1884

Trochus matoni Payraudeau, 1827 (DS Pilsbry, 1889) - Origine :Récent, Méditerranée

Jujubinus bucklandi (Basterot, 1825)Pl. 4 figs 2a-2c ; 3

1825 Trochus bucklandi Basterot : 34, pl. 1 fig. 21.1852 Trochus bucklandi Basterot - d'Orbigny : n°106, 7.

1917 Callistoma (Strigosella) bucklandi (Basterot) - Cossmann &Peyrot : n°93, pl. 4 figs 78-82.


Jujubinus subturgidulus (d'Orbigny, 1852)Pl. 4 figs 4a-4c ; 5a-5b

1825 Trochus turgidulus? Brocchi - Basterot : 33, pl. 1 fig. 20.1832a Trochus turgidulus Brocchi - Grateloup : n°203, 199.1847 Trochus turgidulus Brocchi - Grateloup : pl. 13 figs 18-19.1852 Trochus subturgidulus d'Orbigny : n°643, 42.1917 Callistoma (Strigosella) subturgidulum (d'Orbigny) - Coss-

mann & Peyrot : n°94, pl. 4 figs 1-4.


Famille TROCHIDAE (UMBONIINAE) H. Adams & A.Adams, 1854

Paroxystele Schultz, 1970

Trochus patulus Brocchi, 1814 - Origine : Miocène supérieur d'Italie.

Paroxystele sp.Pl. 3 figs 7a-7b


Initialement nous avions retenu pour cette espèce levocable Oxystele burdigalensis Cossmann & Peyrot,1917 mais cette espèce possède un ombilic plus ouvertet une forme moins déprimée (voir COSSMANN & PEY-

ROT 1917 : pl. 3 figs 66-69). Finalement l'espèce de La-riey semble plus proche de Paroxystele cf. burdigalen-sis (Cossmann & Peyrot) de l'Oligocène supérieur (Lo-zouet 1986 : 148, pl. 5 fig. 4.).

Famille TURBINIDAE (TURBININAE) Rafinesque, 1815

Astralium Link, 1807

Turbo calcar Linné, 1758 (DS Fischer, 1873) - Origine : Caraïbe.

Astralium aquitanicum Benoist, 1874Pl. 5 figs 1a-1b

1874a Astralium aquitanicum Benoist : n°381, 312.1874b Astralium aquitanicum Benoist : 149.1917 Astralium (Uvanilla) aquitanicum Benoist - Cossmann &

Peyrot : n°106, pl. 5 figs 50-54.1918 Astralium (Uvanilla) aquitanicum Benoist - Cossmann : Essais

11, 147, pl. 5 figs 12-14, 15.1971 Astraea (Uvanilla) aquitanica Benoist - Magne & Vergneau-

Saubade : 2.1986a Astralium aquitanicum Benoist - Lozouet, 157, pl. 5 fig. 8.

Matériel examiné : 2 spm coll. Cossmann (MNHN-Paléontologie n°J02901-J02902).


L'espèce a été décrite de Lariey par BENOIST

(1874a) d'après un seul individu. Deux autres exemplai-res ont été trouvé par Cossmann, et c'est semble t-il à cejour les seuls autres récoltés dans cet affleurement. As-tralium aquitanicum est rare dans le Miocène inférieur,en revanche, il s'avère commun dans certains sites del'Oligocène supérieur du Bassin de l'Adour.

Nous n'avons pas retrouvé dans la collection Be-noist d'exemplaire d'Astralium aquitanicum. La des-cription de Benoist est par ailleurs très succincte ; fortheureusement COSSMANN & PEYROT (1917) ont donnéun bon complément descriptif qui est accompagné defigures très correctes.

Famille TURBINIDAE (COLLONIINAE) Cossmann, 1917

Homalopoma Carpenter, 1864

Turbo sanguineus Linné, 1758 (DO) - Origine : Récent, Méditerra-née.

Homalopoma degrangei (Cossmann & Peyrot, 1917)Pl. 4 figs 8a-8c

1917 Collonia (Circulopsis) degrangei Cossmann & Peyrot : n°118,texte-fig. 26 (non pl. 6 fig. 25).


C. degrangei a été décrit d'après un seul individude l'Aquitanien du Moulin de Gamachot (Uzeste, Gi-ronde). La figure donnée par Cossmann & Peyrot esttrès médiocre et la description s'applique également àde jeunes Homalopoma granulosa, espèce commune àGamachot. Telle que nous l'avons comprise, nous neconnaissons d'Homalopoma degrangei qu'un autreexemplaire provenant du Burdigalien des Landes.

Homalopoma granulosa (Grateloup, 1828)Pl. 4 figs 7a-7b

1828c Delphinula granulosa Grateloup : n°172, 203.1828c Delphinula sulcata Lamarck - Grateloup : n°171, 202.1847 Delphinula granulosa Grateloup - Grateloup : pl. 12 figs 17-18.1847 Delphinula sulcata Grateloup - Grateloup : pl. 12 figs 16.1852 Trochus subsulcatus d'Orbigny : n°123, 8.1852 Turbo subgranulosus d'Orbigny : n°755, 47.1917 Cirsochilus granulosus (Grateloup) - Cossmann & Peyrot :

n°104, pl. 5 figs 42-49.


Nous avons suivi l'opinion de LOZOUET (1986a,159) qui considère qu'"Homalopoma granulosa est uneespèce répartie de l'Oligocène inférieur au Miocène".Les auteurs précédents rangeaient cette espèce dans legenre Cirsochilus Cossmann, 1888. Dans ce travailnous avons considéré que quelques espèces extrêmes dugenre Cirsochilus appartenait en fait à Homalopoma.

Famille TURBINIDAE (TRICOLIINAE) Woodring, 1928

Tricolia Risso, 1826

Turbo pullus Linné, 1758 (DS Gray, 1847) - Origine : Récent, Mé-diterranée.

Tricolia aquensis (d'Orbigny, 1852)

1832a Phasianella turbinoides Lamarck - Grateloup : n°230, 156.1847 Phasianella turbinoides Lamarck - Grateloup : pl. 14 fig. 28.1852 Phasianella aquensis d'Orbigny : n°746, 46.1917 Phasianella (Steganomphalus) aquensis d'Orbigny - Cossmann

& Peyrot : n°114, pl. 6 figs 31-32 (non 29-30).


Tricolia spirata (Grateloup, 1832)Pl. 4 figs 6a-6b

1832a Phasianella spirata Grateloup : n°232, 157.1847 Phasianella spirata Grateloup - Grateloup : pl. 14 fig. 27.1852 Phasianella spirata Grateloup - D'Orbigny : n°745, 46.1917 Phasianella (Tricolia) spirata Grateloup - Cossmann & Peyrot

: n°112, pl. 6 figs 16-19.1918 Phasianella (Tricolia) spirata Grateloup - Cossmann : Essais

11, 160, pl. 6 figs 1-3.


Super-Ordre NERITOPSINA Cox & Knight, 1960

Superfamille NERITOIDEA Rafinesque, 1815

Famille NERITOPSIDAE Gray, 1847

Neritopsis Grateloup, 1832

Neritopsis moniliformis Grateloup, 1832 (DO) - Origine : Miocèneinférieur d'Aquitaine.

Neritopsis moniliformis Grateloup, 1832Pl. 5 figs 5a-5b

1832d Neritopsis moniliformis Grateloup : 129, figs 1-3.1840 Neritopsis moniliformis Grateloup - Grateloup : 142, pl. 7 figs

36-38.1847 Neritopsis moniliformis Grateloup - Grateloup : pl. 5 figs 36-

38.1852 Neritopsis moniliformis Grateloup - D'Orbigny, n°597, 39.1917 Neritopsis moniliformis Grateloup - Cossmann & Peyrot :

n°140, pl. 7 figs 69-71.1972 Neritopsis moniliformis Grateloup - Hoerle : 24.1982 Neritopsis moniliformis Grateloup - Lozouet & Maestrati : 171,

pl. 6 fig.6.

Matériel examiné : 1 spm. coll. Aubrecht.

Bien que très rare à Lariey, cette espèce a éténéanmoins signalée par BENOIST (1874a). LOZOUET

(1997) a montré que les assemblages à Neritopsis mo-niliformis témoignent de la présence de milieux crypti-ques. A Lariey, N. moniliformis est une espèce acci-


dentelle et, de fait, on n'y rencontre pas le cortège d'es-pèces des milieux sciaphiles ; en particulier la familledes Pickworthiidae est absente.

Famille NERITIDAE (NERITINAE)Rafinesque, 1815

Nerita Linné, 1758

Nerita peloronta Linné, 1758 (DS Montfort, 1810) - Origine : Ré-cent, Caraïbe.

Nerita plutonis (Basterot, 1825)Pl. 5 figs 4a-4d

1825 Nerita plutonis Basterot : 39, pl. 2 fig. 14.1828b Nerita plutonis Basterot - Grateloup : n°129, 148.1840 Nerita plutonis Basterot - Grateloup : 134, pl. 7 figs 29-30.1847 Nerita plutonis Basterot - Grateloup : pl. 5 figs 29-30.1852 Nerita plutonis Basterot - D'Orbigny : n°612, 40.1857 Nerita plutonis Basterot - Deshayes : XI, pl. 73 ter. figs 8-9.1883 Nerita plutonis Basterot - Benoist : 390, pl. 15 figs 18-19.1917 Nerita funata Dujardin - Cossmann & Peyrot : n°142, pl.7 figs

77-82.1917 Nerita plutonis Basterot - Cossmann & Peyrot : n°141, pl. 7

figs 72-76.1917 Nerita funata Dujardin - Cossmann & Peyrot : n°142, pl.7 figs

77-82.1974 Nerita plutonis Basterot - Magne & Vergneau-Saubade, 1.


Nous avons suivi MAGNE & VERGNEAU-SAUBADE

(1974) qui considèrent que Nerita funata sensu Coss-mann & Peyrot rentre dans le cadre de la variabilité deN. plutonis.

Theodoxus Montfort, 1810

Theodoxus lutetianus Montfort, 1810 (DO) - Origine : Récent, Pa-léarctique.

Theodoxus grateloupianus (Férussac, 1823)Pl. 5 fig. 3

1823 Nerita grateloupiana Férussac in Férussac & Deshayes : pl. 2(fossiles), fig. 13.

1825 Neritina fluviatilis Linné - Basterot : 39.1828b Neritina aquensis Grateloup : n°122, 144.1840 Neritina grateloupeana Férussac - Grateloup : 125, pl. 7 figs 6-

8, 10-12.1847 Neritina grateloupeana Férussac - Grateloup : pl. 5 figs 6-8,

10-12.1852 Neritina gratteloupiana d'Orbigny : n°605, 40.1883 Neritina gratelupeana Férussac - Benoist : 384, pl. 15 figs 5-6.1917 Neritina grateloupiana Férussac - Cossmann & Peyrot : n°147,

pl. 8 figs 15-20.1929 Theodoxus (?Calvertia) grateloupianus (Férussac) - Wenz :

2951.1974 Theodoxus fluviatilis (Linné) - Magne & Vergneau-Saubade :

10.


MAGNE & VERGNEAU-SAUBADE (1974) assimilentl'espèce de l'Oligocène supérieur et du Miocène inférieuraquitain à l'espèce actuelle de nos ruisseaux T. fluviatilis(Linné, 1758). Cette opinion ne nous semble pas fondée.T. grateloupi est de taille supérieure à T. fluviatilis (envi-ron deux fois plus grande) et son callus columellaireporte de nombreuses rides alors qu'il est lisse chez T. flu-viatilis (voir FRETTER & GRAHAM 1978, figs 101-103).

Vitta Mörch, 1852

Nerita virginea Linné, 1758 (DS Baker, 1923) - Origine : Récent,Caraïbe.

Vitta picta (Férussac, 1823)Pl. 5 figs 6a-6b, 7-8, 9a-9b

1823 Neritina picta Férussac in Férussac & Deshayes : pl. 2 (fossi-les) figs 4-7.

1828b Neritina picta Férussac - Grateloup : n°123, 145.1828b Neritina duchasteli Lamarck - Grateloup : n°126, 146.1840 Neritina picta Férussac - Grateloup : 127, pl. 7 figs 13-17.1840 Neritina duchasteli Lamarck - Grateloup : 130, pl. 7 fig. 24.1847 Neritina picta Férussac - Grateloup : pl. 5 figs 13-17, 44.1847 Neritina duchasteli Lamarck - Grateloup : pl. 5 fig. 24.1852 Nerita subpicta d'Orbigny : n°598, 39.1883 Neritina ferussaci Benoist : 382, Pl. 15 figs 3-4.1892 Neritina picta Férussac - Crosse & Fischer : 292.1917 Neritina picta Férussac - Cossmann & Peyrot : n°146, pl. 8 figs

4-14.1929 Theodoxus (Vittoclithon) pictus pictus (Férussac) - Wenz :

2918.1974 Neritina picta Férussac - Magne & Vergneau-Saubade, 7.1974 Neritina eopicta Magne & Vergneau-Saubade : 7.1986a Vitta (s.s.) picta (Férussac) - Lozouet : 175, figs 40b-c.


Vitta picta présente un patron pigmentaire particu-lièrement varié et remarquablement préservé. Ainsi lesflammules en zig-zag peuvent s'étendre sur l'ensemblede la coquille et alors se correspondre d'un tour à l'autre(Pl. 5 fig. 7) ou être disposées en larges bandes sépa-rées par une zone neutre (Pl. 5 figs 9a-9b). Nous figu-rons également l'opercule de cette espèce (Pl. 5 fig. 6).

Famille PHENACOLEPADIDAE Pilsbry, 1895

Plesiothyreus Cossmann, 1888

Capulus parmophoroides Cossmann, 1885 (DO) - Origine : Eocènedu Bassin de Paris.

Plesiothyreus ancyliformis (Grateloup, 1828)Pl. 5 figs 2a-2c

1828a Pileopsis ancyliformis Grateloup : n°16, 81.1836 Pileopsis ancyliformis Grateloup - Grateloup : 282, pl. 1 figs

40-43.1847 Pileopsis ancyliformis Grateloup - Grateloup, pl. 1 figs 40-43.1852 Capulus ancyliformis (Grateloup) - n°265, 18.1895b Hyalosiria benoisti Cossmann : 4, pl. 3 figs 7-9.1919 Plesiothyreus ancyliformis (Grateloup) - Cossmann & Peyrot :

n°295, pl. 14 figs 35-37.



Super-Ordre CAENOGASTROPODA Cox, 1960

Ordre ARCHITAENIOGLOSSA ? Haller, 1892

Superfamille AMPULLINOIDEA Cossmann, 1918

Famille AMPULLINIDAE Cossmann, 1918

KASE (1990) a apporté des arguments anatomiques,admis par PONDER & LINDBERG (1997), pour un clas-sement des Ampullinidae près des Architaenioglossa.

Globularia Swainson, 1840

Ampullaria sigaretina Lamarck, 1804 (DS Herrmannsen, 1847) -Origine : Eocène du Bassin de Paris.

Globularia compressa (Basterot, 1825)Pl. 18 fig. 10

1825 Ampullaria compressa Basterot : 34, pl. 4 fig. 17.1828b Natica globosa Roemer - Grateloup : 149, n°133.1847 Natica globosa Roemer - Grateloup : pl. 8 figs 9, 12, 14 ; pl. 10

figs 1.1852 Natica compressa (Basterot) - D'Orbigny : n°86, 6.1919 Ampullina (Cernina) compressa Basterot - Cossmann & Peyrot

: n°262, pl. 12 figs 27-28.?1919 Crommium aturense Cossmann & Peyrot : n°263, pl. 12 figs

34-35.1925 Cernina rothi Cossmann : 37.1973 Globularia rothi (Cossmann) - Baldi : 277, pl. 32 fogs 6-7.1986a Globularia (Cernina) compressa (Basterot) - Lozouet : 362,

pl. 28 figs 1-2.


Nous avons compris dans la synonymie Crommiumaturense Cossmann & Peyrot, 1919 qui est très proba-blement un exemplaire juvénile de Cernina compressa.

L'espèce est commune à l'Oligocène supérieur danstoute l'Europe mésogéenne, en Aquitaine elle se ren-contre essentiellement dans les niveaux chattiens etaquitaniens ; elle n'a pas été signalée au Miocènemoyen. C'est le dernier représentant en Europe dugroupe des Globularia (Globulariinae) qui était très flo-rissant à l'Eocène. Actuellement il ne subsiste que l'es-pèce de l'Indo-Ouest-Pacifique, Globularia fluctuata(Sowerby, 1825), dont l'aire de distribution est réduite àquelques îles des Philippines. Globularia fluctuata estl'espèce-type du genre Cernina Gray, 1847 qui se ca-ractérise par le fort développement du callus columel-laire qui masque complètement la zone ombilicale.Cette simple particularité ne justifie pas selon nousl'adoption de ce genre qui est donc un synonyme deGlobularia.

Pachycrommium Woodring, 1928Amaura saginata Böhm, 1895 (DO) - Origine : Miocène de l'Est des

USA.

Pachycrommium eburnoides (Grateloup, 1847)Pl. 18 fig. 9

1847 Natica eburnoides Grateloup : pl. 8 figs 17-18.1847 Natica eburnoides var. B minor Grateloup : pl. 10 fig. 15.1847 Natica eburnoides var. C media Grateloup : pl. 10 fig. 16.1852 Natica eburnoides Grateloup - d'Orbigny : n°557, 37.1919 Ampullospira eburnoides (Grateloup) - Cossmann & Peyrot :

n°264, pl. 12 figs 55-56.1942(c) Natica eburnoides Grateloup - Magne : 43.


L'espèce est connue en Aquitaine de l'Oligocène supé-rieur au Burdigalien supérieur. Cependant, la protoconquedes exemplaires de l'Oligocène supérieur (Peyrehorade"Peyrère") se caractérise par un nucléus nettement plusgros que ceux de l'Aquitanien (d'après des spécimens deMeilhan "Vives"), ce qui pourrait suggérer l'existence dedeux espèces très proches.

Superfamille CAMPANILOIDEA Douvillé, 1904

La position des Campaniloidea reste relativementincertaine. Cependant, les résultats d'HARASEWYCH etal. (1998), à partir de séquences d'ADNr 18s, suggèrentqu'il s'agit d'un clade relié aux Architaenioglossa ; unpositionnement entre les Cerithioidea et les Hypsogas-tropoda (PONDER & LINDBERG 1997) semble moins ro-buste.

Famille PLESIOTROCHIDAE Houbrick, 1990

Plesiotrochus Fischer, 1878

Plesiotrochus sowerbianus Fischer, 1878 (M) - Origine : Récent,Indo-Ouest-Pacifique.

Plesiotrochus fallax (Grateloup, 1832)Pl. 10 figs 1a-1c, 2, 3a-3b

1832b Cerithium fallax Grateloup : n°263, 265.1847 Cerithium fallax Grateloup - Grateloup : pl. 17 fig. 9.1852 Cerithium fallax Grateloup - D'Orbigny : n°1478, 80.1906 Benoistia (Conocerithium) tauroconicum (Sacco) - Cossmann :

100, pl. 12 figs 50-51.1911 Cerithium (Hemicerithium) fallax Grateloup - Vignal : 151, pl.

7 fig. 11.1911 Cerithium (Hemicerithium) fallax var. crassicostata Vignal :

152, pl. 7 fig. 12.1922 Hemicerithium fallax (Grateloup) - Cossmann & Peyrot :

n°579, pl. 5 figs 78-83, 89.



HEALY (1993) a précisé la position systématiquedes Plesiotrochidae et montré leur relation avec lesCampanilidae.

Famille CAMPANILIDAE Douvillé, 1904

Campanile Fischer, 1884

Cerithium giganteum Lamarck, 1804 (DS Sacco, 1895) - Origine :Eocène du bassin de Paris.

Campanile pseudoobeliscus (Grateloup, 1832)Pl. 10 figs 4a-4b, 5, 6, 7a-7b

1832b Cerithium pseudo-obeliscus Grateloup : n° 304, 282.1847 Cerithium pseudo-obeliscum Grateloup - Grateloup : pl. 17 fig.

12.1852 Cerithium pseudo-obeliscum Grateloup - D'Orbigny : n°1480,

80.1867 Cerithium catticum Speyer (1862-1870) : 209, pl. 23 fig. 5.1911 Potamides (Telescopium) charpentieri (Basterot) - Vignal :

182.1922 Telescopium pseudo-obeliscus var. spinato-conicum Cossmann

& Peyrot : n°596, pl. 6 fig. 16.1922 Telescopium pseudo-obeliscus (Grateloup) - Cossmann &

Peyrot : n°595, pl. 7 fig. 35.1978b Telescopium catticum (Speyer) - R. Janssen : 163.


COSSMANN & PEYROT (1922) ont relevé les diffé-rences entre ce Campanile et le Campanile charpentieri(Basterot, 1825) : angle apical plus ouvert, granulationsplus fines. C. pseudoobeliscus est connu depuis l'Oligo-cène supérieur tandis que C. charpentieri semble limitéà l'Oligocène inférieur et moyen. Campanile pseudo-obeliscus est le dernier Campanile connu du Tertiaired'Europe, il ne semble pas dépasser le Miocène infé-rieur. Actuellement le genre est représenté par une seuleespèce localisée aux côtes du sud-ouest de l'Australie.HOUBRICK (1981) considère que la disparition desCampanile est liée au développement des Strombus quiauraient occupé leur niche écologique.

Ordre SORBEOCONCHA Ponder & Lindberg, 1997

Superfamille CERITHIOIDEA Fleming, 1822

Famille MELANOPSIDAE H. & A. Adams, 1854

Melanopsis Férussac, 1807

Murex praerosa Linné, 1758 (DO) - Origine : Récent, Paléarctique.

Melanopsis dufourii Férussac, 1822Fig. 8i

1822 Melanopsis dufourii Férussac : Pl. 3 (fossile) fig. 16.1823b Melanopsis dufourii fossilis Férussac : 25.1828b Melanopsis dufourii Férussac - Grateloup : n°108, 135.

1838b Melanopsis aquensis Grateloup : 139, pl. 4 figs 48-49.1838b Melanopsis gibbosula Grateloup : 141, pl. 4 fig. 50.1838b Melanopsis dufourii Férussac - Grateloup : 142, pl. 4 fig. 51.1847 Melanopsis aquensis Grateloup - Grateloup : pl. 3 figs 60.1852 Melanopsis dufourii Férussac - D'Orbigny, n°355, 28.1919 Melanopsis aquensis Grateloup - Cossmann & Peyrot : n°399,

pl. 17 figs 75-76.1929 Melanopsis major Férussac - Wenz : 2773.


FÉRUSSAC (1822) a clairement indiqué commeprovenance "fossiles de Dax". Il n'y a donc pas lieu dereprendre le nom aquensis Grateloup.

Famille MODULIDAE P. Fischer, 1884

Modulus Gray, 1842

Trochus modulus Linné, 1758 (DS Gray, 1847) - Origine : Récent,Caraïbe.

Modulus basteroti Benoist, 1874Pl. 6 figs 1a-1d

1825 Trochus modulus Linné - Basterot : 32.1874a Modulus basteroti Benoist : 285.1895b Modulus basteroti Benoist - Cossmann : 7, pl. 3 figs 15-16.1906 Modulus basteroti Benoist - Cossmann : 202, pl. 13 figs 16-17.1922 Modulus basteroti Benoist - Cossmann & Peyrot : n°646, pl. 5

figs 6-10.


Les Modulidae vivent actuellement dans la zonemédiolittorale ou à la partie supérieure de la zone in-fralittorale. Les coquilles de Modulus basteroti récol-tées à Lariey sont parfois très "fraîches", suggérant laproximité de ces milieux lors du dépôt.

Famille CERITHIIDAE Fleming, 1822

Bittium Leach in Gray, 1847

Strombiformis reticulatum Da Costa, 1778 (DS Gray, 1847) - Ori-gine : Récent, Tempérée Européenne.

Bittium larrieyense Vignal, 1911Pl. 6 figs 6a-6c

1911 Bittium vignali var. larrieyensis Vignal : 160, pl. 8 fig. 19.1911 Bittium vignali Dollfus - Vignal : 158, pl. 8 fig. 18.1911 Bittium subclathratum (d'Orbigny) - Vignal : 160, pl. 8 fig. 20.1911 Bittium reticulatum (Da Costa) - Vignal : 157.1922 Bittium vignali Dollfus - Cossmann & Peyrot : n°615, pl. 7 figs

31-32, 47-50.1922 Bittium asperulum Cossmann & Peyrot : n°618, pl. 7 figs 66-

69.?1922 Bittium canejanense Cossmann & Peyrot : n°619, pl. 7 figs

64-65.



Ce Bittium est connu sous le nom de B. vignali Doll-fus, 1909. En fait, DOLLFUS (1909) a introduit le nom "vi-gnali" en remplacement de Cerithium subgranosum Gra-teloup, nom préoccupé par Lamarck. Pour GRATELOUP

(1832b, 1847), Cerithium subgranosum désignait une pe-tite espèce de cérithe commune dans les faluns miocènes deSt-Paul-lès-Dax. Or, dans les faluns burdigaliens de "Ca-banes" (St-Paul-lès-Dax) la seule espèce de Bittium quel'on rencontre correspond à Bittium evolutum Cossmann &Peyrot, 1922. Dans les faluns aquitaniens de "Maïnot" (St-Paul-lès-Dax) on rencontre deux Bittium mais Bittiumevolutum est l'espèce la plus commune. Il en résulte doncque le nom vignali s'applique à l'espèce désignée parCOSSMANN & PEYROT (1922) sous le nom d'evolutum. Lenom le plus ancien disponible pour le Bittium très commundans la plupart des sites de l'Aquitanien et, en particulier àLariey, semble donc celui de larrieyense.

Les différentes espèces ou variétés de Bittiumadmises par COSSMANN & PEYROT (1922) sont mal dé-finies et fondées sur peu d'exemplaires. Bittium aspe-rulum a été décrit d'après des exemplaires juvéniles etle type de Bittium canejanense est une coquille malconservée. Il est donc préférable, en l'absence d'étuderécente sur le genre Bittium dans le Néogène aquitain,de réunir ces différents noms.

Cerithium Bruguière, 1789

Cerithium adansoni Bruguière, 1792 (DS Melville, 1987) - Ori-gine : Récent, Indo-Ouest-Pacifique.

Cerithium calculosum Basterot, 1825Pl. 6 figs 2a-2c

1825 Cerithium calculosum (Defrance in sched.) Basterot : 58, pl.3 fig. 5.

1832b Cerithium calculosum Basterot - Grateloup : n°270, 268.1847 Cerithium calculosum var. granatina Grateloup : pl. 18 fig.

27.1847 Cerithium calculosum var. varicosa Grateloup : pl. 18 fig.

18.1852 Cerithium calculosum Basterot - D'Orbigny : n°1481, 80.1906 Cerithium (Chondrocerithium) calculosum Basterot - Coss-

mann : 14, pl. 13 figs 8-9.1911 Cerithium (Thericium) calculosum Vignal : 144, pl. 7 fig. 4.1911 Cerithium (Thericium) calculosum var. granatina Grateloup

- Vignal : 146, pl. 7 fig. 5.1922 Cerithium (Chondrocerithium) calculosum Basterot - Coss-

mann & Peyrot : n°562, pl. 5 figs 38-39.1922 Cerithium (Chondrocerithium) calculosum var. aequigrani-

ferum Cossmann & Peyrot : n°563, pl. 5 fig. 57.1922 Cerithium (Chondrocerithium) calculosum var. basterotinum Gra-

teloup - Cossmann & Peyrot : n°564, pl. 5 fig. 58.


Cerithium calculosum est souvent signalé de l'Oli-gocène inférieur d'Aquitaine ; il s'agit en réalité d'uneautre espèce, que nous avons exclue de la synonymie.

Dans sa révision des Cerithium de la province In-do-Ouest-Pacifique, HOUBRICK (1992) a inclu dans legenre Cerithium dix-sept autres taxons parmi lesquels :Chondrocerithium Monterosato, 1906 (dont le type estprécisément Cerithium calculosum) ; Thericium Monte-rosato, 1890 ; Pithocerithium Sacco, 1895 ; Plioceri-thium Monterosato, 1910. Nous ne suivrons qu'en partiecet auteur, car nous trouvons aussi en synonymie dansce travail : Tenuicerithium Cossmann, 1896 et Conoce-rithium Sacco, 1895. Ces derniers genres sont très pro-ches, sinon synonymes, de Plesiotrochus (=Hemi-cerithium) de la famille des Plesiotrochidae. Tiarace-rithium Sacco, 1895, reconnu comme peu distinct deGranulolabium (LOZOUET 1986b) est un Batillariidae ;dans la monographie d'Houbrick le genre est considérécomme un synonyme de Cerithium!

Cerithium ferelaeve Vignal, 1911Pl. 6 figs 5a-5c

1911 Cerithium salmo ferelaevis Vignal : 148, pl. 7 fig. 7.1922 Cerithium (Vulgocerithium) raulini mut. ferelaevigatum Vi-

gnal - Cossmann & Peyrot : n°555, pl. 5 figs 24-25.


Cerithium peyroti (Dollfus, 1909)Pl. 6 figs 3a-3c, 4

1878 Cerithium gallicum Mayer : 174, pl. 4 fig. 2 (non d'Orbigny).?1878 Cerithium galliculum Mayer : 175, pl. 4 fig. 3.1909 Thericium peyroti Dollfus : 55.1910 Cerithium (Thericium) galliculum Mayer - Vignal : 143, pl. 7

fig. 3.1922 Cerithium (Vulgocerithium) peyroti Dollfus - Cossmann &

Peyrot : n°551, pl. 5 figs 15-16, 23, 71.


Il subsiste une imprécision sur la nomination decette espèce car C. gallicum et C. galliculum sont indi-qués par MAYER (1878) comme commun à "Larriey-Saucats". Or, nous n'avons pas rencontré à Lariey l'es-pèce galliculum telle que l'ont comprise COSSMANN &PEYROT (1922) et qui correspond bien aux figures deMAYER (1878).

Gourmya Fischer, 1884

Cerithium gourmyi Crosse, 1861 (DO) - Origine : Récent, Mer duCorail.

Gourmya tuberosa (Grateloup, 1847)

1832b Cerithium geminatum Grateloup : n°260, 264 (non Sowerby).?1832b Cerithium alucoides Olivi - Grateloup : n°261, 264.?1847 Cerithium alucoides Brocchi - Grateloup : pl. 17 fig. 22.1847 Cerithium geminatum var. tuberosum Grateloup : pl. 18 fig. 13.1847 Cerithium (Gourmya) geminatum var. fistulosum Grateloup :

pl. 18 fig. 28.1847 Cerithium tuberosum Grateloup - Grateloup : pl. 48 fig. 10.1847 Cerithium klipsteini Michelotti : 198, pl. 7 fig. 16.?1852 Cerithium subalucoides d'Orbigny : n°1487, 81.


1921 Cerithium (Gourmya) fistulosum Grateloup - Cossmann &Peyrot : n°546, pl. 5 figs 4-5.

1921 Cerithium (Gourmya) tuberosum Grateloup - Cossmann &Peyrot : n°547, pl. 5 figs 12-13.

1972 Cerithium (Gourmya) tuberosum Grateloup - Magne & Ver-gneau-Saubade, 3.

Matériel examiné : 1 spm. coll. Rocher.

Le genre Gourmya, fréquent dans l'Oligocène infé-rieur de Gaas, est actuellement représenté par une seuleespèce localisée à la Mer de Corail (HOUBRICK 1984).Sa présence dans le Cénozoïque européen est attestéejusqu'au Burdigalien.

Le seul individu examiné de Lariey est trop malpréservé pour être utilement figuré et ne permet évi-demment pas de se forger une opinion sur la validitédes différentes espèces décrites dans le Miocène infé-rieur aquitain. Selon MAGNE & VERGNEAU-SAUBADE

(1972), il existe une seule espèce de Gourmya au Mio-cène inférieur. Le matériel nouveau récolté dansl'Aquitanien de Meilhan, où Gourmya est plus abon-dant, confirme d'ailleurs cette opinion. On rencontre eneffet des formes à nodules saillants et d'autres qui ensont pratiquement dépourvues.

Nous avons inclu dans la synonymie Cerithiumklipsteini Michelotti du Miocène d'Italie (Colline deTurin) qui est fondé sur un jeune individu incomplet.

Famille LITIOPIDAE Gray, 1847

Dalliella Cossmann, 1895

Dalliella brusinai Cossmann, 1895 (DO) - Origine : Miocène infé-rieur d'Aquitaine.

Dalliella brusinai Cossmann, 1895

?1832a Planaxis punctata Grateloup : 156, n°228.?1847 Planaxis punctata Grateloup - Grateloup : pl. 14 figs 33-34.?1847 Planaxis auriculatus Grateloup : Pl. 14 figs 33-34.1895b Dalliella brusinai Cossmann : 6, pl. 3 figs 1-3.1906 Dalliella brusinai Cossmann - Cossmann : 200, pl. 13 figs 12-

13.1922 Dalliella brusinai Cossmann - Cossmann & Peyrot : n°644, pl.

5 figs 17-18, pl. 6 fig. 27.1922 Dalliella brusinai race peyroti Cossmann in Cossmann &

Peyrot : n°645, pl. 5 figs 19-20.1994 Dalliella brusinai Cossmann - Lozouet & Maestrati : 169, fig.

1D.


LOZOUET & MAESTRATI (1994) ont transféré cegenre des Planaxidae au Litiopidae. Plusieurs espècesdécrites par Grateloup pourraient s'appliquer à cette es-pèce, nous les indiquons dans la synonymie.

Styliferina Adams, 1860

Styliferina goniochila Adams, 1860 (DS Warén, 1983) - Origine :Récent, Japon.

Styliferina disjuncta n. sp.Pl. 11 figs 2a-2d - Figs 10a-b

Locus typicus : Saucats (Lariey).Stratum typicum : Miocène inférieur (Aquitanien), falunà Ervilia.Derivatio nominis : "éloignée".Holotypus (MNHN) ; paratypes, Lariey : 10 spm. coll.Favia & Lozouet.

Autre matériel examiné : Lariey, 1 spm. coll. Lesport ;14 spm. coll. Favia & Lozouet, 1 spm. coll. Renard ;Aquitanien des Landes, Meilhan (Vives, 3 spm.) collMNHN.

Dimensions (Holotype) : H= 2,38 mm ; Dmax= 1 mm.

Description : La coquille est de petite taille, conique,élancée, d'aspect luisant. Elle se compose de 5 tours 1/2de téléoconque, convexes, séparés par une suture mar-quée. La protoconque est multispirée. La téléoconquedébute par une faible carène située au tiers abapical etvisible sur environ un demi-tour. La sculpture est réduiteaux fines stries d'accroissement. Le dernier tour occupeenviron la moitié de la hauteur totale. Sa base ne montrepas d'ombilic mais une simple dépression. L'ouverture estovoïde à labre mince de direction opisthocline. Le bordpariétal est très fin tandis que le bord columellaire estépaissi. La protoconque (H=0,28 mm ; Dmax= 0,23 mm)se compose de 2 tours 3/4. Son nucléus est obtus. Elle setermine par une forte collerette prosocyrte qui s'étend dela suture adapicale jusqu'aux deux tiers du tour. A la col-lerette fait suite une strie qui semble décrire une courbeopistocyrte très ouverte et se fond dans une carène obso-lète. La surface de la protoconque présente de nombreu-ses stries d'accroissements prosocyrtes.

Discussion : C'est le premier représentant fossile du genreStyliferina ; une autre espèce, plus trapue, est toutefoisprésente dans l'Oligocène inférieur des Landes. KOSUGE

(1964) a transféré Styliferina goniochila dans le genreDiala Adams, 1861 et considère donc que ces deux gen-res sont synonymes. En fait, l'animal de Styliferina estsemblable à celui de Litiopa dont il présente les tentacu-les épipodiaux caractéristiques (voir HOUBRICK 1987).En revanche, l'animal de Diala ne porte sur le pied aucuntentacule (PONDER & KEYSER 1992). S. disjuncta s'appa-rente à certaines espèces classées dans Obtortio Hedley,1899 et Finella mais elle s'en sépare par son absence desculpture. Ainsi, Finella pyrrhacme (Melvill & Staden,1896), de l'Océan Indien, présente une sculpture forte-ment treillissée mais la forme générale de la coquille estcependant identique à S. disjuncta d'après la figured'HEDLEY (1899, 413 fig. 6). LADD (1972) a décrit diffé-rents Obtortio du Miocène inférieur du Pacifique qui sontfortement sculptés de même que les Finella figurées parPONDER (1994, pl. 1).


Famille SCALIOLIDAE Jousseaume, 1912

Sandbergeria Bosquet, 1861

Sandbergeria cancellata Nyst, 1836 (M) - Origine : Oligocène infé-rieur de Belgique.

Sandbergeria turrita (Grateloup, 1828)

1828a Bulimus turritus Grateloup : n°59, 99.1828b Rissoa perpusilla Grateloup : n°103, 133.1838c Rissoa perpusilla Grateloup - Grateloup : 202, pl. 5 figs 40-41.1843 Melania secalina Philippi : 19, pl. 3 fig. 15.1847 Rissoa perpusilla Grateloup - Grateloup : pl. 4 figs 40-41.1852 Rissoa perpusilla Grateloup - d'Orbigny : n°375, 29.1895a Pseudomelania perpusilla Grateloup - Degrange-Touzin : 63.1909 Bayania purpusilla (Grateloup) - Cossmann : 99.1922 Sandbergeria perpusilla (Grateloup) - Cossmann & Peyrot :n°643, pl.6 figs 21-24, pl. 7 figs 81-82.1938 Sandbergeria turrita (Grateloup) - Magne : 611960a Sandbergeria secalina (Philippi) - Anderson : 53, pl. 11 figs

3, 3c.1976 Fesandella perpusilla (Grateloup) - Gründel : 83 (pars).1978b Sandbergeria secalina (Philippi) - R. Janssen : 164, pl. 31 fig.

38.1993 Bayania purpusilla (Degrange-Touzin) - Tracey et al. : 143.


La synonymie de cette espèce est donnée parMAGNE (1938). S. turrita abonde dans de nombreuxsites aquitains de l'Oligocène supérieur et du Miocèneinférieur. A Lariey, seuls de très jeunes individus ontété récoltés.

A noter que GRÜNDEL (1976) a désigné comme es-pèce-type d'un nouveau genre (Fesandella) l'espèce tur-rita (=perpusilla). Sandbergeria turrita est très proche del'espèce-type de Sandbergeria [S. cancellata (Nyst,1836)]. Il apparaît donc que Fesandella est synonyme deSandbergeria. Par ailleurs on doit souligner les ressem-blances entre Sandbergeria et Finella [Finella Adams,1860 espèce-type : Finella pupoides Adams, 1860 (DSAdams, 1860) - Origine : Récent, Détroit de Corée] cequi pourrait conduire à réunir les deux genres.

Scaliola A. Adams, 1860Scaliola bella A. Adams, 1860 (DO) - Origine : Récent, Indo-Ouest-

Pacifique.

Scaliola degrangei Cossmann & Peyrot, 1919Pl. 6 figs 7a-7b - Fig. 10c

1919 Scaliola degrangei (de Boury mss.) Cossmann & Peyrot :n°346, pl. 16 figs 3-6.

1986a Scaliola degrangei Boury - Lozouet : 296, figs 63c-d.1993 Scaliola degrangei Boury - Bandel & El-Nakhal : 178.1998 Scaliola degrangei Boury - Lozouet : 92, fig. 14a-b.


Scaliola se caractérise par une coquille incrustée degrains de sable. On ne sait d'ailleurs pas exactement

comment l'animal attache les grains de sable dont l'ad-hésion est particulièrement forte (PONDER 1994) et ré-siste en partie à la fossilisation chez S. degrangei.

Famille DIALIDAE Kay, 1979

Gibborissoa Cossmann in Sacco, 1895

Bulimus costellatus Grateloup, 1828 (DO) - Origine : Miocène infé-rieur d'Aquitaine.

Gibborissoa varicosa (Basterot, 1825)Pl. 6 figs 8a-8c, 9

1825 Rissoa varicosa Basterot : 37, pl. 1 fig. 2.1825 Phasianella prevostina Basterot : 38, pl. 1 fig. 18.1828a Bulimus costellatus Grateloup : 99.1838c Rissoa costellata (Grateloup) - Grateloup : pl. 5 figs 29-31.1847 Rissoa costellata (Grateloup) - Grateloup : pl. 4 figs 29-31.1852 Rissoa varicosa Basterot - D'Orbigny : n°374, 29.1919 Alaba costellata (Grateloup) - Cossmann & Peyrot : n°327, pl.

17 figs 26-27.1919 Alaba costellata var. varicosa (Basterot) - Cossmann & Peyrot

: n°328, pl. 17 figs 1-2.1919 Alaba costellata var. ventripotens Cossmann & Peyrot : n°329,

Pl. 16 figs 117-118.1919 Alaba costellata var. costata Cossmann & Peyrot : n°330, pl.

16 figs 94-95.1921 Gibborissoa costellata (Grateloup) - Cossmann (Livraison 12)

: 53, pl 2 figs 87-90.


Cette espèce, des plus communes dans le Miocèneinférieur aquitain, présente un large spectre de variabi-lité ainsi que l'ont souligné COSSMANN & PEYROT

(1919). Il est donc étonnant que ces auteurs n'aient pasfait le lien avec Phasianella prevostina et soient allésjusqu'à classer cette sous-espèce dans une autre famille.Auraient-ils suivi, à la lettre, le conseil de BASTEROT

(1825, 38)? : "Il ne faut pas confondre cette coquille(prevostina) avec la R. varicosa".

Le classement dans le genre Alaba H. & A. Adams,1853 (espèce-type : Rissoa melaneura C.B. Adams, 1850; désignation subséquente Nevill, 1885) ne convient pas.En effet si la téléoconque de Rissoa varicosa rappellecelle des Alaba, les protoconques sont totalement dis-tinctes. D'après HOUBRICK (1987) les Alaba, comme laplupart des Litiopidae, possèdent une protoconque plan-ctotrophe richement sculptée. C'est par exemple la pré-sence de ce type de protoconque chez Dalliella qui nousa confirmé le classement de ce genre dans les Litiopidae(LOZOUET & MAESTRATI 1994). Or, chez les différentesespèces de Gibborissoa que nous avons examinées del'Oligocène au Miocène, aucune ne montre une proto-conque litiopiforme. Celle-ci est invariablement lisse etcomporte environ deux tours. C'est un type de proto-conque banale chez les Cerithioidea que l'on rencontrenotamment dans le genre Diala A. Adams, 1861 (voirPONDER & KEYSER 1992). Comme par ailleurs la co-


quille de Gibborissoa est comparable à celles des Dialala réunion de ces deux genres dans la même famille noussemble, pour l'instant, préférable.

Touzinia Cossmann, 1915 a comme espèce-typePhasianella prevostina Basterot qui est une sous-espèce,voire une simple forme, de Gibborissoa varicosa. C'estdonc un synonyme postérieur de Gibborissoa. REID

(1989b) considérait d'ailleurs douteuse la position deTouzinia au sein des Littorinidae.

Famille POTAMIDIDAE H. & A. Adams, 1854

Terebralia Swainson, 1840

Strombus palustris Linné, 1758 (DS Sacco, 1895) - Origine : Récent,Indo-Ouest-Pacifique.

Terebralia bidentata (Defrance in Grateloup, 1832)Pl. 9 fig. 11

1792 Cerithium sulcatum Bruguière : 486 (pars).1832b Cerithium bidentatum Defrance in Grateloup : n°277, 271.1847 Cerithium bidentatum Defrance in Grateloup - Grateloup : pl.

17 fig. 15, pl. 48 fig. 1.1852 Cerithium bidentatum Defrance in Grateloup - D'Orbigny :

n°1481, 81.1853 Cerithium gibberosum Grateloup - Deshayes : 62, pl. 104 figs

1-2.1874b Cerithium bidentatum Grateloup - Tournouër : 120.1922 Terebralia bidentata (Defrance) - Cossmann & Peyrot : n°600,

pl.6 figs 4-5.

Matériel examiné : 20 spm. coll. Lesport ; 2 spm. coll.Renard.

BRUGUIÈRE (1792) considère que l'espèce actuelle(C. sulcatum) est aussi représentée "aux environs deMontpellier, à une petite distance du Château de Cau-nelle. Les coquilles sont contenues avec d'autres espè-ces dans une couche marneuse grisâtre...". Les autrescoquilles dont parle Bruguière sont Cerithium plicatumet Cerithium cinctum.

Terebralia subcorrugata (d'Orbigny, 1852)Pl. 8 figs 6a-6b, 7a-7b - Pl. 9 fig. 10

1825 Cerithium corrugatum Brongniart - Basterot : 54.1847 Cerithium corrugatum Brongniart - Grateloup : pl. 18 fig. 20.1847 Cerithium corrugatum Brongniart var. B - Grateloup : pl. 18

fig. 20.1847 Cerithium interruptum Lamarck - Grateloup : pl. 17 fig. 23.1852 Cerithium subcorrugatum d'Orbigny : n°1468, 80.1874b Cerithium subcorrugatum d'Orbigny - Tournouër : 126.1906 Terebralia subcorrugata (d'Orbigny) - Cossmann : 125, pl. 10

figs 21-22.1911 Potamides (Terebralia) subcorrugatus (d'Orbigny) - Vignal :

180, pl. 9 fig. 37-38.1922 Terebralia subcorrugata (d'Orbigny) - Cossmann & Peyrot :

n°597, n°598, n°599, pl. 5 figs 93, 98, pl. 6 figs 2-3, 8-9.


Tympanotonos Schumacher, 1817

Murex fuscatus Linné, 1758 (DO) - Origine : Récent, Ouest Afrique.

Tympanotonos cinctus (Bruguière, 1792)Pl. 9 fig. 6

1792 Cerithium cinctum Bruguière : 493.1822 Cerithium cinctum Bruguière - Lamarck : 80.1825 Cerithium papaveraceum Basterot : 56.1832b Cerithium papaveraceum Basterot - Grateloup : 280.1847 Cerithium papaveraceum Basterot - Grateloup : pl. 17 fig. 28.1852 Cerithium papaveraceum Basterot - D'Orbigny : n°1482, 80.1912-1918 Cerithium cinctum Lamarck - Favre : pl. 9 figs 160-163.1922 Potamides (Ptychopotamides) papaveraceus (Basterot) -

Cossmann & Peyrot : n°586, pl. 6 fig. 1.


La description de BRUGUIÈRE (1792) est précise etla coquille décrite est bien l'espèce papaveraceus deBasterot. BRUGUIÈRE a récolté cette coquille en compa-gnie de Granulolabium plicatum et Terebralia sp. auxenvirons de Montpellier près du Château de Caunelle.

Tympanotonos margaritaceus (Brocchi, 1814)Pl. 9 figs 1a-1b, 2, 3a-3b, 4, 5a-5b

1814 Murex margaritaceus Brocchi : 447, pl. 9 fig. 24.1822 Cerithium cinctum Bruguière - Lamarck : 80 (pars)1832b Cerithium margaritaceus Brongniart - Grateloup : n°296,279.1847 Cerithium margaritaceum var. A moniliformis Grateloup : pl.

17 fig. 2.1847 Cerithium margaritaceum var. B granulifera Grateloup : pl. 17

fig. 4.1847 Cerithium margaritaceus var. C calcarata Grateloup : pl. 17

fig. 11.1847 Cerithium marginatum De Serres var. D. incrassata Grateloup

: pl. 48 fig. 7.1847 Cerithium margaritaceum moniliformis Grateloup : pl. 17 fig.

2.1847 Cerithium baccatum Defrance - Grateloup : pl. 48 fig. 11.1852 Cerithium gratteloupi d'Orbigny : n°1489, 81.1853 Cerithium margaritaceum Brongniart - Deshayes : 63, pl. 105

figs 5-6.1878 Cerithium girondicus Mayer : 176, pl. 4 fig. 4.1911 Potamides (Tympanotonus) margaritaceus typocalcaratus Vi-

gnal : 171, pl. 8 fig. 28.1911 Potamides (Tympanotonus) margaritaceus simplicior Vignal :

169, pl. 8 fig. 25.1912-1918 Cerithium cinctum Lamarck - Favre : pl. 9 figs 157-159.1922 Potamides girondicus (Mayer) - Cossmann & Peyrot : n°581,

pl. 6 figs 28-31.1922 Tympanotonus sonensis Vignal - Cossmann & Peyrot : n°588,

pl. 6 figs. 68-72.1922 Tympanotonus margaritaceus (Brocchi) - Cossmann & Peyrot :

n°589.1922 Tympanotonus margaritaceus typicocalcaratus (Vignal) -

Cossmann & Peyrot : n°589bis, pl. 6 fig. 67.

1922 Tympanotonus margaritaceus grateloupi (d'Orbigny) -Cossmann & Peyrot : 590, pl. 7 figs 1-2.

1922 Tympanotonus margaritaceus moniliformis (Grateloup) -Cossmann & Peyrot : n°591, pl. 7 fig. 6.

1922 Tympanotonus margaritaceus calcaratus (Grateloup) - Coss-mann & Peyrot : n°592, pl. 6 fig. 64.

1922 Tympanotonus margaritaceus bearnensis Cossmann & Peyrot :n°593, pl. 6 fig. 60.

1983 Mesohalina margaritacea (Brocchi) - Wittibschlager : 15, 7 pl.



En accord avec LOZOUET (1986b) nous considéronsque le genre Mesohalina Wittibschlager, 1983 (espèce-type T. margaritaceus) est strictement synonyme de Tym-panotonos.

Tympanotonos tournoueri (Mayer, 1878)Pl. 9 figs 7-9

1878 Cerithium tournoueri Mayer : 180, pl. 4 fig. 8.1911 Potamides tournoueri (Mayer) - Vignal : 163, pl. 8 fig. 2.1922 Potamides derelictus Cossmann & Peyrot : n°582, pl. 6 figs

12-15.1922 Potamides persuturatus Cossmann & Peyrot : n°583, pl. 6 figs

25-26.1922 Potamides tournoueri (Mayer)- Cossmann & Peyrot : n°584,

pl. 6 figs 32-36, 65-66.1922 Escoffieria? degrangei Cossmann & Peyrot : n°587, pl. 6 fig.

63, pl. 7 figs 79-80.1986b Potamides tournoueri (Mayer) - Lozouet : 179.


Nous avons suivi l'interprétation de LOZOUET

(1986b) qui considère que C. tournoueri est issu deTympanotonos margaritaceus. L'extrême variabilité desPotamididae, largement sous-estimée dans la plupartdes travaux, nous conduit à ne reconnaître qu'un nom-bre limité d'espèces. Les espèces (P. derelictus, P. per-suturatus, P. girondicus) admises par COSSMANN &

PEYROT (1922) sont des morphes appartenant soit àl'espèce tournoueri soit à l'espèce margaritaceus. Nousavons considéré d'une part que P. derelictus et P. per-suturatus étaient des morphes de T. tournoueri et d'au-tre part que Potamides girondicus était une morphe ex-trême de Tympanotonos margaritaceus. Cependant, onne peut en fait exclure qu'à l'Aquitanien, dans le bassinAquitain, il n'existe qu'une seule espèce de Tympanoto-nos qui présenterait un spectre de variabilité particuliè-rement étendu. L'exemple des Potamididae actuels estintéressant, le genre Potamides ne compte d'aprèsLOZOUET (1986b) qu'une seule espèce répartie de laMéditerranée aux Indes ; le genre Terebralia n'encompte que deux, largement distribuées dans la pro-vince Indo-Ouest-Pacifique et le genre Telescopiumn'est connu que par une seule espèce de l'Indo-Ouest-Pacifique (HOUBRICK 1991) ; le genre Granulolabiumn'est représenté que par une espèce australienne ; legenre Zeacumantus comprend deux espèces néo-zélandaises ; Tympanotonos se limite à une espèce desmangroves de l'Afrique de l'Ouest. Dans ce contexte, lapléthore de taxons admis par différents auteurs chez lesPotamididae du Miocène aquitain semble bien n'être enpartie que l'expression d'une variabilité mal comprise.Nous soulignons aussi, qu'Escoffieria degrangei (Pl. 9fig. 9) est un individu monstrueux de T. tournoueri, demême qu'Escoffieria fischeri Fontannes, 1880 (espèce-type du genre Escoffieria Fontannes, 1880) du Pliocène

du Roussillon, est un individu monstrueux de Potami-des (P. granosus Borson, 1821 ou P. graecus Des-hayes, 1832). Cette opinion est partagée par COSSMANN

(1906) qui écrit au sujet d'Escoffieria : "Potamides àtours disjoints". En conséquence, le genre Escoffieriadevient un synonyme de Potamides. Enfin, contraire-ment à l'opinion de CATZIGRAS (1971) il n'est pas cer-tain que P. girondicus (Mayer, 1878) soit un Potamidesproche sinon identique à P. lamarcki (Brongniart,1810) de l'Oligocène du bassin de Paris. Il est plus vrai-semblable qu'il s'agisse d'une forme de T. margarita-ceus.

Famille BATILLARIIDAE Thiele, 1929

Suivant HOUBRICK (1991) les Batillariinae doivent êtreexclus des Potamididae et élevés au rang familial.

Batillaria Benson, 1842

Cerithium zonale Bruguière, 1792 (M) - Origine : Récent, Japon.

Batillaria? pupaeformis (Basterot, 1825)Pl. 8 fig. 5

1825 Cerithium pupaeforme Basterot : 58, pl.3 fig. 18.1911 Cerithium (Semivertagus) partitum Vignal : 155, pl. 7 fig. 16.1911 Cerithium (Semivertagus) partitum var. derivata Vignal : 156,

pl. 7 fig. 17.1911 Cerithium (Semivertagus) pupaeforme Basterot - Vignal : 154,

pl. 7 fig. 15.1922 Rhinoclavis (Semivertagus) pupaeformis (Basterot) - Coss-

mann & Peyrot : n°568, pl. 5 fig. 50.1922 Rhinoclavis (Semivertagus) pupaeformis var. partita (Vignal) -

Cossmann & Peyrot : n°571, pl. 5 figs 84, 86, 88.1922 Rhinoclavis (Semivertagus) pupaeformis var. derivata (Vignal)

- Cossmann & Peyrot : n°572, pl. 5 figs 68-67.


Cerithium pupaeformis a été jusqu'à présent classédans le genre Cerithium. La briéveté du canal et laconfiguration de son dernier tour avec souvent un ren-flement opposé au labre, suggère qu'il s'agirait non pasd'un Cerithium mais d'une Batillaria. Ce qui s'accordeassez bien avec l'écologie de l'espèce pupaeformis quel'on rencontre dans des milieux très littoraux. Parexemple, dans les niveaux supérieurs de la coupe deSaucats "Pont-Pourquey" (Burdigalien) en compagniedes Granulolabium.

Granulolabium Cossmann, 1889Cerithium plicatum Bruguière, 1792 (DO) - Origine : Miocène infé-

rieur de Montpellier.

Granulolabium plicatum (Bruguière, 1792)Pl. 8 figs 1a-1b, 2a-2c, 3a-3c

1792 Cerithium plicatum Bruguière : 488.1804 Cerithium plicatum Bruguière - Lamarck : 345, vélin 14 fig. 2.1825 Cerithium inconstans Basterot : 55, pl. 3 fig. 19.


1825 Cerithium plicatum Bruguière - Basterot : 55.1832b Cerithium plicatum Bruguière var B. Grateloup - Grateloup :

n°281, 273.1847 Cerithium plicatum Bruguière var B. Grateloup - Grateloup :

pl. 18 fig. 19.1852 Cerithium plicatum Bruguière - D'Orbigny : n°229, 15.1922 Pirenella plicata (Bruguière) - Cossmann & Peyrot : n°604, pl.

5 figs 99-101, pl. 6 figs 42-44.1922 Pirenella inconstans (Basterot) - Cossmann & Peyrot : n°605,

n°606, n°607, pl. 6 figs 37-39.1922 Cerithium plicatum (Bruguière) - Dollfus : 153, figs 1-2.1936 Cerithium plicatum (Bruguière) - Alimen : pl. 7 figs 10-21.1978b Pirenella (Pirenella) plicata (Bruguière) - R. Janssen : 163.1986b Granulolabium plicatum (Bruguière) - Lozouet : 4, pl. 1 figs

1-6.


LOZOUET (1986b) a proposé un essai de classificationdu complexe G. plicatum en montrant des aspects évolu-tifs, écologiques et biogéographiques. Depuis lors, plu-sieurs auteurs ont pris le contre-pied de ce travail et ontcréé d'autres espèces aux dépens de Granulolabium pli-catum (MOISESCU 1992, KADOLSKY 1995). L'analysedu groupe que font ces deux auteurs procède d'unconcept spécifique radicalement différent de celui deLOZOUET (1986b). L'étude des variations de Granulo-labium, largement typologique dans ces travaux, est en-visagée dans le cadre d'une série sédimentaire, dans unerégion déterminée, sans prise en compte réelle de la va-riation constatée dans les autres bassins européens. Parailleurs, l'introduction d'un concept de "Morpho-species" dans le cas de Kadolsky ajoute à la confusion.

La date de création de l'espèce plicatum est géné-ralement indiquée comme 1789 ; en fait, ainsi que l'ontprécisé SHERBORN & WOODWARD (1906), cette partiede "L'Encyclopédie Méthodique" est parue en 1792.

Enfin, rappelons que le genre Granulolabium estactuellement représenté par une seule espèce qui fré-quente les zones vaseuses médiolittorales des lagunesdu sud de l'Australie (voir Fig. 7).

Granulolabium (Tiaracerithium) Sacco, 1895

Cerithium pseudotiarella d'Orbigny, 1852 (DO) - Origine : Miocèneinférieur d'Aquitaine.

Granulolabium (Tiaracerithium) thiarella(Grateloup, 1832)

Pl. 8 fig. 4

1832b Cerithium thiarella Grateloup : n°286, 275.1847 Cerithium thiarella Grateloup : pl. 18 fig. 23.1847 Cerithium thiarella var B. ventricosa Grateloup : pl. 18 fig. 24.1852 Cerithium pseudo-tiarella d'Orbigny : n°1490, 81.1922 Pirenella pseudotiarella (d'Orbigny) - Cossmann & Peyrot :

n°612, pl. 6 figs 40-41, figs 53-57.1986b Granulolabium (Tiaracerithium) pseudotiarella (d'Orbigny) -

Lozouet : 185, Pl. 2 fig. 5.


D'ORBIGNY (1852) a substitué au nom thiarellaGrateloup celui de pseudotiarella d'Orbigny sous pré-texte qu'il était préoccupé par Deshayes. En fait, Ceri-thium thiarella a été décrit par DESHAYES en 1833., etc'est cette espèce qui devrait être renommée.

Famille SILIQUARIIDAE Anton, 1838

Tenagodus Guettard, 1770

Serpula anguinea Linné, 1758 (DS H. Adams & A. Adams, 1854) -Origine : Récent, Méditerranée.

Tenagodus terebellus (Lamarck, 1818)

1818 Siliquaria terebella Lamarck : 338.1922 Tenagodes anguinus miocaenicus Cossmann & Peyrot : n°464,

pl. 3 fig. 23.1978b Siliquaria terebellum Lamarck - R. Janssen : 162.


La distinction des espèces fossiles du genre Tena-godes étant très délicate, nous nous contentons de re-prendre, à l'exemple de GLIBERT (1962) et R. JANSSEN

(1978b), le nom le plus ancien. Tenagodes terebellus aété décrit par LAMARCK (1818) du Miocène supérieur(Redonien) des environs d'Angers.

Famille TURRITELLIDAE Lovén, 1847

Protoma Baird, 1870

Turritella cathedralis Brongniart, 1823 (DO) - Origine : Miocènemoyen d'Italie.

Protoma cathedralis (Brongniart, 1823)Pl. 7 figs 4a-4b, 5a-5b

1823 Turritella cathedralis Brongniart : 55, pl. 4 fig. 6.1825 Turritella proto Basterot : 30, pl. 1 fig. 7.1825 Turritella quadriplicata Basterot : 29, pl. 1 fig. 13.1825 Turritella cathedralis Brongniart - Basterot : 29.1832a Turritella cathedralis Brongniart - Grateloup : n°236, 160.1832a Turritella quadriplicata Basterot - Grateloup : n°237, 161.1847 Turritella cathedralis var. C. obelisca Grateloup : pl. 16 fig. 4.1850 Turritella proto Defrance - Deshayes : 42, pl. 69 figs 15-16.1852 Turritella cathedralis Brongniart - D'Orbigny : n°427, 31.1874a Proto basteroti Benoist : n°280, 286.1910 Protoma cathedralis (Brongniart) - Cossmann : 187, 1 Pl.1922 Protoma cathedralis (Brongniart) - Cossmann & Peyrot :

n°437, pl. 2 fig. 121922 Protama obeliscus (Grateloup) - Cossmann & Peyrot : n°438,

pl. 1 figs 36-37.1922 Protoma quadriplicata (Basterot) - Cossmann & Peyrot :

n°439 (non 429), pl. 2 fig. 7.1922 Protoma proto (Basterot) - Cossmann & Peyrot : n°441, pl. 2

figs 5-6.



Protoma cathedralis est une espèce largement ré-pandue au Miocène inférieur dans le Bassin d'Aqui-taine. Différentes espèces, voisines de P. cathedralis,ont été reconnues par Cossmann & Peyrot. Elles sontmal caractérisées et nous avons choisi de les incluredans la synonymie. La population de Lariey correspondà l'espèce Protoma proto sensu Cossmann & Peyrot(COSSMANN & PEYROT 1922, pl. 2 fig. 5).

Turritella Lamarck, 1799

Turbo terebra Linné, 1758 (DO) - Origine : Récent, Indo-Ouest-Pacifique.

Turritella terebralis Lamarck, 1822Pl. 7 figs 2a-2b

1822 Turritella terebralis Lamarck : 59.1825 Turritella terebralis Lamarck - Basterot : 28, pl. 1 fig. 14.1832a Turritella terebralis Lamarck - Grateloup : n°233, 158.1843 Turritella terebralis Lamarck - Deshayes & Milne Edwards :

263.1847 Turritella terebralis Lamarck - Grateloup : pl. 15 fig. 1-2 (non

3).1847 Turritella terebralis var D. fragilis Grateloup : pl. 16 fig. 18.1850 Turritella terebralis Lamarck - Deshayes : 42, pl. 69 figs 17.1852 Turritella terebralis Lamarck - D'Orbigny : n°426, 31.1912 Turritella terebralis Lamarck - Favre (1912-1918) : pl. 6 figs

77-80.1922 Turritella terebralis var. aquensis Cossmann & Peyrot : n°405,

pl. 1 fig. 7.1922 Turritella terebralis var. aturensis Cossmann & Peyrot : n°406,

pl. 1 figs 18-19.1922 Turritella terebralis var. grata Cossmann & Peyrot : n°403, pl.

1 fig. 4-6.1922 Turritella terebralis Lamarck - Cossmann & Peyrot : n°402, pl.

1 figs 1-3.1922 Turritella terebralis var. fragilis Grateloup - Cossmann &

Peyrot : n°404, pl. 1 fig. 7.1955 Turritella (turritella) terebralis Lamarck - Korobkov : 221, pl.

32 figs 1-3.1996 Turritella terebralis Lamarck - Allmon : 42.1997 Turritella terebralis Lamarck - Lozouet : 16, figs 9-10.


Turritella turris Basterot, 1825Pl. 7 figs 1a-1b

1825 Turritella turris Basterot : 29, pl. 1 fig. 11.1832a Turritella imbricataria Lamarck - Grateloup : n°239, 162.1832a Turritella turris Basterot - Grateloup : n°242, 164.1847 Turritella turris Basterot - Grateloup : pl. 15 fig. 9.1847 Turritella imbricataria Lamarck - Grateloup : pl. 16 fig. 17.1852 Turritella turris Basterot - D'Orbigny : n°430, 32.1852 Turritella eryna d'Orbigny : n°429, 31.1852 Turritella subtriplicata d'Orbigny : n°431, 32.?1922 Turritella vasatensis Tournouër in Cossmann & Peyrot :

n°431, pl. 2 figs 27-28.1922 Turritella (Haustator) eryna d'Orbigny - Cossmann & Peyrot :

n°427, pl. 1 figs 31-33 ; pl. 2 figs 33-34.1922 Turritella (Haustator) turris Basterot - Cossmann & Peyrot :

n°429, pl. 1 fig. 25 ; pl. 2 figs 21-24.1922 Turritella subtriplicata d'Orbigny - Cossmann & Peyrot :

n°430, pl. 2 fig. 45.


Turritella (Haustator) Montfort, 1810

Haustator galliculus Montfort, 1810 (DO) - Origine : Eocène duBassin de Paris.

Turritella (Haustator) desmarestina Basterot, 1825Pl. 7 fig. 3

1825 Turritella desmarestina Basterot : 30, pl. 4 fig. 4.1832a Turritella desmarestina Basterot - Grateloup : n°256, 170.1847 Turritella desmarestina Basterot var. A monilifera Grateloup :

pl. 16 fig. 9.1847 Turritella desmarestina Basterot var. B bicatenata Grateloup :

pl. 16 fig. 11.1852 Turritella desmarestina Basterot - D'Orbigny : n°64, 5.1890 Turritella echinata Déperet - Gourret : 104, pl. 7 figs 14-17.1922 Turritella (Peyrotia) desmarestina Basterot - Cossmann &

Peyrot : n°434, pl. 2 fig. 4.1922 Turritella (Peyrotia) strangulata var. grossa Cossmann &

Peyrot : n°436, pl. 2 fig. 3.

Matériel examiné : 1 spm. coll. Lesport.

GRATELOUP (1832a, 1847) signale T. desmarestinadans l'Oligocène inférieur de Gaas et les figures qu'ilprésente s'appliquent effectivement à cette espèce. Or,hormis cette citation de Grateloup, T. desmarestina n'ajamais été retrouvée à Gaas. Dans les sites de Gaas onrencontre en revanche communément T. strangulataGrateloup, 1827, espèce très proche, qui se distingue deT. desmarestina par l'absence de cordon granuleux à lapartie médiane du tour.

Superfamille VERMETOIDEA Rafinesque, 1815

Famille VERMETIDAE Rafinesque, 1815

Vermetus Cuvier, 1800

Vermetus adansonii Daudin, 1800 (DO) - Origine : Récent, Ouest-Africaine.

Vermetus carmatus Rousseau, 1844Pl. 7 fig. 8

1844 Vermetus carmatus Rousseau in Chenu : pl. 2 fig. 4.1844 Vermetus michaudi Rousseau in Chenu : Pl. 2 fig. 5.1922 Vermetus (Elliptovermetus) breigneti Cossmann & Peyrot :

n°456, pl. 2 fig. 49.


Les échantillons types de Rousseau sont conservésau MNHN-Paris ; ils proviennent, d'après les étiquettesoriginales, de la région de Bordeaux. Les planches deChenu ne comprennent aucune indication de prove-nance, cela explique que les Vermetus de Rousseaun'ont, jusqu'à présent, jamais été catalogués comme desespèces fossiles.


Vermetus cf. arenarius (Linné, 1767)Pl. 7 fig. 7

1767 Serpula arenaria Linné : n°803, 1266.1922 Vermetus (Lemintina) arenarius mut. turonensis Deshayes -

Cossmann & Peyrot : n°458, pl. 3 figs 18-20.1922 Vermetus (Lemintina) arenarius var. pseudodentifer Cossmann

& Peyrot : n°459, pl. 3 figs 1-2.1922 Vermetus (Lemintina) arenarius var. tauragranosa (Sacco) -

Cossmann & Peyrot : n°460, pl. 3 fig. 12.1922 Vermetus (Lemintina) arenarius var. an anom. arcusferens

Cossmann & Peyrot : n°461, pl. 3 fig. 15.


Vermetus cf. intortus Lamarck, 1818Pl. 7 fig. 6

1818 Serpula intorta Lamarck : 365.1922 Vermetus (Petaloconcha) intortus (Lamarck) - Cossmann &

Peyrot : n°451, pl. 3 fig. 16.1922 Vermetus (Petaloconcha) intortus var. aff. solutella Sacco -

Cossmann & Peyrot : n°451, pl. 3 fig. 17.1922 Vermetus (Petaloconcha) intortus var. colligata Cossmann &

Peyrot : n°453, pl. 3 fig. 28.


Sous-Ordre HYPSOGASTROPODA

Ponder & Lindberg, 1997

Infra-Ordre LITTORINIMORPHA

Goliko & Starobogatov, 1975

Superfamille LITTORINOIDEA Anonyme, 1834

Famille POMATIIDAE Newton, 1891

Pomatias Studer, 1789

Nerita elegans O.F. Müller, 1774 (M) - Origine : Récent, Paléarcti-que.

Pomatias squamosum (Peyrot, 1932)Pl. 12 fig. 1

1874a Cyclostoma antiquum Deshayes - Benoist : n°797, 410.1892 Cyclostoma antiquum Brongniart - Degrange-Touzin : 190.1909 Cyclostoma bisulcatum Zieten - Dollfus : 65.1932 Cyclostoma squamosum Peyrot : n°1481, pl. 18 figs 4-6.


Cette espèce terrestre n'est connue de Lariey quepar des individus encroûtés dans une gangue calcaire.

Famille LITTORINIDAE Anonyme, 1834

Littorinopsis Mörch, 1876

Littorina angulifera Lamarck, 1822 (DO) - Origine : Récent, Ca-raïbe.

Littorinopsis grateloupi (Deshayes, 1843)Pl. 12 fig. 2

1832a Phasianella angulifera Lamarck - Grateloup : n°229, 156.1843 Littorina grateloupi Deshayes in Deshayes & Milne Edwards :

213.1847 Phasianella angulifera Lamarck - Grateloup : pl. 14 fig. 26.1916 Littorinopsis tournoueri Cossmann : 61, 262, pl. 3 fig. 4.1916 Littorinopsis tournoueri mut. burdigalica Cossmann : 262, pl.

3 fig. 5.1919 Littorina (Littorinopsis) grateloupi Deshayes - Cossmann &

Peyrot : n°369, pl. 15 figs 75-76.1999 Littoraria (Littorinopsis) grateloupi (Deshayes) - Reid : 315.


L'espèce Littorinopsis tournoueri Cossmann estfondée sur un exemplaire provenant du Burdigalien deSt-Jean-de-Marsacq tandis que la mut. burdigalicaCossmann est décrite d'après un exemplaire de Léognan(Aquitanien ou Burdigalien).

REID (1999) classe Littorinopsis en sous-genre deLittoraria Griffith & Pidgeon, 1834 en admettant ce-pendant la monophylétie des Littorinopsis.

Melarhaphe Menke, 1828

Turbo neritoides Linné, 1758 (M) - Origine : Récent, Tempérée Eu-ropéenne.

Melarhaphe sacyi (Cossmann & Peyrot, 1919)Fig. 8a

1919 Littorina (Melaraphe) sacyi Cossmann & Peyrot : n°368, pl. 17figs 87-88.

1989b Melarhaphe sacyi Cossmann & Peyrot - Reid : 77.


Superfamille RISSOOIDEA Gray J.E., 1847.

Famille TRUNCATELLIDAE Gray, 1840

Truncatella Risso, 1826

Truncatella laevigata Risso, 1826 (DO) - Origine : Récent, Méditer-ranée.

Truncatella wattebledi Benoist, 1878Pl. 12 figs 3a-3b - Fig. 8b

1878 Truncatella wattebledi Benoist : 5.1895b Truncatella costata Benoist in Cossmann : 5, pl. 3 figs 10-11.1919 Truncatella wattebledi Benoist - Cossmann & Peyrot : n°303,

pl. 16 figs. 119-1221921 Truncatella wattebledi Benoist - Cossmann (Livraison 12) :

165, pl. 4 figs 66-67.



Fig. 8 – a Melarhaphe sacyi (Cossmann & Peyrot, 1919) H= 3,7 mm - b Truncatella wattebledi Benoist, 1878 H=4,1 mm - c-d Pusillina sp. H= 1,5 mm - e Stosicia buccinalis (Grateloup, 1828) H= 4 mm - f Caecum fibratum Folin& Bérillon, 1874 Long= 2,2 mm - g Caecum banoni Benoist, 1874 Long= 0,8 mm - h Circulus subcirculus (Coss-mann & Peyrot, 1917) Dmax= 2,6 mm - i Melanopsis dufourii Férussac, 1822 H= 6,3 mm (coll. Lesport) - j Pelyci-dion cf. aciculare (Cossmann & Pissarro, 1913) H= 1,1 mm - k-l Zebina aquitanica (Cossmann & Peyrot, 1919) H=2,4 mm (coll. Lesport). [Lariey, coll. Favia & Lozouet, sauf indication contraire].

Famille RISSOIDAE Gray, 1847

Alvania Risso, 1826

Alvania europea Risso, 1826 (DS Nevill, 1885) - Origine : Récent,Méditerranée.

Alvania andraldensis Lozouet, 1998Pl. 12 fig. 8

1998 Alvania andraldensis Lozouet : 76, fig. 8f-h.


Cette espèce est beaucoup plus commune dans lessites de la région de Villandraut, comme à "Gamachot".

Alvania lachesis (Basterot, 1825)Pl. 12 figs 5a-5c - Pl. 13 figs 3a-3b

1825 Turbo lachesis Basterot : 27, pl. 1 fig. 4.1828b Rissoa bulimoides Grateloup : n°101, 132.1837 Rissoa curta Dujardin : 279, pl. 19 fig. 5.1838c Rissoa bulimoides Grateloup - Grateloup : 201, pl. 5 figs 34-

35.

1847 Rissoa bulimoides Grateloup - Grateloup : pl. 4 fig. 34-35.1864 Rissoa lachesis (Basterot) - Mohrenstern : 30, pl. 2 fig. 17.1919 Alvania curta (Dujardin) - Cossmann & Peyrot : n°334, pl. 17

figs 43-46.1919 Alvania curta var. lachesis (Basterot) - Cossmann & Peyrot :

n°335, pl. 17 figs 9-10.1949 Alvania curta (Dujardin) - Glibert : 105, pl. 6 figs 3a-b.


Alvania mariae (d'Orbigny, 1852)Pl. 12 figs 7a-7b - Pl. 13 fig. 4

1828b Rissoa cimex (Linné) - Grateloup : n°102, 133.1838c Rissoa cimex (Linné) - Grateloup : 206, pl. 5 figs 53-54.1847 Rissoa cimex (Linné) - Grateloup : Pl. 4 figs 53-54.1852 Rissoa mariae d'Orbigny : n°373, 29.1882-1886 Rissoa mariae d'Orbigny - Bucquoy, Dautzenberg &

Dollfus (pars) : 292, pl. 36 fig. 7.1919 Alvania (Turbona) oceani race mariae (d'Orbigny) - Cossmann

& Peyrot : n°338, pl. 17 figs 17-20.1983 Alvania mariae (d'Orbigny) - Gougerot (pars) : 46.1999 Alvania mariae (d'Orbigny) - Gofas : 84.



GOUGEROT (1983) a consacré une longue discus-sion sur A. mariae dans laquelle il affirme que l'inter-prétation de COSSMANN & PEYROT (1919) est erronée.GOUGEROT (1983) fonde son analyse sur la figure don-née par BUCQUOY et al. (1882-1886) qui a été établied'après un exemplaire de la coll. d'Orbigny. Les exem-plaires récoltés par Gougerot dans le Miocène moyendu bassin de la Loire seraient conformes à cette repro-duction.. Or, le dessin de BUCQUOY et al. (1882-1886)est de mauvaise facture et peut notamment s'interprétercomme étant celui d'Alvania oceani (d'Orbigny, 1852).Nous avons consulté la collection d'Orbigny (Lab. dePaléontologie, MNHN), malheureusement le lotqu'avait vu Bucquoy et al. a disparu. Toutefois, dansl'ancien catalogue de la collection d'Orbigny ce lot estclairement indiqué comme provenant du Miocène deVienne. Pour ces différentes raisons nous estimons pré-férable de conserver le concept de COSSMANN & PEYROT

(1919) dont le grand avantage est d'être fondé sur desindividus de la localité type (St-Paul-lès-Dax) d'Alvaniamariae. Ainsi que le souligne GOFAS (1999), l'espèceactuelle ouest-africaine Alvania marioi Gofas, 1999 estremarquablement proche. Elle se distingue essentielle-ment par l'apparition d'un troisième cordon spiral aupremier tour de la téléoconque.

Alvania sp.


Cette espèce s'apparente à Alvania mariae maiss'en distingue par sa sculpture composée de fines côtesaxiales entre lesquelles sont disposés des rubans spirauxassez serrés. L'espèce est également présente dansl'Aquitanien de St-Paul-lès-Dax ; le spécimen de Larieyest trop usé pour être utilement figuré.

Alvania venus (d'Orbigny, 1852)Pl. 12 figs 6a-6c - Pl. 13 figs 5a-5c

1828b Rissoa cimex Linné - Grateloup : n°102, 133.1838b Rissoa cimex Linné - Grateloup : pl. 5 figs 55-56.1847 Rissoa cimex Linné - Grateloup : pl. 4 figs 55-56.1852 Rissoa venus d'Orbigny : n°364, 28.1919 Alvania venus (d'Orbigny) - Cossmann & Peyrot : n°336, pl. 17

figs 23-24.


Pusillina Monterosato, 1884

Rissoa pusilla Philippi, 1836 (non Grateloup, 1826) (DO) - Origine :Récent, Méditerranée.

Pusillina sp.Figs 8c-d


L'espèce se caractérise par la faiblesse de ses côtesaxiales. Turbella (Pusillina) degrangei Cossmann &Peyrot, 1919 d'après COSSMANN & PEYROT (1919 n°333pl. 17 figs 49-50), possède des côtes plus vigoureuses.

Rissoina d'Orbigny, 1840

Rissoina inca d'Orbigny, 1840 (DO) - Origine : Récent, Pérou.

Rissoina subconoidea (Grateloup, 1847)Pl. 12 figs 11a-11b

1825 Rissoa cochlearella Lamarck - Basterot : 37.1828b Rissoa cochlearella var B - Grateloup : 131.1838c Rissoa cochlearella var B - Grateloup : 197, pl. 5 figs 19-20.1847 Rissoa cochlearella var. A subconoidea Grateloup : pl. 4 figs

17-18.1847 Rissoa cochlearella var. B elongata Grateloup : pl. 4 figs 19-

20 (non Defrance).1852 Rissoa subcochlearella d'Orbigny : n°388, 29.1852 Rissoa gratteloupi d'Orbigny : n°389, 30 (non Basterot).?1895 Rissoina pusilla var. parvofusula Sacco : 37, pl.1 fig. 101.1919 Rissoina elongata (Grateloup) - Cossmann & Peyrot : n°304, pl.

16 figs 101-102 (non 133-134, indiquée 105-106 in légende).1919 Rissoina elongata var. (an monst.?) scalarata Cossmann &

Peyrot : n°305, pl. 16 figs 131-132.1919 Rissoina recticostulata Cossmann & Peyrot : n°319, pl. 17 figs

36-37.?1921 Rissoina podolica Cossmann : 317, pl. 3 figs 43-44.


Le nom Rissoa elongata étant préemployé, nousavons repris le nom le plus ancien disponible. R. scala-rata est, comme le supposaient COSSMANN & PEYROT

(1919), un individu monstrueux de subconoidea. Ris-soina subconoidea fait partie d'une lignée très stableque l'on suit de l'Oligocène inférieur jusqu'au Pliocèneavec R. pusilla (Brocchi, 1814). L'examen des spéci-mens de la collection Cossmann nous a montré queCossmann & Peyrot ont parfois confondu les espècessubconoidea et subcancellata. Ainsi, la figure 133-134de la planche 16 (indiquée 105-106 dans la légende)représente un exemplaire de R. subcancellata.

Rissoina (Pachyrissoina) Boettger, 1893Rissoina walkeri Smith, 1893 (DS Wenz, 1939) - Origine : Récent,

Indo-Ouest-Pacifique.

Rissoina (Pachyrissoina) grateloupi (Basterot, 1825)Pl. 12 figs 9a-9b

1825 Rissoa? grateloupi Basterot : 37, pl. 1 fig. 3.1828b Rissoa grateloupi Basterot - Grateloup : n°98, 131.1838c Rissoa grateloupi Basterot - Grateloup : 198, pl. 5 fig. 28.1847 Rissoa grateloupi Basterot - Grateloup : pl. 4 fig. 28.1852 Rissoa gratteloupi Basterot - D'Orbigny : n°3822, 29.1860 Rissoina basteroti Mohrenstern : 60, pl. 3 fig.22.1919 Rissoina (Rissolina) grateloupi (Basterot) - Cossmann &

Peyrot : n°313, pl. 16 figs 98-100.1921 Rissoina (Rissolina) grateloupi (Basterot) - Cossmann (Livrai-

son 12) : 86, pl. 3 figs 49-50.1985a Rissoina basteroti (Mohrenstern) - Ponder : 85.1993 Rissoina grateloupi Basterot - Sleurs : 123.



SLEURS (1993) ne classe pas R. grateloupi parmi lesPachyrissoina. L'argument invoqué est que cette espècene possède pas le fort cordon basal caractéristique de cesous-genre. En fait, si R. grateloupi ne présente pas uncordon franc, elle montre à la place un bourrelet plus oumoins net, qui préfigure certainement le cordon des Pa-chyrissoina. Comme par ailleurs R. grateloupi est trèsproche de R. walkeri, il convient de classer ces deux es-pèces dans le même sous-genre. Rappelons que Pachy-rissoina est actuellement limitée à la province Indo-Ouest-Pacifique.

Rissoina (Zebinella) Mörch, 1876Helix decussata Montagu, 1803 (DO) - Origine : Récent, Caraïbe.

Rissoina (Zebinella) subcancellata (Grateloup, 1847)Pl. 12 figs 10a-10c

1828b Rissoa cochlearella Lamarck - Grateloup : 131.1838c Rissoa cochlearella Lamarck var D - Grateloup : n°97, 197,

pl. 5 figs 24-25.1847 Rissoa cochlearella subcancellata Grateloup : pl. 4 figs 24-25.1919 Rissoina (Zebinella) subcancellata (Grateloup) - Cossmann &

Peyrot : n°318, pl. 17 figs 32-33.


Stosicia Brusina, 1878

Rissoa buccinalis Grateloup, 1828 (DO) - Origine : Miocène infé-rieur du Bassin d'Aquitaine.

Stosicia buccinalis (Grateloup, 1828)Fig. 8e

1828b Rissoa buccinalis Grateloup : n°99, 132.1838c Rissoa planaxoides Desmoulins in Grateloup : 201, pl. 5 figs

36, 37, 39.1847 Rissoa planaxoides Desmoulins - Grateloup : pl. 4 figs 36, 37,

39.1919 Stossicia planaxoides (Desmoulins) - Cossmann & Peyrot :

n°323, pl. 16 figs 90-91.1921 Stossicia planaxoides (Desmoulins) - Cossmann (Livraison 12)

: 74, pl. 2 figs 74-75.1985a Stosicia planaxoides (Desmoulins) - Ponder : 92, fig. 63.


C'est à tort que Rissoa buccinalis Grateloup a étéconsidérée comme un homonyme primaire de Bulimusbuccinalis Lamarck, 1804. Cette dernière espèce est parailleurs l'espèce-type du genre Pseudotaphrus Coss-mann, 1888 tandis que R. buccinalis Grateloup est l'es-pèce-type du genre Stosicia Brusina, 1870. SLEURS

(1996 fig. 8 H) a figuré provenant du Tortonien d'Italiesous le nom de Stosicia planaxoides (Grateloup, 1838)une espèce différente à cordons spiraux plus nombreuxet plus fins.

Zebina H. & A. Adams, 1854

Rissoina semiglabrata A. Adams, 1854 (DS Rehder, 1980) - Origine: Récent, Indo-Ouest-Pacifique.

Zebina aquitanica (Cossmann & Peyrot, 1919)Figs 8k-l

1828b Rissoa nitida Grateloup - Grateloup : n°106, 134 (non De-france).

1838c Rissoa nitida Grateloup - Grateloup : 208, pl. 5 figs 63-66.1847 Rissoa nitida Grateloup - Grateloup : pl. 4 figs 63-66.1852 Rissoa nerina d'Orbigny : n°43, 3.1919 Rissoina (Zebina) aquitanica Cossmann & Peyrot : n° 321, pl.

16 figs 71-74.


Famille ADEORBIDAE Monterosato, 1884

Circulus Jeffreys, 1865

Delphinula duminyi Requiem, 1842 (DO) - Origine : Récent, Médi-terranée.

Circulus subcirculus (Cossmann & Peyrot, 1917)Pl. 11 figs 1a-1b - Fig. 8h

1917 Tornus subcirculus Cossmann & Peyrot : n°139, pl. 7 figs 54-56.

1986a Circulus subcirculus (Cossmann & Peyrot) - Lozouet : 256.


Cette espèce est proche de Circulus dubius Philip-pi, 1843 (Oligocène supérieur d'Allemagne) telle que l'acomprise R. JANSSEN (1978a, pl. 11 figs 35-36).

Cochliolepis Stimpson, 1858

Cochliolepis parasitica Stimpson, 1858 (DO) - Origine : Récent,Atlantique nord américain.

Cochliolepis sp.


L'unique individu récolté est très fruste. Cependantil se sépare aisément de C. trigonostoma par sa spireplus élevée et son ombilic moins ouvert.

Cochliolepis trigonostoma (Basterot, 1825)

1825 Delphinula trigonostoma Basterot : 28, pl. 4 fig. 10.1828c Delphinula trigonostoma Basterot - Grateloup : n°175, 204.1847 Delphinula trigonostoma Basterot - Grateloup : pl. 12 fig. 24-

26.1852 Solarium trigonostomum d'Orbigny : n°710, 44.1917 Tornus trigonostoma (Basterot) - Cossmann & Peyrot : n°135,

pl. 7 figs 47-49.?1960a Tornus (Tornus) trigonostoma (Basterot) - Anderson : 31, pl.

4 figs 4a-b.



Teinostoma H. & A. Adams, 1853

Teinostoma politum A. Adams, 1853 (DS Cossmann, 1888) - Ori-gine : Récent, Philippines.

Teinostoma simplex Benoist, 1874Pl. 12 figs 4a-4b

1874a Teinostoma simplex Benoist : n° 388, 313.1917 Tinostoma simplex Benoist - Cossmann & Peyrot : n°123, pl. 6

figs 53-55.1986a Teinostoma simplex (Benoist) - Lozouet : 260.


La position systématique de cette espèce est trèsdouteuse ; sa protoconque paucispirée semble être celled'un Trochoidea.

Famille PELYCIDIIDAE Ponder & Hall, 1983

Pelycidion P. Fischer in Folin & Périer, 1873

Pelycidion venustulum Fischer in Folin & Périer, 1873 (M) - Origine: Récent, Ouest-Africaine.

Pelycidion cf. aciculare (Cossmann & Pissarro, 1913)Fig. 8j


Le genre Pelycidion est reconnu pour la premièrefois dans le Miocène inférieur d'Aquitaine. GOUGEROT

et al. (1977) ont signalé une espèce dans le Miocènemoyen de Touraine (que nous avons également récoltéedans les faluns de Pont-Levoy, coll. Lozouet), sansdoute très proche de la notre, qu'ils attribuent à Pelyci-dion aciculare (Cossmann & Pissarro, 1913) de l'Eo-cène parisien.

Les Pelycidion se rencontrent d'après PONDER &HALL (1983) dans les zones tropicales (Caraïbe, Ouest-Afrique, Indo-Ouest-Pacifique) et font partie de lafaune interstitielle des sables littoraux (d'après des ob-servations de l'équipe "Montrouzier" à Touho, Nou-velle-Calédonie, septembre 1993).

Famille CAECIDAE Gray, 1850

Caecum Fleming, 1824

Dentalium trachaea Montagu, 1803 (DS Gray, 1847) - Origine :Récent, Tempérée européenne.

Caecum banoni Benoist, 1874Pl. 14 figs 2a-2c - Fig. 8g

1874a Caecum banoni Benoist : n°261, 278.1874 Meioceras cabanensis Folin & Bérillon : 100.1922 Caecum banoni Benoist - Cossmann & Peyrot : n°445, pl. 3

figs 29, 31.


Caecum fibratum Folin & Bérillon, 1874Pl. 14 figs 1a-1c - Fig. 8f

1874 Caecum fibratum Folin et Bérillon : 100.


Cette espèce se caractérise par son septum arrondi.

Caecum larieyense n. sp.Pl. 14 figs 3a-3b


Locus typicus : Saucats (Lariey).Stratum typicum : Miocène inférieur (Aquitanien), falunà Ervilia.Derivatio nominis : de sa localité type.Holotypus (MNHN) ; paratypes 7 spm. coll. Favia &Lozouet.

Dimensions (Holotype) : Longueur= 2,54 mm ; Diamè-tre de l'ouverture= 0,55 mm.

Description : la coquille, de très petite taille, à testfin est en forme de tube. Elle est régulièrement arquéeet l'arc dessiné correspond à un angle d'environ 65°.L'extrémité adapicale de la coquille est scellée par unseptum peu saillant qui déborde très légèrement du bordde la coquille en une goutte obtuse. Toute la surface estsculptée de nombreuses fines stries concentrique assezirrégulières. Les stries sont plus nombreuses autour del'ouverture qui est bordée par une collerette mousse.

Discussion : La vigueur de ses stries concentriquesdistingue facilement cette espèce des deux autres Cae-cum signalés du Miocène inférieur d'Aquitaine (voir Pl.14). Caecum mineuri Lozouet, 1999 de l'Oligocène su-périeur posséde un test très épais et son septum est plussaillant et non sphérique (LOZOUET 1999, pl. 20 fig. 3).

Famille IRAVADIIDAE Thiele, 1928

Chevallieria Cossmann, 1888

Chevallieria labrosa Cossmann, 1888 (DO) - Origine : Eocène duBassin de Paris.

Chevallieria sp.Fig. 10e


L'unique spécimen récolté à Lariey est juvénile.Chevallieria sp. existe aussi dans l'Aquitanien de St-Avit au "Basta". L'individu que nous avons examiné(coll. Renard) possède un labre épaissi, ce qui nous


permet de classer cette espèce dans Chevallieria. Com-paré à des spécimens de Ceratia dufrenoyi Des Mou-lins, 1868 provenant de l'Aquitanien de "La Saubotte"et de Léogeats (Gironde), Chevallieria sp. se distinguepar son labre épaissi et sa protoconque moins aplatie ànucléus plus gros. Ceratia dufrenoyi semble provenird'après le commentaire de DES MOULINS (1868, 375)des faluns aquitaniens de Martillac ("faluns blancs").La seconde Iravadiidae signalée du Miocène inférieuraquitain, Ceratia suturalis Cossmann & Peyrot, 1919 aété décrite du Burdigalien de Martillac (Gironde) etnous l'avons également recueillie dans le Burdigalien deSaucats (Lagus). Elle est proche de C. dufrenoyi maisest de forme plus conique (COSSMANN & PEYROT 1919,pl. 16 figs 92-93) .

Famille ELACHISINIDAE Ponder, 1985

Pseudocirsope O. Boettger, 1907

Lacuna galeodina Boettger, 1907 (M) - Origine : Miocène moyen dela Paratéthys.

Pseudocirsope sp.Pl. 15 fig. 8, Fig. 10f


Les seuls spécimens que nous possédons sont tropjeunes pour que nous puissions les rapporter à une es-pèce connue. Le classement des Cirsope et des Pseudo-cirsope dans les Elachisinidae (PONDER 1985) a étéproposé par LOZOUET (1986a) et semble maintenanttrès vraisemblable.

Famille HYDROBIIDAE Troschel, 1857

Hydrobia Hartmann, 1821

Cyclostoma acuta Draparnaud, 1825 (DS Gray, 1847) - Origine :Récent, Paléarctique.

Hydrobia andreaei Boettger, 1892Figs 9a-c

1892 Hydrobia andreaei Boettger in Degrange-Touzin : 58, pl. 5 fig.1.

1892 Hydrobia andreaei elongata Degrange-Touzin : 60, pl. 5 fig. 2.1919 Hydrobia (Peringia) andreaei Boettger - Cossmann & Peyrot :

n°353, pl. 16 figs 25-30.1923b Hydrobia andreaei degrangei Wenz : 115.1926 Hydrobia andreaei degrangei Wenz - Wenz (1923-1926) :

1866.1926 Hydrobia andreaei andreaei Boettger - Wenz (1923-1926) :

1865.


Hydrobia aturensis Noulet, 1854Fig. 9d

1854 Hydrobia? aturensis Noulet : 116.1868 Bythinia aturensis (Noulet) - Noulet : 183.1892 Hydrobia aturensis Noulet - Degrange-Touzin : 56.1912a Hydrobia (Tournoueria) aturensis Noulet - Dollfus : 267, pl.

6 figs 23-26.1919 Hydrobia (Tournoueria) aturensis Noulet - Cossmann &

Peyrot : n°350, pl. 16 figs 17-18, 21-24, pl. 17 figs 96-97.1926 Hydrobia aturensis Noulet - Wenz (1923-1926) : 1869.


Les spécimens de Lariey correspondent bien auxreproductions des syntypes de Noulet (DOLLFUS

1912a). L'individu figuré par Cossmann & Peyrot (coll.Cossmann), provenant de l'Aquitanien supérieur ouBurdigalien basal de Lucbardez, est en revanche parti-culièrement allongé mais rentre dans le cadre de la va-riabilité de cette espèce. Hydrobia aturensis était, sem-ble-t-il, nettement plus dulcicole qu'Hydrobia andreaei.Elle est en effet dominante dans les niveaux calcairo-marneux où abondent les espèces franchement fluviati-les telles que Lymnaea et Planorbis. C'est ce que l'onobserve, à Saucats, dans les niveaux de transition entrele sommet de la coupe de Lariey et la base du Burdiga-lien du Peloua (d'après des échantillons et indicationscommuniqués par P. Rocher).

Mercuria Boeters, 1971Amnicola confusa Frauenfeld, 1863 - Origine : Récent, Paléarctique.

Mercuria balizacensis (Degrange-Touzin, 1892)Fig. 9j

1892 Valvata balizacensis Boettger in Degrange-Touzin : 189, pl. 5fig. 8.

1921 Valvata balizacensis Benoist - Cossmann (Livraison 12) : 170,pl. 4 figs 47-48.

1926 Amnicola (Amnicola) balizacensis Boettger - Wenz (1923-1926) : 2057.

1931 Valvata moguntina Boettger - Peyrot : n°1482, pl. 17 figs 20-21.

1931 Valvata balizacensis Boettger - Peyrot : n°1483, pl. 17 figs 18-19.


Cette espèce, dont nous ne possédons que des indi-vidus juvéniles, peut se confondre avec de jeunes Hy-drobia ; son classement dans le genre Mercuria est in-certain.

Schuettemmericia Schlickum, 1961

Hydrobia subpyrenaica Noulet, 1854 - Origine : Miocène inférieurdu Bassin d'Aquitaine.


Schuettemmericia lemani (Basterot, 1825)Figs 9e-f

1825 Cyclostoma lemani Basterot : 31, pl. 4 fig. 9.

1854 Hydrobia subpyrenaica Noulet : 115.1892 Fossarulus lemani (Basterot) - Degrange-Touzin : 187.1919 Stalioa lemani (Basterot) - Cossmann & Peyrot : n°361, pl. 16

figs 58-59.1923 Stalioa lemani (Basterot) - Wenz (1923-1926) : 2184.1993 Schuettemericia lemani (Basterot) - Kadolsky : 349, figs 8-13.

Matériel examiné : 2 spm. coll. Staadt.

Cette espèce fluviatile provient des calcaires grissupérieur qui ne sont pas visibles dans la coupe aména-gée de Lariey.

Famille STENOTHYRIDAE P. Fischer, 1885

Stenothyroides Lozouet, 1985

Bithynia mediana Deshayes, 1862 - Origine : Eocène moyen du Bas-sin de Paris.

Stenothyroides aquitanica (Cossmann & Peyrot, 1919)

1919 Stenothyra aquitanica Cossmann & Peyrot : n°360, pl. 16 figs49-50.

1921 Stenothyra aquitanica Cossmann & Peyrot - Cossmann (Li-vraison 12) : 156, planche - texte B fig. 60.

1985 Stenothyroides aquitanica (Cossmann & Peyrot) - Lozouet :134, 17a-b.


COSSMANN & PEYROT (1919) indiquent comme pro-venance Mérignac ; en 1921 COSSMANN donne commelocalité "Saucats, Le Son". L'holotype de la collectionCossmann (que nous avons examiné) ainsi que notreunique échantillon, sont très roulés et nous ne connais-sons pas d'autre exemplaire de cette espèce. Les Steno-thyroides se rencontrent habituellement en populationsnombreuses, la rareté de cette espèce signifie donc quenous n'avons pas encore appréhendé son milieu de dé-pôt véritable.

Stenothyroides sanctistampaensis n. sp.Pl. 13 figs 1a, 2a-2b - Figs 9g-i

Locus typicus : Saucats (Lariey).Stratum typicum : Miocène inférieur (Aquitanien), falunà Ervilia.Derivatio nominis : du ruisseau du Saint-Jean-d'Etampes.Holotypus (MNHN) ; Paratypes, 10 spm. (MNHN).

Autre matériel examiné : 23 spm. coll. Lesport ; 56spm. coll. Favia & Lozouet ; 1 spm. coll. Renard.

Dimensions (holotype) : H = 1,5 mm ; Dmax = 0,85mm.

Description : La coquille est de petite taille, lisse, à testépais, de galbe pupoïdal. Elle compte environ 3 toursadultes, séparés par une suture bien marquée. La proto-conque est lisse, paucispirée et se compose, sans son grosnucléus, de 3/4 de tour. Les tours de spire sont régulière-ment convexes. Le dernier tour occupe 70 % de la hau-teur totale. Il présente un méplat juste au-dessous de lasuture imperceptiblement concave ; au-delà, le profil dutour est particulièrement convexe. La coquille apparaîtlisse et brillante. Cependant à l'aide d'une lumière rasanteon met en évidence des stries axiales nombreuses maisd'une extrême finesse. L'ouverture de forme circulaire estrelativement petite, son péristome est épais et continu.Une longue dépression ombilicale lui donne un aspectsubdétaché. En vue latérale, on constate que l'ouvertureest située dans un plan légèrement prosocline. On y re-trouve, en vue interne, l'épaississement calleux caracté-ristique des Stenothyroides (dont la fonction était sansdoute d'ancrer l'opercule). Il s'agit ici d'un renfort d'appa-rence continu qui se développe depuis l'angle adapical del'ouverture - où il fait légèrement saillie - jusqu'à la basede la columelle d'où il déborde un peu.

Discussion : La seule espèce de Stenothyroides compa-rable dans le Miocène inférieur aquitain, Stenothyraaquitanica Cossmann & Peyrot, 1919 (LOZOUET 1985,pl. 4 fig. 17), appartient à un autre groupe dont la pre-mière caractéristique est de présenter une ouverture lé-gèrement opisthocline. Stenothyroides sanctistampaen-sis est en fait pour l'instant le dernier terme connu dugroupe de S. mediana dont on connaît deux espècesdans l'Oligocène inférieur aquitain : Stenothyroides sp.(LOZOUET 1985, pl. 4 figs 20, 21) et Stenothyroidesminuta (Wenz, 1925). Stenothyroides sp. est une espèceun peu plus grande à ouverture dotée d'une callositéaperturale plus marquée. S. minuta possède une proto-conque très différente, presque plane, qui débute par untrès petit nucléus (LOZOUET 1985, pl. 4 fig. 22).

Superfamille STROMBOIDEA Rafinesque, 1812

Famille APORRHAIDAE Gray, 1850

Aporrhais da Costa, 1778

Aporrhais quadrifidus da Costa, 1776 (M) - Origine : Récent, Tem-pérée européenne.

Aporrhais meridionalis (Basterot, 1825)

1825 Rostellaria pespelicani var. meridionalis Basterot : 69.1834a Rostellaria pes-carboni Brongniart - Grateloup : n°457, 190.1847 Rostellaria pes-carboni Brongniart - Grateloup : pl. 32 fig. 6.1852 Chenopus gratteloupi d'Orbigny : n°1028, 59.1867 Chenopus pes-pelecani L. - Mayer (Premier Cahier) : 10.1867 Chenopus speciosus Schl. - Mayer (Premier Cahier) : 10.1923 Chenopus meridionalis (Basterot) - Cossmann & Peyrot :

n°658, pl. 8 figs 18-19.


Fig. 9 – a-c Hydrobia andreaei Boettger, 1892 a : H= 4,2 mm ; b : H= 3,8 mm ; c : H= 5,2 mm - d Hydrobia atu-rensis Noulet, 1854 d : H= 3,6 mm - e-f Schuettemmericia lemani (Basterot, 1825) H= 6,2 mm (coll. Staadt-MNHN) - g-i Stenothyroides sanctistampaensis n. sp. H= 1,5 mm - j Mercuria balizacensis (Degrange-Touzin,1892) H= 2,7 mm. [Lariey, coll. Favia & Lozouet, sauf indication contraire].

1941a Aporrhais meridionales (Basterot) - Magne : 55.1952 Aporrhais meridionales (Basterot) - Magne : 123.1952 Aporrhais castexi Magne : 124, fig. 1.1987 Aporrhais meridionalis (Basterot) - Lozouet & Maestrati : 23,

fig. 8.1997 Aporrhais meridionalis (Basterot) - Lozouet : 16, figs 11-

12.MF

Matériel examiné : 1 spm. coll. Six.

Famille STROMBIDAE Rafinesque, 1815

Strombus Linné, 1758

Strombus pugilis Linné, 1758 (DS Montfort, 1810) - Origine : Ré-cent, Caraïbe.

Strombus bonellii Brongniart, 1823Pl. 15 figs 1a-1b

1823 Strombus bonelli Brongniart : 74, pl. 6 fig. 6.1825 Strombus bonelli Brongniart - Basterot : 69.1834a Strombus bonelli Brongniart - Grateloup : 192.1842 Strombus bonellii Brongniart - Matheron : n°232, 251.1843 Strombus bonellii Brongniart - Deshayes & Milne Edwards :

724.1847 Strombus radix Brongniart - Grateloup : pl. 32 figs 10, 14-5.1847 Strombus bonelli Brongniart - Grateloup : pl. 32 fig. 12.1847 Strombus lentiginosus Linné - Grateloup : pl. 32 fig. 16.

1847 Strombus bonelli Brongniart var. B - Grateloup : pl. 33 fig. 6a-b.

1852 Strombus bonellii Brongniart - D'Orbigny : n°1013, 58.1867 Strombus bonellii Brong. - Mayer (premier cahier) : 18.1904 Strombus bonellii Brongniart - Cossmann : 11, pl. 1 fig. 8.1910 Strombus bonellii Brongniart - Boussac : fig. 161.1923 Strombus (Canarium) bonellii Brongniart - Cossmann &

Peyrot : n°649, pl. 8 figs 1-4, 10.1923 Strombus (Canarium) pelouatensis Cossmann & Peyrot :

n°652, pl. 9 figs 3-4.1942a Strombus (Strombus) bonellii Brongniart - Magne : 3.1992 Strombus bonellii Brongniart - Lozouet & Maestrati : 11, figs

J-K.


LOZOUET & MAESTRATI (1992) ont souligné, à lasuite de DESHAYES & MILNE-EDWARDS (1843, 724), lesaffinités évidentes qui existent entre S. bonellii et S.granulatus Swainson, 1822 de la province panaméenne,qualifiant cette dernière espèce de "relique méso-géenne". Récemment, JUNG & HEITZ (2001) ont décritplusieurs Strombus du Miocène moyen à Pléistocènedes Caraïbes ; deux pourraient se rattacher au groupe deradix-bonellii : S. toroensis Jung & Heitz, 2001 (Mio-cène moyen et Pliocène) et S. insulanus Jung & Heitz,2001 (Pliocène inférieur).


Tibia Röding, 1798

Murex fusus Linné, 1758 (DS Dall, 1906) - Origine : Récent, Indo-Ouest-Pacifique.

Tibia dentata (Grateloup, 1827)

1825 Rostellaria curvirostris Lamarck var B - Basterot : 69, pl. 4 fig.1.

1827 Rostellaria dentata Grateloup : 17.1834a Rostellaria dentata Grateloup - Grateloup : n°455, 188.1847 Rostellaria dentata Grateloup - Grateloup : pl. 32 figs 2, 4.1852 Rostellaria dentata Grateloup - D'Orbigny : n°1022, 58.1867 Rostellaria dentata Grat. - Mayer (premier cahier) : 13.1904 Rostellaria dentata Grateloup - Cossmann : 18, pl. 2 figs 12-

13.1923 Rostellaria dentata Grateloup - Cossmann & Peyrot : n°653,

pl. 9 fig. 1-2.1940 Rostellaria dentata Grateloup - Magne : 136.1955 Rostellaria (Rostellaria) dentata Grateloup - Korobkov : 267,

pl. 54 figs 1-2.1973 Rostellaria dentata Grateloup - Baldi : 271, pl. 34 fig. 3.1995 Rostellaria dentata Grateloup - Baluk : 180, pl. 7 fig. 1.

Matériel examiné : 1 fragment coll. Rocher.

L'espèce est connue dès l'Oligocène supérieur, oùelle est de petite taille, en Aquitaine et dans le domainede la Paratéthys. Elle est signalée en Aquitaine jusqu'auLanghien de Saubrigues. MAGNE (1940) considère eneffet que la citation de COSSMANN & PEYROT (1922) deTibia ordalensis (Almera & Bofill, 1886) dans les mar-nes de Saubrigues est erronée et qu'il s'agit en réalité deT. dentata.

Superfamille CALYPTRAEOIDEA Lamarck, 1809

Famille CALYPTRAEIDAE Lamarck, 1809

Bicatillus Swainson, 1840

Calyptraea extinctorium Lamarck, 1822 (DO) - Origine : Récent,Mer de Chine.

Bicatillus deformis (Lamarck, 1822)

1822 Calyptraea deformis Lamarck : 532.1825 Calyptraea deformis Lamarck - Basterot : 71.1828a Calyptraea deformis Lamarck - Grateloup : n°23, 84.1830 Calyptraea deformis Lamarck - Deshayes : 175.1836 Calyptraea deformis Lamarck - Grateloup : 291, pl. 2 figs 34-

36.1836 Calyptraea deformis Lamarck - Deshayes & Milne Edwards :

625.1847 Calyptraea deformis Lamarck - Grateloup : pl. 1 figs 80-82.1850 Calyptraea deformis Lamarck - Deshayes (1839-1853) : 38, pl.

63 figs 6-7.1852 Calyptraea deformis Lamarck - D'Orbigny : n°1709, 92.1912 Calyptraea deformis Lamarck - Favre (1912-1918) : pl. 2 figs

22-23.1919 Crucibulum (Bicatillus) deformis (Lamarck) - Cossmann &

Peyrot : n°286, pl. 14 figs 22-24.1997a Bicatillus deformis (Lamarck) - Lozouet : 15, figs 7-13.


Calyptraea Lamarck, 1799

Patella chinensis Linné, 1758 (M) - Origine : Récent, Tempérée Eu-ropéenne.

Calyptraea depressa Lamarck, 1822Pl. 15 figs 6a-6b

1822 Calyptraea depressa Lamarck : 532.1825 Calyptraea depressa Lamarck - Basterot : 71.1828a Calyptraea depressa Lamarck - Grateloup : n°21, 83.1836 Calyptraea depressa Lamarck - Grateloup : 288, pl. 2 figs 20-

24.1836 Calyptraea depressa Lamarck - Deshayes & Milne Edwards :

625.1847 Calyptraea depressa Lamarck - Grateloup : pl. 1 figs 66-68.1852 Infundibulum depressum D'Orbigny : n°1700, 91.1912 Calyptraea depressa Lamarck - Favre (1912-1918) : pl. 3 figs

24-26.1919 Calyptraea depressa Lamarck - Cossmann & Peyrot : n°275,

pl. 13 figs 13-17, pl. 14 figs 6, 34.


Crepidula Lamarck, 1799

Patella fornicata Linné, 1758 (DS ) - Origine : Récent, AtlantiqueNord-Américain.

Crepidula cochleare Basterot, 1825Pl. 15 figs 7a-7b

1825 Crepidula unguiformis Lamarck - Basterot : 70.1825 Crepidula cochleare Basterot : 71, Pl. 5 fig. 10.1828a Crepidula unguiformis Lamarck - Grateloup : n°24, 84.1836 Crepidula unguiformis Lamarck - Grateloup : 293, pl. 1 fig. 83.1847 Crepidula unguiformis Lamarck - Grateloup : pl. 1 fig. 831852 Crepidula unguis d'Orbigny : n°1711, 91.1919 Crepidula (Crypta) gibbosa mut. cochlearis Basterot - Coss-

mann & Peyrot : n°283, pl. 14 figs 12-14.1919 Crepidula (Janachus) crepidula mut. unguis d'Orbigny -

Cossmann & Peyrot : n°284, pl. 14 figs 15-21.1963 Crepidula (Janacus) crepidula Linné - Glibert : 21 (pars).1997a Crepidula unguis d'Orbigny - Lozouet : 17, figs 2-3, 4-6.

Matériel examiné : 1 spm. coll. Daney.

A la différence de COSSMANN & PEYROT (1919),nous avons admis une seule espèce de Crepidula dansle Miocène inférieur d'Aquitaine ; en effet, les caractè-res distinctifs qu'évoquent ces deux auteurs pour sépa-rer C. cochleare de C. unguis (crochet plus pointu etplus dévié, galbe plus renflé) n'ont aucune constance. C.cochleare est commun dans certains sites, par exempledans le Burdigalien de Saucats (La Coquillère) ou dansl'Aquitanien de Meilhan (Vives). Dans ce dernier site,les Crepidula sont souvent récoltées encore plaquées àl'intérieur des ouvertures de gros gastéropodes (Murici-dae en particulier). On retrouve donc la relation decommensalisme bien connue chez l'espèce actuelle C.unguiformis qui s'installe dans les coquilles de gastéro-podes habitées par des Pagures (LOZOUET 1997a). Lestraces laissées par C. cochleare sur le bord columellaireou labral des gastéropodes sont très ténues, contraire-ment à celles constatées par BONGRAIN (1995) sur des


Pectinidae du Serravallien et qui sont attribuées à unCapulidae. Les Capulidae comme les Calyptraeidaesont des gastéropodes filtreurs et bénéficient des mou-vements de leur hôte qui leur procurent ainsi la nourri-ture.

Trochita Schumacher, 1817

Patella trochiformis Gmelin, 1791 (DO) - Origine : Récent, Ouest-Africaine.

Trochita costaria (Grateloup, 1828)Pl. 15 figs 5a-5c

1828a Calyptraea costaria Grateloup : n°18, 82.1836 Calyptraea costaria Grateloup - Grateloup : 286, pl. 2 figs 13-

14.1847 Calyptraea costaria Grateloup - Grateloup : pl. 1 figs 60-63.1852 Infundibulum costarium D'Orbigny : n°1699, 91.1919 Calyptraea (Trochatella) costaria Grateloup - Cossmann &

Peyrot : n°281, pl. 13 fig. 34, pl. 14 fig. 24.1975 Calyptraea (Trochita) costaria Grateloup - Vokes : 165, pl. 1

figs 3-4.


VOKES (1975) signale Trochita costaria ainsi queT. ornata (Basterot, 1825) dans le Miocène inférieur deFloride (Chipola Formation), les figures qu'elle donnes'accordent bien avec la définition de ces deux espèces.Il a été montré (TAYLOR & SMYTHE 1985) que le genre

Trochita avait actuellement une répartition ponctuellemondiale qui coïncidait avec les zones d'upwellings.Cette particularité peut expliquer la présence de ces es-pèces des deux côtes de l'Atlantique au Miocène infé-rieur.

Superfamille VANIKOROOIDEA Gray J.E., 1840

Famille VANIKORIDAE Gray, 1840

Megalomphalus Brusina, 1871

Stomatia azonea Brusina, 1864 (M) - Origine : Récent, Adriatique.

Megalomphalus aturensis (Cossmann & Peyrot, 1919)Fig. 10d

1919 Micreschara (Macromphalina) aturensis Cossmann & Peyrot :n°302, pl. 12 figs 52-53.


C'est avec doute que nous rapportons à cette espèceles deux exemplaires cassés de Lariey. Nous avons sui-vi BOUCHET & WARÉN (1988) pour le classement géné-rique et familiale.

Fig. 10 – a-b Styliferina disjuncta n. sp. a : profil du labre, b : H= 2,2 mm - c Scaliola degrangei Cossmann &Peyrot, 1919 H= 3,3 mm - d Megalomphalus aturensis (Cossmann & Peyrot, 1919) H= 0,9 mm - e Chevallieria sp.H= 1,3 mm - f Pseudocirsope sp. H= 2,7 mm [Lariey, coll. Favia & Lozouet].


Famille HIPPONICIDAE Troschel, 1861

Hipponyx Defrance, 1819

Patella cornucopiae Lamarck, 1822 (DS Gray, 1847) - Origine :Eocène du Bassin de Paris.

Hipponyx bistriatus (Grateloup, 1836)Pl. 15 fig. 4

1836 Pileopsis bi-striata Grateloup : 283, pl. 1 figs 44-47.1847 Pileopsis bi-striata Grateloup - Grateloup : pl. 1 figs 44-47.1852 Capulus bistriatus D'Orbigny : n°1691, 91.1874a Pileopsis bistriatus Grateloup - Benoist : n°245, 273.1919 Hipponyx bistriatus Grateloup - Cossmann & Peyrot : n°297,

pl. 14 figs 65-66, pl. 15 figs 1-3.


Hipponyx grateloupi Benoist, 1874Pl. 15 fig. 2

1874a Hipponyx grateloupi Benoist : n°239, 272.1919 Hipponyx grateloupi Benoist - Cossmman & Peyrot : n°298, pl.

15 figs 4-8.


Hipponyx striatulus (Deshayes, 1830)Pl. 16 figs 2a-2b

1828a Pileopsis retortella Lamarck - Grateloup : n°15, 81.1830 Pileopsis striatulus Deshayes : 156.1836 Pileopsis aquensis Grateloup : 281, pl. 1 figs 36-39.1836 Pileopsis striatulus Deshayes - Deshayes & Milne Edwards :

614.1847 Pileopsis aquensis Grateloup - Grateloup : pl. 1 figs 36-39.1852 Capulus aquensis D'Orbigny : n°1690, 91.1919 Capulus striatulus (Deshayes) - Cossmann & Peyrot : n°290,

pl. 14 figs 50-53.


Hipponyx sulcatus (Borson, 1820)Pl. 15 fig. 3

1820 Patella sulcatus Borson : 185.1825 Hipponyx granulatus Basterot : 72, Pl. 4 fig. 14.1836 Pileopsis granulosa Grateloup : 279, pl. 1 figs 29-30.1847 Pileopsis granulosa Grateloup - Grateloup : pl. 1 figs 29-30.1852 Capulus granulosus D'Orbigny : n°1688, 91.1852 Capulus sulcatus D'Orbigny : n°1695, 91.1874a Hippponyx sulcatus (Borson) - Benoist : n°240, 272.1895a Gadinia sulcata (Borson) - Cossmann : Essais 1, 145, pl. 6

figs 20-22.1919 Hipponyx sulcatus (Borson) - Cossmann & Peyrot : n°299, pl.

14 fig. 64, pl. 15 figs 12-15.


Superfamille XENOPHOROIDEA Troschel, 1852

Famille XENOPHORIDAE Philippi, 1853

Xenophora Fischer von Waldheim, 1807

Xenophora laevigata Fischer de Waldheim, 1807 (DS Gray, 1847) - Ori-gine : Récent, Caraïbe.

Xenophora deshayesi (Michelotti, 1847)Pl. 16 fig. 1

1847 Phorus deshayesi Michelotti : 173.1852 Phorus deshayesi Michelotti - D'Orbigny : n°95, 7.1886 Xenophora helvetica Mayer in Dollfus & Dautzenberg : 17.1919 Xenophora deshayesi (Michelotti) - Cossmann & Peyrot :

n°270, pl. 13 figs 7-8.1949 Xenophora deshayesi (Michelotti) - Glibert : 207, pl. 12 fig.

20b (non fig.20a!).1963 Xenophora deshayesi (Michelotti) - Glibert : 24.1983 Xenophora deshayesi (Michelotti) - Ponder : 13, 14, 69.


Cette espèce s'apparente à Xenophora cumulansBrongniart, 1825 de l'Eocène et de l'Oligocène infé-rieur, elle n'avait pas encore été signalée au Miocèneinférieur bien qu'elle ait été récoltée ponctuellementdans différents gisements aquitaniens ou burdigaliens(St-Paul-lès-Dax "Cabanes", Mérignac, Meilhan "Car-rière Vives"...). Nous avons suivi l'interprétation deGLIBERT (1963) qui corrige celle de GLIBERT (1949). Ilest à signaler que COSSMANN & PEYROT (1918) ont seu-lement figuré un jeune individu provenant du Miocènemoyen de Manciet (Gers). PONDER (1983) inclut cetteespèce dans un ensemble qu'il dénomme "conchylio-phora group".

Superfamille CYPRAEOIDEA Rafinesque, 1815

Famille CYPRAEIDAE Rafinesque, 1815

Fossacypraea Schilder, 1939

Cypraea hieroglyphica Schilder, 1923 - Origine : Miocène moyen deParatéthys.

Fossacypraea apiceproducta (Cossmann & Peyrot,1923)

Pl. 16 figs 4, 5a-5b

1923 Cypraea (Bernayia) fabagina var. apiceproducta Cossmann &Peyrot : n°670, Pl. 9 figs 7-8.

1927 Zonarina (Pseudozonarina) daxensis Schilder : 116.1932a Pseudozonaria apiceproducta apiceproducta (Cossmann &

Peyrot) - Schlider : 173.1932a Pseudozonaria apiceproducta daxensis - Schilder : 173.1971 Fossacypraea apiceproducta (Cossmann & Peyrot) - Schilder

& Schilder : 39.2000 Fossacypraea extusdentata apiceproducta (Cossmann &

Peyrot) - Fehse : 26-27, figs.



L'espèce est abondante à Lariey et particulièrementbien conservée. C'est probablement l'une des rares es-pèces de Cypraeidae ayant vécu à proximité du dépôt.Selon Luc Dolin (comm. pers.), elle est très proche deCypraea fabagina Lamarck, 1810.

Fossacypraea eburnina (Grateloup, 1847)Pl. 16 figs 6a-6b

1834b Cypraea pseudo scarabeus Grateloup : 311.1847 Cypraea annulus Brocchi var E. eburnina Grateloup : pl. 46

figs 10a-b.1847 Cypraea pseudo scarabeus Grateloup - Grateloup : pl. 41 fig.

22.1852 Cypraea pseudo-scarabeus Grateloup - d'Orbigny : n°803, 49.1923 Cypraea (Bernayia) pseudo-hirundo d'Orbigny - Cossmann &

Peyrot : n°677, pl. 10 figs 28-30.1932a Pseudozonaria pseudoscarabaeus (Grateloup) - Schilder :

172.1971 Fossacypraea pseudoscarabaeus (Grateloup) - Schilder &

Schilder : 39.


Jousseaumea Schilder, 1927

Cypraea sublynchoides d'Orbigny, 1852 (DO) - Origine : Miocèneinférieur d'Aquitaine.

Jousseaumea diluviana (Gray, 1824)Pl. 16 fig. 7

1824 Cypraea diluviana Gray : 149.1923 Cypraea sublynchoides d'Orbigny - Cossmann & Peyrot :

n°664, pl. 9 figs 17-18.1927 Jousseaumea pseudodiluviana Schilder : 100.1932a Jousseaumea diluvian diluviana (Gray) - Schilder : 145.1971 Jousseaumea diluvian diluviana (Gray) - Schilder & Schilder :

39.2000 Jousseaumea diluvian diluviana (Gray) - Fehse : 21, figs.


Lyncina Troschel, 1863

Cypraea lynx Linné, 1758 (DS Tryon, 1883) - Origine : Récent, In-do-Ouest-Pacifique.

Lyncina peyroti (Schilder, 1932)Pl. 17 fig. 3

1923 Cypraea (Cavicypraea) subovum d'Orbigny - Cossmann &Peyrot : n°666, pl. 10 figs 1-2 (pars).

1932b Callistocypraea peyroti Schilder : 25.1932a Callistocypraea (Miolyncina) peyroti Schilder - Schilder :

132.1971 Miolyncina peyroti (Schilder) - Schilder & Schilder : 31.1991 Lyncina peyroti (Schilder) - Dolin : 30.2000 Miolyncina peyroti (Schilder) - Fehse : 32, figs.


Lyncina tumida (Grateloup, 1834)Pl. 17 figs 1-2

1834b Cypraea tumida Grateloup : n°581, 304.1847 Cypraea tumida (Grateloup) - Grateloup : pl. 40 fig. 5.1852 Cypraea tumida (Grateloup) - d'Orbigny : n°792, 48.1923 Cypraea (Cavicypraea) sublynchoides var. grateloupi - Coss-

mann & Peyrot : n°665, pl. 9 figs 13-14.1932a Callistocypraea (Miolyncina) tumida (Grateloup) - Schilder :

132.1971 Miolyncina tumida (Grateloup) - Schilder & Schilder : 31.1991 Lyncina tumida (Grateloup) - Dolin : 30.2000 Miolyncina tumida tumida (Grateloup) - Fehse : 31, figs.


Mandolina Jousseaume, 1884

Cypraea gibbosa Borson, 1820 (DO) - Origine : Miocène d'Italie.

Mandolina rhomboidalis (Grateloup, 1847)

1834b Cypraea pyrula Lamarck - Grateloup : 306.1847 Cypraea rhomboidalis Grateloup : pl. 41 fig. 4.1852 Cypraea rhomboidalis Grateloup - d'Orbigny : n°809, 49.1932a Mandolina (Mandolina) rhomboidalis (Grateloup) - Schilder :

123.1942b Cypraea (Mandolina) rhomboidalis Grateloup - Magne : 31.1971 Mandolina (Mandolina) rhomboidalis rhomboidalis (Grate-

loup) - Schilder & Schilder : 26.


Prozonarina Schilder, 1941

Cypraea brocchi Deshayes, 1844 (par DO) - Origine : Miocène d'Eu-rope.

Prozonarina expansa (Grateloup, 1847)Pl. 17 figs 5a-5b

1825 Cypraea annulus Brocchi - Basterot : 40.1834b Cypraea annulus Brocchi - Grateloup : n°588, 307.1847 Cypraea brocchi var. expansa Grateloup : pl. 47 fig. 11a-b.1923 Cypraea (Bernayia) brocchi var. expansa Grateloup - Coss-

mann & Peyrot : n°672, pl. 10 figs 21-22.1971 Zonarina (Prozonarina) brocchi expansa (Grateloup) - Schil-

der & Schilder : 42.


Schilderia Tomlin, 1930

Cypraea utriculata Lamarck, 1810 (DO) - Origine : Pliocène d'Italie.

Schilderia subannularia (d'Orbigny, 1852)

1834b Cypraea annularia Brongniart - Grateloup : n°583, 305.1847 Cypraea annularia Brongniart - Grateloup : pl. 41 fig. 10.1852 Cypraea subannularia d'Orbigny : n°812, 49.1923 Cypraea brocchi var. annularia Brongniart - Cossmann &

Peyrot : n°673, pl. 10 figs 25-27.1932 Zonarina (Zonarina) subannularia d'Orbigny - Schilder : 155.1971 Zonarina (Prozonarina) subannularia subannularia (D'Orbi-

gny) - Schilder & Schilder : 42.



Trona Jousseaume, 1884

Cypraea stercoraria Linné, 1758 (DO) - Origine : Récent, Ouest-Africaine.

Trona leporina leporina (Lamarck, 1810)Pl. 17 figs 4a-4b

1810 Cypraea leporina Lamarck : 104.1825 Cypraea leporina Lamarck - Basterot : 41.1834b Cypraea leporina Lamarck - Grateloup : n°576, 302.1847 Cypraea leporina Lamarck - Grateloup : pl. 40 fig. 3.1903 Cypraea (Cavicypraea) leporina Lamarck - Cossmann : 157.1923 Cypraea (Cavicypraea) leporina Lamarck - Cossmann &

Peyrot : n°663, pl. 9 figs 11-12.1942(b) Cypraea (Cypraea) leporina Lamarck - Magne : 27.1971 Trona leporina leporina (Lamarck) - Schilder & Schilder : 32.1991 Trona leporina leporina (Lamarck) - Dolin : 22.2000 Trona leporina leporina (Lamarck) - Fehse : 33, figs.


DOLIN (1991) a décrit une Trona leporina calhou-nensis dans les Chipola Formation (Floride), l'espèceavait donc une distribution amphi-atlantique au Mio-cène inférieur.

Zonarina Sacco, 1894

Cypraea pinguis Grateloup, 1847 (DO) - Origine : Miocène inférieurd'Aquitaine.

Zonarina pinguis (Grateloup, 1847)

1847 Cypraea annulus var. pinguis Grateloup : pl. 41 fig. 23.1923 Cypraea (Bernayia) pinguis Grateloup - Cossmann & Peyrot :

n°676, pl. 10 figs 40-41.1932a Zonarina pinguis pinguis (Grateloup) - Schilder : 156.1971 Zonarina (Zonarina) pinguis pinguis (Grateloup) - Schilder &

Schilder : 42.


Famille OVULIDAE Fleming, 1822

Apiocypraea Schilder, 1927

Cypraea michaudiana Grateloup, 1847 (DO) - Origine : Miocèneinférieur d'Aquitaine.

Apiocypraea subamygdalum (d'Orbigny, 1852)

1834b Cypraea amygdalum Brocchi - Grateloup : n°528, 305.1847 Cypraea amygdalum Brocchi - Grateloup : pl. 40 figs 14-15.1852 Cypraea subamygdalum d'Orbigny : n°799, 49.1923 Cypraea (Adusta) subamygdalum d'Orbigny - Cossmann &

Peyrot : n°667, pl. 9 figs 22-23, pl. 10 fig. 5.1971 Apiocypraea subamygdalum subamygdalum (d'Orbigny) -

Schilder & Schilder : 68.


Jenneria Jousseaume, 1884

Cypraea pustulata Lightfoot, 1786 (DO) - Origine : Récent, Pana-méenne.

Jenneria duclosiana (Basterot, 1825)Pl. 17 figs 6a-6b

1825 Cypraea duclosiana Basterot : 41, pl. 4 fig. 8.1834b Cypraea duclosiana Basterot - Grateloup : n°599, 311.1847 Cypraea duclosiana Basterot - Grateloup : pl. 41 figs 28a-b.1852 Cypraea duclosiana Basterot - d'Orbigny : n°789, 48.1923 Pustularia duclosiana (Basterot) - Cossmann & Peyrot : n°693,

pl. 11 fig. 4-8.1923 Cypraea (Jenneria) duclosiana Basterot - Schilder : 97.1971 Crypropterina (Cypraeotrivia) duclosiana duclosiana (Baste-

rot) - Schilder & Schilder : 71.1997 Jenneria (Jenneria) duclosiana (Basterot) - Dolin : 24, figs 6-

7.


Superfamille LAMELLARIOIDEA d'Orbigny, 1841

Famille TRIVIIDAE Troschel, 1863

Eratopsis Hörnes & Auinger, 1880

Erato (Eratopis) barrandei Hörnes & Auinger, 1880 (DO) - Origine: Miocène moyen de Paratéthys.

Eratopsis subcypraeola (d'Orbigny, 1852)Pl. 16 fig. 3

1825 Marginella cypraeola Brocchi - Basterot : 44.1834b Marginella cypraeola Brocchi - Grateloup : n°571, 300.1847 Marginella cypraeola Brocchi - Grateloup : pl. 42 figs 33-34.1852 Erato subcypraeola d'Orbigny : n°843, 51.1923 Erato (Eratopsis?) subcypraeola d'Orbigny - Cossmann &

Peyrot : n°649, pl. 11 figs 44-51.1932a Erato (Eratopsis) hemmoorensis aquitanica Schilder : 87

(nomen nudum).1933 Erato (Eratopsis) aquitanica Schilder : 260, figs 52-53.1933 Erato (Eratopsis) subcypraeola d'Orbigny - Schilder : 272, fig.

64.1971 Erato (Eratopsis) aquitanica Schilder - Schilder & Schilder :

13.1971 Erato (Eratopsis) subcypraeola d'Orbigny - Schilder & Schil-

der : 13.


Trivia Gray, 1837

Cypraea europaea Montagu, 1802 (DO) - Origine : Récent, Tempé-rée Européenne.

Trivia burdigalensis (d'Orbigny, 1852)

1847 Cypraea sphaericulata var. minor - Grateloup : pl. 41 fig. 27b.1852 Cypraea burdigalensis d'Orbigny : n°811, 49.1971 Trivia (Trivia) burdigalensis (d'Orbigny) - Schilder & Schilder

: 16.



Superfamille NATICOIDEA Guilding, 1834

Famille NATICIDAE (NATICINAE) Guilding, 1834

Natica Scopoli, 1777

Nerita vitellus Linné, 1758 (DS Anton, 1838) - Origine : Récent,Indo-Ouest-Pacifique.

Natica crassiuscula Grateloup, 1847Pl. 18 fig. 1

1825 Natica canrena Linné - Basterot : 38.1825 Natica tigrina Defrance : 257 (non Röding 1798)1828b Natica tigrina Defrance - Grateloup : n°142, 155.1847 Natica tigrina var. A. ampullosa : Grateloup : pl. 9 figs 10-11.1847 Natica tigrina var. B. crassiuscula Grateloup : pl. 9 figs 12-13.1847 Natica tigrina var. C. ovata Grateloup : pl. 9 fig. 14.1847 Natica tigrina var. D. millepunctata Grateloup. pl. 10 figs 2-3

(non Lamarck).1847 Natica tigrina var. E. immaculata Grateloup : pl. 10 fig. 4 (non

Totteny, 1835).

1847 Natica tigrina var. F. punctulata Grateloup : pl. 10 fig. 5 (nonTotteny, 1835).

1852 Natica tigrina Defrance - D'Orbigny : n°548, 37.1873a Natica aquitanica Tournouër : 154.1873b Natica aquitanica Tournouër - Tournouër : 292, pl. 10 fig. 6.1919 Natica tigrina Defrance - Cossmann & Peyrot : n°233, pl. 11

figs 1, 9-10.1919 Natica aquitanica Tournouër - Cossmann & Peyrot : n°244, pl.

11 figs 18-19.


Le binom Natica tigrina ne pouvait être repris dansle cadre du Cénozoïque aquitain. En effet, RÖDING

(1798, p. 147, n°1843) a créé pour une Natice actuellede l'Indo-Ouest-Pacifique un "Cochlis tigrina" large-ment utilisé de nos jours sous le binom Natica tigrina(voir par exemple WILSON 1993 p. 217). Dans sa des-cription originale, ici reproduite, DEFRANCE (1825,257) a indiqué plusieurs localités pour sa Natica tigrina:

"Natice tigrée ; Natica tigrina, def. On trouve dansle Plaisantin, dans le Piémont aux environs de Sienne etde Bordeaux, une espèce de ce genre qui a près de deuxpouces de longueur sur un pouce et demi de diamètre,et qui a de si grands rapports avec la natice mille-points, Natica millepunctata, Lamck., que l'on recontreà l'état vivant dans la Méditerranée, qu'on pourroit laregarder comme identique avec elle, si les taches dontcette dernière étoit couverte, n'étoient pas beaucoupplus petites que celles qu'on voit encore sur les coquil-les fossiles de cette espèce".

Dès 1828, GRATELOUP utilise le nom tigrina pourune espèce du Miocène inférieur de St-Paul-lès-Daxqu'il figure abondamment en 1847. D'ORBIGNY (1852)interprète le nom tigrina dans le même sens que Grate-loup. A la suite de quoi COSSMANN & PEYROT (1919)ont considéré que le binom Natica tigrina devait êtreréservé à l'espèce du Miocène inférieur d'Aquitaine.Cependant, Natica tigrina a été si largement employé

dans le Pliocène méditerranéen que son utilisation ex-clusive pour le Miocène inférieur d'Aquitaine était peuconcevable.

Les différents noms introduits par GRATELOUP

(1847) semblent les plus anciens disponibles. Parmiceux-ci le vocable crassiuscula nous semble le mieuxconvenir, la figure de Grateloup est en effet tout-à-faitconforme à l'espèce Natica tigrina telle que générale-ment comprise dans le Miocène aquitain. Natica tigrinasensu Grateloup, sensu Cossmann & Peyrot devraitdonc prendre le nom de Natica crassiuscula Grateloup,1847.

En dépit de la mauvaise conservation de nos spé-cimens, ils se rapportent sans ambiguïté au groupe deNatica crassiuscula (=Natica tigrina Defrance sensuCossmann & Peyrot) et Natica aquitanica plutôt qu'àcelui de N. burdigalensis Mayer, 1864 ou de N. saucat-sensis Mayer, 1864 (MAYER 1864b) qui comportent desespèces moins massives et possèdent un test plus mince.Natica aquitanica se différencie de N. tigrina sensuCossmann & Peyrot, 1919 par sa forme plus dépriméeet sa callosité columellaire étendue. Ces différences nesemblant pas constantes, nous avons préféré, pourl'instant, réunir les deux formes.

Natica neglecta Mayer, 1859Pl. 18 fig. 2

1859 Natica neglecta Mayer : 388, pl. 11 fig. 2.?1919 Natica saucatsensis mut. avitensis Cossmann & Peyrot :

n°237, pl. 11 figs 15-17.1919 Natica neglecta Mayer - Cossmann & Peyrot : n° 238, pl. 11

figs 11-14.


Natica parvuloides Cossmann & Peyrot, 1919Pl. 18 figs 3a-3b

1919 Natica (Tectonatica) parvuloides Cossmann & Peyrot : n°247,pl. 11 figs 26-27.


Cette petite espèce s'apparente à Natica angyglossaCossmann & Peyrot, 1919 du Burdigalien aquitain(COSSMANN & PEYROT 1919 n°242, pl. 11 figs 49-52)mais s'en distingue par un ombilic plus ouvert, jamaiscomplètement recouvert par le callus, où l'on distingueun gros funicule. Elle est aussi de taille et de formecomparable à Polinices turbinoides mais cette dernièreprésente un ombilic totalement dépourvu de funicule.

Famille NATICIDAE (POLINICINAE) Gray, 1847

Neverita Risso, 1826

Neverita josephinia Risso, 1826 (M) - Origine : Récent, TempéréeEuropéenne.


Neverita semiglobosa (Grateloup, 1847)Pl. 18 figs 8a-8b

1825 Natica glaucina Lamarck - Basterot : 38.1828b Natica glaucinoides Deshayes - Grateloup : n°138, 153.1847 Natica glaucinoides Deshayes - Grateloup : pl. 10 figs 9-13.1847 Natica glaucinoides var. A semiglobosa Grateloup : pl. 10 figs

9-10.1847 Natica glaucinoides var. B depressa Grateloup : pl. 10 figs 11-

12.1847 Natica glaucinoides var. C excavata Grateloup : pl. 10 fig. 13.1852 Natica subglaucinoides d'Orbigny : n°551, 37.1919 Neverita olla subglaucinoides (d'Orbigny) - Cossmann &

Peyrot : n°248 (n°4), Pl. 11 figs 52-54, pl. 12 figs 11-15.


Le vocable semiglobosa proposé par GRATELOUP

(1847) est accompagné d'une courte description et d'unefigure, il n'y a donc pas lieu de le remplacer par sub-glaucinoides de D'ORBIGNY (1852).

Polinices Montfort, 1810

Polinices albus Montfort, 1810 (DO) - Origine : Indo-Ouest-Pacifique.

Polinices benoisti (Cossmann & Peyrot, 1919)Pl. 18 figs. 4a-4b

1919 Natica (Lunatia) benoisti Cossmann & Peyrot : n°251, pl. 11figs 28-31.


Polinices turbinoides (Grateloup, 1828)

1828b Natica turbinoides Grateloup : n°145, 157.1847 Natica turbinoides Grateloup - Grateloup : pl. 10 figs 25-26.1852 Natica turbinoides Grateloup - D'Orbigny : n°554, 37.1919 Natica (Lunatia) turbinoides Grateloup - Cossmann & Peyrot :

n°252, pl. 11 figs 32-34.


Famille NATICIDAE (SININAE) Woodring, 1928

Eunaticina Fischer, 1855

Nerita papilla Gmelin, 1791 (M) - Origine : Récent, Indo-Ouest-Pacifique.

Eunaticina striatella (Grateloup, 1828)Pl. 18 fig. 5

1828b Natica sulcata Grateloup : n°145, 157.1828b Natica striatella Grateloup : n°146, 158.1843 Sigaretus sulcatus Recluz in Chenu : 9, pl. 1 figs 6c-d.1843 Sigaretus gratelupianus Recluz in Chenu : 9, pl. 1 figs 6a-b.1847 Natica sulcata Grateloup : pl. 10 figs 22-23.1847 Natica striatella Grateloup - Grateloup : pl. 10 fig. 24.1851 Sigaretus desmoulinsianus Recluz : 182.1852 Natica striatella Grateloup - d'Orbigny : n°553, 37.1864a Sigaretus suturalis Mayer : 360, Pl. 14 fig. 8.1919 Sigaretus (Sigaretotrema) striatellus (Grateloup) - Cossmann

& Peyrot : n°258, pl. 12 figs 49-50.1997 Sigaretus desmoulinsianus Recluz - Kabat, Finet & Way : 19.1997 Sigaretus gratelupianus Recluz - Kabat, Finet & Way : 20.


Le nom S. desmoulinsianus a été proposé parRECLUZ (1851) à la place de S. sulcatus Recluz pourune coquille provenant de l'Aquitanien de Maïnot (St-Paul-lès-Dax, Landes). L'espèce S. gratelupianus Re-cluz a été décrite d'après un exemplaire provenant deSt-Jean-de-Marsacq donc de dépôts probablement d'âgeBurdigalien supérieur.

Sinum Röding, 1798

Helix haliotidea Linné, 1758 (DS Dall, 1915) - Origine : Indo-Ouest-Pacifique.

Sinum faviai n. sp.Pl. 18 figs 7a-7c

Locus typicus : Saucats (Lariey).Stratum typicum : Miocène inférieur (Aquitanien), falunà Ervilia.Derivatio nominis : dédiée à Raymond Favia qui a dé-couvert cette espèce.Holotypus (MNHN) ; paratypes (coll. MNHN) : Aqui-tanien, Landes, Meilhan (Vives, 2 spm.).Dimensions (Holotype) : Dmax= 14 mm ; H= 4,6 mm

Description : Coquille de taille moyenne, à test très fin,auriforme, surbaissée, composée d'un peu plus d'un touret demi de téléoconque séparé par une suture marquée.La protoconque compte un peu moins de 2,25 tours ;elle est lisse et fait légèrement saillie au-dessus de laspire. La sculpture de la téléoconque se compose denombreuses stries d'accroissement, relativement forteset serrées, recoupées par des cordons spiraux irrégulierset fins. L'ouverture est très large et occupe l'essentiel dela partie abapicale ; le labre est mince et tranchant ; lapartie pariétale est légèrement calleuse ; la columelletrès fine, concave, est recouverte d'une faible inducturaen sa partie adapicale qui déborde dans la dépressionombilicale qu'elle contribue à combler.

Discussion : Sinum faviai se distingue de Sinum stria-tum (de Serres, 1829) (DE SERRES 1829, p. 127, pl. 3figs 13-14) par son galbe plus auriforme et ses cordonsspiraux plus faibles. La protoconque de S. faviai estaussi plus saillante (d'après l'examen de S. striatumprovenant du Serravallien d'Orthez, Le Paren). Sinumstriatum est une espèce largement répandue dans leMiocène moyen (voir BALUK 1995, 200, pl. 15 fig. 1)et dans le Pliocène européen. Pour COSSMANN &

PEYROT (1919 n°257) elle aurait pour ancêtre directSinum patulum. Dans l'évolution de cette lignée on ob-serve, selon ces auteurs, un aplatissement progressif de


la spire. L'espèce méditerranéenne et ouest-africaineSinum bifasciatum (Récluz, 1851) (voir RUEDA &GOFAS 1999) serait un proche parent. Parmi les nom-breuses variétés de S. striatus désignées par SACCO

(1891), on note Cryptostoma striatum var. perelliptica(SACCO 1891, 104, pl. 1 fig. 74) du Pliocène qui est re-présentée avec un galbe presque aussi auriforme que S.faviai mais semble sculptée de cordons plus marqués.

Sinum patulum (Grateloup, 1847)Pl. 18 fig. 6

1825 Sigaretus canaliculatus (Sowerby) - Basterot : 70.1847 Sigaretus haliotideus - Grateloup : pl. 48 figs 19a-b.1847 Sigaretus haliotideus var. B patula Grateloup : pl. 48 fig. 20.1851 Sigaretus aquensis Recluz : 184.1852 Sigaretus subcanaliculatus d'Orbigny : n°589, 39.1919 Sigaretus aquensis Recluz - Cossmann & Peyrot : n°256, pl. 12

figs 47-48.1919 Sigaretus aquensis Recluz - Cossmann : 143, pl. 4 figs 23-24.


COSSMANN & PEYROT ont attribué à cette espèce lenom aquensis Recluz in Deshayes 1843, GLIBERT

(1963) l'attribue à Recluz in Chenu 1843. Nous n'avonspas trouvé trace du Sigaretus aquensis Recluz ni dansCHENU (1842-1853), ni dans DESHAYES (1857). Dansce dernier travail le seul Sigaretus décrit (recluzianusDESHAYES 1857 : pl. 73bis figs 14-15) est figuré sansprovenance. Enfin, D'ORBIGNY (1852) n'en fait pasmention de même que SHERBON (1922-1931). En re-vanche, RECLUZ a bien introduit un nom aquensis pourSigaretus haliotideus Grateloup mais en 1851. Dès lors,le nom le plus ancien disponible apparaît être celui deGrateloup que nous reprenons donc. ANDERSON

(1960b) a noté également l'erreur de Cossmann &Peyrot mais a utilisé le nom de Recluz de 1851.

Superfamille TONNOIDEA Suter, 1913

Famille CASSIDAE (PHALIINAE) Beu, 1981

Semicassis Mörch, 1852

Cassis japonica Reeve, 1848 (DS Harris, 1897) - Origine : Récent,Japon.

Semicassis grateloupi (Deshayes, 1853)

1817 Cassis diadema Defrance : 210.1825 Cassis saburon (Bruguière) - Basterot : 51.1833 Cassis diadema Defrance - Grateloup : 166.1834 Cassis saburon (Bruguière) var a - Grateloup : n°485, 201.1838e Cassis saburon (Bruguière) - Grateloup : n°294, 42.1847 Cassis saburon (Bruguière) - Grateloup : pl. 34 fig. 16.1847 Cassis saburon (Bruguière) - Grateloup : pl. 34 fig. 16.1847 Cassis laevigata Defrance - Grateloup : pl. 34 fig. 17.1847 Cassis texta var. B sulcosa Grateloup : pl. 48 figs 25, 27 (non

Bruguière).1852 Cassis laevigata Gratteloup - D'Orbigny : n°1674, 90.1853 Cassis grateloupi Deshayes : 69 ; Pl. 116 fig. 2.

?1924 Semicassis dumasi Cossmann & Peyrot : n°709, pl. 11 figs 42-43.

1924 Semicassis grateloupi (Deshayes) - Cossmann & Peyrot :n°711, pl. 12 figs 34-35.

1924 Semicassis grateloupi var. diadema (Grateloup) - Cossmann &Peyrot : n°713, pl. 11 figs 37-39.


Le Cassis diadema décrit par DEFRANCE (1817)porte deux rangées de tubercules ; sa provenance estinconnue, toutefois Defrance fait référence à Buccinumdiadema Brocchi, 1815 du Pliocène italien et signaleposséder un jeune individu de "Laugnan" (Léognan)avec une seule rangée de tubercules. Du fait de l'incer-titude de la provenance, il n'est pas souhaitable d'utili-ser le nom Cassis diadema au sens de Grateloup. En ac-cord avec A. Beu (comm. pers.) nous interprétons Cassisdiadema sensu Grateloup comme une forme de Semicas-sis grateloupi. Par ailleurs, aucun des noms utilisés parGRATELOUP (1847) pour désigner cette espèce ne peutêtre repris. Le vocable C. saburon s'applique à une es-pèce actuelle de Méditerranée, C. sulcosa est préoccupéet Cassis laevigata a été décrit par DEFRANCE (1817)d'après un spécimen du Pliocène d'Italie. A la suite deCOSSMANN & PEYROT (1909-1924) la plupart des auteursont utilisé le nom de Deshayes (Cassis grateloupi) carces derniers ont daté de 1850 l'introduction de ce nom.Or, COX (1942) a montré que la partie des légendes oùest introduit pour la première fois le Cassis grateloupi(Deshayes 1839-1853) est parue en 1853. Finalement, lenom le plus ancien serait donc celui proposé parD'ORBIGNY (1852 : Cassis subgranulosa) pour le Cassisgranulosa sensu Grateloup, 1847 (nom Lamarck) quijusqu'à présent a été considéré comme un synonyme deCassis grateloupi. Cependant l'examen du spécimen typede Cassis granulosa sensu Grateloup indique que cetteespèce est très probablement un synonyme de Cassis in-crassata Grateloup, 1833.

Famille RANELLIDAE (BURSINAE) Thiele, 1925

Bursa Röding, 1798

Bursa monitara Röding, 1798 (DS Jousseaume, 1881) - Origine :Récent, Indo-Ouest-Pacifique.

Bursa tuberosa (Grateloup, 1833)Pl. 19 figs 3a-3b

1833b Ranella tuberosa Grateloup : n°420, 92.1847 Ranella tuberosa - Grateloup : pl. 29 fig. 7.1852 Ranella subtuberosa d'Orbigny : n°1405, 76.1872 Ranella tuberosa Bonelli (m.s.) - Bellardi : 236, pl. 15 fig. 7.1924 Apollon pelouatensis Cossmann & Peyrot : n°842, pl. 15 figs

38-39, pl. 17 figs 1-2.



Ainsi que l'ont indiqué FERRERO MORTARA et al.(1982), Ranella tuberosa Bonelli est un simple nom ma-nuscrit, nous reprenons donc le nom proposé par Grate-loup au lieu du R. subtuberosa d'Orbigny, 1852.COSSMANN & PEYROT (1924) ont donné une interpréta-tion peu crédible de cette espèce. Selon eux, il s'agiraitd'un Cymatinae alors que la figure de GRATELOUP (1847)représente sans ambiguïté la Bursa commune des falunsmiocènes de St-Paul-lès-Dax. Eutritonium subtuberosumsensu Cossmann & Peyrot, 1924 correspond à Sassiatransiens (Baldi, 1973) une espèce connue dans l'Oligo-cène supérieur de Hongrie (BALDI 1973) et d'Aquitaine.C'est cette erreur d'interprétation qui a conduit ces deuxauteurs a créer leur Apollon pelouatensis.

Famille RANELLIDAE (CYMATIINAE)) Iredale, 1913

Charonia Gistel, 1848

Murex tritonis Linné, 1758 (M) - Origine : Récent, Indo-Ouest-Pacifique.

Charonia lampas ventricosa (Grateloup, 1833)

1833c Triton ventricosum Grateloup : n°449, 162.1847 Triton ventricosum Grateloup - Grateloup : pl. 29 fig. 17.1852 Triton ventricosum Grateloup - D'Orbigny : n°1423, 77.1924 Eutritonium (s. str.) ventricosum (Grateloup) - Cossmann &

Peyrot : n°814, pl. 15 figs 24-25.1924 Eutritonium salbriacense Cossmann & Peyrot : n°815, pl. 16

figs 3-4.1924 Eutritonium (Sassia) aperturale Cossmann & Peyrot : n°827,

pl. 17 figs 10-11, 16.1973 Charonia ventricosa (Grateloup) - Magne & Vergneau-

Saubade, 1 (pars).1998 Charonia ventricosa (Grateloup) - Lozouet : 94, fig. 17c.1999 Charonia crassa (Grateloup) - Lozouet : 17, pl. 8 fig. 16.1999 Charonia ventricosa (Grateloup) - Lozouet : 17, pl. 8 fig. 17.


Nous avons adopté en partie l'opinion de BEU

(1998) qui considère que Charonia ventricosa est unsynonyme de l'espèce actuelle Charonia lampas (Linné,1758).

Cymatiella Iredale, 1924

Triton verrucosa Reeve, 1844 (DO) - Origine : Récent, sud de l'Aus-tralie.

Cymatiella tritonea (Grateloup, 1847)Pl. 19 fig. 2

1847 Murex tritoneum Grateloup : pl. 29 fig. 23.1852 Triton tritonium d'Orbigny : n°1427, 78.1924 Eutritonium (Sassia) tritoneum (Grateloup) - Cossmann &Peyrot : n°826, pl. 15 figs 50-51, pl. 16 figs 21-22.


Cymatium Röding, 1798

Murex femorale Linné, 1758 (DS ) - Origine : Récent, Caraïbe.

Cymatium subcorrugatum (d'Orbigny, 1852)Pl. 19 fig. 1a-1b

1847 Triton corrugatum Lamarck - Grateloup : pl. 29 figs 18-19.1852 Triton subcorrugatum d'Orbigny : n°1424, 77.1924 Eutritonium (Lampusia) subcorrugatum (d'Orbigny) - Coss-

mann & Peyrot : n°817, pl. 16 figs 23-24.1924 Eutritonium (Lampusia) aquitanicum Cossmann & Peyrot :

n°818, pl. 16 figs 7-9.1924 Eutritonium (Lampusia) doliaroides Cossmann & Peyrot :

n°819, pl. 15 figs 48-49.1924 Ranularia multicostata Cossmann & Peyrot : n°830, pl. 17 figs

14-15.1924 Ranularia duvergieri Cossmann & Peyrot : n°831, pl. 16 figs

30-31.


L'examen d'un matériel important comprenant lestypes de la coll de Sacy et de la coll. Cossmann, nousconduit, en accord avec A. Beu (comm. pers), à mettreen synonymie la plupart des espèces d"Eutritonium" etde "Ranularia" créées pas Cossmann et Peyrot.

Superfamille FICOIDEA Meek, 1864

Famille FICIDAE Meek, 1864

Ficus Röding, 1798

Murex ficus Linné, 1758 (DS Dall, 1906) - Origine : Récent, Indo-Ouest-Pacifique.

Ficus conditus (Brongniart, 1823)

1823 Pyrula condita Brongniart : 75, Pl. 6 fig. 4.1825 Pyrula condita Brongniart - Basterot : 67.1833 Pyrula condita Brongniart - Grateloup : n°412, 46.1847 Pirula condita Brongniart - Grateloup : pl. 28 figs 9-10.1847 Pirula condita var. ventricosa Grateloup : pl. 27 figs 8-9.1852 Pyrula condita Brongniart - D'Orbigny : n°1279, 70.1853 Ficula condita Brongniart - Deshayes : 64, pl. 106 figs 4-5.1923 Pirula condita Brongniart - Cossmann & Peyrot : n°699, pl. 10

fig. 46.1923 Pirula condita var. ventricosa Grateloup - Cossmann & Peyrot

: n°700, pl. 11 fig. 13.1923 Pirula subclathrata (d'Orbigny) - Cossmann & Peyrot : n° 702,

pl. 11 figs 9-10.


RIEDEL (1994) a retiré les Ficidae des Tonnoideapour les ranger dans la superfamille des Ficoidea qu'ilredéfinit à cette occasion.


Infra-Ordre PTENOGLOSSA Gray, 1853

Superfamille TRIPHOROIDEA Gray J.E., 1847

Famille CERITHIOPSIDAE H. & A. Adams, 1853

Cerithiella Verrill, 1882

Cerithium metula Lovén, 1842 (DO) - Origine : Récent, TempéréeEuropéenne.

Cerithiella? sp.Pl. 19 fig. 14


Cerithiopsis Forbes & Hanley, 1851

Murex tubercularis Montagu, 1803 (DO) - Origine : Récent, Tempé-rée Européenne.

Cerithiopsis eopachus n. sp.Pl. 20 figs 1a-1b, 2

Locus typicus : Saucats (Lariey).Stratum typicum : Miocène inférieur (Aquitanien), falunà Ervilia.Derivatio nominis : du grec, allusion aux larges etépaisses côtes axiales de la protoconque.Holotypus (MNHN-Paris) ; paratypes, Lariey : 4 spm.,coll. Favia & Lozouet.

Autres matériels examinés : 9 spm. coll. Favia & Lo-zouet (Lariey) ; 3 spm., Meilhan (Vives) coll. MNHN-Paris.

Dimensions (Holotype) : H= 2,85 mm ; Dmax.= 0,9mm.

Description : La coquille, de petite taille, allongée,turriculée, possède un test épais. Elle compte 5tours 1/4 de téléoconque, convexes, séparés parune large zone suturale. Dès le premier tour de té-léoconque se développent trois cordons spirauxdotés de gros granules ; le premier, le plus faible(en position adapicale par rapport au tour) longe lasuture ; le second occupe la partie médiane du tour; enfin le troisième, limite la rampe suturale. 14 à15 côtes axiales par tour, pratiquement orthoclineset presque aussi larges que les cordons spiraux, ré-unissent les granules ; l'ensemble forme un réseaude grosses mailles quadrangulaires. Sur le derniertour apparaît un quatrième cordon à peine granu-leux qui délimite la base ; celle-ci est légèrementconvexe et ne comporte que des stries d'accroisse-ments. L'ouverture est de forme quadrangulaire, lelabre fin est de direction presque orthocline la co-lumelle qui apparaît légèrement torsadée, est limi-tée du reste de la base par une rainure spirale ; elle

forme un canal très court faiblement infléchi seraccordant avec une large échancrure de la partieabapicale de l'ouverture.

La protoconque (H= 470 µm ; Dmax= 260 µm)compte 3 tours 1/2 ; la protoconque I (apex) sem-ble lisse ; la protoconque II est sculptée par de lar-ges côtes axiales de direction prosocline ; on de-vine la trace de fins filets flexueux (opisthoclines)entre les côtes.

Discussion : Par sa forme générale, sa base lisselimitée par un cordon, sa protoconque sculptée pardes côtes axiales, C. eopachus évoque les espècesactuelles européennes C. barleei Jeffreys, 1867 etC. scalaris Locard, 1892 (voir TRINGALI 1999).Toutefois, les côtes axiales que portent C. eopa-chus sont beaucoup plus fortes et vigoureuses. Plu-sieurs espèces miocènes ont une téléoconquesculptée comme C. eopachus de trois rangées decordons spiraux ; ainsi pour le miocène nordiqueon relève Cerithiopsis vogeli Janssen, 1967, C.vandemarki Janssen, 1967, C. andersoni Janssen,1967 (voir A.W. JANSSEN 1967) et pour le Mio-cène d'aquitaine Cerithiopsis vignali mais, ces dif-férentes espèces, possèdent une protoconque mul-tispirée lisse.

Cerithiopsis cf. pseudomanzonii Boettger, 1906Pl. 19 fig. 15

1906 Cerithiopsis pseudomanzonii Boettger : 146.1934 Cerithiopsis pseudomanzonii Boettger - Zilch : 146.


Les spécimens d'Aquitaine sont plus étroits queceux figurés par ZILCH (1934) qui proviennent du Mio-cène moyen d'Europe centrale.

Cerithiopsis vignali Cossmann & Peyrot, 1922Fig. 11a

1922 Cerithiopsis vignali Cossmann & Peyrot : n°622, pl. 7 figs 70-71.


Cerithiopsis sp.Fig. 11b


Cette espèce est nettement pupoïde comparée à C. vi-gnali.

Dizoniopsis Sacco, 1895

Cerithium bilineata Hörnes, 1856 (DO) - Origine : Miocène moyend'Autriche.


Fig. 11 – a Cerithiopsis vignali, H= 4,1 mm ; b Cerithiopsis sp., H= 3 mm ; c Dizoniopsis aquitaniensis, H= 4,4 mm.Lariey, coll. Favia & Lozouet.

Fig. 12 – Dizoniopsis brevicaput n. sp. Uzeste (Gamachot). Holotype (H= 3,5 mm).

Fig. 13 – Joculator maestratii n. sp., Uzeste (Gamachot). a-c holotype (H= 5,6 mm), d paratype (H= 4,5 mm).


Dizoniopsis aquitaniensis (Cossmann & Peyrot, 1922)Fig. 11c

1906 Cerithiopsis (Dizoniopsis) pupaeformis (Basterot) - Cossmann: 147, pl. 12 figs 22-24.

1922 Cerithiopsis (Dizoniopsis) aquitaniensis Cossmann & Peyrot :n°625, pl. 7 figs 53-56.


Dizoniopsis brevicaput n. sp.Fig. 12

Locus typicus : Uzeste (Gamachot).Stratum typicum : Miocène inférieur (Aquitanien), mar-no-calcaire à Porites.Derivatio nominis : allusion à la protoconque trèscourte.Holotypus (MNHN-Paris), paratypes, Gamachot : (5ex.), coll. Favia & Lozouet (MNHN-Paris).

Autres matériels examinés : 1 spm. Lariey, coll Favia &Lozouet (MNHN-Paris) ; 5 spm. Gamachot, coll.MNHN-Paris) ; 3 spm., Meilhan (Vives) coll. MNHN-Paris.

Dimensions (Holotype) : H= 3,5 mm ; Dmax= 1,4 mm.

Description : La coquille de petite taille est turriculée,trapue, son test est très épais. La téléoconque se com-pose de sept tours trois-quarts peu convexes séparés parun espace sutural assez large. La sculpture de la spirecomporte deux larges cordons spiraux (adapical : C1 ;abapical : C2) à très gros granules arrondis qui tendentà être coalescents dans le sens axial ; on compte envi-ron 18 granules par tour. Le dernier tour occupe 41%de la hauteur totale. Les cordons C1 et C2 deviennentde plus en plus coalescents axialement et quadrangulai-res en rejoignant le péristome. La base convexe est li-mitée par un cordon peu granuleux, deux autres cordonslisses, de même force, occupent le reste de la base.L'ouverture est quadrangulaire avec une columelle cou-dée ; le canal siphonal très court est muni d'une largefasciole et porte des filets spiraux ; le canal anal estprésent sous forme d'une petite encoche.

La protoconque paucispirée compte 1,5 tour avecun gros apex lisse, convexe, et se termine par un demi-tour anguleux où l'on note des costules axiales.

Discussion : Dizoniopsis aquitaniensis est une espècebeaucoup plus étroite que D. brevicaput, sa base estsubplane et sa protoconque polygirée. Dizoniopsis bili-neata du Néogène de Paratéthys est de galbe compara-ble mais sa protoconque comporte un demi-tour sup-plémentaire et présente une sculpture axiale très mar-quée (voir GRÜNDEL 1980 fig. 15). Enfin, J. maestratiise distingue par son galbe piriforme, la division du cor-don C1 sur le dernier tour et la présence d'un seul cor-don sur la base.

Joculator Hedley, 1909

Cerithium ridicula Watson, 1886 (DO) - Origine : Récent, Australie(Queensland).

Joculator maestratii n. sp.Pl. 19 fig. 10 ; Fig. 13

Locus typicus : Uzeste (Gamachot).Stratum typicum : Miocène inférieur (Aquitanien), mar-no-calcaire à Porites.Derivatio nominis : dédiée à Philippe Maestrati qui arécolté une partie du matériel.Holotypus (MNHN-Paris) ; paratypes, Gamachot : (3ex.), coll. MNHN-Paris.

Autres matériels examinés : 1 spm. coll Renard (La-riey) ; 3 spm., Burdigalien de Saucats (Peloua), coll.MNHN-Paris ; 1 spm., Aquitanien, Meilhan (Vives),coll. MNHN-Paris.

Dimensions (Holotype) : H= 5,6 mm ; Dmax.= 1,6 mm.

Description : La coquille de petite taille est piriformeallongée, son test est très épais. La téléoconque secompose de 11,5 tours peu convexes séparés par uneligne suturale peu distincte. La sculpture de la spirecomporte deux larges cordons spiraux (adapical : C1 ;abapical : C2) à très gros granules arrondis très peucoalescents ; on compte une quinzaine de granules partour. Le dernier tour qui présente une constriction mar-quée occupe 31% de la hauteur totale ; on note le dé-veloppement d'un troisième cordon granuleux (C3) quiapparaît, le long de la suture, au dépend du cordon C1 ;les granules des trois cordons deviennent de plus enplus jointifs et quadrangulaires en rejoignant le péris-tome ; C1 et C3 sont particulièrement resserrés. La baseest limitée par un cordon peu granuleux, un second cor-don lisse, plus fort, occupe sa partie médiane. L'ouver-ture est quadrangulaire avec une columelle très coudée ;le canal siphonal très court est muni d'une large fasciole; le canal anal est présent sous forme d'une petite enco-che.

La protoconque est seulement en partie visible surun paratype ; elle compte au moins deux tours ; elleprésente deux carènes spirales dans les intervalles des-quelles on devine de fines costules axiales.

Discussion : Aucun autre Cerithiopsidae décrit du Néo-gène ou de l'Oligocène aquitain ne possède le galbe pi-riforme allongée de J. maestratii.

Seila A. Adams & Reeve, 1861Triphoris dextroversa A. Adams & Reeve, 1850 (DS Dall, 1889) -

Origine : Récent, Japon.

Seila cf. infrapercincta Sacco, 1895Pl. 19 fig. 12

1895 Seila trilineata infrapercincta Sacco : 73, pl. 3 fig. 95.


1911 Cerithiopsis trilineata infrapercincta (Sacco) - Vignal : 185,pl. 9 fig. 45.

1922 Newtoniella (Seila) trilineata mut. infrapercincta (Vignal) -Cossmann & Peyrot : n°630, pl. 6 figs 84-85.


Dans la légende de leur planche COSSMANN &

PEYROT (1922, pl. 6 figs 84-85) indiquent par erreurNewtoniella (Seila) turrella Grat., var. taurotransiensSacco.

Seila sp.Pl. 19 fig. 11


Cette espèce est moins étroite que Seila cf. infra-percincta et ses cordons spiraux sont mieux marqués.

Famille TRIPHORIDAE (GROUPE TRIPHORA)Gray, 1847

Triphora (s. l.) Blainville, 1828

Triphora gemmata Blainville, 1828 (DO) - Origine : Récent, Tempé-rée Européenne.

Sur le plan familial, nous avons séparé les Tripho-rinae en deux groupes en suivant les conclusions deMARSHALL (1983) adoptées par ailleurs par MARQUET

(1996) pour les Triphoridae du Néogène de Belgique.L'identification des Triphora (s.l.) fossiles est particu-lièrement délicate, aussi les auteurs ont généralementrapporté les espèces du Miocène aquitain à T. papave-racea. On sait cependant, grâce aux études entreprisessur les espèces actuelles (BOUCHET & GUILLEMOT 1978; MARSHALL 1983 ; BOUCHET 1985), que derrière unecertaine uniformité de la coquille se cache une diversitéspécifique et générique importante. Des caractères quipeuvent apparaître comme ténus sont en fait très signi-ficatifs (la forme des granules du nucleus par exemple).Nous avons ainsi séparé 3 Triphora (s. l.) et une Inella(s. l.) dans le site de Lariey. Cependant seuls quelquesindividus ont pu être identifiés car la reconnaissancedes espèces est parfois impossible sur des spécimensmal préservés ou roulés.

Plusieurs noms ont été proposés par BENOIST

(1874a). Les descriptions succinctes qu'il donne, enl'absence du matériel type (non retrouvé dans les col-lections du Muséum de Bordeaux), ne suffisent pas àreconnaître les espèces. Nous avons donc pris le partide considérer que T. papaveracea était l'espèce la plusgrande et la plus commune. Nous avons appliqué lenom nodosoplicata à l'autre espèce commune. Le troi-sième nom proposé par BENOIST (1874a : Triforis bili-neata) est vraisemblablement synonyme de papavera-

cea ou de nodosoplicata et n'a donc pas été retenu. Ilest de même impossible pour l'instant de se prononcersur les variétés admises par COSSMANN & PEYROT

(1922) : var. benoisti, var. inflexicosta. Le nom Tripho-ra benoisti Cossmann, 1906 a été introduit en rempla-cement de Triforis bilineatus Benoist, 1874 queCOSSMANN (1906, 169 pl. 12 figs 27-28) a considéréabusivement comme préoccupé par Triforis bilineatusMeyer, 1886.

Triphora (s. l.) sp.


Le spécimen est trop incomplet pour être utilementfiguré ; il se distingue des autres Triphoridae de Larieypar ses rangées de gros tubercules spiraux.

Triphora (s. l.) nodosoplicata (Benoist, 1874)Pl. 19 fig. 16 - pl. 20 fig. 5 ; pl. 21 fig. 3

1874a Triforis nodoso plicata Benoist : 340, n°499.1922 Triphora (Ogiva) nodosoplicata (Benoist) - Cossmann &

Peyrot : n°641.


T. nodosoplicata est plus pupoïde que T. papave-racea. La protoconque se termine par deux cordonsgranuleux qui restent parallèles et sont plus rapprochésque chez T. papaveracea, il en résulte un réseau demailles plus étroit. On ne note pas de nette sinusigère.

Triphora (s. l.) papaveracea (Benoist, 1874)Pl. 19 fig. 17 - pl. 20 figs 3-4 - pl. 21 figs 2, 4

1874a Triforis papaveracea Benoist : 340, n°498.?1906 Triphora perversa (Linné) - Cossmann : 169, pl. 13 fig. 43.1922 Triphora papaveracea (Benoist) - Cossmann & Peyrot : n°638,

pl. 7 figs 83-84.


L'espèce est plus grande que T. nodosoplicata etplus étroite. La protoconque se termine par deux cor-dons spiraux granuleux qui ont tendance à se rejoindreet une nette sinusigère. Le réseau de mailles de la pro-toconque est plus large que chez T. nodosoplicata. Onnote que la coquille embryonnaire est munie de granu-les.

Famille TRIPHORIDAE (GROUPE INELLA)Gray, 1847

Inella Bayle, 1879

Triforis (Ino) gigas Hinds, 1843 (DS Jousseaume, 1884) - Origine :Récent, Indo-Pacifique.


Inella cf. fritschi (von Koenen, 1882)Pl. 21 fig. 1 ; fig. 14

1882 Cerithium fritschi von Koenen : 271, pl. 6 figs 19a-c.1984 Norephora (Norephora) fritschi (von Koenen) - A.W. Janssen :

159, pl. 7 fig. 5 ; pl. 49 fig. 14.1996 Subuliphora fritschi (von Koenen) - Marquet : 142, pl. 1 fig. 3.


Cette espèce classique du Néogène du domainenordique est signalée avec quelques doutes en Aqui-taine. Les exemplaires aquitains portent en effet desgranules plus marquées. Inella cf. fritschi est très com-mune dans l'Aquitanien des Landes (Meilhan, coll.MNHN-Paris, 50 spm.). Elle est caractérisée par le dé-veloppement dès la fin du premier tour de spire d'unetroisième rangée de tubercules spiraux. La protoconqueest aussi plus grande que chez T. nodosoplicata et T.papaveracea.

Fig. 14 – Inella cf. fritschi, H= 0,7 mm ; Aquitanien,Meilhan (Vives), [coll. MNHN-Paris]

Famille TRIPHORIDAE (METAXIINAE) Marshall, 1977

Metaxia Monterosato, 1884

Cerithium rugulosum C.B. Adams, 1850 (DO) - Origine : Récent,Caraïbe.

Metaxia merignacencis (Cossmann & Peyrot, 1922)Pl. 19 fig. 13 ; Fig. 15

1922 Cerithiopsis merignacensis Cossmann & Peyrot : n°623, pl. 6figs 77-78.

1922 Cerithiopsis merignacensis race touzini Cossmann & Peyrot :n°623, pl. 6 figs 79-80.

1922 Newtoniella? degrangei Cossmann & Peyrot : n°626, pl. 7 figs18-19 (non 20).

1986a Metaxia merignacensis (Cossmann & Peyrot) - Lozouet : 319,fig. 68 G.

1996 Metaxia degrangei (Cossmann & Peyrot) - Marquet : 143, pl. 2figs 1-2.

1999 Metaxia merignacensis (Cossmann & Peyrot) - Lozouet : 21.


LOZOUET (1986a ; 1999) a indiqué la synonymieprobable des Metaxia du Miocène inférieur d'Aquitaine.Il considère aussi que Metaxia merignacensis est pro-bablement l'ancêtre de Metaxia metaxae Della Chiaje,1828, seule espèce connue des côtes européennes(BOUCHET 1985). Plusieurs Metaxia apparentées ontaussi été décrites du Miocène moyen de Touraine :

- Cerithiopsis quadrilineata Mayer-Eymar in Ivolas& Peyrot, 1900 (IVOLAS & PEYROT 1900, 142, pl. 2 fig.38)

- Pirenella detrita Peyrot, 1938 (PEYROT 1938, pl.3 figs 1, 6)

- Cerithiopsis (Metaxia) turoniensis Glibert, 1949(GLIBERT 1949, 153, pl. 10 fig. 6).

Fig. 15 – Metaxia merignacensis (Cossmann & Peyrot,1922), protoconque, Uzeste (Gamachot).

Superfamille JANTHINOIDEA Lamarck, 1810

Famille EPITONIIDAE Berry, 1910

Cirsotrema Mörch, 1852

Scalaria varicosa Lamarck, 1822 (DO) - Origine : Récent, Indo-Ouest-Pacifique.

Cirsotrema crassicostatum (Deshayes, 1853)Pl. 19 fig. 6

1839 Scalaria crassicostata Deshayes in Verneuil : 76 (nom. nu-dum).

1853 Scalaria crassicostata Deshayes - Deshayes : pl. 70 figs 1-3.


1895b Scalaria (Cirsotrema) cf. crassicostata Deshayes - Degrange-Touzin : 315.

1912 Cirsotrema thais de Boury in Cossmann : Essais 9, 180, pl. 6fig. 16.

1922 Cirsotrema crassicostatum (Deshayes) - Cossmann & Peyrot :n° 523, pl. 4 figs 79-80, 85 & 87-98.

1922 Cirsotrema thais de Boury - Cossmann & Peyrot : n°525, pl. 4figs 68-70.


Les différences exposées COSSMANN & PEYROT

pour justifier une distinction entre Scalaria crassicos-tata et S. thais, telles que la forme plus étroite ou leslamelles plus serrées chez la seconde, ne résistent pas àl'examen des nombreux individus de S. crassicostataque nous possédons du Burdigalien de St-Paul-lès-Dax(Cabanes).

Cirsotrema subspinosum (Grateloup, 1828)

1828c Scalaria subspinosa Grateloup : n°167, 200.1847 Scalaria subspinosa Grateloup : pl. 12 fig. 10.1852 Scalaria subspinosa Grateloup - d'Orbigny : n°397, 30.1912 Cirsotrema subspinosum (Grateloup) - Cossmann : 52, pl. 2

figs 36-37.1922 Cirsotrema subspinosum (Grateloup) - Cossmann & Peyrot :

n°522, pl. 4 figs 61-63.


Epitonium Röding, 1798

Epitonium scalare Linné, 1758 (DS Suter, 1913) - Origine : Récent,Indo-Ouest-Pacifique.

Epitonium merignacense (de Boury, 1912)Pl. 19 fig. 7

1912 Spiniscala merignacensis de Boury in Cossmann : Essais 9,168, pl. 1 figs 30-31.

1913 Scala (Spiniscala) merignacensis (de Boury) - de Boury : 304,pl. 11 fig. 5.

1922 Spiniscala merignacensis de Boury - Cossmann & Peyrot :n°498, pl. 3 figs 39-42.

1922 Spiniscala merignacensis var. crassicostulifera de Boury -Cossmann & Peyrot : n°499, pl. 3 figs 43-44

1922 Spiniscala merignacensis var. polycolpata Cossmann in Coss-mann & Peyrot : n°500, pl. 3 figs 45-46.


Epitonium rocheri n. sp.Pl. 19 fig. 4a-4c

Locus typicus : Saucats (Lariey).Stratum typicum : Miocène inférieur (Aquitanien), falunà Ervilia.Derivatio nominis : dédiée à Philippe Rocher.Holotypus (Bordeaux-Talence, leg P. Rocher) ; para-type, Lariey : 1 spm. juvénile, coll. Favia & Lozouet.

Dimensions (Holotype) : H= 9 mm ; Dmax.= 4,5 mm.

Description : La coquille, de forme conique, globu-leuse, est de petite taille, son test est mince. Elle compte5 tours 3/4 de téléoconque, très convexes, séparés parune suture nette, finement gravée dans la coquille. Laprotoconque multispirée apparaît légèrement déviée parrapport à l'axe de la coquille ; le passage à la téléo-conque est brutal. La spire représente le tiers de lahauteur totale de la coquille. Elle est sculptée de nom-breuses lamelles axiales (environ 50 par tours) relati-vement serrées et assez irrégulièrement espacées, maistoujours beaucoup moins larges que leurs intervalles.On ne distingue pas de sculpture spirale. Le dernier tourest particulièrement convexe et globuleux. Il occupe unpeu moins des deux tiers de la hauteur totale. Les la-melles axiales sont moins saillantes que sur la spire, el-les s'estompent progressivement en rejoignant l'ouver-ture et se transforment en fortes stries d'accroissement,irrégulières, parfois presque imbriquées. La base estperforée par un ombilic étroit mais profond. Elle estmatérialisée sur la face ventrale par un cordon spiralqui court depuis l'angle adapical de l'ouverture et cir-conscrit entièrement la coquille. Le cordon spiral prendl'aspect d'une cicatrice sur la face dorsale. L'ouverture,un peu endommagée, est ovoïde et de direction proso-cline ; elle est un peu versante en sa partie abapicale etson bord columellaire est mince. La protoconque (H=390 µm ; Dmax= 300 µm) semble lisse, elle compte 3tours ; elle est de forme pupoïdale et se termine par unevarice.

Discussion : Par sa forme générale Epitonium rocherise rapproche de l'espèce indo-ouest-pacifique Epito-nium (Globiscala) bullatum (Sowerby, 1844). Cettedernière est l'espèce-type du sous-genre Globiscala deBoury, 1910. Toutefois on note chez E. rocheri la pré-sence d'une faible carène basale qui n'existe pas chez E.bullata (voir KILBURN 1985, figs 160-163). Il est pos-sible que cette carène résulte d'une cassure.

Epitonium subscalare (d'Orbigny, 1852)Pl. 19 fig. 5

1828c Scalaria communis Lamarck - Grateloup : n°162, 198.1847 Scalaria communis Lamarck - Grateloup : pl. 12 fig. 3..1852 Scalaria subscalaris d'Orbigny : n°394, 30.1910 Scala (Gyroscala) vasconiensis de Boury : 255, pl. 12 fig. 14.1912 Scala (Gyroscala) vasconiensis de Boury - Cossmann : 177, pl.

2 figs 30-31.1913 Scala (Circuloscala) exspectata de Boury : 190, pl. 8 fig. 14.1922 Gyroscala subscalaris (d'Orbigny) - Cossmann & Peyrot :

n°512, pl. 4 figs 39-40.1922 Gyroscala neovasconiensis de Boury in Cossmann & Peyrot :

n°513, pl. 4 fig. 67.1922 Gyroscala despecta de Boury in Cossmann & Peyrot : n°514,

pl. 4 figs 77-78.1922 ?Gyroscala suavis de Boury in Cossmann & Peyrot : n°515, pl.

4 figs 128-129.1922 Circuloscala exspectata (de Boury) - Cossmann & Peyrot :

n°516, pl. 4 figs 53-54.



La présente synonymie est fondée sur l'examend'individus de différents sites de l'Aquitanien (Meilhan,Moulin de Carro, Lariey).

Nodiscala de Boury, 1890

Scalaria bicarinata Sowerby, 1844 (DO) - Origine : Récent, Philip-pines.

Nodiscala cf. bimonilifera (Boettger, 1902)Pl. 19 figs 8a-8b

1902 Pliciscala (Nodiscala) bimonilifera Boettger : (1897-1907),87, n° 273.

1934 Opalia ( Nodiscala) bimonilifera (Boettger) - Zilch : 228, pl.10 fig. 70.


Famille ACLIDIDAE G.O. Sars, 1878

Graphis Jeffreys, 1867

Turbo unicus Montagu, 1803 (M) - Origine : Récent, Tempérée Eu-ropéenne.

Graphis sp.


Ce Graphis s'apparente à Graphis albida (Kanma-cher, 1798) de Méditerranée ; ses côtes axiales sem-blent cependant plus marquées. C'est le premier Gra-phis signalé en Aquitaine au Miocène, l'espèce est assezcommune dans l'Aquitano-Burdigalien de "Gamachot".

Superfamille EULIMOIDEA Adams H. & A., 1853

Famille EULIMIDAE Philippi, 1853

Eulima (s. l.) Risso, 1826

Eulima (s. l.) sp.


Cette espèce à quelques ressemblances avec Euli-ma fontinensis Cossmann & Peyrot, 1917 (COSSMANN

& PEYROT 1917, pl. 8 figs 53-54) du Burdigalien maiselle possède une ouverture moins allongée.

Melanella Bowdich, 1822

Melanella dufresnei Bowdich, 1822 (DO) - Origine : Indo-Ouest-Pacifique.

Melanella cf. subbrevis (d'Orbigny, 1852)Pl. 19 fig. 9

1852 Eulima subbrevis d'Orbigny : n°63, 167.1917 Eulima (Vitreolina) subbrevis d'Orbigny - Cossmann & Peyrot

: n°153, pl. 8 figs 44-47.1949 Melanella subbrevis (d'Orbigny) - Glibert : 177, pl. 12 fig. 1.1986a Amamibalcis sp. - Lozouet : 338, fig. 69 C.


Eulima subbrevis d'Orbigny, 1852 a été décrite duPliocène italien et diffère d'après la mauvaise figure deSACCO (1892, pl. 1 fig. 4) par une torsion de la spiremoins accentuée. En revanche l'espèce du Miocènemoyen d'Aquitaine et de la Loire que COSSMANN &

PEYROT (1917) et GLIBERT (1949) ont identifiée sous lenom de subbrevis semble proche de cette espèceconnue de l'Oligocène supérieure à l'Aquitanien. L'at-tribution au genre Amamibalcis Kuroda & Habe, 1950proposée par LOZOUET (1986a) est possible mais cegenre est actuellement trop mal défini pour être utilisé(A. Warén comm. pers., WARÉN 1983).

Melanella similis (d'Orbigny, 1852)

1828b Melania distorta Defrance - Grateloup : n°96, 130.1838c Melania distorta Defrance - Grateloup : 190, pl. 5 fig. 14.1847 Melania distorta Defrance - Grateloup : pl. 4 fig. 14.1852 Eulima similis d'Orbigny : n°482, 34.1917 Eulima similis d'Orbigny - Cossmann & Peyrot : n°151, pl. 8.

figs 35-38.


Infra-Ordre NEOGASTROPODA Wenz, 1938

Superfamille MURICOIDEA Rafinesque, 1815

Famille MURICIDAE (MURICINAE) Rafinesque, 1815

Aspella Mörch, 1877

Ranella anceps Lamarck, 1822 (M) - Origine : inconnue d'aprèsHOUART & VOKES 1995.

Aspella subanceps (d'Orbigny, 1852)Pl. 25 fig. 1

1833b Murex pulchellus Lamarck - Grateloup : n°436, 99.1847 Ranella anceps Lamarck - Grateloup : pl. 30 figs 28, 30.1852 Ranella subanceps d'Orbigny : n°1411, 77.1924 Eupleura subanceps (d'Orbigny) - Cossmann & Peyrot : n°793,

pl. 12 figs 24-25.


Attiliosa Emerson, 1968

Coralliophila incompta Berry, 1960 - Origine : Récent, Californie.


Attiliosa villae (Michelotti, 1847)Pl. 24 fig. 1

1847 Fusus villae Michelotti : 279, Pl. 10 fig. 11.1872 Fusus villae Michelotti - Bellardi : 146, pl. 9 figs 20a-b.1924 Taurasia sacyi Cossmann & Peyrot : n°809, pl. 13 figs 31-32.1927 Tritonidea (Cantharus) merignacensis Peyrot : n°980, pl. 4

figs 53-55.1989b Attiliosa sacyi Cossmann & Peyrot - E.H. Vokes : 63.1999 Attiliosa sacyi Cossmann & Peyrot - E.H. Vokes : 290, fig. 2.


En l'absence de matériel disponible de Fusus villae,VOKES E.H. (1999) maintient le nom sacyi.

Chicoreus Montfort, 1810

Murex ramosus Linné, 1758 (DO) - Origine : Récent, Indo-Ouest-Pacifique.

Chicoreus dujardini (Tournouër, 1875)

1875a Murex dujardini Tournouër : 151, pl. 5 figs 4, 4a.1875c Murex dujardini Tournouër : 242.1924 Murex (Favartia) dujardini exaquitanicus Cossmann & Peyrot

: n°747, pl. 12 figs 46-47, pl. 18 fig. 15.


D'après COSSMANN & PEYROT (1924) la "mutation"exaquitanicus se sépare de C. dujardini du Langhien deTouraine par des caractères qui paraissent peu robustes:taille plus grande et varices "froncées plutôt que laci-niées". La protoconque de C. dujardini exaquitanicusest de type planctotrophe, multispirée tout comme cellede C. dujardini (d'après des exemplaires de Pontlevoy).Il semble donc préférable de réunir les deux espèces.

Homalocantha Mörch, 1852

Murex scorpio Linné, 1758 (M) - Origine : Récent, Indo-Ouest-Pacifique.

Homalocantha pauli (Benoist, 1880)

1880 Murex heptagonatus var. pauli (Tournouër) Benoist : n°52,1691924 Murex (Favartia) heptagonatus var. pauli Tournouër - Cossmann

& Peyrot : n°749, pl. 12 figs 44-45, pl. 13 figs 40-41.


Pterynotus Swainson, 1833

Murex pinnatus Swainson, 1822 (DS Swainson, 1833) - Origine :Récent, Indo-Ouest-Pacifique.

Pterynotus perlongus (Bellardi, 1872)Pl. 24 figs 2a-2b

1872 Murex perlongus Bellardi : 75, pl. 5 figs 8a-b.1912 Murex lamarcki Grateloup - Steuer : 27, pl. 1 figs 24a-b.1924 Murex (Pteropurpura) lamarcki Grateloup - Cossmann &

Peyrot : n°730, pl. 13 figs 18-20, pl. 18 fig. 5.1941c Murex (Pteropurpura) pseudo-lamarcki Magne : 374.

Matériel examiné : 1 spm. coll. Daney.

Cette espèce est souvent rapportée au Murex la-marcki Grateloup, 1847 qui provient de l'Oligocène in-férieur de Gaas. Murex perlongus a été décrit par Bel-lardi du Miocène inférieur des Collines de Turin. Ilcorrespond parfaitement aux spécimens que nous pos-sédons de différents sites du Miocène inférieur d'Aqui-taine (St-Paul-lès-Dax, Meilhan, Corbieu) et l'introduc-tion d'un nouveau nom par MAGNE (1941c) est injusti-fié.

Purpurellus Jousseaume, 1880

Murex gambiensis Reeve, 1845 (DO) - Origine : Récent, Afrique del'Ouest.

Purpurellus gastaldii (Bellardi, 1872)

1872 Murex gastaldii Bellardi : 57, pl. 5 fig. 9.?1875a Murex (Pteronotus) cyclopterus Millet - Tournouër : 147, pl.

5 fig. 2.1924 Murex (Pteropurpura) gastaldii Bellardi - Cossmann & Peyrot

: n°732, pl. 18 figs 6-7.1924 Murex (Pteropurpura) cyclopterus Millet - Cossmann & Peyrot

: n°733, pl. 17 figs 36.1941c Murex (Pteropurpura) cyclopterus Millet - Magne : 375.

Matériel examiné : 1 spm. d'une collection privée nonidentifiée.

Contrairement à l'opinion émise par MAGNE

(1941c), P. cyclopterus (Millet, 1866) et M. gastaldiisont bien deux espèces distinctes. P. cyclopterus a étédécrite du Miocène supérieur d'Anjou (MILLET 1866n°111) or, d'après des spécimens du Redonien deSceaux (Anjou, coll. MNHN-Paléontologie), l'espècepossède une protoconque paucispirée tandis que cellede P. gastaldii est multispirée (d'après des spécimensde l'Aquitanien de Meilhan, coll. MMHN).

Famille MURICIDAE (MURICOPSINAE)Radwin & d'Attilio, 1971

Favartia Jousseaume, 1880

Murex breviculus Sowerby, 1834 (DO) - Origine : Récent, Indo-Ouest-Pacifique.

Favartia cf. suboblonga (d'Orbigny, 1852)Pl. 24 figs 3a-3b, 4

1926 Murex (Favartia) suboblongus d'Orbigny - Cossmann & Peyrot: n°752, pl. 12 figs 21-23.

Matériel examiné : 2 spm. coll. Lesport ; 1 spm. coll.Renard ; 1 spm. coll. Favia & Lozouet (MNHN-Paris).

COSSMANN & PEYROT (1924 : n°752 & n°753, pl.13 figs 21-23, pl. 13 figs 31-32) ont groupé sous le vo-cable Murex suboblongus d'Orbigny, 1852 deux espè-ces qui diffèrent l'une et l'autre du véritable M. subo-blongus d'Orbigny. Ce dernier est fondé sur la figure deGRATELOUP (1847, pl. 31 fig. 13) qui semble représen-


ter une Favartia typique. Le Murex suboblongus sensuCossmann & Peyrot correspond à notre Favartia de La-riey tandis que la variété quadrangulatus Cossmann &Peyrot serait un synonyme de Favartia excisa (Grate-loup, 1833).

On remarque que par sa forme générale, Favartiacf. suboblonga rappelle le groupe des Caribiella Per-rilliat, 1972 (espèce type : Murex intermedius C.B.Adams, 1850 - Origine : Récent, Caraïbe) qui d'aprèsVOKES (1994) est connu de la côte Est américaine(Province Caraïbe), Ouest américaine (Province Pana-méenne) (D'ATTILIO 1988) et de l'Indo-Ouest-Pacifique(MYERS & D'ATTILIO 1989).

Muricopsis Bucquoy, Dollfus & Dautzenberg, 1882

Murex blainvillei Payraudeau, 1826. (DO) - Origine : Récent, Médi-terranée.

Muricopsis crassicosta (Benoist, 1874)Pl. 25 figs 2a-2b, 3

1874a Jania crassicosta Benoist : n°532, 165.1924 Muricopsis crassicosta Benoist - Cossmann & Peyrot : n°761,

pl. 15 figs 5.1971 Muricopsis crassicosta Benoist - Vokes E.H. : 37.1986 Muricopsis (Risomurex) crassicosta Benoist - Vokes E.H. &

Houart : 84, pl. 3 figs 6-7?1994 Muricopsis (Risomurex) crassicosta Benoist - Vokes E.H. :

72, pl. 7 fig. 3.


Cette espèce classique du Miocène inférieur d'Aqui-taine existe aussi selon VOKES E.H. (1994, 72) dans leMiocène inférieur de la Chipola Formation (Floride).Plusieurs autres Muricidae de la Chipola Formation oud'autres niveaux du Miocène inférieur américain sont trèsproches sinon identiques à des espèces du Miocène infé-rieur aquitain. VOKES E.H., dans plusieurs articles, etnotamment en 1965 et 1989, a relevé un certain nombred'espèces affines dans différentes familles ; la plupartsont planctotrophes (Bursidae, Cypraeidae...) mais ellestémoignent néanmoins d'une circulation trans-atlantiquerelativement aisée au Miocène inférieur.

Famille MURICIDAE (OCENEBRINAE) Cossmann, 1903

Jaton Pusch, 1837

Murex decussatus Gmelin, 1791 (DO) - Origine : Récent, Afrique del'Ouest.

Jaton dufrenoyi (Grateloup, 1847)Pl. 24 figs 6a-6b

1847 Murex dufrenoyi Grateloup : pl. 30 fig. 19.1852 Murex dufrenoyi Grateloup - d'Orbigny : n°1347, 74.1903 Murex (Inermicosta) dufrenoyi Grateloup - Cossmann : Essais

5, 26 : pl. 1 fig. 5.

1924 Murex (Inermicosta) dufrenoyi Grateloup - Cossmann & Peyrot: n°738 pl. 13 figs 29-30.

1995 Purpura (Tritonalia) erinacea (Linnaeus) - Baluk : 226, pl. 23figs 1-7.

1996 Jaton dufrenoyi (Grateloup) - Vermeij & Houart : 88.


Cette espèce possède, ainsi que l'a indiquéPETTIJEAN (1966), un cortex calcitique comparable àcelui que l'on rencontre chez différentes espèces d'Oce-nebra. L'interprétation de BALUK (1995, 232) quiconsidère J. dufreynoyi comme une forme extrême del'espèce actuelle européenne, Ocenebra erinacea (Lin-né, 1758), ne semble cependant pas plausible. Chez lesindividus de J. dufreynoyi parfaitement conservés, onrelève à la partie abapicale du labre un ou deux denti-cules semblables à ceux observés chez Jaton decussa-tus (Gmelin, 1791) de l'Afrique de l'Ouest (VERMEIJ &

HOUART 1996). Telle que nous la comprenons, J. du-freynoyi aurait une assez large distribution stratigraphi-que : sommet de l'Oligocène supérieur (Aquitaine, St-Paul-lès-Dax "Bezoye, Falaise") à base du Miocènemoyen (Badenien de Paratéthys).

Kestocenebra Vermeij, 1998

Murex curvicosta Grateloup, 1847 - Origine : Miocène inférieurd'Aquitaine.

Kestocenebra striaeformis (Michelotti, 1841)Pl. 22 figs 1a-1c

1841 Murex striaeformis Michelotti : 18.1872 Murex striaeformis Michelotti - Bellardi : 95.1904 Murex (Phyllonotus) striaeformis Michelotti - Sacco : 22, pl. 6

figs 15-16.1971 Ocenebra striaeformis (Michelotti) - Vokes : 101.1998 Kestocenebra striaeformis (Michelotti) - Vermeij : 861.


Cette grande Ocenebra est reconnue pour la pre-mière fois dans le Néogène aquitain. Elle a été décritedu Miocène inférieur d'Italie et s'apparente à O. subla-vata, mais s'en distingue par sa spire moins étagée àsculpture non muriquée. Sur le dernier tour la tendanceest de développer un assez fort cordon qui délimite labase. Le cordon peut déterminer un petit denticule surle bord du labre qui ne semble pas toutefois comparableà celui de Spinucella (voir VERMEIJ 1993). C'est surnos indications que VERMEIJ a signalé cette espèce à"Arrié" (Lariey) qu'il classe dans son nouveau genreKestocenebra.

Ocenebra Leach in Gray, 1847

Murex erinaceus Linné, 1758 (M) - Origine : Récent, Tempérée Eu-ropéenne.


Ocenebra cf. cazeauxi Cossmann & Peyrot, 1924Pl. 23 figs 6a-6b, 7

1924 Ocenebra cazeauxi Cossmann & Peyrot : n°774, pl. 13 figs 7-8.


Le type de l'espèce, malheureusement disparu(MARCOMINI 1994), provenait du Burdigalien de Ces-tas. D'après les figures de COSSMANN & PEYROT

(1924), les exemplaires de Lariey ont une sculpture quisemble se distinguer par des cordons spiraux plus fins.On notera que VERMEIJ & HOUART (1999) suggèrent unclassement de cette espèce dans le genre InermicostaJousseaume, 1880 (espèce type : Murex fasciatus So-werby, 1841).

Ocenebra excoelata Cossmann & Peyrot, 1924Pl. 22 figs 2a-2b - Fig. 16d

1847 Fusus coelatus Grateloup : pl. 24 fig. 26 (non Dujardin).1847 Fusus lavatus Basterot - Grateloup : pl. 24 fig. 27.1852 Fusus coelatus Grateloup - d'Orbigny : n°1176, 66.1924 Ocenebra (Ocenebrina) gibbovaricosa Cossmann & Peyrot :

n°779, pl. 14 figs 16-17.1924 Ocenebra (Ocenebrina) avitensis Cossmann & Peyrot : n°780,

pl. 14 fig. 57, pl. 15 figs 22-23.1924 Ocenebra (Ocenebrina) excoelata Cossmann & Peyrot : n°781,

pl. 14 fig. 57, pl. 16 figs 5-6.1924 Ocenebra (Ocenebrina) excoelata var. tauroelongata (Sacco) -

Cossmann & Peyrot : n°781, pl. 14 fig. 29.1924 Ocenebra (Ocenebrina) excoelata var. merignacensis Coss-

mann & Peyrot : n°782, Pl. 14 fig. 57, pl. 14 figs 38-39.1924 Ocenebra (Ocenebrina) excoelata var. cestasensis Cossmann

& Peyrot : n°783, pl. 14 fig. 35 (non fig. 25).1994 Ocenebra (Ocenebrina) gibbovaricosa Cossmann & Peyrot -

Marcomini, 20, figs 39-40.1999 Ocenebrina avitensis (Cossmann & Peyrot) - Marko & Vermeij

: 282.


COSSMANN & PEYROT (1924) ont usé pour décrireO. excoelata d'une conception très typologique de l'es-pèce. O. gibbovaricosa, d'après l'examen du type deLéognan "Carrère" (coll. de Sacy), est un exemplairegérontique, trapu et particulièrement gibbeux qui res-semble à Ocenebra bicaudata (Borson, 1821) du Plio-cène méditerranéen (voir MUNIZ SOLIS & GUERRA-MERCHAN 1994 figs 6 J-K.). Ocenebra avitensis estidentique à O. excoelata, si ce n'est la sculpture spiralequi est nettement plus fine chez avitensis, cette caracté-ristique demanderait d'ailleurs à être étudiée plus préci-sément et sur un grand nombre d'individus. Les autresformes admises par Cossmann & Peyrot rentrent sansambiguïté dans le cadre de la variabilité de l'espèce.

Pour PETITJEAN (1960, 1966) O. excoelata ne pos-sède pas de cortex calcitique ce qui permettrait de clas-ser l'espèce dans les Ocenebrina ; c'est aussi l'avis de

MARKO & VERMEIJ (1999).

Ocenebra lassaignei (Basterot, 1825)Pl. 23 figs 8a-8b - Fig. 16b

1825 Purpura lassaignei Basterot : 50, pl.3 fig.17.1834a Purpura lassaignei Basterot - Grateloup : n°495, 206.1834a Purpura torulosa Grateloup : n°496, 206.1847 Purpura torulosa Grateloup - Grateloup : pl. 35 figs 10-11.1847 Purpura lassaignei Basterot - Grateloup : pl. 35 figs 5-7.1852 Murex lassaignei D'Orbigny : n°1336, 73.1852 Murex torulosus D'Orbigny : n°1338, 73.1924 Hadriana (Pseudomurex) cantharoides Cossmann & Peyrot :

n°792, pl. 14 figs 36-37, Pl. 17 figs 17-18.1924 Ocenebra torulosa (Grateloup) : Cossmann & Peyrot : n°769,

pl. 14 figs 20-21.


L'examen de la collection Grateloup confirme quePurpura lassaignei au sens de Grateloup est bienconforme à l'espèce de Basterot. Les exemplaires deGrateloup sont étiquetés "Maïnot" (Aquitanien infé-rieur) et "Canenx" (Aquitanien supérieur). Purpura to-rulosa Grateloup proviendrait du Burdigalien de "Man-dillot" (St-Paul-lès-Dax), on note seulement des diffé-rences mineures avec O. lassaignei (varices plus forteset plus épineuses). Nous avons donc considéré que O.torulosa était une forme de O. lassaignei fortement mu-riquée. L'exemplaire de O. torulosa figuré parCOSSMANN & PEYROT (1924, pl. 15 figs 20-21) pro-vient de Saucats lieu-dit "Le Son" (coll. de Sacy) à ni-veaux très proches de ceux de Lariey. Il est identique àcertaines Ocenebra que nous avons examinées de La-riey. Hadriana cantharoides correspond à des exem-plaires immatures. Par ailleurs, nous avons attribué àcette espèce de très jeunes individus munis de leurprotoconque. Celle-ci compte environ 2 tours. A noterque CHIRLI (2000, 26, pl. 12 figs 8-11) signale P. las-saignei dans le Pliocène de Toscane ; cette occurrencedemanderait à être vérifiée.

Ocenebra suberinacea (Basterot, 1825)Pl. 22 figs 6a-6b, 7a-7b

1825 Murex suberinaceus Basterot : 60, pl. 4 fig. 15.1847 Murex brongniartii Grateloup : pl. 30 figs 2, 4.1847 Murex beaumontii Grateloup : pl. 30 fig. 3.1847 Murex suberinaceus Basterot - Grateloup : pl. 30 fig. 5.1847 Murex bronnii Grateloup : pl. 30 fig. 31.1852 Murex bronnii Grateloup - D'Orbigny : n°1321, 72.1852 Murex beaumontii Grateloup - D'Orbigny : n°1328, 73.1852 Murex brongniartii Grateloup - D'Orbigny : n°1327, 73.1852 Murex suberinaceus Grateloup - D'Orbigny : n°1329, 73.1924 Ocenebra sacyi Cossmann & Peyrot : n°772, pl. 14 figs. 22-23.1924 Ocenebra beaumonti (Grateloup) - Cossmann & Peyrot :

n°773, pl. 14 figs 3-4.1994 Ocenebra sacyi Cossmann & Peyrot - Marcomini : 20, figs 34-

35.



Fig. 16 – a Ocenebra umbilicina Cossmann & Peyrot, 1924 : Lariey - b Ocenebra lassaignei (Basterot, 1825) :Landes, Meilhan (Vives), niveau à Granulolabium (Aquitanien supérieur) - c Ocenebra sublavata (Basterot, 1825) :Lariey - d Ocenebra excoelata Cossmann & Peyrot, 1924 : Landes, St-Paul-lès-Dax (Cabanes), Burdigalien infé-rieur. [coll. Favia & Lozouet].

L'espèce a été bien figurée par BASTEROT (1825) eton ne comprend pas les raisons pour lesquellesCOSSMANN & PEYROT (1924) n'ont pas retenu le nom.Murex beaumontii Grateloup, 1847 est donc un syno-nyme, de même que M. brongniartii. La faiblesse oul'absence des dents labrales chez l'exemplaire d'O.brongniarti figuré par Grateloup atteste que cet indivi-du est immature. Enfin, le type d'Ocenebra sacyi (coll.de Sacy ; Saint Côme, Gironde, Aquitanien) est unemorphe proche de Murex brongniartii, ce qui n'avaitpas échappé à Cossmann & Peyrot qui ont toutefois re-levé comme différences : la présence de dents labraleset un canal siphonal moins arqué chez O. sacyi. Ces ca-ractères sont liés au stade de croissance. L'aspect moinsarqué du canal siphonal chez O. sacyi provient du faitque sur l'individu étudié par Cossmann & Peyrot lecallus est bien développé, masquant ainsi le canal si-phonal.

Ocenebra sublavata (Basterot, 1825)Pl. 23 figs 1, 2a-2b, 3, 4a-4b, 5a-5b - Fig. 16c

1825 Murex sublavatus Basterot : 59, Pl. 3 fig. 23.1852 Triton sublavatum D'Orbigny : n°1437, 78.1880 Murex basteroti Benoist : 163, pl. 9 figs. 3-4.1924 Ocenebra duvergieri Cossmann & Peyrot : n°770, pl. 14 figs

25-26.

1924 Ocenebra thilensis Cossmann & Peyrot : n°771, pl. 14 figs 27-28.

1924 Ocenebra (Ocenebrina) sublavata Basterot - Cossmann &Peyrot : n°775, pl. 13 figs 44-45.

1994 Ocenebra thilensis Cossmann & Peyrot - Marcomini : 20,figs 27-38.

1997 Ocinebrina sublavata (Basterot) - Vermeij & Vokes E.H. :79, pl. 2 fig. 6.


Ocenebra sublavata se distingue d'O. lassaigneipar le développement de ses côtes axiales pouvant setransformer en fortes varices saillantes notamment surle dos, ce qui donne alors un aspect tri-variqué à lacoquille. COSSMANN & PEYROT (1924) ont restreint lenom sublavata aux individus à spire élevée et à côtesaxiales régulières. O. duvergieri et surtout O. thilensisde l'Aquitanien de Léognan lieu-dit "Le Thil" (coll. deSacy, leg Marcomini) s'appliquent à des individusd'aspect tri-variqué. Murex basteroti Benoist caracté-rise une forme à deux varices peu proéminentes. Ilexiste toutefois chez O. lassaignei et O. sublavata desindividus difficilement classables. Ces mêmes obser-vations valent pour Ocenebra torulosa. On ne peutdonc pour l'instant exclure que ces trois espèces n'enconstituent en fait qu'une seule, bien qu'un premier


examen des protoconques et des tours juvéniles plaideen faveur de leur maintien. On remarquera que Gra-teloup a très mal interprété le Murex sublavatus Bas-terot et a groupé sous ce nom différentes formesd'Ocenebra excoelata (d'après l'examen de la collec-tion Grateloup).

Ocenebra umbilicina Cossmann & Peyrot, 1924Pl. 22 figs 3a-3b, 4, 5a-5b - Fig. 16a

1924 Murex (Muricopsis?) trifascialis Grateloup - Cossmann &Peyrot : n°760, pl. 13 figs 25-26.

1924 Ocenebra (Ocenebrina) sublavata var umbilicina Cossmann& Peyrot : n°776, pl. 13 fig. 46.

?1924 Hadrinia minutisquama Cossmann & Peyrot : n° 791, pl. 15fig. 55.

1994 Ocenebra (Ocenebrina) sublavata var umbilicina Cossmann& Peyrot - Marcomini : 20, fig. 33.


Cette petite Ocenebra est abondante dans les ni-veaux supérieurs de Lariey, dans l'Aquitanien infé-rieur de Martillac (Le Breyra) et sans doute de Léo-gnan (Le Thil). Les deux spécimens figurés parCOSSMANN & PEYROT (1924) que nous rapportons àcette espèce (O. sublavata var. umbilicina et M. tri-fascialis) sont des individus anormaux (coll. de Sacy,MNHN-Malacologie). Ils présentent tous deux destraces de cassures avec reprise de croissance induisantune sculpture et une forme très particulière. Le syn-type de O. umbilicina est aussi une fois et demie plusgrand que nos exemplaires de Lariey ou du Breyra etsa protoconque est cassée, ce qui augmente l'incerti-tude de notre identification. Ces remarques illustrentla méthode de travail de Cossmann & Peyrot qui onttravaillé sur un faible nombre d'individus et se sontsurtout efforcés de décrire les exemplaires spectacu-laires. C'est finalement "par hasard" qu'ils ont désignécette espèce.

O. umbilicina se caractérise par une protoconquecourte de type non-planctotrophe (cassée chez lesyntype) alors que la protoconque des autres Ocene-bra que nous avons examinés est de type planctotro-phe : O. lassaignei (Basterot, 1825), O. sublavata etO. excoelata Cossmann & Peyrot, 1924 (Fig. 16).

Vitularia Swainson, 1840Murex miliaris Gmelin, 1782 (M) - Origine : Récent, Indo-Ouest-

Pacifique.

Vitularia linguabovis (Basterot, 1825)Pl. 24 figs 5a-5b

1825 Murex lingua-bovis Basterot : 59, pl. 3 fig. 10.1833b Murex lingua-bovis Basterot - Grateloup : 94.1847 Murex vitilinus Lamarck - Grateloup : pl. 31 fig. 17.1847 Murex vitulinus var. edentula Grateloup : pl. 31 figs 18a-b.1852 Murex subvitulenus d'Orbigny : n°1342, 73.1852 Murex lingua-bovis Basterot - d'Orbigny : n°1373, 75.

1853 Murex lingua-bovis Basterot - Deshayes (1839-1853) : 66, pl.111 fig. 7.

1924 Vitularia lingua-bovis (Basterot) - Cossmann & Peyrot : n°788,pl. 14 figs 33-34.

1924 Vitularia salbriacensis Cossmann & Peyrot : n°789, pl. 14 figs30-31.

1940 Vitularia lingua-bovis (Basterot) - Magne : 138.1995 Vitularia lingua-bovis (Basterot) - Baluk : 229, fig. 9.


Famille MURICIDAE (ERGALATAXINAE)Kuroda, Habe & Oyama, 1971

Ergalatax Iredale, 1931

Ergalatax recurrens Iredale, 1931 (DO) - Origine : Récent, Austra-lie.

Ergalatax cf. seraphinae (Boettger, 1901)Pl. 25 figs 7a-7b

1901 Pollia seraphinae Boettger : n°134.1934 Cantharus (Pollia) seraphinae (Boettger) - Zilch : 254, pl. 16

fig. 94.


Pollia seraphinae est signalée pour la première foisen Aquitaine, elle a été récoltée également (coll.MNHN-Paris) dans le site de la Carrière Vives (Meil-han). Sa position systématique est très incertaine et de-vra être précisée.

Orania Pallary, 1900

Murex fusulus Brocchi, 1814 (DO) - Origine : Pliocène d'Italie.

Orania fischeri (Benoist, 1874)Pl. 25 figs 6a-6b

1874a Pollia fischeri Benoist : n°518, 161.1927 Tritonidea fischeri (Benoist) - Peyrot : n°976, pl. 4 figs 42-44.1927 Tritonidea stephanensis Peyrot : n°977, pl. 4 figs 45-47.


Orania fischeri est connue en Aquitaine de l'Oligo-cène supérieur au Miocène inférieur (Burdigalien).Orania cheilotoma (Hornes, 1848) décrite du Miocènemoyen de Paratéthys, mais signalée également dans leMiocène inférieur/moyen du domaine nordique(JANSSEN A.W. 1984), pourrait être un synonyme.

Phyllocoma Tapparone-Canefri, 1881

Triton convolutus Broderip, 1833 (DO) - Origine : Récent, Indo-Ouest-Pacifique.


Phyllocoma michelottii (Bellardi, 1872)Pl. 24 figs 7a-7b

1872 Ranella michelottii Bellardi : 245, pl. 15 figs 22a-b.1890 Ranella (Miocenia) michelottii Bellardi - Sacco : n°2498.1904 Ranella (Miocenia) michelottii Bellardi - Sacco : 40.1924 Ranella minuteornata Cossmann & Peyrot : n°838, pl. 12 figs

37-38 ; pl. 18 fig. 26.1994 Phyllocoma michelottii (Bellardi) - Lozouet, Ledon & Lesport :

47, pl. 2 figs 10-11.


Cette espèce est présente également à l'Oligocènesupérieur dans le Bassin de l'Adour, elle est particuliè-rement abondante dans le site aquitanien de la Carrièrevives (Meilhan).

Trachypollia Woodring, 1928

Trachypollia sclera Woodring, 1928 (DO) - Origine : Miocène, Ca-raïbe.

Trachypollia granifera (Bellardi, 1872)

Pl. 25 figs 4a-4b

1872 Pollia granifera Bellardi : 174, pl. 12 fig. 12.1982 Pollia granifera Bellardi - Ferrero Mortara, Montefameglio,

Pavia & Tampieri : 47, pl. 5 fig. 2.

Matériel examiné : 8 spm. coll. Lesport ; 2 spm. coll.

Favia & Lozouet ; 1 spm. coll. Renard.

Cette espèce est la première du genre reconnuedans le Cénozoïque européen. Elle s'apparente aux es-pèces actuelles T. turriculata (von Maltzan, 1884) et T.didyma (Schwengel, 1943) respectivement des provin-ces Ouest-Africaine et Caraïbe. Ces deux espèces sonttrès proches ; elles se séparent d'après VOKES (1996)sur la base d'une faible différence dans leur rapporthauteur/largeur.

Famille MURICIDAE (RAPANINAE) Gray, 1853

Morula (s. l.) Schumacher, 1817

Morula papillosa Schumacher, 1817 (M) - Origine : Récent, Indo-Ouest-Pacifique.

Morula (s. l.) cf. bellardii (Hoernes & Auinger, 1890)Pl. 25 figs 5a-5b

1890 Pollia bellardii Hoernes & Auinger : 237, pl. 27 figs 15a-c.1901 Pollia augustae Boettger : 34.1934 Cantharus (Pollia) augustae (Boettger) - Zilch : 254, pl. 16 fig.

93.


Morula bellardii est une espèce classique du Mio-cène moyen de Paratéthys ; elle est signalée pour lapremière fois dans le Miocène aquitain. Nous la con-naissons des sites aquitaniens de la région de Mont-de-Marsan (Landes), par exemple au Moulin de Carro(Corbieu), mais aussi de la région bordelaise (Mérignac"Baour", coll. Marcomini [ex. coll. de Sacy]). Par sapetite taille, sa forme et sa sculpture, l'espèce s'appa-rente à Morula echinata (Reeve, 1846) de l'Indo-Ouest-Pacifique. L'usure chez Morula echinata engendre unesculpture composée de gros nodules, comparable à cellede M. cf. bellardii de Lariey (voir figuration du type deM. echinata : CERNOHORSKY 1983, fig. 9). On peutaussi comparer M. cf. bellardii au genre Pascula Dall,1908 (espèce-type par monotypie : Trophon (Pascula)citricus Dall, 1908 ; Indo-Ouest-Pacifique) comme lemontrent les figures de CERNOHORSKY (1982, figs 12-21).

Thais Röding, 1798

Murex fuscus Gmelin, 1791 (DS Iredale, 1915) - Origine : Récent,Afrique de l'Ouest.

Thais calcarata (Grateloup, 1834)Pl. 25 figs 9a-9b

1834a Ricinula calcarata Grateloup : 204.1847 Ricinula calcarata Grateloup - Grateloup : pl. 35 figs 15, 18.1852 Sistrum calcaratum d'Orbigny : n°1463, 79.1997 Cymia calcarata (Grateloup) - Lozouet : 17, fig. 3.


COSSMANN & PEYROT (1924) ont méconnu la Rici-nula calcarata Grateloup et ont groupé sous ce termedeux espèces distinctes. Nous considérons que l'exem-plaire désigné comme "plésiotype" (coll. de Sacy) pareux, et provenant de l'Aquitanien de Mérignac (COSS-

MANN & PEYROT 1924, pl. 14 figs 48-49), est uneforme noduleuse de Cymia pluriplicata Cossmann &Peyrot, 1924. L'individu épineux (COSSMANN &

PEYROT 1924 pl. 14 fig. 40) provenant du Burdigaliende Saucats (coll. de Sacy) appartient à une autre espèce,non nommée, qui s'apparente au genre Indo-Ouest-Pacifique Mancinella Link, 1807 (espèce-type : Manci-nella acuelata Link, 1807). L'arbre cladistique que pré-sente KOOL (1993, fig. 30) indique que Thais et Manci-nella sont très proches, il n'est donc pas étonnant qu'ilsoit difficile de classer dans l'un ou l'autre genre noscoquilles fossiles.

Thais pluriplicata (Cossmann & Peyrot, 1924)Pl. 25 fig. 10

1924 Cymia pluriplicata Cossmann & Peyrot : n°803, pl. 14 fig. 58,pl. 15 fig.3.

1924 Cymia calcarata (Grateloup) - Cossmann & Peyrot : n°804, pl.14 figs 48-49.



Famille CORALLIOPHILIDAE Chenu, 1859

Coralliophila H. & A. Adams, 1853

Purpura neritoides Lamarck, 1816 (DS Cossmann, 1903) - Origine :Récent, Indo-Ouest-Pacifique.

Coralliophila burdigalensis (Tournouër, 1874)Pl. 25 fig. 8

1874a Coralliophila burdigalensis Tournouër : 296, pl. 9 fig. 6.1882 Coralliophila costata Bellardi : 197, pl. 12 fig. 11.1903 Coralliophila costata Bellardi - Cossmann : Essais 5, 83, pl. 4

fig. 14.1924 Coralliophila burdigalensis Tournouër - Cossmann & Peyrot :

n°813, pl. 18 figs 23, 27-28.1924 Coralliophila burdigalensis var. subangulifera Cossmann &

Peyrot : n°816, Pl. 15 figs 20-21.1975 Coralliophila burdigalensis Tournouër - Magne & Vergneau-

Saubade : 2.1998 Coralliophila burdigalensis Tournouër - Lozouet & Renard :

173, fig. 2 (1-10).


Les Coralliophilidae sont pour PONDER & WARÉN

(1988) une simple sous-famille des Muricidae. En re-vanche, KANTOR (1995), considère que les Corallio-philidae ont rang familial ; c'est la solution que nousavons provisoirement adoptée dans notre révision desCoralliophilidae du Miocène aquitain (LOZOUET &

RENARD 1998).

Famille BUCCINIDAE Rafinesque, 1815

Cantharus Röding, 1798

Buccinum tranquebaricum Gmelin, 1791 (DS Cossmann, 1901) -Origine : Récent, Indo-Ouest-Pacifique.

Cantharus andrei (Basterot, 1825)Pl. 26 figs 2a-2b

1825 Nassa andrei Basterot : 50, pl. 4 fig. 7.1834a Purpura pleurotomoides Grateloup : n°493, 206.1847 Purpura pleurotomoides Grateloup - Grateloup : pl. 35 figs 1-2.1853 Buccinum andrei Basterot - Deshayes : 71, pl. 118 fig. 7.1927 Tritonidea andrei Basterot - Peyrot : n°972, pl. 1 figs 86, 94.


Cantharus aquitanensis (Peyrot, 1927)

1927 Tritonidea exsculpta (Dujardin) - Peyrot : n°974, pl. 4 figs 37-39 (pars).

1927 Tritonidea aquitanensis Peyrot : n°975, pl. 4 figs 40-41 (pars).1927 Tritonidea thibaudei Peyrot : n°978, pl. 4 figs 48-49.


La téléoconque de cette espèce est peu discernablede Cantharus exculptus (Dujardin, 1837) du Miocènemoyen de Touraine. Les protoconques sont en revanchefort différentes chez les deux espèces. C. exculptus,d'après des exemplaires de Pontlevoy "Route de The-nay" (coll. MNHN), est pourvue d'une protoconquepaucispirée alors que celle de C. aquitanensis est mul-tispirée.

Cantharus cancellarioides (Basterot, 1825)Pl. 26 figs 1a-1b

1825 Nassa cancellarioides Basterot : 50, pl. 3 figs 8.1834b Nassa cancellarioides Basterot - Grateloup : n°516, 273.1847 Buccinum cancellarioides (Basterot) - Grateloup : pl. 36 fig.26.1852 Buccinum cancellarioides Gratteloup - D'Orbigny : n°1595, 86.1927 Tritonidea cancellarioides (Basterot) - Peyrot : n°973, pl. 1

figs 6-7.


Euthria J.E. Gray, 1850

Murex corneum Linné, 1758 (DO) - Origine : Récent, Méditerranée.

Euthria sp.Pl. 26 figs 3a-3b


Cette petite Euthria est la seule espèce à proto-conque paucispirée (environ un tour et demi) que nousconnaissons du Miocène aquitain. Elle est probable-ment nouvelle.

Euthriofusus Cossmann, 1901

Fusus burdigalensis Basterot, 1825 (DO) - Origine : Miocène infé-rieur d'Aquitaine.

Euthriofusus burdigalensis (Defrance, 1820)

1820 Fasciolaria burdigalensis Defrance : 541.1825 Fasciolaria burdigalensis Defrance - Basterot : 66, pl. 7 fig.11.1833a Fasciolaria burdigalensis Defrance - Grateloup : 35.1847 Fasciolaria burdigalensis Defrance - Grateloup : pl. 23 figs 6-

8, 10, pl. 24 figs 13-14.1852 Fasciolaria burdigalensis Defrance - d'Orbigny : n°1258, 71.1853 Fusus burdigalensis Basterot - Deshayes (1829-1853) : 64, pl.

107 figs 1-2.1901 Euthriofusus burdigalensis (Defrance) - Cossmann : Essais 8,

25, pl. 1 fig. 1.1928 Euthriofusus burdigalensis (Defrance) - Peyrot : n°1020, pl. 6

figs 1-6.


DELSAERDT (1993) a décrit des côtes de l'Afriquede l'Ouest un Afer lansbergisi morphologiquement pro-che d'Euthriofusus burdigalensis ce qui suggère uneparenté entre Euthriofusus et Afer. Les autres espècesd'Afer présentant également des ressemblances avecEuthriofusus.


Famille NASSARIIDAE Iredale, 1916

Cyllene Gray in Griffith & Pidgeon, 1834

Cyllene owenii Gray in Griffith & Pidgeon, 1834 (DO) - Origine :Récent, Afrique de l'Ouest.

Cyllene desnoyersi (Basterot, 1825)Pl. 26 figs 11a-11b

1825 Nassa desnoyersi Basterot : 50, Pl. 2 fig. 13.1834b Nassa desnoyersi Basterot - Grateloup :n°515, 272.1847 Buccinum desnoyersi (Basterot) - Grateloup : pl. 36 fig. 22.1852 Nassa desnoyersi Basterot - d'Orbigny : n°1550, 84.1875(b) Cyllene desnoyersi (Basterot) - Tournouër : 332, pl. 15 figs

1a-b.1875(b) Cyllene desnoyersi var. aquitanica Tournouër : 332, pl. 15

fig. 2, 2a-b.1875(b) Cyllene desnoyersi var. bisinuata Tournouër : 332, pl. 15

fig. 3.1885a Cyllene desnoyersi (Basterot) - Benoist : 18.1927 Cyllene desnoyersi (Basterot) - Peyrot : n°962, pl. 4 figs 9-14.1927 Cyllene degrangei Peyrot : n°963, pl. 4 figs 15-16.1975 Cyllene desnoyersi desnoyersi (Basterot) - Cernohorsky : 168.1984 Cyllene desnoyersi desnoyersi (Basterot) - Cernohorsky : 219.


PEYROT (1927) a décrit l'espèce degrangei d'aprèsun unique individu de l'Oligocène supérieur de St-Etienne-d'Orthe. Depuis lors, nous avons récolté denombreuses Cyllene dans les dépôts de même âge à St-Paul-lès-Dax qui montrent que les différences mises enavant par Peyrot pour séparer les espèces degrangei etdesnoyersi ne sont pas constantes.

Dorsanum Gray, 1847

Buccinum politum Lamarck, 1822 (DO) - Origine : Récent, Afriquede l'Ouest.

Dorsanum baccatum (Basterot, 1825)Pl. 26 figs 5a-5b, 6a-6b, 7a-7b

1825 Buccinum baccatum Basterot : 47, pl. 2 fig. 16.1834a Buccinum baccatum Basterot - Grateloup : n°500, 208.1847 Buccinum baccatum Basterot - Grateloup : pl. 36 figs 2, 6.1847 Buccinum baccatum var A. aquensis Grateloup : pl. 36 figs 1,

20.1852 Buccinum baccatum Basterot - D'Orbigny : n°1585, 85.1927 Dorsanum aquense (Grateloup) - Peyrot : n°953, pl. 1 figs 1-3,

38.1927 Dorsanum aquense var. gracilis Peyrot : n°953, pl. 1 fig. 4.1927 Dorsanum aquense mut. pertinax Peyrot : n°954, pl. 1 figs 13-

14, 26-28, 56.1927 Cyllene (Cyllenina) baccata (de Basterot) - Peyrot : n°966, pl.

4 figs 21-23.1990 "Buccinum baccatum" Basterot - Allmon : pl. 13 fig. 6 (non 7),

pl ; 14 figs 3-4.


Finalement, nous souscrivons à l'opinion de Grate-

loup qui considérait son aquensis comme une simplevariété du Buccinum baccatum de Basterot, 1825. Cer-tes séparer des Dorsanum baccatum du Burdigalienmoyen (faluns de Cestas ou de Saucats "Pont-Pourquey") de D. aquensis de Lariey ou du Burdigaliende St-Paul-lès-Dax (Cabanes) ne présente aucune diffi-culté. En revanche, il est délicat d'attribuer à l'une oul'autre espèce les exemplaires de gisements tel que Sau-cats "Lagus" (Burdigalien) qui sont stratigraphiquementintermédiaires entre Lariey et Pont-Pourquey. La tran-sition entre les deux espèces paraît donc progressive etil n'est pas raisonnable, sans étude spécifique préalable,de les séparer.

Dorsanum lineolatum (Grateloup, 1834)Pl. 26 figs 4a-4b

1834b Nassa lineolata Grateloup : n°525, 277.1847 Buccinum lineolatum Grateloup - Grateloup : pl. 36 fig. 36.1852 Buccinum eolus D'Orbigny : n°1592, 86.1925 Nassa (Hinia?) avitensis Peyrot : n°882, pl. 3 figs 81-83.1925 Nassa (Uzita) lineolata Grateloup - Peyrot : n°890, pl. 2 figs

50-52, pl. 3 fig. 12.1925 Nassa (Uzita) lineolata var. peracuta - Peyrot : n°891, pl. 3 fig.

11.


Dorsanum lineolatum présente de nombreusesformes au statut incertain. Par exemple Nassa avitensisqui paraît localisée aux sites aquitaniens de la vallée dela Douze (Landes). L'échantillon type de N. avitensisest effectivement très éloigné de D. lineolatum et l'oncomprend que PEYROT (1925) l'ait non seulementconsidéré comme une espèce distincte mais de surplusne l'ait pas comparé à D. lineolatum. Il semble cepen-dant qu'il existe un continuum entre D. lineolatum et N.avitensis, ce qui se traduit par le fait que de nombreuxindividus ne peuvent être attribués à l'une ou l'autre es-pèce.

Dorsanum plicatum (Grateloup, 1847)Pl. 26 fig. 9

1834a Buccinum politum Lamarck - Grateloup : n°501, 209.1847 Buccinum politum Lamarck - Grateloup : pl. 36 figs 10, 31, 39.1847 Buccinum politum var B. plicatum Grateloup : pl. 36 fig. 31.1852 Buccinum subpolitum d'Orbigny : n°1593, 86.1925 Dorsanum subpolitum (d'Orbigny) - Peyrot : n°948, pl. 1 figs

17, 32-33.1925 Dorsanum plicatum (Grateloup) - Peyrot : n°950, pl. 1 figs 15-

16.


Nassarius Duméril, 1806

Buccinum arcularia Linné, 1758 (DO) - Origine : Récent, Indo-Ouest-Pacifique.


Nassarius aquitanicus (Mayer, 1858)Pl. 26 figs 8a-8b, 10a-10b

1858 Buccinum aquitanicum Mayer : 192, pl. 4 fig. 2.1874a Nassa aquitanica (Mayer) - Benoist : n°672, 383.1885 Nassa aquitanica (Mayer) - Benoist : 21.1925 Nassa (Phrontis) aquitanica (Mayer) - Peyrot : n°914, pl. 3

figs 28-30.


Nous avons hésité à mettre en synonymie Nassa gi-rondica Peyrot, 1925 (=Nassa pelouatensis Peyrot,1925) bien que cette hypothèse soit très vraisemblable.Nassarius girondicus est connu de l'Aquitanien au Bur-digalien, tandis que Nassarius aquitanicus semble res-treint à l'Aquitanien et en particulier à l'Aquitanien su-périeur. Cependant, on observe des formes de passagesentre ces deux groupes ; Nassarius girondicus se dis-tinguant principalement par sa taille généralement plusgrande et son dernier tour plus globuleux.

Nassarius subtesselatus (Peyrot, 1925)1925 Nassa (Telasco?) subtessellata Peyrot : n°934, pl. 3 figs 4-6, 8-

10.


Cette espèce est surtout commune dans le Burdiga-lien bien que PEYROT (1925) la signale de plusieurs si-tes aquitaniens dont Lariey. En fait, Nassa subtesselataest très proche de Nassa degrangei (Peyrot, 1825) del'Oligocène supérieur.

Famille MELONGENIIDAE Gill, 1871

Melongena Schumacher, 1817

Murex melongena Linné, 1758 (DO) - Origine : Récent, Caraïbe.

Melongena cornuta (Agassiz, 1843)Pl. 27 figs 1a-1b, 2a-2b

1825 Pyrula melongena (Linné) - Basterot : 68.1833a Pyrula melongena (Linné) - Grateloup : 44.1843 Pyrula cornuta Agassiz : 89.1847 Pyrula melongena (Linné) - Grateloup : pl. 26 fig. 1.1847 Pyrula melongena (Linné) - Grateloup : pl. 28 figs 1, 15a-b.1852 Fusus cornutus d'Orbigny : n°1193, 67.1888 Melongena cornuta (Agassiz) - Dollfus : 11.1901 Melongena cornuta (Agassiz) - Cossmann : 86, pl. 5 fig. 11.1928 Melongena cornuta (Agassiz) - Peyrot : n°1009, pl. 8 figs 1-6.1941b Melongena cornuta (Agassiz) - Magne : 87.1941b Melongena cornuta var. spiroplana Magne : 88.1955 Galeodes (Galeodes) cornutus (Agassiz) - Korobkov : 377, pl.

99 fig. 8.1970 Melongena cornuta (Agassiz) - Magne & Saubade : 2, fig. 1.


Melongena cornuta est un fossile classique duBordelais et en particulier du Burdigalien. MAGNE

(1941b) a toutefois rappelé que l'espèce est connuedans plusieurs localités aquitaniennes et qu'elle existeaussi au Miocène moyen (voir DOLLFUS 1888).

Melongena lainei (Basterot, 1825)Pl. 28 figs 1a-1b, 2, 3

1825 Pyrula lainei Basterot : 67, pl. 7 fig. 8.1833a Pyrula sulcata Grateloup : 45.1842 Pyrula lainei Basterot - Matheron : n°217, 249.1847 Pyrula lainei Basterot - Grateloup : pl. 26 figs 2, 3,8 ; pl. 27

fig. 2 ; pl. 28 figs 13, 14.1847 Pyrula lainei Basterot var nodifera Grateloup : pl. 26 fig. 2.1847 Pyrula lainei var B. cornigera Grateloup : pl. 26 fig. 2 ; pl. 27

fig. 2 ; pl. 28 fig. 14.1847 Pyrula lainei Basterot var resecata Grateloup : pl. 28 fig. 13.1852 Fusus lainei d'Orbigny : n°1196, 67.1900 Pyrula Semseyiana Erdös : 262, pl. 1.1901 Melongena cornuta (Agassiz) - Cossmann : Essais 8, 86, pl. 4fig. 10.1928 Melongena lainei (Basterot) - Peyrot : n°1008, pl. 5 figs 33-36.1941b Melongena (Melongena) lainei (Basterot) - Magne : 86.1970 Melongena lainei (Basterot) - Magne & Saubade : 2, fig. 3.1973 Galeodes semseyiana (Erdös) - Baldi : 295, pl. 49 figs 1-2.


Melongena lainei est, en Aquitaine, une espècesurtout commune à l'Aquitanien bien qu'elle se ren-contre aussi dans le Burdigalien des Landes (St-Paul-lès-Dax) et de Gironde (Saucats "Le Peloua"). Elle fré-quentait probablement les vasières lagunaires. Melon-gena lainei a une très large répartition. Elle est signa-lée, sous le nom de M. semseyiana dans l'Egérien hon-grois (Oligocène supérieur) (BALDI 1973). VREDEN-

BURG (1925) cite également l'espèce au Pakistan orien-tal dans des couches attribuées au Miocène inférieur.Dans ce travail l'espèce n'est pas figurée mais la des-cription qui est faite correspond parfaitement à Melon-gena lainei. BEETS (1941, pl. 5 figs 212-216) figureune Melongena du Miocène d'Indonésie, sous le nomde Melongena gigas (Martin, 1883), qui ne semble pasdiscernable de M. lainei. Dans le Bassin de Siva (Tur-quie centrale) Melongena lainei est représentée au seind'une association de mollusques, presque indissociablede celles du Miocène inférieur aquitain (POISSON et al.1997). ERUNAL-ERENTOZ (1958) a figuré sous le nomde Melongena cornuta une espèce proche de Melonge-na lainei mais qui s'en distingue par sa sculpture spiralemoins forte. La même espèce existe aussi en CrêteCentrale (Didier Merle, comm. pers.) dans des couchesprobablement tortoniennes (DELRIEU 1990). En Crête,cette Melongena se rencontre en compagnie de mollus-ques saumâtres comme le Potamididae Terebralia ou leBatillariidae Granulobium.

En conclusion, Melongena lainei serait présentedès l'Oligocène supérieur en Paratéthys et répandueavec certitude au Miocène inférieur, de l'Aquitaine à laTurquie, voire jusqu'au Pakistan et à l'Indonésie. L'es-pèce qui lui succède a perduré jusqu'au Miocène supé-rieur (Tortonien) en Méditerranée orientale.


Volema Röding, 1798

Volema paradisiaca Röding, 1798 (DO) - Origine : Récent, Indo-Ouest-Pacifique.

Volema tarbeliana pyrulata(Bellardi & Michelotti, 1840)

Pl. 27 figs 3a-3b

1833 Pyrula tarbeliana Grateloup : n°411, 46.1840 Murex pyrulatus Bellardi & Michelotti (Bonelli ms.) : 39, pl. 2

figs 10-11.1847 Fusus diluvianus Grateloup : pl. 24 fig. 4.1847 Pyrula tarbeliana Grateloup - Grateloup : pl. 27 fig. 7.1847 Fusus tarbellianus d'Orbigny : n°203, 13.1852 Fusus diluvianus Gratteloup - d'Orbigny : n°1192, 66.1872 Hemifusus pirulatus (Bonelli) - Bellardi : pl. 10 figs 1-2.1928 Buccinofusus diluvianus (Grateloup) - Peyrot : n°1027, pl. 7

figs 3-41941b Melongena (Pugilina) pyrulata (Bonelli) - Magne : 93.

Matériel examiné : 1 spm. coll. Lesport ; 1 spm. coll.Balauze.

Pyrula tarbeliana tarbeliana Grateloup, 1833 pro-vient de l'Oligocène inférieur de Gaas, la sous-espècepyrulata se rencontre au Miocène inférieur en Aqui-taine et en Italie (Colline de Turin). C'est une espècepeu fréquente dont nous avons cependant pu examinerquinze exemplaires provenant des collections Aucoin(Oligocène inférieur, Gaas, Espibos : 5 spm.), Lozouetet al. (Oligocène inférieur, Gaas, Espibos, : 3 spm. ;Miocène inférieur : St-Paul-Lès-Dax, Cabanes, 1 spm. ;Meilhan, Carrière Vive, 2 spm.), de Sacy (Miocène in-férieur, Mérignac, 1 spm.), coll. MNHN (Miocène infé-rieur, Mérignac, 2 spm.), coll. Balauze (Lariey, 1 spm.),coll. Lesport (3 spm. : 1 spm. Pessac-Lorient, 1 spm. deSt-Paul-lès-Dax "Cabanes"). On constate qu'à l'Oligo-cène inférieur l'espèce développe parfois des morphesdont le dernier tour montre un profil anguleux ; c'estd'ailleurs l'une de ces morphes qu'a représentée Grate-loup. Au Miocène inférieur nous n'avons observé quedes individus à profil régulièrement convexe commeceux figurés par Peyrot et Grateloup. On peut donc ad-mettre que l'espèce pyrulata est une sous-espèce strati-graphique de Pyrula tarbeliana.

Volema pyrulata (=diluviana) a été classée parPeyrot dans le genre Buccinofusus Conrad, 1867 (Es-pèce type : B. parvilis Conrad, 1867 ; Miocène supé-rieur Nord-Américain) qui groupe des espèces présen-tant des rapports bien lointains avec V. diluviana. Il estpossible que PEYROT (1928) se soit basé seulement surune certaine similitude de la sculpture (présence chezBuccinofusus de forts cordons spiraux), délaissant lesdifférences importantes dans la forme des coquilles deBuccinofusus : spire allongée, ouverture plus arrondie,canal étroit, incurvé (voir par exemple Buccinofususchesapeakensis Petuch, 1988, ancêtre d'après WARD

(1992, 134, pl. 13 fig. 7, de B. parvilis).

Famille FASCIOLARIIDAE Gray, 1853Latirulus Cossmann, 1880

Fusus subaffinis d'Orbigny, 1852 (DO) - Origine : Eocène du Bassinde Paris.

Latirulus coarctatus (Michelotti, 1847)Pl. 28 fig. 4

1847 Turbinella coarctata Michelotti : 262, pl. 17 fig. 4.1928 Lathyrus (Lathyrulus) coarctatus (Michelotti) - Peyrot :

n°1042, pl. 6 figs 23-24.


Pleuroploca Fischer, 1884

Murex trapezium Linné, 1758 (M) - Origine : Récent, Indo-Ouest-Pacifique.

Pleuroploca michelotiana (Grateloup, 1847)Pl. 28 figs 5a-5b

1847 Fasciolaria michelotiana Grateloup : pl. 23 fig. 1.1847 Turbinella tritonina Grateloup : pl. 24 fig. 17.1852 Fasciolaria michelottiana Grateloup - d'Orbigny : n°1289, 71.1864a Fasciolaria jouanneti Mayer : 361, pl. 14 fig. 9.1875b Fasciolaria jouanneti Mayer - Benoist : 111.?1928 Fasciolaria (Pleuroploca) sacyi Peyrot : n°1033, pl. 7 figs 6-

7.1928 Fasciolaria (Pleuroploca) aquitaniensis Peyrot : n°1034, pl. 9

figs 17-18.1928 Fasciolaria (Pleuroploca) tritonina Grateloup - Peyrot :

n°1032, pl. 8 figs 19-20.


PEYROT (1928) a admis cinq espèces de Pleuroplo-ca dans le Miocène inférieur sans tenir compte de tou-tes les figures de GRATELOUP (1847). Les argumentsqu'il avance pour justifier son découpage sont fondéssur quelques spécimens et n'apparaissent pas crédibles.Dans le cas de F. aquitaniensis et F. tritonina parexemple, on constate que les individus figurés sont malconservés et ne permettent pas un diagnostique spécifi-que fiable.

Famille COLUMBELLIDAE Swainson, 1840

Costoanachis Sacco, 1890

Columbella (Anachis) turrita Sacco, 1890 (DO) - Origine : Miocènemoyen d'Italie.

Costoanachis terebralis (Grateloup, 1834)Pl. 28 figs 6a-6c

1834b Nassa terebralis Grateloup : n°512, 271.1847 Buccinum terebrale (Grateloup) - Grateloup : pl. 36 fig. 35.1852 Buccinum terebrale (Grateloup) - d'Orbigny : n°1591, 86.1925 Anachis terebralis (Grateloup) - Peyrot : n°856, pl. 1 figs 65-79.1925 Anachis terebralis var. perlonga Peyrot : n°858, pl. 1 fig. 81.



Mitrella Risso, 1826

Mitrella flaminea Risso, 1826 (DS Cox, 1927) - Origine : Récent,Méditerranée.

Mitrella aquitanica (Peyrot, 1925)Pl. 28 figs 9a-9c

1925 Columbella (Alia) turonensis mut. aquitanica Peyrot : n°849,pl. 1 figs 58-59.


Mitrella sp.Pl. 28 fig. 8


Nous avons séparé cette espèce en raison de cestours particulièrement convexes comparés à ceux deMitrella aquitanica.

Retizafra Hedley, 1913

Anachis (Retizafra) gemmulifera Hedley, 1913 (DO) - Origine : Ré-cent, Indo-Ouest-Pacifique.

Retizafra rissoides (Grateloup, 1834)Pl. 28 figs 7a-7b

1834b Nassa rissoides Grateloup : n°513, 271.1847 Buccinum rissoides (Grateloup) - Grateloup : pl. 36 fig. 9.1852 Columbella rissoides d'Orbigny : n°1646, 88.1925 Anachis rissoides (Grateloup) - Peyrot : n°860, pl. 1 figs 71,

82-83.


Famille VOLUTIDAE Rafinesque, 1815

Athleta Conrad, 1853

Voluta rarispina Lamarck, 1811 (DO) - Origine : Miocène inférieurd'Aquitaine.

Athleta ficulina (Lamarck, 1811)

1811 Voluta ficulina Lamarck : 79.1811 Voluta rarispina Lamarck : 79.1825 Voluta rarispina Lamarck - Basterot : pl. 2 fig. 1.1834b Voluta rarispina Lamarck - Grateloup : n°564, 297.1834b Voluta ficulina Lamarck - Grateloup : n°565, 298.1847 Voluta ficulina Lamarck - Grateloup : pl. 38 figs 4, 6, 10, 11.1847 Voluta rarispina Lamarck - Grateloup : pl. 38 figs 1, 3, 7, 8, 9,

12-13, 18, 19.1847 Voluta affinis Brocchi - Grateloup : pl. 38 figs 16-17, 20.1852 Voluta ficulina Lamarck - d'Orbigny : n°149, 10.1852 Voluta rarispina Lamarck - Hörnes (1851-1856) : 91, pl. 9 figs

6-10.1852 Voluta ficulina Lamarck - Hörnes (1851-1856) : 92, pl. 9 figs

11-12.

1853 Voluta rarispina Lamarck - Deshayes (1829-1853) : pl. 112figs 9-10.

1899 Volutilithes (Athleta) ficulina (Lamarck) - Cossmann : 142, pl.4 fig. 24.

1928 Volutilithes (Athleta) ficulina (Lamarck) - Peyrot : n°1085, pl.10 figs 1-2, 14-17 : pl. 11 fig. 11.

1928 Volutilithes (Athleta) ficulina var. rarispina (Lamarck) - Peyrot: n°1087, pl. 11 fig. 18-22.


Famille TURBINELLIDAE (TUDICLINAE)Cossmann, 1901

Tudicla Röding, 1798

Murex spirillus Linné, 1767 (DS Fischer, 1884) - Origine : Récent,Indo-Ouest-Pacifique.

Tudicla rusticula (Basterot, 1825)Pl. 29 figs 7a-7b

1825 Pyrula rusticula Basterot : 68, Pl. 7 fig. 9.1833a Pyrula spirullus Lamarck - Grateloup : n°416, 48.1847 Pyrula spirullus Lamarck - Grateloup : pl. 28 figs 1-5.1852 Murex rusticulus d'Orbigny : n°1333, 73.1901 Tudicula rusticula (Basterot) - Cossmann : essais 8, 68, pl. 3

fig. 12-13.1928 Tudicula rusticula (Basterot) - Peyrot : n°1007, pl. 5 figs 17,

20.1960a Tudicla rusticula (Basterot) - Glibert : 46.

Matériel examiné : 1 spm. coll. Lesport. ; 1 spm. coll.Daney.

Famille HARPIDAE Bronn, 1849

Morum (Oniscidia) Mörch, 1852

Oniscia cancellata Sowerby, 1824 (M) - Origine : Récent, Indo-Ouest-Pacifique.

Morum (Oniscidia) harpaeforme (Grateloup, 1827)

1827 Cassidaria harpaeformis Grateloup : 18.1834a Cassidaria harpaeformis Grateloup - Grateloup : n°473, 196.1847 Cassidaria harpaeformis Grateloup - Grateloup : pl. 34 fig. 8.1852 Oniscia cithara Sowerby - d'Orbigny : n°1663, 89.1924 Oniscia (Oniscidia) harpaeformis (Grateloup) - Cossmann &

Peyrot : n°721, pl. 12 figs 18-20.

Matériel examiné : 1 spm. coll. Muséum d'Histoire na-turelle - Bordeaux.

Morum (Oniscidia) variolosum (Grateloup, 1834)Pl. 29 fig. 8

1834b Voluta variolosa Grateloup : n°561, 296.1840 Oniscia verrucosa Bonelli in Michelotti : 159.1847 Cassidaria oniscus Lamarck - Grateloup : pl. 34 figs 5-6.1847 Oniscia verrucosa Bonelli - Michelotti : 220, pl 12 figs 11-12.1852 Oniscia verrucosa Bonelli in Michelotti - d'Orbigny : n°1662,

89.1924 Oniscia (Oniscidia) verrucosa Bonelli - Cossmann & Peyrot :

n°722, pl. 12 figs 39-40.



Oniscia verrucosa Bonelli est un simple nom d'uncatalogue manuscrit (FERRERO MORTARA et al 1984).L'espèce verrucosa a en fait été validée par MICHE-

LOTTI (1840) postérieurement donc à Voluta variolosaGrateloup. D'après BEU (1976) Onimusiro Kuroda,Habe & Oyama, 1971 est un synonyme d'Oniscidia. Onremarquera que M. variolosum s'apparente à Morumfinlayi (Laws, 1932) du Miocène inférieur et moyen deNouvelle-Zélande (voir BEU 1976, figs 3, 6-7, 10).

Famille MARGINELLIDAE Fleming, 1828

Volvarina Hinds, 1844

Marginella nitida Hinds, 1844 (DS Redfield, 1871) - Origine : Ré-cent, Méditerranée.

Volvarina tumulensis Lozouet, 1998Pl. 29 fig. 6

1998 Volvarina tumulensis Lozouet : 96, figs 18d-e.


Volvarina tumulensis est connue du sommet del'Oligocène supérieur au Burdigalien inférieur maisl'espèce est généralement peu commune.

Famille CYSTISCIDAE Stimpson, 1865

Gibberula Swainson, 1840

Volvaria oryza Lamarck, 1822 (M) - Origine : Récent, Afrique del'Ouest.

Gibberula sp.Pl. 29 figs 5a-5b


Nous ne connaissons pas d'autre exemplaire decette espèce qui se caractérise par sa spire totalement"noyée" par le dernier tour.

Gibberula subovulata (d'Orbigny, 1852)Pl. 29 figs 4a-4c

1834b Marginella ovulata Lamarck - Grateloup : n°573, 301.1847 Marginella ovulata Lamarck - Grateloup : pl. 42 fig. 35.1852 Marginella subovulata d'Orbigny : n°845, 51.1928 Cryptospira (Gibberula) subovulata (d'Orbigny) - Peyrot :

n°1094, pl. 11 figs 52-53.1998 Gibberula subovulata (d'Orbigny) - Lozouet : 96, fig. 18c.


Famille COSTELLARIIDAE MacDonald, 1860

Costellaria Swainson, 1840

Mitra rigida Swainson, 1821 (M) - Origine : Récent, Indo-Ouest-Pacifique.

Costellaria miocenica (Peyrot, 1928)Pl. 29 figs 15a-15b

1928 Turricula miocenica Peyrot : n°1060, pl. 9 figs 2, 12, 61.


Costellaria semiplicata (Peyrot, 1928)Pl. 29 fig. 9

1928 Turricula (Uromitra?) semiplicata (Bellardi) Peyrot : n°1067,pl. 7 figs 18-19, 33-34.


Nous avons suivi l'opinion de CERNOHORSKY

(1970, 53) qui considère qu'Uromitra Bellardi, 1887,genre dans lequel cette espèce a jusqu'à présent étéclassée, est un synonyme postérieur de Costellaria.

Famille MITRIDAE (MITRINAE) Swainson, 1831

Mitra Lamarck, 1801

Voluta mitra Linné, 1758 (DO) - Origine : Récent, Indo-Ouest-Pacifique.

Mitra basteroti (Mayer, 1891)Pl. 29 fig. 11

1891a Mitra basteroti Mayer-Eymar : 335, pl. 10 fig. 4.1928 Mitra basteroti Mayer - Peyrot : n°1048, pl. 8 fig. 14-16.1976 Mitra basteroti Mayer - Cernohorsky : 375, pl. 323G.


Mitra dufresnei (Basterot, 1825)Pl. 29 fig. 10

1825 Mitra dufresnei Basterot : 44, pl. 2 fig. 8.1834b Mitra dufresnei Basterot - Grateloup : n°541, 286.1847 Mitra dufresnei Basterot - Grateloup : pl. 37 figs 1-2.1928 Mitra dufresnei Basterot - Peyrot : n°1043, pl. 9 figs 34-36.1976 Mitra (Mitra) dufresnei Basterot - Cernohorsky : 376, pl. 323E.


Mitra incognita (Basterot, 1825)Pl. 29 fig. 12

1825 Mitra incognita Basterot : 45, pl. 4 fig. 5.1834b Mitra incognita Basterot - Grateloup : n°543, 287.1847 Mitra incognita Basterot - Grateloup : pl. 37 fig. 8.

1928 Mitra incognita Basterot - Peyrot : n°1047, pl. 9 figs 15-16,29-31.

1976 Mitra (Mitra) incognita Basterot - Cernohorsky : 378, pl.323G.



Famille MITRIDAE (IMBRICARIINAE) Troschel, 1867

Scabricola Swainson, 1840

Voluta variegata Gmelin, 1791 (DS Gray, 1847) - Origine : Récent,Indo-Ouest-Pacifique.

Scabricola brevispira (Bellardi, 1887)Pl. 29 fig. 13-14

1887 Mitra brevispira Bellardi : 6, pl. 3 fig. 1.1982 Mitra brevispira Bellardi - Ferrero Mortara, Montefameglio,

Pavia & Tampieri : 146, pl. 40 fig. 12.


Cette espèce, signalée pour la première fois dans leNéogène aquitain, n'était auparavant connue que parl'exemplaire juvénile et cassé de Bellardi récolté dansles "Collines de Turin". Le site de la Carrière "Vives"(Meilhan) a fourni des exemplaires adultes, ce qui nouspermet d'illustrer plus convenablement l'espèce (Pl. 29fig. 14).

Nous rapportons avec doute Mitra brevispira augenre Scabricola dont un seul réprésentant fossile(Miocène d'Indonésie) a été signalé (CERNOHORSKY

1991).

Superfamille OLIVELLIDOIDEA Troschel, 1869

Famille OLIVELLIDAE Troschel, 1869

Agaronia Gray, 1839

Voluta hiatula Gmelin, 1790 (DO) - Origine : Récent, Afrique del'Ouest.

Agaronia plicaria (Lamarck, 1810)Pl. 29 fig. 2

1810 Oliva plicaria Lamarck : 327.1825 Oliva plicaria Lamarck - Basterot : 41, pl. 2 fig. 9.1834b Oliva basterotina Grateloup : n°611, 318.1844 Oliva plicaria Lamarck - Duclos in Chenu : 11.1845 Oliva hiatula Linné - Duclos in Chenu : pl. 4 figs 17-18.1847 Oliva basterotina Grateloup - Grateloup : pl. 42 fig. 28-30.1847 Oliva basterotina var. A. aquensis Grateloup : pl 42 fig. 28.1847 Oliva basterotina var. B. burdigalica Grateloup : pl. 42 figs

29-30.1899 Olivancillaria (Agaronia) basterotina (Defrance) - Cossmann :

Essais 3, 50, pl. 2 figs 21-23.1928 Olivancillaria (Agaronia) plicaria (Lamarck) - Peyrot :

n°1099, pl. 12 figs 17-20.1989 Olivancillaria (Agaronia) plicaria (Lamarck) - Davoli : 126,

pl. 4 fig. 17.1999 Agaronia plicaria (Lamarck) - Lhaumet : 26, fig. 6.


Cette espèce est proche d'Oliva hiatula Gmelin,1791 des côtes de l'Afrique de l'Ouest ainsi que le sou-ligne LHAUMET (1999). VERGNEAU (1966) signale A.plicaria dans l'Oligocène inférieur de Gaas. Il s'agit enfait d'Oliva prestwichi Mayer, 1861 (MAYER, 1861).

Olivella Swainson, 1831

Oliva purpurata Swainson, 1831 (DS Dall, 1909) - Origine : Récent,Province Panaméenne.

Olivella nilotida (Duclos, 1840)Pl. 29 fig. 3

1834b Oliva laumontiana Lamarck - Grateloup : n°614, 320.1840 Oliva nilotida Duclos : pl. 18 figs 1-2.1844 Oliva nilotida Duclos - Duclos in Chenu : 21.1845 Oliva nilotida Duclos - Duclos in Chenu : pl. 19 figs 1-2.1847 Oliva laumontiana Lamarck - Grateloup : pl. 42 fig. 31.1852 Oliva grateloupii d'Orbigny : n°861, 51.1897 Oliva (Olivella) benoisti Mayer-Eymar : 146, pl. 4 figs 5, 5a.1897 Oliva (Olivella) brevispira Mayer-Eymar : 146, pl. 4 figs 6, 6a.1928 Olivella grateloupi (d'Orbigny) - Peyrot : n°1100, pl. 11 figs

25-26.1992 Olivella grateloupi (d'Orbigny) - Lozouet : 31, pl. 3 fig. 7.


La figuration ainsi que la provenance mentionnée"Fossile de Dax et Léognan" par DUCLOS (1844, 21) nelaissent aucun doute sur la détermination de cette es-pèce.

Famille OLIVIDAE Latreille, 1825

Anazola Gray, 1853

Oliva acuminata Lamarck, 1810 (DS Fischer, 1883) - Origine : Ré-cent, Afrique de l'Ouest.

Anazola clavula (Lamarck, 1810)Pl. 29 figs 1a-1c

1810 Oliva clavula Lamarck : 328.1825 Oliva clavula Lamarck - Basterot : 42, pl. 2 fig. 7.1834b Oliva clavula Lamarck - Grateloup : n°612, 319.1835 Oliva clavula Lamarck - Duclos : pl. 18 figs 13-141845 Oliva clavula Lamarck - Duclos in Chenu : pl. 19 figs 13-14.1847 Oliva clavula Lamarck - Grateloup : pl. 42 figs 25-26, 27.1852 Oliva subclavula d'Orbigny : n°859, 51.1899 Olivella (Lamprodoma) subclavula (d'Orbigny) - Cossmann :

57, pl. 2 fig. 28.1928 Olivella (Lamprodoma) clavula (Lamarck) - Peyrot : n°1101,

pl. 11 figs 50-51.


Oliva (Strephona) Mörch, 1852

Oliva flammulata Lamarck, 1810 (DO) - Origine : Récent, Afriquede l'Ouest.

Oliva (Strephona) dufresnei Basterot, 1825

1825 Oliva dufresnei Basterot : 42, pl. 2 fig. 10.1834b Oliva dufresnei Basterot - Grateloup : n°615, 320.


1835 Oliva dufresnei Basterot - Duclos : pl. 18 figs 9-10.1845 Oliva dufresnei Basterot - Duclos in Chenu : pl. 19 figs 9-10.1847 Oliva dufresnei Basterot - Grateloup : pl. 42 figs 23-24.1852 Oliva dufresnei Basterot - d'Orbigny : n°858, 51.1899 Oliva (Neocylindrus) dufresnei Basterot - Cossmann : Essais 3,

42, pl. 2 figs 30-31.1928 Oliva (Neocylindrus) dufresnei Basterot - Peyrot : n°1097, pl.

11 figs 45-48.?1979a Oliva (Strephona) dufresnei Basterot - R. Janssen : 302.


Il est probable qu'il existe de l'Oligocène supérieurau Miocène inférieur (Burdigalien) plusieurs espècesdans ce qu'il convient d'appeler le groupe d'Oliva du-fresnei :

- Oliva dufresnei a été décrite du Burdigalien deLéognan-Saucats. Elle existe dans le Burdigalien àLéognan, Saucats (Peloua, Lagus) à Pessac (Cap deBos), mais également dans le Burdigalien des Landes(Mimbaste) et dans les niveaux de base (Burdigaliensupérieur) de la série de Saubrigues/St-Jean-de Marsacq(Landes). Elle se caractérise par son limbe basal dontles deux plis principaux sont parallèles sur une bonnepartie de leur course.

- le limbe basal permet de distinguer un autregroupe chez lequel les deux plis principaux convergentrapidement. Cette forme semble plus particulièrementdéveloppée à l'Aquitanien ou au Burdigalien inférieurdes Landes (Meilhan, Moulin de Carro, Cabanes) etpeut-être aussi au Chattien dans les niveaux supérieursd'Abesse (St-Paul-lès-Dax).

- Oliva degrangei Peyrot, 1928 de l'Oligocène su-périeur présente, constamment, une spire plus élevée.

Superfamille CANCELLARIOIDEA

Forbes & Hanley, 1851

Famille CANCELLARIIDAE (CANCELLARIINAE)Forbes & Hanley, 1851

Aphera H. & A. Adams, 1854

Cancellaria tessellata Sowerby, 1832 (M) - Origine : Récent, Pro-vince Panaméenne.

Aphera bronni (Bellardi, 1841)Pl. 30 figs 2a-2b

1841 Cancellaria bronnii Bellardi : 31, pl. 4 figs 11-12.1899 Merica (Aphera) bronni (Bellardi) - Cossmann : Essais 3, 18,

pl. 1 fig. 11.1928 Merica (Aphera) bronni (Bellardi) - Peyrot : n°1117, pl. 13 figs

38-40.1990 Cancellaria bronnii Bellardi - Petit & Harasewych : 13.


Ventrilia Jousseaume, 1887

Cancellaria tenera Philipi, 1848 (M) - Origine : Récent, ProvinceCaraïbe.

Ventrilia sp.Pl. 30 figs 1a-1b


Cette Ventrilia a été également récoltée dans le sitede Meilhan ; la force de ses côtes axiales ne permet dela confondre avec aucune des espèces décrites parPEYROT (1928).

Superfamille CONOIDEA Rafinesque, 1815

Famille TURRIDAE (TURRINAE) H. & A. Adams, 1853

Coronia de Gregorio, 1890

Pleurotoma childreni Lea, 1833 (DS Gardner, 1935) - Origine : Eo-cène, Clairbone group, Alabama.

Coronia cypris (d'Orbigny, 1852)

1825 Pleurotoma undata Lamarck - Basterot : 64.1832c Pleurotoma undata Lamarck - Grateloup : n°347, 331.1847 Pleurotoma uniserialis Deshayes - Grateloup : pl. 20 fig. 34.1852 Pleurotoma cypris d'Orbigny : n°1061, 61.1852 Pleurotoma subundata d'Orbigny : n°1062, 61.1931 Pleurotoma cypris d'Orbigny - Peyrot : n°1245, pl. 9 figs 84,

87.


Nous rapprochons cette espèce des Coronia del'Eocène moyen américain (voir DOCKERY 1980, pl. 41figs 1-8). L'examen de Coronia tenella (Conrad, 1848)de l'Oligocène inférieur (Byram Formation) du Missis-sippi (exemplaires communiqués par D. Dockery, voirMACNEIL & DOCKERY 1984, pl. 35 figs 11-12) nousconfirme dans ce classement.

Gemmula Weinkauff, 1875

Pleurotoma gemmata Reeve, 1843 (DS Cossmann, 1896) - Origine :Récent, Indo-Ouest-Pacifique.

Gemmula denticula (Basterot, 1825)

1825 Pleurotoma denticula Basterot : 63, pl. 3 fig. 12.1832c Pleurotoma denticula Basterot - Grateloup : n°318, 320.1847 Pleurotoma denticula Basterot - Grateloup : pl. 20 fig. 8.1852 Pleurotoma denticula Basterot - d'Orbigny : n°1039, 60.1896a Pleurotoma (Hemipleurotoma) denticula Basterot - Cossmann

: Essais 2, 78, pl. 5 figs 9-10.1931 Pleurotoma (Hemipleurotoma) denticula Basterot - Peyrot :

n°1246, pl. 8 figs 20-21.1931 Pleurotoma (Hemipleurotoma) canaliculata (Bellardi) Peyrot :

n°1247, pl. 6 figs 41, 43, 45 ; pl. 8 fig. 9.



Famille TURRIDAE (CLAVATULINAE) Gray, 1853

Clavatula Lamarck, 1801

Clavatula coronata Lamarck, 1801 (M) - Origine : Récent, Afriquede l'Ouest.

Clavatula evoluta (Mayer-Eymar, 1891)Pl. 30 figs 12a-12c

1891a Pleurotoma evoluta Mayer-Eymar : 321, pl. 8 fig.4.?1931 Clavatula evoluta (Mayer) - Peyrot : n°1215, pl. 8 figs 79-80,

92.


Perrona Schumacher, 1817

Perrona tritonium Schumacher, 1817 (M) - Origine : Récent, Afri-que de l'Ouest.

Perrona semimarginata (Lamarck, 1822)

1822 Pleurotoma semimarginata Lamarck : 296.1825 Pleurotoma borsoni Basterot : 64, pl. 3 fig. 2.1832c Pleurotoma semimarginata Lamarck - Grateloup : n°311,

317.1842 Pleurotoma semimarginata Lamarck - Desmoulins : 144.1847 Pleurotoma semi-marginata Lamarck - Grateloup : pl. 19 figs

5-6, 15, 15, 16, 26.1847 Pleurotoma borsoni Basterot - Grateloup : pl. 19 figs 1-2.1852 Pleurotoma semi-marginata Gratteloup - d'Orbigny : n°1038,

59.1896a Clavatula (Perrona) semimarginata (Lamarck) - Cossmann :

Essais 2, 69, pl. 5 fig. 13.1931 Clavatula (Perrona) semimarginata (Lamarck) - Peyrot :

n°1218, pl. 6 figs 14-15, 23, 27, 32.


Pusionella Gray, 1847

Borsonia prima Bellardi, 1839 (DO) - Origine : Miocène d'Italie.

Pusionella pseudofusus (Des Moulins, 1842)

1825 Fusus buccinoides Basterot : 62 (pars).1832c Pleurotoma buccinoides (Basterot) - Grateloup : n°310, 316.1842 Pleurotoma pseudofusus Des Moulins : 140.1847 Pleurotoma buccinoides (Basterot) - Grateloup : pl. 19 fig. 19,

pl. 21 figs 10-11.1852 Pleurotoma pseudo-fusus Desmoulins - d'Orbigny : n°1098,

60.1931 Pusionella pseudofusus (Desmoulins) - Peyrot : n°1350bis, pl.

9 figs 74-76.


Famille TURRIDAE (CRASSISPIRINAE) McLean, 1971

Crassispira Swainson, 1840

Pleurotoma bottae Kiener, 1839-40 (DS Hermmannsen, 1847) - Ori-gine : Récent, Province Panaméenne.

Crassispira daguini Peyrot, 1931Pl. 30 figs 3a-3b

1931 Drillia (Crassispira) daguini Peyrot : n°1254, pl. 8 figs 5, 7.


Crassispira terebra (Basterot, 1825)1825 Pleurotoma terebra Basterot : 66, pl. 3 fig. 20.1852 Pleurotoma terebra Basterot - d'Orbigny : n°1053, 60.1931 Drillia (Crassispira) terebra (Basterot) - Peyrot : n°1257, pl. 7

figs 96, 100.


Famille CONIDAE (CONINAE) Fleming, 1822

Conus Linné, 1758

Conus marmoreus Linné, 1758 (DS Children, 1823) - Origine : Ré-cent, Indo-Ouest-Pacifique.

Conus basteroti Mayer-Eymar, 1891Pl. 31 figs 4a-4b, 5, 6

1891a Conus basteroti Mayer-Eymar : 323, pl. 8 fig. 6.1891b Conus basteroti Mayer-Eymar : "Diagnoses specierum nova-

rum", 293.1928 Conus (Chelyconus) basteroti Mayer - Peyrot : n°1179, pl. 2

figs 4, 6, 25.


Conus cf. berghausi Michelotti, 1847Pl. 31 figs 8a-8b

1847 Conus berghausi Michelotti : 342, pl. 13 fig. 9.1852 Conus berghausi Michelotti - d'Orbigny : 967, 56.1938 Conus (Dendroconus) gravis Peyrot : 260, pl. 5 figs 37-38.1952(a) Conus berghausi Michelotti - Glibert : 375, pl. 13 fig. 3.


Conus subalsionus d'Orbigny, 1852Pl. 31 figs 3

1835 Conus alsiosus Brongniart - Grateloup : n°639, 112.1847 Conus alsiosus var. striatulata - Grateloup : pl. 45 figs 10, 16.1847 Conus alsiosus var. laevis - Grateloup : pl. 45 fig. 25 (non

Gmelin)1852 Conus subalsionus d'Orbigny : n°979, 57.


Conus subturris d'Orbigny, 1852 sensu PEYROT

(1931) correspond en partie aux trois espèces suivantes :Conus aquitanicus Mayer, 1858, Conus subalsionusd'Orbigny, 1852 et Conus subturris. Le véritable Conussubturris paraît restreint à l'Aquitanien inférieur et se ca-ractérise par une protoconque paucispirée tandis que C.subalsionus, dont le type provient du Burdigalien de Ca-banes (St-Paul-lès-Dax), possède une protoconque mul-


tispirée. En l'absence des protoconques, il est difficile deséparer ces différentes espèces ; aussi l'identification desindividus de Lariey demeure incertaine.

Conus trigonulus Grateloup, 1835Pl. 31 figs 1a-1b, 2

1835 Conus trigonulus Grateloup : n°631, 108.1847 Conus trigonulus Grateloup - Grateloup : pl. 25 fig. 14.1852 Conus trigonulus Grateloup - d'Orbigny : n°988, 57.1992 Conus trigonulus Grateloup - Kohn : 261, fig. 527.


Nous ne souscrivons pas à l'opinion de KOHN

(1992, 261) qui considère que C. trigonulus est unexemplaire juvénile de C. mercati Brocchi, 1814, es-pèce du Pliocène italien. Le type de Brocchi (ROSSI

RONCHETTI 1955, 292, fig. 156) possède une spire plusétagée et ne porte pas de nodule sur la spire. Les Conusmercati que signale DAVOLI (1972, 119, pl. 1 figs. 2-3,5-9) dans le Tortonien de Monteggibio se distinguentdes exemplaires du Pliocène par une spire moins élevéeet s'apparentent de ce fait à C. trigonulus.

Hemiconus Cossmann, 1899

Conus stromboides Lamarck, 1803 (DO) - Origine : Eocène du Bas-sin de Paris.

Hemiconus granularis (Borson, 1820)Pl. 31 figs 7a-7b

1820 Conus granularis Borson : 196.1835 Conus granuliferus Grateloup : n°643, 113.1847 Conus granuliferus Grateloup - Grateloup : pl. 45 figs 21-22.1891a Conus granulato-cinctus Mayer-Eymar : 329, pl. 10 fig. 1.1931 Hemiconus granulifer (Grateloup) - Peyrot : n°1157, pl. 1 figs

11-12.1931 Hemiconus granulato-cinctus (Mayer) - Peyrot : n°1159, pl. 1

figs 40-41.1992 Conus granularis Borson - Kohn : 195, fig. 397.1992 Conus granuliferus Grateloup - Kohn : 261, fig. 522.


KOHN (1992) a développé les raisons de cette sy-nonymie que présentait PEYROT (1931).

Famille CONIDAE (MANGELIINAE) P. Fischer, 1883

Agathotoma Cossmann, 1899

Pleurotoma angusta Jan in Bellardi, 1848 (DO) - Origine : Pliocèned'Italie.

Agathotoma cf. subfoliata (Boettger, 1902)Pl. 30 fig. 11

1902 Mangilia subfoliata Boettger : (1897-1907), n°230, 68.1906 Mangilia subfoliata Boettger - Boettger : (1897-1907), n°292,

78.1934 Cythara (Mangelia) subfoliata (Boettger) - Zilch : n°329, 264,

pl. 19 fig. 47.


Mangelia (Agathotoma) pherousae Glibert, 1960[GLIBERT 1960b, 26, pl. 5 fig. 12 = Mangelia perforata(Brusina) in PEYROT 1938 (n°1290, pl. 7 figs 47-49)]du Miocène moyen de la Touraine est proche mais aune protoconque paucispirée. Or, nous avons pu cons-tater -d'après des individus de Meilhan (carrière Vives)-que l'espèce aquitanienne est pourvue d'une proto-conque multispirée. Les deux autres espèces de Mangi-lia décrites par Boettger qui semblent appartenir augroupe des Agathotoma [Mangilia paulae Boettger,1902 (ZILCH 1934 pl. 19 fig. 48), Mangilia detmersia-na Boettger, 1902 (ZILCH 1934 pl. 19 fig. 49)] possè-dent des côtes axiales plus nombreuses.

Bela Gray, 1847

Murex nebula Montagu, 1803 (DS Gray, 1847) - Origine : Récent,Province Tempérée Européenne.

Le genre Bela correspond plus ou moins au conceptde Raphitoma Bellardi, 1847 et d'Amblyacrum Coss-mann, 1889 proposé par COSSMANN (1896a) et reprispar PEYROT (1931) ainsi que par GOUGEROT & LE

RENARD (1981). Le genre Mangelia Risso, 1826 tel quecompris par COSSMANN (1896a), groupe des Mangeliaauthentiques et des Clathromangelia Monterosato,1884 ; la même confusion se retrouve dans le travail dePeyrot. En revanche, le concept de Mangelia inGOUGEROT & LE RENARD (1981) correspond bien à ladéfinition actuelle du genre (voir SABELLI et al. 1990).

Bela burdigalina (Peyrot, 1931)Pl. 30 figs 7a-7b

1931 Daphnella (Raphitoma) burdigalina Peyrot : n°1348, pl. 9 figs47-49.


Bela elegantissima (Peyrot, 1931)Pl. 30 figs 5a-5b, 6

?1931 Daphnella formosa Peyrot : n°1318, pl. 9 figs 99, 101.1931 Daphnella compacta Peyrot : n°1320, pl. 9 figs 108-109.1931 Daphnella (Raphitoma) aquensis Peyrot : n°1342, pl. 9 figs 90-

91.1931 Daphnella (Raphitoma) subpurpurea (d'Orbigny) - Peyrot :

n°1324, pl. 7 figs 42, 44, 91.1931 Daphnella (Raphitoma) elegantissima Peyrot : n°1326, pl. 9

figs 63-64.1931 Daphnella (Raphitoma) subvulpecula var. praecedens Peyrot :

n°1333, pl. 9 fig. 68.?1931 Daphnella (Raphitoma) benoisti Peyrot : n°1337, pl. 9 figs

62, 94.



On ne peut retenir, comme cela était notre premièreintention, le nom aquensis pour dénommer cette espèce.En effet, son classement dans le genre Bela entraîne unproblème d'homonymie car il existe une Bela aquensisPeyrot, 1931 (PEYROT 1931, pl. 9 fig. 22).

Famille CONIDAE (CLATHURELLINAE)H. &. A. Adams, 1858

Genota H. & A. Adams, 1853

Buccinum mitriformis Wood, 1828 (DS Fischer, 1883) - Origine :Récent, Afrique de l'Ouest.

Genota ramosa (Basterot, 1825)Pl. 30 fig. 13

1825 Pleurotoma ramosa Basterot : 63, pl. 3 fig. 15.1832c Pleurotoma ramosa Basterot - Grateloup : n°332, 326.1842 Pleurotoma ramosa Basterot - Des Moulins : 20.1847 Pleurotoma ramosa Basterot - Grateloup : pl. 19 figs 20-23.1896a Genotia ramosa (Basterot) - Cossmann : Essais 3, 144, fig. 2.1931 Genotia ramosa (Basterot) - Peyrot : n°1188, pl. 1 figs 29-34.


Pleurotomoides Bronn, 1831

Defrancia pagoda Millet, 1826 (DS Dall, 1908) - Origine : Miocènesupérieur d'Anjou.

Pleurotomoides subcostellatus (d'Orbigny, 1852)Pl. 30 fig. 4

1825 Pleurotoma costellata Lamarck - Basterot : 66, pl. 3 fig. 24.1832c Pleurotoma costellata Lamarck - Grateloup : n°350, 332.1842 Pleurotoma sulcilabris Des Moulins : 173 (nomen nudum).1847 Pleurotoma costellata Lamarck - Grateloup : pl. 20 figs 25, 27-

29.1852 Pleurotoma subcostellata d'Orbigny : n°1054, 60.1896a Mangelia (Clathurella) subcostellata (d'Orbigny) - Cossmann

: Essais 2, 123.1931 Mangelia (Clathurella) subcostellata (d'Orbigny) - Peyrot :

n°1301, pl. 8 figs 25, 27, 37.


Tomopleura Casey, 1904

Pleurotoma nivea Philippi, 1851 (DO) - Origine : Récent, Taiwan.

Tomopleura basteroti (Des Moulins, 1842)

1825 Pleurotoma turrella Lamarck var B - Basterot : 64.1832c Pleurotoma turrella Lamarck - Grateloup : n°348, 332.1842 Pleurotoma basteroti Des Moulins : 156.1847 Pleurotoma basteroti Desmoulins - Grateloup : pl. 20 fig. 62.1852 Pleurotoma basteroti Desmoulins - d'Orbigny : n°1085, 62.1896a Asthenotoma basteroti (Desmoulins) - Cossmann : Essais 2,

104, pl. 6 figs 23-24.1931 Asthenotoma ex-basteroti Peyrot : n°1284, pl. 7 figs 27-29 ; pl.

8 figs 32.

1990 Tomopleura basteroti (Desmoulins) - Gatto : 221.


Famille CONIDAE (DAPHNELLINAE) Casey, 1904

Andonia Bellardi, 1872

Fusus bonellii Bellardi & Michelotti, 1840 (DO) - Origine : Plio-cène et Miocène d'Italie.

MORONI & RUGGIERI (1981) ont démontré que legenre Andonia appartient à la famille des Conidae enraison de la fine sculpture treillisée de la protoconque.

Andonia cf. degrangei (Cossmann, 1895)Pl. 30 figs 9a-9b

1895b Homotoma degrangei Cossmann : 9, pl. 3 fig. 4.1931 Daphnella degrangei (Cossmann) - Peyrot : n°1322, pl. 9figs 58, 61.


Cette Andonia se caractérise par une forme parti-culièrement buccinoïde mais la protoconque plancto-trophe présente les caractéristiques de celle desDaphnellinae. Plus globuleuse qu'Andonia degrangei,sa sculpture axiale reste par ailleurs toujours vigou-reuse. Andonia perpusilla (Boettger, 1906) [ZILCH

1934, pl. 16 fig. 96] du Miocène moyen de la Paraté-thys, ressemble à A. cf. degrangei ; elle est cependantplus étroite et sa sculpture se compose de cordons spi-raux forts et serrés.

Raphitoma Bellardi, 1848

Pleurotoma hystrix Cristofori & Jan, 1832 (DS Monterosato, 1875) -Origine : Pliocène d'Italie.

Raphitoma sp.Pl. 30 figs 8a-8b


Cette espèce assez commune dans le site Aquita-nien de Meilhan "Vives" (Landes) est également pré-sente au Burdigalien (Saucats "Le Peloua", coll.MNHN).

Raphitoma pulchra (Peyrot, 1931)Pl. 30 fig. 10

1931 Daphnella pulchra Peyrot : n°1321, pl. 9 figs 104-105.



Famille TEREBRIDAE Mörch, 1852

Hastula H. & A. Adams, 1853

Buccinum strigillatum Linné, 1758 (DS Cossmann, 1896) - Origine :Récent, Indo-Ouest-Pacifique.

Hastula subcinerea (d'Orbigny, 1852)Pl. 31 fig. 10

1825 Terebra cinerea Lamarck - Basterot : 52, pl. 3 fig. 14.1834b Terebra aciculina Lamarck - Grateloup : n°539, 285.1847 Terebra cinerea Lamarck - Grateloup : pl. 35 fig. 25.1852 Terebra subcinerea d'Orbigny : n°1626, 87.1896a Terebra (Hastula) subcinerea d'Orbigny - Cossmann : Essais

2, 54.1931 Terebra (Hastula) subcinerea d'Orbigny - Peyrot : n°1362, pl.

10 figs 16-19, 33.


Strioterebrum Sacco, 1891

Terebra basteroti Nyst, 1834 (DO) - Origine : Miocène d'Europe.

Strioterebrum basteroti (Nyst, 1845)Pl. 31 fig. 11

1825 Terebra duplicata Linné - Basterot : 53.1834b Terebra duplicata Linné - Grateloup : n°532, 282.1845 Terebra basteroti Nyst : 582.1847 Terebra duplicata Linné - Grateloup : pl. 35 figs 24a-b.1852 Terebra basteroti Nyst - d'Orbigny : n°1625, 87.1896a Terebra (Myurella) basteroti Nyst - Cossmann : Essais 2, 49.1931 Terebra (Myurella) basteroti Nyst - Peyrot : n°1353, pl. 10 figs

3-9.


Subula Schumacher, 1817

Buccinum dimidiata Linné, 1758 (DO) - Origine : Récent, Indo-Ouest-Pacifique.

Subula plicaria (Basterot, 1825)

1825 Terebra plicaria Basterot : 52, Pl. 3 fig. 4.1834b Terebra plicaria Basterot - Grateloup : n°531, 281.1847 Terebra plicaria Basterot - Grateloup : pl. 35 figs 21-22, 28.1852 Terebra plicaria Basterot - d'Orbigny : n°1634, 88.1896a Terebra (Subula) plicaria Basterot - Cossmann : Essais 2, 52,

pl. 4 fig. 7.1931 Terebra (Subula) plicaria Basterot - Peyrot : n°1359, pl. 10

figs 21-24, 34-35.


Terebra Bruguière, 1789

Buccinum subulatum Linné, 1767 (DS Lamarck, 1799) - Origine :Récent, Indo-Ouest-Pacifique.

Terebra pseudopertusa Peyrot, 1931Pl. 31 fig. 9

1825 Terebra pertusa var B - Basterot : 53, pl. 3 fig. 9.

1834b Terebra pertusa Basterot - Grateloup : n°533, 282.1847 Terebra pertusa Basterot - Grateloup : pl. 35 fig. 33.1931 Terebra pseudopertusa Peyrot : n°1351, pl. 10 figs 27-28, 30,

32, 36, 40-43.1931 Terebra degrangei Peyrot : n°1352, Pl. 10 fig. 20.


PEYROT (1931) a consacré une longue discussion àcette espèce. Elle est proche de T. acuminata Borson,1820 du Pliocène et du Miocène supérieur italien (voirDAVOLI 1977, 161, pl. 4 figs 2, 3, 11). GLIBERT

(1960c) assimile T. pseudopertusa à T. acuminata etconsidère donc que T. acuminata est présent dès leMiocène inférieur en Aquitaine. Comme par ailleurs T.degrangei, qui a été décrite de l'Oligocène supérieur,est difficilement discernable de T. pseudopertusa, lalignée de T. acuminata serait donc présente de l'Oligo-cène au Pliocène.

Super-Ordre HETEROBRANCHIA Gray J.E., 1840

Superfamille VALVATOIDEA Gray J.E., 1840

Famille CORNIROSTRIDAE Ponder, 1990

Rotostoma Laseron, 1954

Ethalia brazieri Angas, 1877 - Origine : Récent, Australie.

Rotostoma duvergieri (Cossmann & Peyrot, 1917)Pl. 32 figs 3, 4a-4b

1917 Collonia (Parvirota) duvergieri Cossmann & Peyrot : n°119,pl. 6 figs 39-41.

1978a Collonia (Parvirota) duvergieri Cossmann & Peyrot - R.Janssen : 30, pl. 4 figs 7-9.

1978b Collonia (Parvirota) duvergieri Cossmann & Peyrot - R.Janssen : 149.

1986a Parvirota duvergieri (Cossmann & Peyrot) - Lozouet : 260.


Le classement de cette espèce dans les Cornirostridaeet plus précisément dans le genre Rotostoma Laseron, 1954nous a été suggéré par A. Warén. LASERON (1954) avaitclassé le genre dans les Trochidae. R. duvergieri est connueen Aquitaine de l'Oligocène supérieur au Burdigalien(LOZOUET 1997) ; une espèce très proche existe par ailleursà l'Oligocène inférieur (Gaas).

Tomura Pilsbry & McGinty, 1946

Vitrinella (Tomura) bicaudata Pilsbry & McGinty, 1946 (M) - Ori-gine : Récent, Floride.


Tomura pacheia n. sp.Pl. 32 figs 1a-1b, 2

Locus Typicus : Saucats (Lariey).Stratum typicum : Miocène inférieur (Aquitanien), falunà Ervilia.Derivatio nominis : du grec, allusion à l'épaisseur dutest.Holotypus (MNHN) ; paratypes, 1 spm. (Coll. Favia &Lozouet -MNHN), 1 spm. (MNHN leg. Renard).

Autres matériels examinés (coll. MNHN) : Oligocèneinférieur (Gaas "Espibos", 1 spm.) ; Aquitanien (Meil-han "Vives", 2 spm ; Uzeste "Gamachot", 7 ex.).

Dimensions (holotype) : H = 1,7 mm ; Dmax = 1,6 mm.

Description : La coquille est de très petite taille, glo-buleuse, sa spire est plane et son test épais. Elle compteenviron 2,5 tours adultes délimités par une suture mar-quée. La protoconque, lisse, se compose d'un peu moinsde un tour ; le nucléus est immergé. Le dernier tour oc-cupe toute la coquille, son profil est particulièrementconvexe. La sculpture se compose essentiellement desstries d'accroissement. La base présente un ombilic,profond mais étroit. L'ouverture circulaire est de direc-tion prosocline. Son bord labral est épaissi, son bordpariétal est dépourvu de callus, le bord columellaire estépaissi.

Discussion : Nous rapprochons cette espèce de Tomurabicaudata (Pilsbry & McGinty, 1946) (voir BIELER etal. 1998, figs 14-15) dont elle se sépare par un test plusmassif et un ombilic très étroit. Vitrinella inopinata Lo-zouet & Maestrati, 1982 a été classée par PONDER

(1990b) dans les Cornirostra, c'est le seul Cornirostri-dae fossile reconnu jusqu'à présent. C. inopinata estune espèce planorbiforme, a test mince et très largeombilic.L'unique exemplaire que nous avons examiné de l'Oli-gocène inférieur ne semble pas se distinguer.

Famille HYALOGYRINIDAE Warén & Bouchet, 1993

Xenoskenea Warén & Gofas, 1993

Skenea pellucida Aradas & Benoit, 1874 - Origine : Récent, Médi-terranée.

Xenoskenea buccinata n. sp.Pl. 33 figs 3, 4a-4b

Locus Typicus : Saucats (Lariey).Stratum typicum : Miocène inférieur (Aquitanien), falunà Ervilia.Derivatio nominis : allusion au bord columellaire del'ouverture, en forme de bord de trompette.Holotypus (MNHN) ; Paratypes, 10 spm. (MNHN).

Autres matériels examinés : 2 spm. coll. Lesport ; 14spm. coll. Favia & Lozouet ; 1 spm. coll. Renard.

Dimensions (holotype) : H = 0,78 mm ; Dmax = 1,16 mm.Protoconque (Paratype), Dmax = 233 µm.

Description : La coquille est de très petite taille, valva-tiforme, sa spire est aplatie et son test particulièrementmince, hyalin. Elle compte environ 3 tours adultes dé-limités par une suture marquée. La protoconque trèsfaiblement hyperstrophique se compose d'un peu plusd'un demi-tour. Le nucléus montre de fines granula-tions. Le dernier tour, à profil particulièrementconvexe, occupe l'essentiel de la hauteur de la coquilleet la spire émerge à peine. La sculpture se limite à defaibles stries axiales. La base présente un très profondombilic, assez large, qui s'enfonce jusqu'à la proto-conque. L'ouverture de forme circulaire est de directionprosocline. Son bord labral est fort mince, son bordcolumellaire et pariétal est au contraire épaissi par uneinductura, non appliquée totalement, légèrement dilatéecomme le pavillon d'une trompette.

Discussion - La forme de la protoconque permet declasser cette espèce sans ambiguïté dans les Hetero-branchia. La forme générale de la coquille l'apparenteau Hyalogyrinidae. Cette dernière famille décrite ré-cemment (WARÉN & BOUCHET 1993) ne comprendpour l'instant que trois genres d'après WARÉN et al.1993 : Hyalogyra, Hyalogyrina (décrits par MARSHALL

1988) et Xenoskenea. Les deux premiers font partie dela faune profonde ; en revanche, Xenoskenea pellucida,seule espèce jusqu'à présent incluse dans Xenoskenea,se rencontre à très faible profondeur au voisinage desamas de végétaux.Xenoskenea buccinata se sépare de X. pellucida par saforme plus surbaissée, sa protoconque à nucléus fine-ment granuleux et son ouverture à bord columellaire en"trompette". Compte tenu de la difficulté de séparer surla base de la coquille les genres de Hyalogyrinidae, lesdifférences indiquées entre X. pellucida et X. buccinatanous semblent importantes.

Famille ORBITESTELLIDAE Iredale, 1917

Orbitestella Iredale, 1917

Cyclostrema bastowi Gatliff, 1906 (DO) - Origine : Récent, Austra-lie.

Orbitestella plicatella (Cossmann, 1888)Pl. 33 figs 1, 2a-2b

1888 Discohelix plicatella Cossmann : 251, pl. 11 figs 43-54.1888 Adeorbis quadricostatus Schopp : pl. 1 fig. 15.1894 Adeorbis? semperi Koenen : pl. 101 figs 9a-d.1980 Orbitestella (Omalogyrina) plicatella (Cossmann) - Dolin,

Dolin & Le Renard : 39, pl. 3 fig. 34.1978b Vitrinorbis semperi (Koenen) - Janssen : 159, pl. 11 fig. 37.


1982 Orbitestella plicatella (Cossmann) - Lozouet & Maestrati :177.

1983 Vitrinorbis semperi (Koenen) - Gürs : 63, pl. 3 fig. 75.1995 Orbitestella quadricostata (Schopp, 1888) - Gürs : 63, pl. 9

fig. 8.


Ainsi que nous l'avions indiqué (LOZOUET &MAESTRATI 1982) le genre Omalogyrina Magne &Vergneau-Saubade, 1973 (in DUCASSE et al. 1973) n'estpas valide, sa description n'étant pas accompagnée de ladésignation d'une espèce type. Il ne semblait d'ailleurspas se justifier tant sont proches les différentes Orbi-testella actuelles et fossiles. Nous considérons aussi quele genre Boschistella Moolenbeek, 1994 espèce-typeBoschistella donaldi Moolenbeck, 1994 de l'Indo-Ouest-Pacifique (MOOLENBEEK 1994) qui s'appliqueexactement au complexe d'Orbitestella plicatella, est unsynonyme d'Orbitestella.

Orbitestella est signalée pour la première fois dansle Miocène aquitain. Le genre est encore représenté enMéditerranée par une espèce extrêmement rare : O. da-riae (Liuzi & Stolfz-Zucchi, 1979) (voir BONFITTO etal. 1995 figs 7-9).

Superfamille ARCHITECTONICOIDEA Gray J.E., 1850

Famille ARCHITECTONICIDAE Gray J.E., 1850

Architectonica Röding, 1798

Trochus perspectivus Linné, 1758 (DS Gray, 1847) - Origine : Ré-cent, Indo-Ouest-Pacifique.

Architectonica carocollata (Lamarck, 1822)Pl. 36 figs 1a-1b

1822 Solarium carocollatum Lamarck : 6.1825 Solarium carocollatum Lamarck - Basterot : 34, pl. 1 fig. 12.1832a Solarium carocollatum Lamarck - Grateloup : n°176, 134.1847 Solarium carocollatum Lamarck - Grateloup : pl. 12 fig. 29.1852 Solarium carocollatum Lamarck - d'Orbigny : n°709, 44.1919 Solarium carocollatum Lamarck - Peyrot : n°382, pl. 15 figs

18-20.


Architectonica simplex subconoidea (d'Orbigny, 1852)

1852 Solarium subconoideum d'Orbigny : n°715, 45.1919 Solarium simplex var. subconoideum d'Orbigny - Cossmann &

Peyrot : n°387, pl. 15 figs 42-44.


Nipteraxis Cossmann, 1916

Solarium plicatum Lamarck, 1904 (DO) - Origine : Eocène moyendu Bassin de Paris.

Nipteraxis cf. misera (Dujardin, 1837)Pl. 36 figs 2a-2b

1837 Solarium miserum Dujardin : n°394, pl. 15 figs 62-64.1919 Solarium (Pseudotorinia) miserum (Dujardin) - Cossmann &

Peyrot : n°394, pl. 15 figs 62-64.


Pseudotorinia Sacco, 1892

Solarium obtusum Bronn, 1892 (DO) - Origine : Pliocène d'Italie.

Pseudotorinia cf. planulata (Grateloup, 1832)Pl. 36 figs 3a-3c

?1832a Solarium planulatum Grateloup : n°184, 137.?1847 Solarium planulatum Grateloup - Grateloup : pl. 12 fig. 37.1919 Solarium (Pseudotorinia) planulatum Grateloup - Cossmann &

Peyrot : n°396, pl. 15 figs 71-73 (non pl. 15 figs 57-58).


On distingue cette espèce de P. planulata (Grate-loup, 1832) par sa sculpture composée de granulationsbeaucoup moins saillantes.

Superfamille RISSOELLOIDEA Gray J.E., 1850

Famille RISSOELLIDAE Gray J. E., 1850

Rissoella Gray J. E., 1848

Rissoa? glaber Alder, 1848 (M) - Origine : Récent, Tempérée Euro-péenne.

Rissoella sp.Fig. 17j


Les citations de Rissoellidae miocènes sont rares.L'espèce décrite par JANSE & JANSSEN (1983, figs 4-5 :Rissoella (Jeffreysina) hesselinki) provient du Miocèneinférieur/moyen des Pays-Bas ; elle est beaucoup plusglobuleuse que les échantillons de Lariey.

Superfamille OMALOGYROIDEA Sars G.O, 1878

Famille OMALOGYRIDAE Sars G.O., 1878

Ammonicera Vayssière, 1893

Homalogyra fischeriana Monterosato, 1869 (M) - Origine : Récent,Méditerranée.

Ammonicera cf. rota (Forbes & Hanley, 1850)

1923 Homalogyra rota (Forbes & Hanley) - Allix : 19, pl. 1 figs 3a-c.1978b Ammonicera rota (Forbes & Hanley) - R. Janssen : 158 ; pl.

11 fig. 34.


1982 Ammonicera rota (Forbes & Hanley) - Lozouet & Maestrati :176.


Du fait de leur petite taille (0,5 à un 1,5 mm envi-ron) les Omalogyridae ne peuvent être valablement étu-diés qu'à l'aide d'un M.E.B.. En l'absence d'une telleétude sur les espèces fossiles, nous préférons grouperles Omalogyra "lisses" sous le vocable atomus Philippiet les Ammonicera sous celui de rota Forbes & Hanley.En agissant ainsi nous sommes conscients de former uncomplexe d'espèces, mais celui-ci nous semble préféra-ble à l'introduction de nouvelles espèces mal définies.

Omalogyra Jeffreys, 1860

Skenea nititissima Forbes & Hanley, 1853 (DO) - Origine : Récent,Tempérée Européenne.

Omalogyra cf. atomus (Philippi, 1841)

1923 Homalogyra atomus (Philippi) - Allix : 18, pl. 1 figs 1-1a.1982 Omalogyra atomus (Philippi) - Lozouet & Maestrati : 176.


Superfamille PYRAMIDELLOIDEA Gray J.E., 1840

Famille PYRAMIDELLIDAE (PYRAMIDELLINAE)Gray, 1840

Pyramidella Lamarck, 1799

Trochus dolabrata Linné, 1758 (DO) - Origine : Récent, Caraïbe.

Pyramidella gratteloupi (d'Orbigny, 1852)Pl. 36 figs 6-7

1825 Pyramidella terebellata Deshayes - Basterot : 28.1827 Pyramidella terebellata Deshayes - Grateloup : 197.1838d Pyramidella terebellata Deshayes - Grateloup : 283, pl. 6 fig.

79.1847 Pyramidella terebellata Deshayes - Grateloup : pl. 11 fig. 79.1852 Pyramidella gratteloupi d'Orbigny : n°489, 34.1917 Pyramidella grateloupi d'Orbigny - Cossmann & Peyrot :

n°166, pl. 8 figs 81-83.


Avec ces trois plis columellaires très inégaux etsubparallèles Pyramidella grateloupi se rapproche desespèces de l'Indo-Ouest-Pacifique du sous-genre Win-genella (espèce-type : P. teres (Adams, 1854)). ChezPyramidella terebellum (Müller, 1774), type du genrePyramidella Lamarck, 1799, les plis columellaires sontbeaucoup plus forts et plus égaux. A noter que HABE

(1985) élève Wingenella au niveau générique.

Famille PYRAMIDELLIDAE (ODOSTOMINAE)Pelseener, 1928

Brachystomia Monterosato, 1884

Odostomia rissoides Hanley, 1844 (DO) - Origine : Récent, Tempé-rée Européenne.

Brachystomia physetum n. sp.Fig. 17e

Locus typicus : Saucats (Lariey).Stratum typicum : Miocène inférieur (Aquitanien), falunà Ervilia.Derivatio nominis : allusion au dernier tour gonflé.Holotypus (MNHN) ; paratypes, Lariey, 8 spm. coll.Favia & Lozouet.

Autres matériels examinés : Lariey, 8 spm.coll. Favia &Lozouet ; Uzeste (Gamachot), 2 ex. coll. MNHN-Paris.

Dimensions (Holotype) : Dmax= 1,2 mm ; H= 2,2 mm.

Description : La coquille est de forme ovoïde, globu-leuse, son test est mince. Elle se compose de 3 tours 3/4de téléoconque séparés par une rampe suturale assezmarquée donnant un aspect imbriqué à la coquille. Lestours de spire, à profil peu convexe, montrent de nom-breuses stries de croissance, assez serrées et de direc-tion opisthocyrte. On ne distingue pas d'autre élémentde sculpture. Le dernier tour, particulièrement convexeet globuleux occupe près de 69% de la hauteur totale.La base montre un ombilic profond. L'ouverture, qua-drangulaire, est un peu rétrécie en sa partie adapicale ;le callus pariétal est très fin ; sa partie columellairesubdétachée, porte un fort pli columellaire situé pro-fondément dans l'ouverture ; le labre, mince, flexueux,est de direction générale prosocline. La protoconquelisse est redressée sur la spire ; seul un tour, est visible ;l'apex est totalement immergé dans le sommet.

Discussion : Avec son dernier tour particulièrementglobuleux cette espèce se sépare facilement des diffé-rentes espèces d'"Odonstostomia" admises parCOSSMANN & PEYROT (1917). Brachystomia turritella(Grateloup), que l'on rencontre à Lariey, est aussi uneespèce beaucoup plus allongée que B. physetum et pos-sède une suture moins marquée.

Brachystomia occidentalis (Gougerot, 1981)Fig. 17h

1981 Odostomia submarginata var. occidentalis Gougerot : 40, fig.14.


GOUGEROT (1981) qui ne connaissait qu'un seulexemplaire du Miocène aquitain a assimilé cette espèceà O. submarginata Boettger, 1906 (ZILCH 1934, pl. 12


fig. 13) du Badénien. Elle s'apparente en fait plus à O.deubeli Boettger, 1902 toujours du Badénien dont ellene diffère que par sa base anguleuse non limitée par unfort cordon.

Brachystomia turritella (Grateloup, 1828)Fig. 17d

1828a Auricula turritella Grateloup : n°72, 105.1838d Acteon bulimoides Grateloup : 275, pl. 6 figs 44-45.1917 Odontostomia bulimoides (Grateloup) - Cossmann & Peyrot :

n°186, pl. 9 figs 43-44.


Nous avons suivi l'interprétation COSSMANN &

PEYROT (1917), fondée sur l'examen de la coll. Grate-loup, mais nous avons repris le nom le plus ancien at-tribué à cette espèce par Grateloup. En effet, contraire-ment aux dires de COSSMANN & PEYROT, "turritella"Grateloup n'est nullement préoccupée par "turritellata"Deshayes décrite en 1864!

Chrysallida Carpenter, 1856

Chemnizia communis C.B. Adams, 1852 (DO) - Origine : Récent,Mexique.

Chrysallida degrangei (Cossmann & Peyrot, 1917)Pl. 34 figs 1a-1b - pl. 36 figs 16

1917 Pyrgulina (Pyrguletta) degrangei Cossmann & Peyrot : n°197,pl. 10 figs 79-80.


Cette espèce est le type de Pyrguletta Cossmann &Peyrot, 1917 (par désignation originale) que nousconsidérons comme un synonyme de Chrysallida.

Chrysallida interita Van der Linden & Eikenboom,1992

1838d Acteon pygmaea Grateloup : 282, pl. 6 figs 77-78 non Lea1833.

1847 Acteon pygmaea Grateloup - Grateloup : pl. 11 figs 77-78.1852 Turbonilla pygmaea d'Orbigny : n°502, 35.1917 Chrysallida pygmaea (Grateloup) - Cossmann & Peyrot :

n°198, pl. 9 figs 61-63.1921 Chrysallida pygmaea (Grateloup) - Cossmann (Livraison 12) :

266, pl. 6 figs 13-16.1992 Chrysallida interita Van der Linden & Eikenboom : 41, fig.

53.


Cette espèce est signalée par différents auteurs,dont KAUTSKY (1925, 73, pl. 6 fig 26), ANDERSON

(1964, 321 , pl. 46 figs 279, 279a), KUSTER-WENDENBURG (1986, 373, pl. 1 fig. 7) dans le Miocène

inférieur et moyen de la mer du Nord avec au moinsune sous-espèce Chrysallida pygmaea belgica Glibert,1958. Si ces identifications sont exactes, il conviendrade substituer l'épithète belgica à interita.

Chrysallida sacyi (Cossmann & Peyrot, 1917)Pl. 36 fig. 15

1917 Pyrgulina sacyi Cossmann & Peyrot : n°195, pl. 9 figs 55-57.


Chrysallida sextona (Cossmann & Peyrot, 1917)Pl. 34 fig. 2

1917 Pyrgulina sextona Cossmann & Peyrot : n°196, pl. 9 figs 58-60.


Liostomia G.O. Sars, 1878

Turbonilla clavula Lovén, 1846 (DS Monterosato, 1884) - Origine :Récent, Europe (Suède).

Liostomia sp.Fig. 17f


Suivant WARÉN (1991), Liostomia s'applique auxespèces dépourvues de pli or, Liostomia? sp. possèdeun pli très fin mais net.

Odostomia Fleming, 1813

Turbo plicatus Montagu, 1803 (DS Gray, 1847) - Origine : Récent,Tempérée Européenne.

Odostomia sp.Fig. 17g


Comparée à Odontostomia ovulina (d'Orbigny,1847) telle que comprise par COSSMANN & PEYROT

(1917), O. sp. se sépare par sa rampe suturale marquée.

Ondina De Folin, 1870

Ondina semiornata De Folin, 1870 (M) - Origine : Récent, TempéréeEuropéenne.

Ondina cicatricosa n. sp.Pl. 34 fig. 3 - Fig. 17b

Locus typicus : Saucats (Lariey).Stratum typicum : Miocène inférieur (Aquitanien), falunà Ervilia.Derivatio nominis : allusion aux arrêts de croissance


marqués que porte la coquille.Holotypus (MNHN) ; paratypes, Lariey, 4 spm. coll.Favia & Lozouet.

Dimensions (Holotype) : Dmax= 1 mm ; H= 2,5 mm.

Description : La coquille est de forme ovoïde, étroite,son test est mince. Elle se compose de 4 tours 1/2 detéléoconque séparés par une suture marquée, de courseirrégulière. Les tours de spire, à profil peu convexe,montrent de nombreuses et fortes stries de croissance,irrégulières et de direction opisthocyrte. On ne distin-gue pas d'autre élément de sculpture. Le dernier touroccupe près de 60% de la hauteur totale. La base mon-tre d'imperceptibles bandes spirales. L'ombilic est étroitet profond. L'ouverture, ovoïde, est rétrécie en sa partieadapicale ; le callus pariétal est marqué. Le labre,mince, est de direction opisthocline près de la suturepuis il devient prosocline pour s'infléchir en fin decourse et tendre vers une direction opisthocline. Laprotoconque lisse est redressée sur la spire ; seul untour, d'environ 0,23 mm de diamètre est visible. L'apexest immergé dans le sommet.

Discussion : O. cicatricosa ressemble à Ondina dia-phana (Jeffreys, 1848) (voir WARÉN 1991, fig. 34B) dela province Tempérée européenne. Elle se distingue parun ombilic ouvert et un fort pli columellaire. Ce derniercaractère rapproche aussi O. cicatricosa des espèces dugenre Brachystomia Monterosato, 1884 (espèce-type :Odostomia rissoides Hanley, 1844). B. rissoides et laplupart des Brachystomia (voir FRETTER et al. 1986,figs 412-413) sont plus globuleuses et leur labre n'estpas aussi sinueux.

Ondina girundica n. sp.Pl. 34 figs 4a-4b, 5 - Fig. 17c

Locus typicus : Saucats (Lariey).Stratum typicum : Miocène inférieur (Aquitanien), falunà Ervilia.Derivatio nominis : de sa région type.Holotypus (MNHN) ; paratypes, Lariey : 10 spm. coll.Favia & Lozouet.

Autres matériels examinés : (Lariey) 4 spm. coll. Les-port ; 26 spm. coll. Favia & Lozouet ; 1 spm. coll. Re-nard.

Dimensions (Holotype) : Dmax= 0,88 mm ; H= 2,28mm

Description : La coquille est de petite taille, cylindri-que, avec un test mince presque hyalin. Le profil destours est particulièrement convexe. On compte 4 toursadultes, séparés par une suture marquée, canaliculée. Lasculpture sur la spire se compose de stries d'accroisse-ment nombreuses et extrêmement délicates et de rainu-

res spirales fines, développées à la partie abapicale destours. Les stries d'accroissement sont opysthocyrtesprès de la suture puis épousent une course prosocyrtes.Le dernier tour occupe un peu plus de la moitié de lahauteur totale. Sa base est délimitée par des rainuresspirales entrecroisées par les stries d'accroissement demême direction que sur la spire. L'ombilic est étroit etprofond. L'ouverture est assez régulièrement ovoïde. Iln'y a pas de pli columellaire mais juste un léger renfle-ment. Le callus pariétal n'est pas complètement plaquésur la base. Le labre, très mince, est de direction géné-rale prosocline. La protoconque déprimée est lisse. Sonnucléus est immergé dans le sommet. Un seul tour deprotoconque d'environ 0,30 mm de diamètre est visible.

Discussion : Nous avons suivi l'opinion de AARSTEN

(1987) et WARÉN (1991) dans l'utilisation du nom gé-nérique Ondina. Précédemment (LOZOUET & MAES-

TRATI 1982) nous avions utilisé le genre NisostomiaCossmann, 1921 qui s'applique en partie au même en-semble d'espèces. Le genre Ondina est signalé pour lapremière fois dans le Miocène aquitain. LOZOUET &MAESTRATI (1982, figs 5-6) ont figuré une espèce del'Oligocène inférieur de Gaas rapportée à Ondina se-mistriata (Speyer, 1864) du Chattien allemand. Ondinagirundica se distingue par sa forme beaucoup plus cy-lindrique et des tours plus convexes.

Famille PYRAMIDELLIDAE (TURBONILLINAE) Bronn,1849

Turbonilla Risso, 1826

Turbonilla costulata Risso, 1826 (DS ) - Origine : Pliocène France.

Turbonilla avitensis Cossmann & Peyrot, 1917Pl. 36 fig. 10

1917 Turbonilla avitensis Cossmann & Peyrot : n°205, pl. 9 figs 82-83.


Turbonilla diastomoides (Cossmann & Peyrot, 1917)Pl. 36 fig. 8

1917 Pyrgostylus diastomoides Cossmann & Peyrot : n°222, pl. 10figs 14-19, (non 67).


Turbonilla sp.Fig. 17i



Turbonilla spiculoides, qui semble l'espèce la plusproche, possède une coquille plus élancée avec des cô-tes axiales plus nombreuses.

Turbonilla raphidiopsis Cossmann & Peyrot, 1917Pl. 36 fig. 14

1917 Turbonilla (Strioturbonilla) raphidiopsis Cossmann & Peyrot :n°212, pl. 9 figs 93-94.

1921 Turbonilla (Strioturbonilla) raphidiopsis Cossmann & Peyrot -Cossmann (Livraison 12) : 281, pl. 6 fig. 56, fig. 99.


Turbonilla spiculoides Cossmann & Peyrot, 1917Pl. 36 fig. 9

1917 Turbonilla spiculoides Cossmann & Peyrot : n°207, pl. 9 figs89-90.

1921 Turbonilla spiculoides Cossmann & Peyrot - Cossmann : Es-sais 12, 279, pl. 6 fig. 55.


Famille PYRAMIDELLIDAE (EULIMELLINAE)Saurin, 1958

Eulimella Forbes & Mac Andrew, 1846

Eulima macandrei Forbes, 1844 (DO) - Origine : Récent, TempéréeEuropéenne.

Eulimella gamachotensis Cossmann & Peyrot, 1917Pl. 36 fig. 12

1917 Eulimella gamachotensis Cossmann & Peyrot : n°229, pl. 10figs 93-94.


L'espèce est très proche d'Eulimella burdigalicaCossmann & Peyrot, 1917 du Burdigalien classique deGironde, elle s'en distingue par une téléoconque et uneprotoconque plus petite. Si l'on se fonde PEÑAS &

ROLÁN (1999) cette espèce est correctement classéedans le genre Eulimella en raison de la faiblesse de sonpli columellaire.

Eulimella sp. 1Pl. 36 fig. 11


L'espèce possède une forte dent columellaire, selonPEÑAS & ROLÁN (1999) ce critère justifierait son clas-sement dans le genre Syrnola A. Adams, 1860 (espèce

type : Syrnola gracillima A. Adams, 1860).

Eulimella sp. 2Pl. 36 fig. 13


Cette petite espèce est beaucoup plus élancéequ'Eulimella gamachotensis qui est de taille compara-ble.

Famille AMATHINIDAE Ponder, 1987

Carinorbis Conrad, 1862

Delphinula lyra Conrad, 1834 (DO) - Origine : Pliocène de Virginie(USA).

Carinorbis burdigalus (d'Orbigny, 1852)Pl. 36 figs 5a-5b

1825 Purpura costata Brocchi - Basterot : 50.1834a Purpura costata Brocchi - Grateloup : n°491, 205.1847 Turbo minutus Michaud - Grateloup : pl. 14 figs 24-25.1852 Turbo burdigalus d'Orbigny : n°757, 47.1919 Fossarus (Phasianema) burdigalensis (d'Orbigny) - Cossmann

& Peyrot : n°374, pl. 17 figs 69-70.


Cette espèce est généralement classée dans le genrePhasianema Wood, 1842 (espèce-type : P. sulcata Wood,1842 du Pliocène d'Angleterre). Or, d'après la figured'HARMER (1921, pl. 53 fig. 35.), confirmée par celle deGLIBERT (1958, pl. 2 fig.13), Carinorbis burdigalus et P.sulcata ne sont pas cogénériques. En revanche, Delphinulalyra (espèce-type du genre Carinorbis) du Pliocène de Vir-ginie (voir CAMPELL 1993, fig. 331) apparaît très proche deC. burdigalus. Elle est aussi comparable à Clathrella cla-thrata (Philippi, 1844) (type du genre Clathrella Recluz,1864) descendant probable de C. burdigalus qui est lui-même peu différenciable de Nerita costata Brocchi, 1814du Pliocène méditerranéen (voir CAMPELL et al. 1995). En-fin, Amathinoides Sacco, 1896 (espèce-type : Nerita sulco-sa Brocchi, 1814 du Néogène européen et des côtes del'Afrique de l'Ouest) serait d'après PONDER (1987, 31) unsynonyme de Clathrella.

Monotigma Gray in G.B. Sowerby, 1839

Monotygma striata Gray, ?1847 (DS Gray, 1847) - Origine : Récent,Indo-Ouest-Pacifique.

Monotigma merignacensis(Cossmann & Peyrot, 1917)

Pl. 36 fig. 4

1914 Actaeopyramis merignacensis Cossmann & Peyrot : n°201, pl.9 figs 72-75.



M. merignacensis est proche de Tornatella cf. tur-rita Dujardin, 1837 du Miocène inférieur d'Aquitaine,elle s'en distingue par une sculpture beaucoup moinsmarquée. Une certaine confusion règne dans l'utilisationdu genre Monotigma ou Monotygma que AARTSEN

(1987) a tenté de clarifier en attribuant le genre à Gray,1847 (Monotygma). En fait, dans la première édition du"Conchological Manual" (G.B. SOWERBY 1839, fig.371) le genre est orthographié Monotigma Gray, il estseulement indiqué, sans désignation d'espèce-type, avecun renvoi à une figure. Dans la deuxième édition (G.B.SOWERBY 1842, fig. 371) on trouve une description etla même figure est explicitement désignée comme l'es-pèce-type du genre. Dans la légende Monotigma estorthographié Monotygma. Dans GRAY 1847 Monotig-ma devient Monotygma et la figure 371 est nomméeMonotygma striata Gray. Acteopyramis Fischer, 1885est un nom de remplacement pour Monotygma Gray,1840 que FISCHER (1880-1887) a considéré abusive-ment comme une orthographe incorrecte et donc syno-nyme de Monoptygma Lea, 1833. Nous retenons donc :Monotigma Gray in Sowerby, 1839 ; espèce-type pardésignation subséquente : Monotygma striata Gray,1847.

Monotigma tel que nous le comprenons regroupe lesespèces classées habituellement dans le genre AdelactaeonCossmann, 1895 (espèce type Tornatella papyraceus Bas-terot, 1825 - Miocène inférieur d'Aquitaine) et semble ap-parentée à Leucotina A. Adams, 1860 (espèce type : Ac-teon dianae A. Adams, 1855). Or, d'après HORI & T (1995)Leucotina est un Amathinidae. AARTSEN et al. (1998) ontdécrit des espèces de l'Atlantique (nord-ouest de l'Afrique)qu'ils classent dans le genre Adelactaeon et rangent dansles Pyramidellidae (c'est également l'opinion de SCHANDER

1997). SCHANDER et al. (1999) classent Adelactaeon dansles Pyramidellidae (Syrnolinae Saurin, 1858) tandis queMonotygma est rangée dans les Pyramidellidae (Chrysalli-dinae Saurin, 1958). Ce dernier classement est aussi adoptépour le genre oligocène Raulinia Mayer, 1864 (espèce type: Raulinia alligata Deshayes, 1832 - Rupélien du Bassin deParis) qui selon nous présente des affinités avec les Ama-thinidae. Les propositions de classement de SCHANDER etal. (1999) ne sont pas justifiées et les relations phylétiquesdes genres précités, proche morphologiquement des Ama-thinidae, ne sont pas évoquées. Ils nous semblent donc pré-férable pour l'instant de conserver le classement adopté parLOZOUET (1997).

Famille EBALIDAE Warén, 1995

Ebala Leach in Gray, 1847

Turbo nitidissima Montagu, 1803 (M) - Origine : Récent, TempéréeEuropéenne.

Ebala cf. bezanconi (Cossmann & Lambert, 1884)Pl. 35 figs 3 - Fig. 17a

?1991 Anisocycla bezançoni (Cossmann & Lambert) - Gougerot : 8.


C'est probablement cette espèce que signaleGOUGEROT (1991) dans l'Aquitanien des Landes (sansautre précision). Selon Gougerot elle ne serait pas dis-cernable de E. bezanconi (Cossmann & Lambert, 1884)du Stampien du bassin de Paris qu'il considère par ail-leurs comme identique à Ebala scalarina (Deshayes,1861) de l'Eocène parisien. Les observations de Gouge-rot, sur ce groupe, sont à prendre avec prudence. Ellesont été réalisées uniquement à l'aide d'une loupe bino-culaire, dont le pouvoir de résolution est très insuffisantpour ces petites espèces, et doivent être confirmées/ouinfirmées par une étude plus précise au M.E.B. Ainsiles figures données par LE RENARD (1998) d'Aciculinascalarina Deshayes montrent une espèce dont le profildes tours est nettement plus anguleux que celui d'Aniso-cyla bezanconi.

Ebala cf. carinata de Folin, 1870Pl. 35 figs 4a-4b

1870 Eulimella carinata de Folin in de Folin & Perrier : 209, pl. 28fig. 8.

1994 Eulimella carinata de Folin - Schander, 14, figs 1 c, 9 e-f.


Nous avons rapproché cette espèce de l'espèce ac-tuelle E. carinata mais elle s'apparente aussi à Pseudo-chileutomia minina Friedberg, 1938 (Miocène moyende Paratéthys) autant que l'on puisse en juger d'après lesseules figures de FRIEDBERG (1938 pl. 3 figs 21 a-b).SCHANDER (1994), puis PEÑAS et al. (1996) ont classécette espèce dans le genre Bacteridium. La position fa-miliale de Bacteridium reste à préciser selon WARÉN(1995) et ce n'est qu'avec doute qu'il est inclus dans lesEbalidae.

Murchisonella Mörch, 1875

Murchisonia (Murchisonella) spectra Mörch, 1875 (DO) - Origine :Récent, Caraïbe.

Murchisonella cf. bezanconi Cossmann, 1892Pl. 35 figs 1, 2a-2b

1892 Truncatella bezançoni Cossmann : 358, pl. 9 fig. 6.


Murchisonella emarginata (Deshayes, 1862) duLutétien du bassin de Paris possède une protoconqueplus redressée (WARÉN 1995 figs 1 D-F).


Fig. 17 – a Ebala cf. bezanconi (Cossmann & Lambert, 1884) H= 1,9 mm - b Ondina cicatricosa n. sp. b : H= 2,5mm (holotype) - c Ondina girundica n. sp. H= 1,8 mm (holotype) - d Brachystomia turritella (Grateloup, 1828) H=2,5 mm - e Brachystomia physetum n. sp. H= 2,2 mm - f Liostomia sp. H= 1,2 mm - g Odostomia sp. H= 2,2 mm - hBrachystomia occidentalis (Gougerot, 1981) H= 2,4 mm - i Turbonilla sp. H= 5,8 mm (coll. Lesport) - j Rissoellasp. H= 1 mm - k Philine sp. H= 1,4 mm. [Lariey, coll. Favia & Lozouet].

Ordre OPISTHOBRANCHIA Milne-Edwards, 1843

Sous-Ordre CEPHALASPIDEA P. Fischer, 1883

Superfamille ACTEONOIDEA d'Orbigny, 1842

Famille ACTEONIDAE d'Orbigny, 1842

Acteon Montfort, 1810

Voluta tornatilis Linné, 1758 (DO) - Origine : Récent, TempéréeEuropéenne.

Acteon sp.Pl. 36 fig. 20


C'est une espèce qui présente des affinités avec A.pinguis ; elle est toutefois de taille plus petite, de formeplus étroite, et son test apparaît relativement épais.

Acteon pinguis d'Orbigny, 1852

1828c Tornatella sulcata Lamarck - Grateloup : n°152, 195.1838 Tornatella sulcata Lamarck - Grateloup : 266, pl. 6 fig. 15.1847 Tornatella sulcata Lamarck - Grateloup : pl. 11 figs 16-17.1852 Acteon pinguis d'Orbigny : n°521, 36.1932 Acteon pinguis d'Orbigny - Peyrot : n°1376, pl. 11 figs 55-57.


Acteon punctulatus (Férussac, 1822)Pl. 36 fig. 19

1822 Tornatella punctulata Férussac : n°11, 108.1825 Tornatella punctulata Férussac - Basterot : 25, pl. 1 fig. 24.1828c Tornatella maculosa Grateloup : n°148, 193.1838d Tornatella punctulata Férussac - Grateloup : 263, pl. 6 figs

11-12.1847 Tornatella punctulata Férussac - Grateloup : pl. 11 figs 11-12.1852 Tornatella punctulata Férussac - d'Orbigny : n°531, 36.1889 Actaeon punctulatus (Férussac) - Benoist ; 29, pl. 3 figs 1a-c.1932 Actaeon punctulata (Férussac) - Peyrot : n°1380, pl. 11 figs 52-

53, pl. 14 fig. 19.



Bullina Férussac, 1822

Bulla scabra Gmelin, 1791 (DS Gray, 1822) - Origine : Récent, In-do-Ouest-Pacifique.

Bullina cf. benoisti (Peyrot, 1932)Pl. 36 figs 17a-17b

1889 Actaeonidea pinguis (d'Orbigny) - Benoist : 63, pl. 5 fig. 6.1895a Actaeonidea pinguis (d'Orbigny) - Essais 1, Cossmann : 52.1932 Actaeonidea benoisti Peyrot : n°1384, pl. 14 figs 5-7.


Bullina benoisti a été décrit du Burdigalien du Pe-loua, les exemplaires aquitaniens ont une sculpturemoins forte et une protoconque plus petite.

Pupa Röding, 1798

Voluta grisebia Röding, 1798 (DS Suter, 1913) - Origine : Récent,Indo-Ouest-Pacifique.

Pupa striatella (Grateloup, 1828)Pl. 36 figs 18a-18b

1828a Auricula striatella Grateloup : n°68, 103.1838d Tornatella striatella (Grateloup) - Grateloup : 270, pl. 6 figs

27-29.1847 Tornatella striatella (Grateloup) - Grateloup : pl. 11 figs 27-29.1852 Acteon striatellus d'Orbigny : n°526, 36.1932 Actaeon (Solidulus) striatellus (Grateloup) - Peyrot : n°1382,

pl. 11 figs 42-44, pl. 14 figs 27-28.


Superfamille RINGICULOIDEA Philippi, 1853

Famille RINGICULIDAE Philippi, 1853

Ringicula Deshayes, 1838

Auricula ringens Lamarck, 1804 (DS Gray, 1847) - Origine : Eocènedu Bassin de Paris.

Ringicula minor (Grateloup, 1838)Pl. 37 fig. 1

1825 Auricula ringens Lamarck var. a - Basterot : 24.1828a Auricula ringens Lamarck var. b, c - Grateloup : n°63, 101.1838d Auricula ringens Lamarck var. b - Grateloup : 260.1838d Auricula ringens var. b. minor Grateloup : 286, pl. 6 fig. 8.1847 Ringicula buccinea Deshayes - Grateloup : pl. 11 fig. 8-0.1878 Ringicula paulucciae Morlet : 266, Pl. 6 fig. 6, pl. 8 fig. 9.1878 Ringicula (Ringiculella) tournoueri Morlet : 287, pl. 6 fig. 10.?1882 Ringicula leognanensis Morlet : 207, pl. 9 fig. 7.1932 Ringicula (Ringiculella) tournoueri Morlet - Peyrot :

n°1371"bis", pl. 11 figs 7, 11-13, 18-25, 37, 54, 61.1998 Ringicula paulucciae Morlet - Valdés & Héros : 700, Fig. 2f.1998 Ringicula tournoueri Morlet - Valdés & Héros : 700, fig. 3g.


PEYROT (1932) a remplacé le nom minor Grate-loup, 1838 par un des noms de Morlet sous prétextequ'il était préoccupé par Ringicula minor Deshayes,1862 (espèce de l'Eocène du Bassin de Paris). Chezplusieurs individus le labre, le callus pariétal et colu-mellaire sont, à taille égale, peu épaissis. Ces différen-ces qui changent considérablement l'aspect de la co-quille peuvent être liées à la maturité des spécimens.Nous avons consulté les types de Ringiculidae décritspar MORLET (1878) et déposés au MNHN (VALDÉS &HÉROS 1998), ce qui nous a permis d'établir la présentesynonymie.

Superfamille PHILINOIDEA Gray J.E, 1850

Famille CYLICHNIDAE H. Adams & A. Adams, 1854

Acteocina Gray, 1847

Acteon wetherelli Lea, 1833 (DO) - Origine : Miocène de l'Est desU.S.A.

Acteocina lajonkaireana (Basterot, 1825)Pl. 37 fig. 5

1825 Bullina lajonkaireana Basterot : 22, pl. 1 fig. 25.1828a Bullina lajonkaireana Basterot - Grateloup : n°43, 92.1837 Bullina lajonkaireana Basterot - Grateloup : 428, pl. 3 figs 45-

46.1847 Bullina lajonkaireana Basterot - Grateloup : pl. 2 figs 45, 46.1852 Bulla lajonkaireana d'Orbigny : n°1777, 95.1862 Bullina exerta Deshayes (1856-1865) : 622, pl. 39 figs 30-31.1889 Tornatina lajonkaireana (Basterot) - Benoist : 72, pl. 5 fig. 8.1895a Tornatina lajonkaireana (Basterot) - Cossmann : Essais 1, 81,

pl. 3 figs 26-27.1932 Tornatina lajonkaireana (Basterot) - Peyrot : n°1412, pl. 12

figs 1-2, 8, 10-11.1979a Acteocina exerta (Deshayes) - R. Janssen : 345.


Nous avons compris dans la synonymie A. exerta(Deshayes, 1834) qui est une espèce classique de l'Oligo-cène du bassin de Paris signalée aussi dans l'Oligocène su-périeur allemand. Dans les sites stampiens d'Aquitaine(Gaas) mais aussi dans ceux de l'Oligocène supérieur dumême bassin, les Acteocina sont particulièrement abon-dantes et présentent une grande variabilité qui transgresselargement les caractères distinctifs entre A. exerta et A. la-jonkaireana.

Cylichna Lovèn, 1846

Bulla cylindracea Pennant, 1877 (DS Hermannsen, 1852) - Origine :Récent, Tempérée Européenne.

Cylichna clathrata (Defrance, 1825)

1825 Bulla clathrata Defrance : 131.1825 Bulla clathrata Defrance - Basterot : 21, pl. 1 fig. 10.1828a Bulla clathrata Defrance - Grateloup : n°38, 90.1837 Bulla tarbelliana Grateloup : 398, 422, pl. 3 fogs 29-30.1847 Bulla tarbelliana Grateloup - Grateloup : pl. 2 figs 29-30.


1932 Bullinella (Cylichnina) clathrata (Defrance) - Peyrot : n°1395,pl. 13 figs 11, 15, 17.


Cylichna sp.


Cylichna sp. diffère de C. sublaevis par son ou-verture plus large et sa columelle simple non coudée.

Cylichna sublaevis (d'Orbigny, 1852)Pl. 37 figs 2a-2b

1828a Bulla laevis? Defrance - Grateloup : n°42, 91.1837 Bulla laevis Grateloup : 400, 424, Pl. 3 figs 35-36 (non De-

france).1847 Bulla laevis? Defrance - Grateloup : pl. 2 figs 35-36.1852 Bulla sublaevis d'Orbigny : n°1772, 95.1932 Bullinella (Cyclichnina) sublaevis (d'Orbigny) - Peyrot :

n°1396, pl. 13 figs 31-33.


Cylichna tournoueri (Peyrot, 1932)

1895a Roxania (Acrostemma) tournoueri Cossmann : Essais 1, 102(nomen nudum).

1932 Roxania (Acrostemma) tournoueri (Benoist ms.) Peyrot :n°1409, pl. 12 figs 3-5.


Cylichnella Gabb, 1873

Bulla bidentata d'Orbigny, 1841 (M) - Origine : Récent, Caraïbe.

Cylichnella vasatensis (Cossmann, 1895)Pl. 37 fig. 4

1895a Bullinella (Cylichnella) vasatensis Cossmann : Essais 1, 97,152, pl. 4 figs 14, 16.

1932 Bullinella (Cylichnella) vasatensis Benoist mss - Peyrot :n°1400, pl. 13 figs 4-6, 24-26.


Scaphander Montfort, 1810

Bulla lignaria Linné, 1767 (DO) - Origine : Récent, Tempérée Euro-péenne.

Scaphander tarbelliana (Grateloup, 1837)Pl. 37 fig. 6

1825 Bulla lignaria Linné var. - Basterot : 20.1828a Bulla lignaria Linné - Grateloup : n°25, 85. 1837 Bulla lignaria var. F. tarbelliana Grateloup : 393.1837 Bulla lignaria Linné - Grateloup : 413, pl. 3 fig. 1.1837 Bulla lignaria var. F. tarbelliana Grateloup : 414, pl. 3 fig. 2.1837 Bulla fortisii Brongniart - Grateloup : 415, pl. 3 fig. 3.1847 Bulla lignaria Linné - Grateloup : 413, pl. 2 fig. 1.

1847 Bulla lignaria var. F. tarbelliana - Grateloup : pl. 2 fig. 2.1847 Bulla grateloupi Michelotti : 150.1852 Scaphander gratteloupi d'Orbigny : n°1768, 95.1852 Scaphander sublignaria d'Orbigny : n°1767, 95.1895a Scaphander grateloupi (Michelotti) - Cossmann : Essais 1,95.1932 Scaphander lignarius mut. grateloupi (Michelotti) - Peyrot :

n°1410, pl. 12 figs 15, 17-21.


Famille PHILINIDAE Gray, 1850

Philine Ascanius, 1772

Bulla aperta Linné, 1767 (DO) - Origine : Récent, Méditerranée.

Philine sp.Fig. 17k


Par sa forme générale cette espèce rappelle Philinescabra Müller, 1776 des mers d'Europe ; chez des spé-cimens parfaitement conservés de Philine sp. et prove-nant de Léogeats (Aquitano-Burdigalien de Gironde), lelabre et la partie basale de l'ouverture sont finementdenticulés, ce caractère est partagé avec P. scabra (voirVAN DER LINDEN & JANSSEN 1996 figs 4a-c).

Superfamille BULLOIDEA Gray J.E, 1827

Famille BULLIDAE Gray, 1827

Haminoea Turton & Kingston, 1830

Bulla hydatis Linné, 1758 (DS Gray, 1847) - Origine : Récent, Mé-diterranée.

Haminoea saucatsensis (Peyrot, 1932)Pl. 37 fig. 3

1895a Bulla (Haminea) saucatsensis Benoist in Cossmann : Essais1, 92 (nom. nud.).

1932 Bulla (Haminea) saucatsensis (Benoist mss.) Peyrot : n°1391,pl. 13 figs 28-30.


?Superfamille BULLOIDEA Gray J.E, 1827

Famille ATYDIDAE Thiele, 1925

Atys Montfort, 1810

Bulla naucum Linné, 1758 (DO) - Origine : Récent, Indo-Ouest-Pacifique.


Atys duvergieri (Peyrot, 1932)

1932 Roxania (Mnestia) duvergieri Peyrot : n°1408, pl. 12 figs 37-39.


Sous-Ordre ANASPIDEA P. Fischer, 1883

Superfamille AKEROIDEA Mazzarelli, 1891

Famille AKERIDAE Mazzarelli, 1891

Akera Müller, 1776

Akera bullata Müller, 1776 (DO) - Origine : Récent, Tempérée Eu-ropéenne.

Akera cf. bullata Müller, 1776Pl. 35 fig. 5

2000 Akera cf. bullata Müller, 1776 - Valdés & Lozouet : 466, figs2A-F.


Les tests d'Akera sont particulièrement minces, ce quiexplique sans doute que le genre n'ait pas été signalé aupa-ravant dans le Miocène inférieur aquitain. Akera bullata estune espèce actuelle de la faune européenne dont il n'a pasété possible de dissocier les Akera provenant de l'Eocènemoyen du Bassin de Paris, de l'Oligocène inférieurd'Aquitaine et du Miocène aquitain.

Superfamille APLYSIOIDEA Lamarck, 1809

Famille APLYSIIDAE Lamarck, 1809

Floribella Woodring, 1970

Dolabella aldrichi Dall, 1890 (DO) - Origine : Miocène américain.

Fig. 18 – Floribella rozieri Valdés & Lozouet, 2000 ; jeune exemplaire, Dmax= 1,6 mm [Lariey, coll. Renard].

Floribella rozieri Valdés & Lozouet, 2000Fig. 18

2000 Floribella rozieri Valdés & Lozouet : 470, pl. 1 figs 7-9, text-fig. 1D.

Matériel examiné :1 spm. coll. Renard.

Sous-Ordre THECOSOMATA de Blainville, 1814

Superfamille EUTHECOSOMATA Meisenheimer, 1905

Famille LIMACINIDAE Gray, 1840

Spiratella Blainville, 1817

Clio helicina Phipps, 1774 (M) - Origine : Récent, Atlantique Nord.

Spiratella miorostralis (Kautsky, 1925)Fig. 19f

1925 Spirialis miorostralis Kautsky : n°308, 202.1984 Limacina miorostralis (Kautsky) - A.W. Janssen : 381, pl. 20

figs 3a-b, 4a-b.



D'après les identifications de notre matériel faitespar A.W. Janssen, cette espèce a une large distributionen Aquitaine puisqu'elle est connue de l'Aquitanien auLanghien.

Famille CAVOLINIIDAE Gray, 1850

Vaginella Daudin, 1800

Vaginella depressa Daudin, 1800 (DO) - Origine : Miocène inférieurd'Aquitaine.

Vaginella depressa Daudin, 1800Fig. 19g

1800 (An IX) Vaginella depressa Daudin : 145, pl. 11.1823 Vaginella strangulata Deshayes : 204.1825 Vaginella depressa Daudin - Basterot : 19, pl. 4 fig. 16.1825 Vaginella depressa Daudin - de Blainville : 481.1828 Creseis vaginella Rang : 8, pl. 18 fig. 2.1828a Cleodora strangulata Deshayes - Grateloup : n°2, 75.1836 Cleodora strangulata Deshayes - Grateloup : 266, pl. 1 figs 3-

4.

1847 Cleodora strangulata Deshayes - Grateloup : pl. 1 fig. 3-4.1852 Vaginella depressa Daudin - d'Orbigny : n°1802, 96.1887 Vaginella depressa Daudin - du Boucher : 147, fig. 3.1889 Vaginella strangulata Deshayes - Benoist : 22, pl. 2 fig. 4.1932 Vaginella depressa Daudin - Peyrot : n°1490, pl. 18 figs 36-37.1984b Vaginella depressa Daudin - A.W. Janssen : 75, pl. 3 fig. 11,

pl. 4 figs 9-13.1984c Vaginella depressa Daudin - A.W. Janssen : 200, figs 10-13.

1990 Vaginella depressa Daudin - A.W. Janssen : 51, pl. 7 figs 8-12,pl. 8 figs 1-8.

1995 Vaginella depressa Daudin - A.W. Janssen : 145, pl. 11 figs11-13.


Vaginella depressa est une espèce très caractéristi-que et très abondante dans le Burdigalien inférieurd'Aquitaine. Elle est toutefois également présente dansl'Aquitanien inférieur de St-Paul-lès-Dax et dansl'Aquitanien supérieur de Meilhan (Carrière "Vives").

Sous-Ordre SACOGLOSSA von Ihering, 1876

Superfamille OXYNOOIDEA Stoliczka, 1868

Famille JULIIDAE E.A. Smith, 1885

Julia Gould, 1862

Julia exquisita Gould, 1862 (DO) - Origine : Récent, Indo-Ouest-Pacifique.

Julia girondica Cossmann & Peyrot, 1914Pl. 37 figs 7a-7b - Figs 19a-c

1914 Julia girondica Cossmann & Peyrot : n°472, pl. 12 figs 19-22.

Fig. 19 – a-c Julia girondica Cossmann & Peyrot, 1914 a-b : Dmax= 3 mm, c : H= 1,7 mm - d-e Spiricella ungui-culus Rang, 1828 d : Long : 1,4 mm, e : Echelle= 125 µm - f Spiratella miorostralis (Kautsky, 1925). H= 1 mm - gVaginella depressa Daudin, 1800 H= 4,9 mm - h-i Tylodina cf. perversa (Gmelin, 1790) H= 2,8 mm (coll. Lesport).[Lariey, coll. Favia & Lozouet, sauf avis contraire].



Nous n'avons pas inclus dans la synonymie Juliaaff. girondica de l'Oligocène de Gaas (R. JANSSEN

1979b, fig. 3) qui est une espèce différente. Julia gi-rondica se rencontre dans différents sites aquitaniens,elle est proche de Julia douvillei Cossmann & Peyrot,1914 de l'Oligocène supérieur d'Aquitaine à laquelleelle succède. JENSEN (1996) a précisé la position desJuliidae au sein des Sacoglossa.

Sous-Ordre NOTASPIDEA P. Fischer, 1883

Superfamille UMBRACULOIDEA Dall, 1889

Famille UMBRACULIDAE Dall, 1889

Spiricella Rang, 1828

Spiricella unguiculus Rang, 1828 (DO) - Origine : Miocène inférieurd'Aquitaine.

Spiricella unguiculus Rang, 1828Figs 19d-e

1828 Spiricella unguiculus Rang in Rang et Des Moulins : 227, pl.1figs 1-5

1852 Capulus unguiculus d'Orbigny ; n°1692, 91.1932 Spiricella unguiculus Rang - Peyrot : n°1366, pl. 18 figs 38-39,

42.1984 Spiricella unguiculus Rang - Hoeksema et Janssen : 48, figs 1-

8.1987 Spiricella unguiculus Rang - Dekker : 225, fig. 1.1994 Spiricella unguiculus Rang - Geuze et Hoeksema : 225, figs 1-

3.2000 Spiricella unguiculus Rang - Valdés et Lozouet : 459, pl. 2 figs

7-10.


Cette espèce se rencontre en Aquitaine dans diffé-rents gisements aquitaniens ou burdigaliens (Uzeste"Gamachot", Mérignac, St-Paul-lès-Dax "Cabanes"),dans les marnes de Saubrigues et à l'Oligocène inférieur(VALDÉS & LOZOUET 2000).

Famille TYLODINIDAE Gray, 1847

Tylodina Rafinesque, 1819

Tylodina punctulata Rafinesque, 1814 (DS ) - Origine : Récent.

Tylodina cf. perversa (Gmelin, 1790)Fig. 19h-i

1790 Patella perversa Gmelin : 3714.2000 Tylodina perversa (Gmelin) - Valdés et Lozouet : 462, pl. 2

figs 1-4.


Ordre PULMONATA Cuvier, 1817

Sous-Ordre BASOMMATOPHORA Keferstein, 1864

Superfamille SIPHONARIOIDEA Gray J.E., 1840

Famille SIPHONARIIDAE Gray, 1827

Siphonaria Sowerby, 1823

Patella laciniosa Linné, 1758 (DO) - Origine : Récent, Indo-Ouest-Pacifique.

Siphonaria bisiphites Michelin, 1831Pl. 37 figs 10a-10b

1828a Patella costaria Lamarck - Grateloup : n°4, 77.1831a Siphonaria bisiphites Michelin : 5, figs 1-2.1836 Patella costaria Lamarck - Grateloup : 269, pl. 1 figs 6-7.1847 Patella costaria Lamarck - Grateloup : pl. 1 figs 6-7.1852 Siphonaria bisiphites Michelin - d'Orbigny : n°1730, 93.1932 Siphonaria bisiphites Michelin - Peyrot : n°1418, pl. 12 figs

29, 31, 34, 40, 54.

Matériel examiné : 1 spm. coll. Gourgues.

Siphonaria vasconiensis Michelin, 1831Pl. 37 figs 9a-9b

1828a Patella vulgata Linné - Grateloup : n°3, 77.1831b Siphonaria vasconiensis Michelin : 32, 2 figs.1836 Patella vulgata Linné - Grateloup : 268, pl. 1 fig. 5.1847 Patella vulgata Linné - Grateloup : pl. 1 fig. 5.1852 Siphonaria vasconiensis Michelin - d'Orbigny : n°1729, 93.1932 Siphonaria vasconiensis Michelin - Peyrot, n°1471, pl. 12 figs

24, 28, 32-34, 40-42.


Williamia Monterosato, 1884

Ancylus gussoni Da Costa, 1829 (DS Cossmann, 1895) - Origine :Récent, Méditerranée.

Williamia merignacensis (Cossmann & Peyrot, 1919)Pl. 37 figs 8a-8b

1919 Capulus (Capulacmaea) merignacensis Cossmann & Peyrot :n°293, pl. 14 figs 61-63.


Les espèces de Williamia ont souvent été confon-dues avec des Patellidae, des Acmaeidae (voirLOZOUET & MAESTRATI 1982, fig. 10 : Patella mega-politana Wiechmann, 1869) ou avec des Capulidae .Un examen de la protoconque montre qu'elle est sénes-tre et l'on peut également distinguer une empreintemusculaire de type Siphonaria.


Sous-Ordre ACTEOPHILA Troschel, 1866

Superfamille ELLOBIOIDEA Adams A, 1855

Famille ELLOBIIDAE L. Pfeiffer, 1854

Ellobium (s.l.) Röding, 1798

Voluta auris-midae Linné, 1758 (DS Gray, 1847) - Origine : Indo-Ouest-Pacifique.

Ellobium (s.l.) sp.Pl. 37 fig. 12


La forme générale de cette espèce rappelle Blaune-ria (Stolidoma) merignacensis Peyrot, 1932 (PEYROT

1932 n°1436, pl. 114 fig. 71) mais son ouverture portetrois plis columellaires alors que Peyrot n'en mentionneque deux sur l'espèce merignacensis.

Proplecotrema Boettger in Degrange-Touzin, 1892

Auricula marginalis Grateloup, 1828 (DO) - Origine : Miocène infé-rieur d'Aquitaine.

Proplecotrema marginalis (Grateloup, 1828)Pl. 37 fig. 11

1828a Auricula marginalis Grateloup : n°70, 104.1838d Auricula marginalis Grateloup - Grateloup : 255, pl. 6 fig. 2.1847 Auricula marginalis Grateloup - Grateloup : pl. 11 fig. 2.1852 Auricula marginalis Grateloup - d'Orbigny : n°321, 26.1872 Plecotrema marginalis (Grateloup) - Tournouër : 100, pl. 4 figs

4a-c.1923a Plecotrema (Proplecotrema) marginalis (Grateloup) - Wenz

(1923-1930) : 1161.1932 Plecotrema (Proplecotrema) marginalis (Grateloup) - Peyrot :

n°1425, pl. 14 figs 45-46, 52-55.


Superfamille LYMNAEOIDEA Rafinesque, 1815

Famille PLANORBIDAE Gray, 1840

Anisus Studer, 1820

Helix spirorbis Linné, 1758 (DS Gray, 1847) - Origine : Récent, Pa-léarctique.

Anisus balizacensis Peyrot, 1932Pl. 37 fig. 14

1932 Planorbis (Gyraulus) declivis balizacensis Peyrot : n°1451, pl.15 figs 32, 38.


Planorbarius Froriep, 1806

Helix corneus Linné, 1758 (M) - Origine : Récent, Paléarctique.

Planorbarius solidus (Thomae, 1845)Pl. 37 fig. 15

1845 Planorbis solidus Thomae : 153.1923a Coretus cornu cornu (Brongniart) - Wenz (1923-1930) :1426.1932 Planorbis (Coretus) cornu solidus Thomae - Peyrot : n°1448,

pl. 15 figs. 16, 17, 21.


Famille LYMNAEIDAE Rafinesque, 1815

Lymnaea Lamarck, 1799

Helix stagnalis Linné, 1758 (DS Fleming, 1818) - Origine : Récent,Paléarctique.

Lymnaea subfragilis (d'Orbigny, 1852)Pl. 37 fig. 13

1828 Lymnaea palustris var. b. Grateloup : n°89, 127.1838 Lymnaea fragilis Grateloup : 130 (non Linné).1847 Lymnaea fragilis Grateloup - Grateloup : pl. 3 figs 36-37.1852 Lymnaea subfragilis d'Orbigny : 26, n°325.1854 Limnaea girondica Noulet : 110.1892 Limnaea girondica Noulet - Degrange-Touzin : 158.1923a ?Galba (Galba) subfragilis (A. d'Orbigny) - Wenz (1923-

1930) : 1398.1932 Limnaea girondica Noulet - Peyrot : n°1439, pl. 14 figs 75, 77,

79 ; pl. 15 fig. 6.1938 Limnaea subfragilis (d'Orbigny) - Magne : 60.


Sous-Ordre EUPULMONATA Haszprunar & Huba, 1990

Superfamille HELICOIDEA Rafinesque, 1815

Famille HELICIDAE Rafinesque, 1815

Cepaea Held, 1837

Helix nemoralis Linné, 1758 (DO) - Origine : Paléarctique.

Cepaea subglobosa (Grateloup, 1828)

1828 Helix subglobosa Grateloup : n°47, 95.1838b Helix subglobosa Grateloup : 105, Pl. 4 fig. 4.1847 Helix subglobosa Grateloup : 105, pl. 3 fig. 4.1854 Helix girondica Noulet : 74.1892 Helix (Coryda) girondica Noulet - Degrange-Touzin : 134.1923a Cepaea subglobosa (Grateloup) - Wenz (1923-1930) : 680.1932 Helix girondica Noulet - Peyrot : n°1457, pl. 15 figs 41-46, pl.

16 figs 1-3.



Nous avons repris pour cette espèce la synonymieindiquée par WENZ (1923-1930).

Superfamille CLAUSILIOIDEA Gray, 1855

Famille CLAUSILIIDAE Gray, 1855

Triptychia Sandberger, 1874

Triptychia antiqua Zieten, 1830 (DS Wenz, 1923) - Origine : Mio-cène inférieur (Allemagne).

Triptychia maxima (Grateloup, 1828)Pl. 37 fig. 16

1828a Clausilia maxima Grateloup : n°55, 97.1831 Clausilia maxima Grateloup - Deshayes : 15, figs 1-2.1838b Clausilia maxima Grateloup - Grateloup : 117, pl. 4 fig. 17.1847 Clausilia maxima Grateloup - Grateloup : pl. 3 fig. 20.1852 Pupa maxima d'Orbigny : n°317, 26.1923a Triptychia (Triptychia) maxima (Grateloup) - Wenz (1923-

1930) : 815.1932 Clausilia (Triptychia) maxima Grateloup - Peyrot : n°1477, pl.

18 figs 19, 26.


DISCUSSION ET CONCLUSION

Cette étude a permis de dénombrer 314 espèces,dont 3 sont terrestres et 4 strictement fluviatiles. Notrematériel de base comprend 300 espèces et 14526 indi-vidus (coll. Lesport, 223 espèces, 7292 individus ; coll.Favia & Lozouet, 229 espèces, 5815 individus ; coll.Renard, 175 espèces, 1951 individus). L'examen descollections mises à notre disposition a finalement per-mis d'ajouter 14 taxons de rang spécifique. Ainsi que lemontre le tableau 1, 10% des espèces représentent plusde 65% du nombre de spécimens. Les espèces domi-nantes sont plus ou moins liées à un environnementd'herbiers (Gibborissoa, Bittium, Cerithium, Tricolia,Jujubinus, Alvania) ; la bonne représentation des Dio-dora, Fossacypraea témoignent du milieu rocheux desniveaux inférieurs (couche des "marmites") ; l'effort derécolte a principalement concerné les niveaux de base,cet assemblage est donc manifestement surreprésenté.Enfin, on notera l'abondance des espèces d'eaux trèscalmes voire lagunaires (Vitta, Hydrobia, Granulola-bium) qui sont surtout très communes dans la partie su-périeure de la coupe.

La comparaison de la richesse spécifique de Larieyavec d'autres sites aquitains est délicate dans la mesureoù cette étude est la première révision exhaustive desgastéropodes d'un gisement de la région. Des donnéesextraites de LOZOUET (1997b) permettent cependant demieux situer la richesse de cette faune dans le cadre ré-gional d'une part, et européen d'autre part. En effet,certains affleurements aquitains, encore incomplète-ment inventoriés, renferment entre 400 et 500 espècesde gastéropodes. C'est le cas notamment des gisementsde l'Oligocène supérieur des Landes [St-Paul-lès-Dax :Bezoye B, 465 espèces ; Estoti : 448 espèces]. Le siteaquitanien de Meilhan (Vives) et le site burdigalien deSt-Paul-lès-Dax (Cabanes) ont livré respectivement 418et 405 espèces de gastéropodes ; contrastant avec ceschiffres, dans le site burdigalien de Saucats "Peloua",LOZOUET (1997b) signale seulement 300 espèces ; or

"Le Peloua" est souvent considéré comme un gisementd'une richesse exceptionnelle! Le besoin d'inventaireprécis apparaît donc clairement. Dans le nord de l'Eu-rope, au Miocène inférieur/moyen, le gisement deWinterswijk-Miste, qui est à ce jour le plus riche duMiocène nordique, a fourni 350 espèces de gastéropo-des (A.W. JANSSEN 1984a). Ces chiffres sont à compa-rer aux 500 espèces de gastéropodes listées par DOLIN

et al. (1980) pour la sablière de Baron (Bassin de Paris,Bartonien). Bien que ce gisement renferme d'asseznombreux éléments remaniés des étages Lutétien àThanétien, ce nombre d'espèces, déjà remarquable, estde toute façon inférieur à ce que l'on obtient dans cer-tains gisements du Lutétien du bassin de Paris. Le Re-nard (comm. pers.) considère qu'un riche affleurementlutétien livre entre 700 et 800 espèces de gastéropodes.Dans le Pliocène de Malaga (Espagne), VERA-PELÁEZ

et al. (1996) listent 531 espèces de gastéropodes pourles seuls affleurements des environs de Velerin.

Cette rapide présentation de quelques assemblagesdu Cénozoïque nous permet de conclure qu'avec 310espèces de gastéropodes recensées, Lariey est d'une ri-chesse spécifique moyenne. On soulignera de nouveauqu'aucun autre affleurement du Miocène, ou de l'Oligo-cène aquitain, n'a fait l'objet d'un tel effort d'inventaire.Au total, l'Aquitanien renferme environ 700 espèces degastéropodes (LOZOUET 1997b). C'est près de 44% dela faune de cet étage que nous avons révisé. Notreconnaissance de l'Aquitanien dans sa région type estdonc considérablement renouvelée. Pourtant, et ilconvient d'insister sur cet aspect, les données surl'Aquitanien marin franc stratotypique, du moins en cequi concerne les mollusques, reposent essentiellementsur une seule coupe et sur quelques niveaux de celle-ci,notamment le mince dépôt très particulier du remplis-sage des "marmites". De là provient sans doute unepartie des problèmes rencontrés, jusqu'à présent, dans lacaractérisation de cet étage.


Enfin, en dernière analyse, on notera que l'expé-rience acquise et les données réunies pour ce travailmonographique, permettent maintenant d'envisager trèsconcrètement l'étude d'autres sites de la Réserve Géolo-gique de Saucats-La Brède, et plus généralement dubassin aquitain. Il devient en effet impératif de présen-ter, dans un délai raisonnable, une réactualisation pa-léontologique des stratotypes de cette région ; on nepeut plus se contenter de la compilation d'un ouvrageinitié il y a près d'un siècle (COSSMANN & PEYROT

1909...). Est-il besoin de rappeler que dans la"Conchologie Néogénique de l'Aquitaine" seulement113 espèces, races ou variétés de gastéropodes sont ci-tées de Lariey (inclus Saucats "Route du Son", la coupede Lariey étant considérée dans son intégralité, tous lesniveaux confondus, lacustres compris) dont 17 espècesterrestres ou fluviatiles!

REMERCIEMENTS

Ce travail a largement bénéficié du soutien du labo-ratoire de Biologie des Invertébrés Marins et Malaco-logie (MNHN-Paris). Nous tenons à mentionner plusparticulièrement : R. Favia, P. Maestrati, J. Le Renardet R. von Cosel ainsi que P. Bouchet et J. P. Rocroipour la mise à disposition de leur très utile Index taxo-nomique. Nous avons pu accéder à diverses collectionspubliques et en remercions les responsables : A. Rageet H. Senut (MNHN-Paléontologie), N. Mémoire (Mu-séum de Bordeaux), B. Cahuzac (Université de Ta-lence). M. Aubrecht (Bordeaux), D. Balauze (Bor-deaux), D. Dudon (Melun), E. Daney (Bordeaux) et D.Gourgues (Bordeaux) nous ont confié le matériel deleur collection. Y Gili et P. Rocher de la Réserve Géo-logique de Saucats-La Brède ont soutenu ce projet. L.Dolin (Amboise) a bien voulu revoir les Cypraeoidea,J.C. Plaziat (Université Paris-Sud , Orsay) et D. More-no (Almeria) nous ont communiqué des photos particu-lièrement utiles, A. Beu (Nouvelle-Zélande) a corrigé letexte anglais.

lbimm


Tableau 1 – Ordination des espèces par effectifs décroissants (spm.= nombre de spécimens).

Espèces Spm. Espèces Spm. Espèces Spm. Espèces Spm.Gibborissoa varicosa 731 Brachystomia turritella 33 Mercuria balizacensis 5 Littorinopsis grateloupi 1Bittium larrieyense 649 Tympanotonos cinctus 32 Tenagodus terebellus 5 Alvania sp. 1Fossacypraea apiceproducta 575 Cyllene desnoyersi 31 Cerithiopsis vignali 5 Rissoina grateloupi 1Vitta picta 571 Seila cf. infrapercincta 30 Dizoniopsis aquitaniensis 5 Cochliolepis sp. 1Hydrobia andreaei 555 Epitonium merignacense 29 Metaxia merignacencis 5 Cochliolepis trigonostoma 1Cerithium peyroti 448 Styliferina disjuncta 27 Nodiscala cf. bimonilifera 5 Pelycidion cf. aciculare 1Diodora subcostaria 439 Xenoskenea buccinata 27 Ocenebra suberinacea 5 Chevallieria sp. 1Tricolia spirata 438 Haminoea saucatsensis 27 Mitra incognita 5 Stenothyroides aquitanica 1Gibberula subovulata 417 Caecum fibratum 26 Olivella nilotida 5 Dalliella brusinai 1Alvania mariae 390 Circulus subcirculus 23 Conus trigonulus 5 Turritella desmarestina 1Jujubinus bucklandi 345 Asteracmea acuminata 22 Subula plicaria 5 Vermetus carmatus 1Natica neglecta 287 Jujubinus subturgidulus 22 Terebra pseudopertusa 5 Bicatillus deformis 1Granulolabium plicatum 279 Terebralia bidentata 22 Ondina cicatricosa 5 Xenophora deshayesi 1Mitrella aquitanica 256 Cerithiella? sp. 22 Murchisonella cf. bezanconi 5 Mandolina rhomboidalis 1Pupa striatella 251 Paroxystele sp. 21 Cylichna clathrata 5 Trona leporina leporina 1Natica parvuloides 222 Batillaria pupaeformis 21 Julia girondica 5 Zonarina pinguis 1Anazola clavula 216 Fossacypraea eburnina 21 Scissurella cf. transylvanica 4 Trivia burdigalensis 1Conus basteroti 212 Orania fischeri 21 Stosicia buccinalis 4 Polinices turbinoides 1Acteocina lajonkaireana 197 Pleuroploca michelotiana 21 Pseudocirsope sp, 4 Sinum faviae 1Plesiotrochus fallax 194 Neverita semiglobosa 19 Melanopsis dufourii 4 Charonia ventricosa 1Hipponyx sulcatus 192 Sukashitrochus terquemi 18 Sandbergeria turrita 4 Ficus conditus 1Clanculus araonis 190 Ocenebra cf. cazeauxi 18 Bursa tuberosa 4 Triphora (s. l.) sp. 1Ocenebra umbilicina 187 Orbitestella plicatella 18 Cirsotrema subspinosum 4 Epitonium rocheri 1Pyramidella gratteloupi 185 Coralliophila burdigalensis 17 Favartia cf. suboblonga. 4 Graphis sp. 1Dorsanum baccatum 183 Retizafra rissoides 17 Jaton dufrenoyi 4 Melanella similis 1Turritella turris 180 Turbonilla sp. 17 Cantharus andrei 4 Attiliosa villae 1Crassispira daguini 179 Triphora (s. l.) nodosoplicata 16 Conus subalsionus 4 Chicoreus dujardini 1Nassarius aquitanicus 175 Teinostoma simplex 15 Tomopleura basteroti 4 Morula (s. l.) cf. bellardii 1Hemiconus granularis 174 Jousseaumea diluviana 15 Rotostoma duvergieri 4 Cantharus cancellarioides 1Tympanotonos tournoueri 163 Natica crassiuscula 15 Pseudotorinia cf. planulata 4 Euthria sp. 1Muricopsis crassicosta 137 Andonia cf. degrangei 15 Eulimella sp.2 4 Nassarius subtesselatus 1Calyptraea depressa 135 Brachystomia physetum 15 Acteon pinguis 4 Volema tarbeliana pyrulata 1Trochita costaria 128 Atys duvergieri 15 Homalopoma granulosa 3 Athleta ficulina 1Ringicula minor 120 Turritella terebralis 14 Tricolia aquensis 3 Morum variolosum 1Cylichna sublaevis 119 Cerithiopsis eopachus 14 Aspella subanceps 3 Gibberula sp. 1Turbonilla spiculoides 114 Thais calcarata 14 Cantharus aquitanensis 3 Costellaria semiplicata 1Alvania lachesis 113 Anisus balizacensis 14 Mitrella sp. 3 Scabricola sp. 1Protoma cathedralis 112 Prozonarina expansa 13 Tudicla rusticula 3 Oliva (Strephona) dufresnei 1Melongena lainei 112 Cymatiella tritonea 13 Strioterebrum basteroti 3 Aphera bronni 1Alvania venus 111 Melanella cf. subbrevis 13 Tomura pacheia 3 Ventrilia sp. 1Rissoina subcancellata 108 Dorsanum plicatum 13 Brachystomia occidentalis 3 Coronia cypris 1Clavatula evoluta 103 Carinorbis burdigalus 13 Chrysallida interita 3 Gemmula denticula 1Cerithium calculosum 101 Ebala cf. bezanconi 13 Chrysallida sacyi 3 Pusionella pseudofusus 1Rissoina subconoidea 100 Cylichna tournoueri 13 Odostomia sp. 3 Crassispira terebra 1Bela elegantissima 97 Caecum banoni 12 Turbonilla raphidiopsis 3 Agathotoma cf. pherousae 1Stenothyroides sanctistampaensis 91 Latirulus coarctatus 12 Haliotis (Sulculus) benoisti 2 Genota ramosa 1Scaliola degrangei 90 Scaphander tarbelliana 12 Melarhaphe sacyi 2 Raphitoma sp. 1Costoanachis terebralis 87 Trachypollia granifera 11 Truncatella wattebledi 2 Nipteraxis cf. misera 1Dorsanum lineolatum 82 Vitularia linguabovis 11 Strombus bonellii 2 Rissoella sp. 1Cerithium ferelaeve 77 Scissurella lamellosa 10 Megalomphalus aturensis 2 Ammonicera cf. rota 1Ocenebra sublavata 69 Hipponyx striatulus 10 Lyncina peyroti 2 Philine sp. 1Cylichnella vasatensis 69 Sinum patulum 10 Schilderia subannularia 2 Vaginella depressa 1Chrysallida degrangei 65 Kestocenebra striaeformis 10 Jenneria duclosiana 2 Spiricella unguiculus 1Colliculus aquitanicus 64 Turbonilla diastomoides 10 Semicassis subgranulosa 2 Tylodina cf. perversa 1Tympanotonos margaritaceus 64 Cylichna sp. 10 Cerithiopsis sp, 2 Siphonaria vasconiensis 1Modulus basteroti 63 Cymatium subcorrugatum 9 Inella cf. fritschi 2 Ellobium (s.l.) sp. 1Melongena cornuta 61 Epitonium subscalaris 9 Cirsotrema crassicostatum 2 Proplecotrema marginalis 1Nerita plutonis 59 Alvania andraldensis 8 Phyllocoma michelottii 2 Cepaea suglobosa 1Vermetus cf. arenarius 59 Caecum larieyense 8 Thais pluriplicata 2 Triptychia maxima 1Polinices benoisti 59 Granulolabium thiarellum 8 Mitra basteroti 2 Apiocypraea subamygdalum 1Hydrobia aturensis 57 Seila sp. 8 Mitra dufresnei 2 Neritopsis moniliformis 1Pachycrommium eburnoides 56 Cerithiopsis cf. pseudomanzonii 8 Agaronia plicaria 2 Schuettemmericia lemani 1Terebralia subcorrugata 56 Pusillina sp. 7 Perrona semimarginata 2 Gourmya tuberosa 1Turbonilla avitensis 55 Zebina aquitanica 7 Conus cf. berghausi 2 Aporrhais meridionalis 1Lucapinella clypeata 51 Eunaticina striatella 7 Raphitoma pulchra 2 Tibia dentata 1Chrysallida sextona 49 Ocenebra excoelata 7 Architectonica carocollata 2 Crepidula cochleare 1Hastula subcinerea 47 Volvarina tumulensis 7 Architectonica subconoidea 2 Astralium aquitanicum 1Acteon sp. 45 Bela burdigalina 7 Omalogyra cf. atomus 2 Pterynotus perlongus 1Eratopsis subcypraeola 43 Eulimella gamachotensis 7 Liostomia sp. 2 Purpurellus gastaldii 1Ondina girundica 42 Sinezona praecedens 6 Monotigma merignacensis 2 Homalocantha pauli 1Eulimella sp. 1 42 Theodoxus grateloupianus 6 Acteon punctulatus 2 Euthriofusus burdigalensis 1Globularia compressa 39 Hipponyx bistriatus 6 Akera cf. bullata 2 Morum harpaeforme 1Bullina cf. benoisti 39 Eulima (s. l.) sp. 6 Williamia merignacensis 2 Siphonaria bisiphites 1Hipponyx grateloupi 38 Ocenebra lassaignei 6 Lymnaea subfragilis 2 Floribella rozieri 1Lyncina tumida 38 Pleurotomoides subcostellatus 6 Tectura sp. 1 Dizoniopsis brevicaput 1Costellaria miocenica 35 Ebala cf. carinata 6 Sinezona haliotimorpha 1 Joculator maestratii 1Triphora (s. l.) papaveracea 34 Spiratella miorostralis 6 Emarginula cf. squammata 1 Ergalatax cf. seraphinae 1Vermetus cf. intortus 33 Planorbarius solidus 6 Homalopoma degrangei 1

Campanile pseudoobeliscus 33 Pomatias squamosum 5 Plesiothyreus ancyliformis 1


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COSSMANN M. - 1896 - (a) Essais de Paléoconchologie com-parée. Livraison 2. 179 pp., 7 pls., Paris (Chez l'Auteur).

COSSMANN M. - 1896 - (b) Sur quelques formes nouvelles oupeu connues des faluns du Bordelais (suite). Extrait de"Association Française pour l'Avancement des Sciences",24 : 1-23, 2 pls.

COSSMANN M. - 1899 - Essais de Paléoconchologie Compa-rée. Livraison 3. 201 pp., 8 pls, Paris (Chez l'Auteur).




COSSMANN M. - 1906 - Essais de Paléoconchologie Compa-

rée. Livraison 7. 261 pp., 14 pls, Paris (Chez l'Auteur).


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COSSMANN M. - 1912 - Essais de Paléoconchologie Compa-rée. Livraison 9. 215 pp., 10 pls.

COSSMANN M. - 1916 - Essais de Paléoconchologie Compa-rée. Livraison 10. 292 pp., 12 pls, Paris (Chez l'Auteur)("1915").

COSSMANN M. - 1918.- Essais de Paléoconchologie Compa-rée. Livraison 11. 388 pp., 11 pls, Paris (Chez l'Auteur).



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Boll., 11(267) : 79-81 (1896) ; Parte 20 (Caecidae, Ver-metidae, Siliquariidae, Phoridae, Calyptraeidae, Capulidae,Hipponycidae e Neritidae), Boll., 11(267) : 82-84 (1896) ;Parte 21 (Naricidae, Modulidae, Phasianellidae, Turbini-dae, Delphinulidae, Cyclostrematidae, Tornidae), Boll.,11(267) : 85-88 (1896) ; Parte 22, Boll., 11(267) : 89-98(1896) ; Parte 22, Gasteropoda (fine) (Pleurotomariidae,Scissurellidae, Haliotidae, Fissurellidae, Tecturidae, Patel-lidae, Oocorythidae, Cyclophoridae, Cyclostomidae, Aci-culidae, Truncatellidae, Acteonidae, Tronatinidae, Sca-phandridae, Bullidae, Cyclinidae, Philinidae, Umbrelli-dae), Pulmonata (Testacellidae, Limacidae, Vitrinidae,Helicidae, Pupidae, Stenogyridae, Succineidae, Auriculi-dae, Limnaeidae, Physidae, Siphonariidae), Amphineura(Chitonidae), Scaphopoda (Dentaliidae), 148 p., 10 pls(1897), Torino (Clausen) (Boll. : Bolletino dei Musei diZoologia ed Anatomia comparata della Reale Universitadi Torino ; Mem. : Memorie della Reale Accademia delleScienze di Torino) [réf. in MARSHALL 1991].

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PLANCHES

[Tous les spécimens figurés proviennent de Lariey sauf le spécimen de la fig. 14, pl. 29]

Planche 1

Figs 1a-1b Asteracmea acuminata (Grateloup, 1828) p. 15[Dmax= 2,32 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Fig. 2 Scissurella lamellosa Benoist, 1875 p. 16[Dmax= 1,48 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Fig. 3 Sukashitrochus terquemi (Deshayes, 1865) p. 17[Dmax= 1,6 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Fig. 4 Scissurella cf. transylvanica (Reuss, 1860) p. 16[Dmax= 1,7 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]



Planche 2

Figs 1a-1b Sukashitrochus terquemi (Deshayes, 1865) p. 17[1a (x 104), 1b (x 382) (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 2a-2b Scissurella lamellosa Benoist, 1875 p. 16[2a (x 112), 2b (x 404) (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 3a-3b Scissurella cf. transylvanica (Reuss, 1860) p. 16[3a (x165), 3b (x 253) (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]



Planche 3

Figs 1a-1b Emarginula cf. squammata Grateloup, 1836 p. 17[Dmax= 6,5 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 2a-2b Diodora subcostaria (d'Orbigny, 1852) p. 17[Dmax= 12 mm (coll. Renard)]Figs 3a-3b Lucapinella clypeata (Grateloup, 1828 p. 17[Dmax= 11 mm (coll. Lesport)]Fig. 4 Haliotis (Sulculus) benoisti Cossmann, 1895 p. 16[Dmax= 12 mm (coll. Lesport)]Figs 5a-5c, 6a-6b Colliculus aquitanicus (Cossmann & Peyrot, 1917) p. 18[5a-5c : H= 8,3 mm ; 6a-6b : H= 6 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 7a-7b Paroxystele sp. p. 18[H= 5,2 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]



Planche 4

Figs 1a-1c Clanculus (Clanculopsis) araonis (Basterot, 1825) p. 18[H= 8 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 2a-2c ; 3 Jujubinus bucklandi (Basterot, 1825) p. 18[2a-2c : H= 11 mm ; 3 : H= 15 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 4a-4c ; 5a-5b Jujubinus subturgidulus (d'Orbigny, 1852) p. 18[4a-4c : H= 11 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN) ; 5a-5b : H= 8 mm (coll. Lesport)]Figs 6a-6b Tricolia spirata (Grateloup, 1832) p. 19[H= 7 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 7a-7b Homalopoma granulosa (Grateloup, 1828) p. 19[H= 3,4 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 8a-8c Homalopoma degrangei (Cossmann & Peyrot, 1917) p. 19[8a-8c : H= 2,1 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]



Planche 5

Figs 1a-1b Astralium aquitanicum Benoist, 1874 p. 18[H= 13 mm ; Dmax= 12,7 mm (coll. Cossmann- MNHN-Paléontologie-n°J02901)]Figs 2a-2c Plesiothyreus ancyliformis (Grateloup, 1828) p. 20[Dmax= 6 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Fig. 3 Theodoxus grateloupianus (Férussac, 1823) p. 20[Dmax= 13 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 4a-c Nerita plutonis (Basterot, 1825) p. 20[Dmax= 10 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 5a-5b Neritopsis moniliformis Grateloup, 1832 p. 19[Dmax= 15 mm (coll. Aubrecht)]Figs 6a-6b, 7-8, 9a-9b Vitta picta (Férussac, 1823) p. 20[6a-6b : opercule ; 7, 8 : Dmax= 4 mm ; 9a-9b : Dmax= 5 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]



Planche 6

Figs 1a-1d Modulus basteroti Benoist, 1873 p. 22[Dmax= 11 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 2a-2c Cerithium calculosum Basterot, 1825 p. 23[H= 38 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 3a-3c, 4 Cerithium peyroti (Dollfus, 1909) p. 23[3a-3c : H= 20 mm ; 4 : H= 21 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 5a-5c Cerithium ferelaeve Vignal, 1911 p. 23[H= 22 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 6a-6c Bittium larrieyense Vignal, 1911 p. 22[H= 9,6 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 7a-7b Scaliola degrangei Cossmann & Peyrot, 1919 p. 25[H= 3,5 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 8a-8c, 9 Gibborissoa varicosa (Basterot, 1825) p. 25 [8a-8c : H= 7 mm ; 9 H= 6,2 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]



Planche 7

Figs 1a-1b Turritella turris Basterot, 1825 p. 29[H= 40 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 2a-2b Turritella terebralis Lamarck, 1822 p. 29[H= 47 mm (coll. Lesport)]Fig. 3 Turritella (Haustator) desmarestina Basterot, 1825 p. 29[H= 65 mm (coll. Lesport)]Figs 4a-4b, 5a-5b Protoma cathedralis (Brongniart, 1823) p. 28[4a-4b : H= 56 mm ; 5a-5b H= 38 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Fig. 6 Vermetus cf. intortus Lamarck, 1818 p. 30[L= 33 mm (coll. Renard)]Fig. 7 Vermetus cf. arenarius (Linné, 1767) p. 30[L= 34 mm (coll. Renard)]Fig 8 Vermetus carmatus Rousseau, 1844 p. 29[L= 20 mm (coll. Lesport)]



Planche 8

Figs 1a-1b, 2a-2c, 3a-3c Granulolabium plicatum (Bruguière, 1792) p. 27[1a-1b : H= 37 mm ; 2a-2c H := 17,6 mm ; 3a-3c H= 17,5 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Fig. 4 Granulolabium (Tiaracerithium) thiarella (Grateloup, 1832) p. 28[H= 15 mm (coll. Lesport)]Fig 5 Batillaria pupaeformis (Basterot, 1825) p. 27[H= 10 mm (coll. Lesport)]Figs 6a-6b, 7a-7b Terebralia subcorrugata (d'Orbigny, 1852) p. 26[6a-6b : H= 45 mm ; (coll. Lesport) ; 7a-7b : H= 17 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]



Planche 9

Figs 1a-1b, 2, 3a-3b, 4, 5a-5b Tympanotonos margaritaceus (Brocchi, 1814) p. 26[1a-1b : H= 51 mm ; 2 : H= 48,5 mm (coll. Lesport) ; 3a-3b : H= 38 mm ; 4 H= 26 mm ; 5a-5b : H= 24 mm (coll.Favia & Lozouet - MNHN)]Fig. 6 Tympanotonos cinctus (Bruguière, 1792) p. 26[H= 66 mm (coll. Lesport)]Figs 7-9 Tympanotonos tournoueri (Mayer, 1878) p. 27[7 : H= 11 mm (coll. Lesport) ; 8 : H= 7,5 mm ; 9 (Escoffieria degrangei) : H= 6,5 mm (coll. Favia & Lozouet -MNHN)]Fig. 10 Terebralia subcorrugata (d'Orbigny, 1852) p. 26[H= 49 mm (coll. Lesport)]Fig. 11 Terebralia bidentata (Defrance in Grateloup, 1832) p. 26[H= 67,5 mm (coll. Lesport)]



Planche 10

Figs 1a-1c, 2, 3a-3b Plesiotrochus fallax (Grateloup, 1832) p. 21[2 : H= 10 mm (coll. Lesport) ; 1a-1c : H= 17 mm ; 3a-3b : H= 17,2 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 4a-4b, 5, 6, 7a-7b Campanile pseudoobeliscus (Grateloup, 1832) p. 22[4a-4b jeune individu ; 5 détail des premiers tours, (coll. Renard) ; 6 : H= 105 mm, forme épineuse, (coll. Lesport) ;7a-7b : H= 150 mm (coll. Renard)]



Planche 11

Figs 1a-1b Circulus subcirculus (Cossmann & Peyrot, 1917) p. 33[1a (x 87,5), 1b : Dmax= 2,26 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 2a-2d Styliferina disjuncta n. sp. p. 24[2a-2b (holotype), 2a (x 290), 2b : H= 2,3 mm ; 2c (x 195), 2d (x 274) (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]



Planche 12

Fig. 1 Pomatias squamosum (Peyrot, 1932) p. 30[H= 20 mm (coll. Lesport)]Fig. 2 Littorinopsis grateloupi (Deshayes, 1843) p. 30[H= 9 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 3a-3b Truncatella wattebledi Benoist, 1878 p. 30[H= 4 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 4a-4b Teinostoma simplex Benoist, 1874 p. 34[Dmax= 2 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 5a-5c Alvania lachesis (Basterot, 1825) p. 31[H= 3,7 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 6a-6c Alvania venus (d'Orbigny, 1852) p. 32[H= 3,6 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 7a-7b Alvania mariae (d'Orbigny, 1852) p. 31[H= 2,1 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Fig. 8 Alvania andraldensis Lozouet, 1998 p. 31[H= 3 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 9a-9b Rissoina (Pachyrissoina) grateloupi (Basterot, 1825) p. 32[H= 7,5 mm (coll. Lesport)]Figs 10a-10b Rissoina (Zebinella) subcancellata (Grateloup, 1847) p. 33[H= 6,8 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 11a-11b Rissoina subconoidea (Grateloup, 1847) p. 32[H= 5,2 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]



Planche 13

Figs 1, 2a-2b Stenothyroides sanctistampaensis n. sp. p. 36[1a (holotype) H= 1,51 mm ; 2a-2b (paratype) 2a H= 1,53 mm, b (x 131) (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 3a-3b Alvania lachesis (Basterot, 1825) p. 31[3a : H= 3,9 mm, 3b (x 70) (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Fig. 4 Alvania mariae (d'Orbigny, 1852) p. 31[H= 2,85 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 5a-5c Alvania venus (d'Orbigny, 1852) p. 32[5a : H= 3,3 mm, 5b (x 116), 5c (x 475) (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]



Planche 14

Figs 1a-1c Caecum fibratum Folin & Bérillon, 1874 p. 34[1a-1b (x 124), 1c (x 32,5) (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 2a-2c Caecum banoni Benoist, 1874 p. 34[2a-2b (x 177), 2c (x 39,8) (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 3a-3b Caecum larieyense n. sp. p. 34[3a (x 30) ; 3b (x 180) (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]



Planche 15

Figs 1a-1b Strombus bonellii Brongniart, 1823 p. 37[H= 80 mm (coll. Lesport)]Fig. 2 Hipponyx grateloupi Benoist, 1874 p. 40[Dmax= 12 mm (coll. Lesport)]Fig. 3 Hipponyx sulcatus (Borson, 1820) p. 40[Dmax= 12,3 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Fig. 4 Hipponyx bistriatus (Grateloup, 1836) p. 40[Dmax= 8 mm (coll. Lesport)]Figs 5a-5c Trochita costaria (Grateloup, 1828) p. 39[Dmax= 26 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 6a-6b Calyptraea depressa Lamarck, 1822 p. 38[Dmax= 12 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 7a-7b Crepidula cochleare Basterot, 1825 p. 38[Dmax= 22,4 mm (coll. Daney)]Fig. 8 Pseudocirsope sp. p. 35[H= 2,4 mm (coll. Renard)]



Planche 16

Fig. 1 Xenophora deshayesi (Michelotti, 1847) p. 40[Dmax= 95 mm (coll. Lesport]Figs 2a-2b Hipponyx striatulus (Deshayes, 1830) p. 40[Dmax= 6 mm (coll. Lesport)]Fig. 3 Eratopsis subcypraeola (d'Orbigny, 1852) p. 42[H= 7,5 mm (coll. Lesport)]Figs 4, 5a-5b Fossacypraea apiceproducta (Cossmann & Peyrot, 1923) p. 40[4 : H= 26 mm (coll. Lesport) ; 5a-5b : H= 22,5 mm (forme juvénile). (coll. Renard)]Figs 6a-6b Fossacypraea eburnina (Grateloup, 1847) p. 41[H= 23 mm (subambigua) (coll. Renard)]Fig. 7 Jousseaumea diluviana (Gray, 1824) p. 41[H= 38 mm (coll. Lesport)]



Planche 17

Figs 1-2 Lyncina tumida (Grateloup, 1834) p. 41[1 : H= 38 mm ; 2 : H= 32,5 mm (coll. Lesport)]Fig. 3 Lyncina peyroti (Schilder, 1932) p. 41[H= 41,5 mm (coll. Renard)]Figs 4a-4b Trona leporina leporina (Lamarck, 1810) p. 42[H= 43,5 mm (coll. Renard)]Figs 5a-5b Prozonarina expansa (Grateloup, 1847) p. 42[H= 22,8 mm (coll. Renard)]Figs 6a-6b Jenneria duclosiana (Basterot, 1825) p. 42[H= 20 mm (coll. Lesport)]



Planche 18

Fig. 1 Natica crassiuscula Grateloup, 1847 p. 43[Dmax= 22 mm (coll. Renard)]Fig. 2 Natica neglecta Mayer, 1859 p. 43[Dmax= 15 mm (coll. Lesport)]Figs 3a-3b Natica parvuloides Cossmann & Peyrot, 1919 p. 43[H= 5,2 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 4a-4b Polinices benoisti (Cossmann & Peyrot, 1919) p. 44[Dmax= 10 mm (coll. Renard)]Fig. 5 Eunaticina striatella (Grateloup, 1828) p. 44[Dmax= 11 mm (coll. Lesport)]Fig. 6 Sinum patulum (Grateloup, 1847) p. 45[Dmax= 28 mm (coll. Lesport)]Figs 7a-7c Sinum faviai n. sp. p. 44[H= 14 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 8a-8b Neverita semiglobosa (Grateloup, 1847) p. 44[Dmax= 22 mm (coll. Lesport)]Fig. 9 Pachycrommium eburnoides (Grateloup, 1847) p. 21[H= 26 mm (coll. Renard)]Fig. 10 Globularia compressa (Basterot, 1825) p. 21[Dmax= 43 mm (coll. Lesport)]



Planche 19Figs 1a-1b Cymatium subcorrugatum (d'Orbigny, 1852) p. 46[H= 40 mm (coll. Lesport)]Fig. 2 Cymatiella tritonea (Grateloup, 1847) p. 46[H= 16 mm (coll. Lesport)]Figs 3a-3b Bursa tuberosa (Grateloup, 1833) p. 45[H= 42 mm (coll. Lesport)]Figs 4a-4c Epitonium rocheri n. sp. p. 52[H= 9,3 mm (coll. Rocher)]Fig. 5 Epitonium subscalare (d'Orbigny, 1852) p. 52[H= 14 mm (coll. Lesport)]Fig. 6 Cirsotrema crassicostatum (Deshayes, 1853) p. 51[H= 13 mm (coll. Lesport)]Fig. 7 Epitonium merignacense (de Boury, 1912) p. 52[H= 11 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 8a-8b Nodiscala cf. bimonilifera (Boettger, 1902) p. 53[H= 4,1 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Fig. 9 Melanella cf. subbrevis (d'Orbigny, 1852) p. 53[H= 14 mm (coll. Lesport)]Fig. 10 Joculator maestratii n. sp. p. 49[H= 4,5 mm (coll. Renard)]Fig. 11 Seila sp. p. 50[H= 3,5 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Fig. 12 Seila cf. infrapercincta Sacco, 1895 p. 49[H= 10 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Fig. 13 Metaxia merignacencis (Cossmann & Peyrot, 1922) p. 51[H= 8 mm (coll. Lesport)]Fig. 14 Cerithiella? sp. p. 47[H= 3,8 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Fig. 15 Cerithiopsis cf. pseudomanzonii Boettger, 1906 p. 47[H= 5,5 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Fig. 16 Triphora (s. l.) nodosoplicata (Benoist, 1874) p. 50[H= 6 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Fig. 17 Triphora (s. l.) papaveracea (Benoist, 1874) p. 50[H= 6,3 mm(coll. Favia & Lozouet - MNHN)]



Planche 20

Figs 1a-1b, 2 Cerithiopsis eopachus n sp. p. 47[1a-1b (paratype), 1a (x 133), 1b (holotype) : H= 3 mm ; 2 : H= 2,85 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 3-4 Triphora (s. l.) papaveracea (Benoist, 1874) p. 50[3 : H= 6,3 mm, 4 : H= 4,1 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Fig. 5 Triphora (s. l.) nodosoplicata (Benoist, 1874) p. 50[5 : H= 6 mm ; 3 (x 135) (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]



Planche 21

Protoconques de Triphoridae (x 135)

Fig. 1 Inella cf. fritschi (von Koenen, 1882) p. 51Figs 2, 4 Triphora (s. l.) papaveracea (Benoist, 1874) p. 50Fig. 3 Triphora (s. l.) nodosoplicata (Benoist, 1874) p. 50

[coll. Favia & Lozouet - MNHN]



Planche 22

Figs 1a-1c Kestocenebra striaeformis (Michelotti, 1841) p. 55[H= 32 mm (coll. Lesport)]Figs 2a-2b Ocenebra excoelata Cossmann & Peyrot, 1924 p. 56[H= 22 mm (coll. Lesport)]Figs 3a-3b, 4, 5a-b Ocenebra umbilicina Cossmann & Peyrot, 1924 p. 58[3a-3b : H= 17,5 mm ; 4 : H= 21 mm ; 5a-5b : H= 21 mm - (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 6a-6b, 7a-7b Ocenebra suberinacea (Basterot, 1825) p. 56[6a-6b : H= 32 mm (coll. Lesport) ; 7a-7b : H= 30 mm (syntype de O. sacyi Cossmann & Peyrot) coll. de Sacy -MNHN]



Planche 23

Figs 1, 2a-2b, 3, 4a-4b, 5a-5b Ocenebra sublavata (Basterot, 1825) p. 57[1 : H= 25 mm, 2a-2b : H= 23 mm, 4a-4b : H= 30 (coll. Renard) ; 3 : H= 26 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN) ;5a-5b : H= 35 mm (coll. Lesport)]Figs 6a-6b, 7 Ocenebra cf. cazeauxi Cossmann & Peyrot, 1924 p. 56[6a-6b : H= 11,7 mm ; 7 : H= 15,5 mm (coll. Lesport)]Figs 8a-8b Ocenebra lassaignei (Basterot, 1825) p. 56[H= 20 mm (coll. Lesport)]



Planche 24

Fig. 1 Attiliosa villae (Michelotti, 1847) p. 54[H= 12 mm (coll. Lesport)]Figs 2a-2b Pterynotus perlongus (Bellardi, 1872) p. 54[H= 30 mm (coll. Daney)]Figs 3a-3b, 4 Favartia cf. suboblonga (d'Orbigny, 1852) p. 54[H= 11 mm, Meilhan (Vives), (coll. Favia & Lozouet - MNHN) ; 4 (Lariey) : H= 14 mm (coll. Lesport)]Figs 5a-5b Vitularia linguabovis (Basterot, 1825) p. 58[H= 44 mm (coll. Lesport)]Figs 6a-6b Jaton dufrenoyi (Grateloup, 1847) p. 55[H= 38 mm (coll. Lesport)]Figs 7a-7b Phyllocoma michelottii (Bellardi, 1872) p. 59[H= 28 mm (coll. Renard)]



Planche 25

Fig. 1 Aspella subanceps (d'Orbigny, 1852) p. 53[H= 10 mm (coll. Lesport)]Figs 2a-2b, 3 Muricopsis crassicosta (Benoist, 1874) p. 55[2a-2b : 18 mm (coll. Lesport) ; 3 : H= 15 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 4a-4b Trachypollia granifera (Bellardi, 1872) p. 59[H= 9,4 mm (coll. Lesport)]Figs 5a-5b Morula (s. l.) cf. bellardii (Hoernes & Auinger, 1890) p. 59[H= 10,4 mm (coll. Lesport)]Figs 6a-6b Orania fischeri (Benoist, 1874) p. 58[H= 13,5 mm (coll. Lesport)]Figs 7a-7b Ergalatax cf. seraphinae (Boettger, 1901) p. 58[H= 10 mm (coll. Lesport)]Fig. 8 Coralliophila burdigalensis (Tournouër, 1874) p. 60[H= 17 mm (coll. Lesport)]Figs 9a-9b Thais calcarata (Grateloup, 1834) p. 59[H= 30 mm (coll. Lesport)]Fig. 10 Thais pluriplicata (Cossmann & Peyrot, 1924) p. 59[H= 26 mm (coll. Lesport)]



Planche 26

Figs 1a-1b Cantharus cancellarioides (Basterot, 1825) p. 60[H= 16 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 2a-2b Cantharus andrei (Basterot, 1825) p. 60[H= 24 mm (coll. Lesport)]Figs 3a-3b Euthria sp. p. 60[H= 14,2 mm (coll. Lesport)]Figs 4a-4b Dorsanum lineolatum (Grateloup, 1834) p. 61[H= 23 mm (coll. Lesport)]Figs 5a-5b, 6a-6b, 7a-7b Dorsanum baccatum (Basterot, 1825) p. 61[6a-6b : H= 20 mm (coll. Lesport). 7a-7b : H= 23 mm ; 8a-8b : H= 19 mm - (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 8a-8b, 10a-10b Nassarius aquitanicus Mayer, 1858 p. 62[8a-8b : H= 10 mm (coll. Lesport) ; 10a-10b : H= 8,3 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Fig. 9 Dorsanum plicatum (Grateloup, 1847) p. 61[H= 11 mm (coll. Lesport)]Figs 11a-11b Cyllene desnoyersi (Basterot, 1825) p. 61[12a-12b : H= 12 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]



Planche 27

Figs 1a-1b, 2a-2b Melongena cornuta (Agassiz, 1843) p. 62[1a-1b : H= 85 mm (coll. Renard) ; 2a-2b : H= 55 mm (coll. Lesport)]Figs 3a-3b Volema tarbeliana pyrulata (Bellardi & Michelotti, 1840) p. 63[H= 68 mm (coll. Balauze)]



Planche 28

Figs 1a-1b, 2, 3 Melongena lainei (Basterot, 1825) p. 62[1a-1b : H= 70 mm (coll. Favia & Lozouet ; 2 : H= 60 mm (coll Renard) ; 3 : H= 70 mm (coll. Renard)]Fig. 4 Latirulus coarctatus (Michelotti, 1847) p. 63[H= 21 mm (coll. Lesport)]Figs 5a-5b Pleuroploca michelotiana (Grateloup, 1847) p. 63[H= 68 mm (coll. Lesport)]Figs 6a-6c Costoanachis terebralis (Grateloup, 1834) p. 63[H= 6,4 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 7a-7b Retizafra rissoides (Grateloup, 1834) p. 64[H= 11 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Fig. 8 Mitrella sp. p. 64[8 : H= 9,7 mm (coll. Lesport)]Figs 9a-9c Mitrella aquitanica (Peyrot, 1925) p. 64[H= 12 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]



Planche 29

Figs 1a-1c Anazola clavula (Lamarck, 1810) p. 66[H= 27 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Fig. 2 Agaronia plicaria (Lamarck, 1810) p. 66[H= 19 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Fig. 3 Olivella nilotida (Duclos, 1840) p. 66[H= 16 mm (coll. Lesport)]Figs 4a-4c Gibberula subovulata (d'Orbigny, 1852) p. 65[H= 5 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 5a-5b Gibberula sp. p. 65[H= 2,3 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Fig. 6 Volvarina tumulensis Lozouet, 1998 p. 65[H= 3,7 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN]Figs 7a-7b Tudicla rusticula (Basterot, 1825) p. 64[H= 68,6 mm (coll. Daney)]Fig. 8 Morum (Oniscidia) variolosum (Grateloup, 1834) p. 64[H= 20 mm (coll. Lesport)]f ig. 9 Costellaria semiplicata (Peyrot, 1928) p. 65[H= 12 mm (coll. Lesport)]Fig. 10 Mitra dufresnei (Basterot, 1825) p. 65[H= 19 mm (coll. Lesport)]Fig. 11 Mitra basteroti (Mayer, 1891) p. 65[H= 18,4 mm (coll. Lesport)]Fig. 12 Mitra incognita (Basterot, 1825) p. 65[H= 19 mm (coll. Lesport)]Figs 13-14 Scabricola brevispira (Bellardi, 1887). p. 66[13 : H= 13 mm (coll. Lesport) ; 14 : H= 18,4 mm (coll. Dudon), Meilhan "Vives"]Figs 15a-15b Costellaria miocenica (Peyrot, 1928) p. 65[H= 24 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]



Planche 30

Figs 1a-1b Ventrilia sp. p. 67[H= 11 mm (coll. Renard)]Figs 2a-2b Aphera bronni (Bellardi, 1841) p. 67[H= 19 mm (coll. Lesport)]Figs 3a-3b Crassispira daguini Peyrot, 1931 p. 68[3a-3b : H= 15,5 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Fig. 4 Pleurotomoides subcostellatus (d'Orbigny, 1852) p. 70[H= 15 mm (coll. Lesport)]Figs 5a-5b, 6 Bela elegantissima (Peyrot, 1931) p. 69[5a-5b : H= 8,4 mm ; 6 : H= 6 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 7a-7b Bela burdigalina (Peyrot, 1931) p. 69[H= 5,7 mm (coll. Lesport)]Figs 8a-8b Raphitoma sp. p. 70[H= 10 mm (coll. Lesport)]Fig. 9a-9b Andonia cf. degrangei (Cossmann, 1895) p. 70[H= 5,2 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Fig. 10 Raphitoma pulchra (Peyrot, 1931) p. 70[7 : H= 8 mm (coll. Lesport) ; 7 : H= 6,4 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Fig. 11 Agathotoma cf. subfoliata (Boettger, 1902) p. 69[H= 4,5 mm (coll. Lesport]Figs 12a-12c Clavatula evoluta (Mayer-Eymar, 1891) p. 68[H= 17 mm (coll. Lesport)]Fig. 13 Genota ramosa (Basterot, 1825) p. 70[H= 33 mm (coll. Lesport)]



Planche 31

Figs 1a-1b, 2 Conus trigonulus Grateloup, 1835 p. 69[1a-1b : H= 39,4 mm (coll. Lesport) ; 2 : H= 32,3 mm (coll. Renard)]Fig. 3 Conus subalsionus d'Orbigny, 1852 p. 68[H= 34 mm (coll. Lesport)]Figs 4a-4b, 5, 6 Conus basteroti Mayer-Eymar, 1891 p. 68[4a-4b : H= 60 mm ; 5 : H= 45 mm ; 6 : H= 65 mm (coll. Lesport)]Figs 7a-7b Hemiconus granularis (Borson, 1820) p. 69[H= 21 mm (coll. Lesport)]Figs 8a-8b Conus cf. berghausi Michelotti, 1847 p. 68[H= 51 mm (coll. Renard)]Fig. 9 Terebra pseudopertusa Peyrot, 1931 p. 71[H= 39 mm (coll. Lesport)]Fig. 10 Hastula subcinerea (d'Orbigny, 1852) p. 71[H= 17 mm (coll. Lesport)]Fig. 11 Strioterebrum basteroti (Nyst, 1845) p. 71[H= 18 mm (coll. Lesport)]



Planche 32

Figs 1a-1b, 2 Tomura pacheia n. sp. p. 72[1a (x 256), 1b Paratype (MNHN, leg. Renard) : Dmax= 1,6 mm ; 2 (holotype) : H= 1,7 mm, (coll. Favia & Lozouet- MNHN)]Figs 3, 4a-4b Rotostoma duvergieri (Cossmann & Peyrot, 1917) p. 71[3 (x 58), 4a (x 294), 4b (x 67), (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]



Planche 33

Figs 1, 2a-2b Orbitestella plicatella (Cossmann, 1888) p. 72[1 : Dmax= 1,4 mm ; 2a : Dmax= 0,54 mm ; 2b (x 346), (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 3, 4a-4b Xenoskenea buccinata n. sp. p. 72[3 (holotype) : Dmax= 1,16 mm ; 4a (x 50), 4b (x 366), (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]



Planche 34

Figs 1a-1b Chrysallida degrangei (Cossmann & Peyrot, 1917) p. 75[1a (x 163), 1b : H= 2,64 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Fig. 2 Chrysallida sextona (Cossmann & Peyrot, 1917) p. 75[H= 2,33 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Fig. 3 Ondina cicatricosa n. sp. p. 75[holotype : H= 2,5 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 4a-4b, 5 Ondina girundica n. sp. p. 76[4a (x 148), 4b : H= 1,77 mm ; 5 (holotype) : H= 2,2 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]



Planche 35Figs 1, 2a-2b Murchisonella cf. bezanconi Cossmann, 1892 p. 78[1 (x 259) ; 2a (x78), 2b : H= 1,5 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Fig. 3 Ebala cf. bezanconi (Cossmann & Lambert, 1884) p. 78[H= 2 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 4a-4b Ebala cf. carinata de Folin, 1870 p. 78[4a (x 243), 4b : H= 1,7 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Fig. 5 Akera cf. bullata Müller, 1776 p. 82[vue de la spire (x 10), (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]



Planche 36Figs 1a-1b Architectonica carocollata (Lamarck, 1822) p. 73[Dmax= 14 mm (coll. Lesport)]Figs 2a-2b Nipteraxis cf. misera (Dujardin, 1837) p. 73[H= 6,6 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 3a-3c Pseudotorinia cf. planulata (Grateloup, 1832) p. 73[H= 4 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Fig. 4 Monotigma merignacensis (Cossmann & Peyrot, 1917) p. 77[H= 3,4 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 5a-5b Carinorbis burdigalus (d'Orbigny, 1852) p. 77[H= 8,8 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 6-7 Pyramidella gratteloupi (d'Orbigny, 1852) p. 74[6 : H= 12 mm (coll. Lesport) ; 7 : H= 9,7 mm (coll. Renard)]Fig. 8 Turbonilla diastomoides (Cossmann & Peyrot, 1917) p. 76[H= 14 mm (coll. Lesport)]Fig. 9 Turbonilla spiculoides Cossmann & Peyrot, 1917 p. 77[H= 4,8 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Fig. 10 Turbonilla avitensis Cossmann & Peyrot, 1917 p. 77[H= 4,7 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Fig. 11 Eulimella sp. 1 p. 77[H= 7 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Fig. 12 Eulimella gamachotensis Cossmann & Peyrot, 1917 p. 77[H= 4,7 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Fig. 13 Eulimella sp. 2 p. 77[H= 4,2 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Fig. 14 Turbonilla raphidiopsis Cossmann & Peyrot, 1917 p. 77[H= 2,3 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Fig. 15 Chrysallida sacyi (Cossmann & Peyrot, 1917) p. 75[H= 2,5 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Fig. 16 Chrysallida degrangei (Cossmann & Peyrot, 1917) p. 75[H= 3 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 17a-17b Bullina cf. benoisti (Peyrot, 1932) p. 80[H= 14 mm (coll. Lesport)]Figs 18a-18b Pupa striatella (Grateloup, 1828) p. 80[H= 6,4 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Fig. 19 Acteon punctulatus (Férussac, 1822) p. 79[H= 4 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Fig. 20 Acteon sp. p. 79[H= 3,7 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]



Planche 37

Fig. 1 Ringicula minor (Grateloup, 1838) p. 80[H= 4 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 2a-2b Cylichna sublaevis (d'Orbigny, 1852) p. 81[H= 9 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Fig. 3 Haminoea saucatsensis (Peyrot, 1932) p. 81[H= 8 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Fig. 4 Cylichnella vasatensis (Cossmann, 1895) p. 81[H= 3,5 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Fig. 5 Acteocina lajonkaireana (Basterot, 1825) p. 80[H= 3,8 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Fig. 6 Scaphander tarbelliana (Grateloup, 1837) p. 81[H= 8 mm (coll. Lesport)]Figs 7a-7b Julia girondica Cossmann & Peyrot, 1914 p. 83[Dmax= 3 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 8a-8b Williamia merignacensis (Cossmann & Peyrot, 1919) p. 84[Dmax= 2,9 mm (coll. Favia & Lozouet - MNHN)]Figs 9a-9b Siphonaria vasconiensis Michelin, 1831 p. 84[Dmax= 28 mm (coll. Lesport)]Figs 10a-10b Siphonaria bisiphites Michelin, 1831 p. 84[Dmax= 18 mm (coll. Gourgues)]Fig. 11 Proplecotrema marginalis (Grateloup, 1828) p. 85[H= 6 mm (coll. Lesport)]Fig. 12 Ellobium (s.l.) sp. p. 85[H= 4 mm (coll. Renard)]Fig. 13 Lymnaea subfragilis (d'Orbigny, 1852) p. 85[H= 17 mm (coll. Lesport)]Fig. 14 Anisus balizacensis Peyrot, 1932 p. 85[Dmax= ? (coll. Lesport)]Fig. 15 Planorbarius solidus (Thomae, 1845) p. 85[Dmax= 11,5 mm (coll. Lesport)]Fig. 16 Triptychia maxima (Grateloup, 1828) p. 86[H= 6,5 mm (coll. Lesport)]




INDEX

Les noms valides sont indiqués en carcatères gras, ainsi que les renvois aux planches et aux figures.Valid names and references to illustrations are in bold.

Aaciculare cf. Pelycidion ...... p. 31,34aciculare Pelycidion ................. p. 34aciculina Terebra ..................... p. 71Aclididae ................................. p. 53Acmaeidae ............................... p. 15Acteocina lajonkaireana p. 80 ; pl. 37Acteon pinguis ........................... p. 79Acteon punctulatus ........ p. 79 ; pl. 34Acteon sp. .................................. p. 79Acteonidae................................. p. 79Acteopyramis.............................. p. 78acuelata Mancinella ................... p. 59acuminata Asteracmea ............... p. 15acuminata Helcion ..................... p. 15acuminata Oliva ......................... p. 66acuminata Patella ...................... p. 15acuminata Terebra ..................... p. 71acuta Cyclostoma ....................... p. 35adansoni Cerithium .................... p. 23adansoni Trochus ....................... p. 18adansonii Vermetus .................... p. 29Adelactaeon ......................................p. 78Adeorbidae ......................................p. 33aequigraniferum var. calculosum Ceri-

thium (Chondrocerithium).... p. 23affinis Voluta .............................. p. 64Agaronia plicaria........... p. 66 ; pl. 29Agathotoma cf. subfoliata

................................. p. 69 ; pl. 30Akera cf. bullata ............ p. 82 ; pl. 35Akeridae.................................... p. 82albus Polinices ........................... p. 44alligata Raulinia......................... p. 78alsiosus Conus ........................... p. 68alucoides Cerithium ................... p. 23Alvania andraldensis ..... p. 31 ; pl. 12Alvania lachesis............ p. 31 ; pl. 12Alvania mariae ............. p. 31 ; pl. 12Alvania sp. ................................ p. 32Alvania venus ............... p. 32 ; pl. 12Amamibalcis sp. ......................... p. 53Amathinidae.............................. p. 77Amathinoides............................. p. 77Amblyacrum .............................. p. 69Ammonicera cf. rota.................. p. 73amphibola var. aquitanica Gibbula

............................................. p. 18Ampullinidae............................. p. 21ampullosa var. tigrina Natica ..... p. 43amygdalum Cypraea .................. p. 42Anazola clavula ............. p. 66 ; pl. 29anceps Ranella ........................... p. 53ancyliformis Capulus.................. p. 20ancyliformis Pileopsis ................ p. 20ancyliformis Plesiothyreus ......... p. 20Andonia cf. degrangei ... p. 70 ; pl. 29andraldensis Alvania.................. p. 31andreaei andreaei Hydrobia ...... p. 35andreaei degrangei Hydrobia .... p. 35andreaei elongata Hydrobia....... p. 35andreaei Hydrobia (Peringia) p. 35,37andrei Buccinum ........................ p. 60andrei Cantharus ....................... p. 60andrei Nassa .............................. p. 60andrei Tritonidea ....................... p. 60anguinus miocaenicus Tenagodes

............................................. p. 28angulifera Littorina .................... p. 30angulifera Phasianella ............... p. 30angusta Pleurotoma ................... p. 69angyglossa Natica ...................... p. 43

Anisus balizacensis........ p. 85 ; pl. 37annularia Cypraea ..................... p. 41annularia var. brocchi Cypraea . p. 41annulus Cypraea ........................ p. 41antiqua Triptychia..................... p. 86antiquum Cyclostoma................. p. 30aperta Bulla ............................... p. 81apertura Patella ......................... p. 17aperturale Eutritonium (Sassia) . p. 46Aphera bronni ............... p. 67 ; pl. 30apiceproducta apiceproducta Pseudo-

zonaria................................. p. 40apiceproducta daxensis Pseudozona-

ria ........................................ p. 40apiceproducta Fossacypraea...... p. 40apiceproducta var. fabagina Cypraea

(Bernayia)............................ p. 40Apiocypraea subamygdalum ..... p. 42Aporrhaidae.............................. p. 36Aporrhais meridionalis ............ p. 36aquense Dorsanum..................... p. 61aquensis Bela ............................. p. 70aquensis Capulus ....................... p. 40aquensis Daphnella (Raphitoma) p. 69aquensis Fissurella .................... p. 17aquensis Melanopsis .................. p. 22aquensis Neritina ....................... p. 20aquensis Phasianella (Steganompha-

lus)....................................... p. 19aquensis Pileopsis ...................... p. 40aquensis Sigaretus ..................... p. 45aquensis Tricolia........................ p. 19aquensis var baccatum Buccinump. 61aquensis var. basterotina Oliva .. p. 66aquensis var. terebralis Turritella

............................................ p. 29aquitanensis Cantharus.............. p. 60aquitanensis Tritonidea.............. p. 60aquitanica Astraea (Uvanilla) .... p. 18aquitanica Erato (Eratopsis) ...... p. 42aquitanica Gibbula (Colliculus) . p. 18aquitanica Mitrella..................... p. 64aquitanica mut. turonensis Colum-

bella (Alia)........................... p. 64aquitanica Nassa (Phrontis) ....... p. 62aquitanica Natica ....................... p. 43aquitanica Perna........................ p. 10aquitanica Rissoina (Zebina)...... p. 33aquitanica Stenothyra ................ p. 36aquitanica Stenothyroides .......... p. 36aquitanica var. desnoyersi Cyllene

............................................ p. 61aquitanica Zebina ...................... p. 33aquitanicum Astralium (Uvanilla)

............................................ p. 18aquitanicum Buccinum ............... p. 62aquitanicum Eutritonium (Lampusia)

............................................ p. 46aquitanicus Colliculus................ p. 18aquitanicus Conus ......................... p. 68aquitanicus Nassarius ................ p. 62aquitaniensis Cerithiopsis (Dizoniop-

sis) ....................................... p. 49aquitaniensis Fasciolaria (Pleuroplo-

pa) ....................................... p. 63araonis Clanculus (Clanculopsis)p. 18araonis Monodonta .................... p. 18araonis Trochus ......................... p. 18Architectonica carocollata

................................ p. 73 ; pl. 36Architectonica simplex subconoidea

............................................ p. 73Architectonicidae...................... p. 73

arcularia Buccinum ....................p. 61arcusferens var. an anom. arenarius

Vermetus (Lemintina)............p. 30arenaria Serpula .........................p. 30arenarius cf. Vermetus ................p. 30Aspella subanceps ......... p. 53 ; pl. 25asperulum Bittium .......................p. 22Asteracmea acuminata.... p. 15 ; pl. 1Astralium aquitanicum ... p. 18 ; pl. 5Athleta ficulina...........................p. 64atomus cf.Omalogyra..................p. 74atomus Homalogyra....................p. 74Attiliosa villae................ p. 54 ; pl. 24aturense Crommium....................p. 21aturensis Bythinia .......................p. 35aturensis Hydrobia (Tournoueria)

.............................................p. 35aturensis Megalomphalus ...........p. 39aturensis Micreschara (Macrompha-

lina) ......................................p. 39aturensis var. terebralis Turritella

.............................................p. 29Atys duvergieri ...........................p. 82Atydidae.....................................p. 81augustae Cantharus (Pollia) .......p. 59auriculatus Planaxis ..................p. 24auris-midae Voluta......................p. 85avitensis mut. saucatsensis Natica

.............................................p. 43avitensis Nassa (Hinia?) .............p. 61avitensis Ocenebra (Ocenebrina)p. 56avitensis Turbonilla ....................p. 76azonea Stomatia ..........................p. 39

Bbaccata Cyllene (Cyllenina) ........p. 61baccatum Buccinum ....................p. 61baccatum Cerithium....................p. 26baccatum Dorsanum ...................p. 61Bacteridium ................................p. 78balizacensis Amnicola (Amnicola)

.............................................p. 35balizacensis Anisus .....................p. 85balizacensis Mercuria .................p. 35balizacensis Valvata....................p. 35banoni Caecum ...........................p. 34barrandei Erato (Eratopis) .........p. 42basteroti Asthenotoma.................p. 70basteroti Conus (Chelyconus) .....p. 68basteroti Mitra ............................p. 65basteroti Modulus .................p. 4,9,22basteroti Murex...........................p. 57basteroti Pleurotoma...................p. 70basteroti Proto ............................p. 28basteroti Rissoina .......................p. 32basteroti Strioterebrum ...............p. 71basteroti Terebra (Myurella).......p. 71basteroti Tomopleura ..................p. 70basterotina Oliva ........................p. 66basterotina Olivancillaria (Agaronia)

.............................................p. 66basterotinum var. calculosum Ceri-

thium (Chondrocerithium) ....p. 23bastowi Cyclostrema ...................p. 72Batillariidae ...............................p. 27Batillaria? pupaeformis .. p. 27 ; pl. 8beaumonti Ocenebra ...................p. 56beaumontii Murex .......................p. 56Bela burdigalina............ p. 69 ; pl. 30Bela elegantissima ....... p. 69 ; pl. 30bella Scaliola ..............................p. 25bellardii Cassis ............................ p. 7bellardii cf. Morula (s. l.)............p. 59

bellardii Morula..........................p. 59bellardii Pollia............................p. 59benoisti Actaeonidea ...................p. 80benoisti cf. Bullina ......................p. 80benoisti Daphnella (Raphitoma) .p. 69benoisti Haliotis (Sulculus) .........p. 16benoisti Hyalosiria......................p. 20benoisti Natica (Lunatia) ............p. 44benoisti Oliva (Olivella)..............p. 66benoisti Polinices ........................p. 44benoisti Triphora ........................p. 50benoisti var. Triphora .................p. 50berghausi cf. Conus ....................p. 68berghausi Conus .........................p. 68bezançoni Anisocycla..................p. 78bezanconi cf. Ebala.....................p. 78bezanconi cf. Murchisonella .......p. 78bezanconi Ebala..........................p. 78bezançoni Truncatella.................p. 78biangulata Gibbula (Colliculus)..p. 18bicarinata Scalaria .....................p. 53bicatenata var. desmarestina Turri-

tella ......................................p. 29Bicatillus deformis .................... p. 38bicaudata Ocenebra....................p. 56bicaudata Vitrinella (Tomura).....p. 71bidentata Bulla............................p. 81bidentata Terebralia ..................p. 26bidentatum Cerithium .................p. 26bifasciatum Sinum.......................p. 45bilineata Cerithium .....................p. 47bilineatus Triforis .......................p. 50bimonilifera cf. Nodiscala...........p. 53bimonilifera Opalia (Nodiscala) .p. 53bimonilifera Pliciscala (Nodiscala)

.............................................p. 53bisinuata var. desnoyersi Cyllenep. 61bisiphites Siphonaria ..................p. 84bi-striata Pileopsis ......................p. 40bistriatus Capulus .......................p. 40bistriatus Hipponyx.....................p. 40bistriatus Pileopsis......................p. 40bisulcatum Cyclostoma ...............p. 30Bittium larrieyense.......... p. 22 ; pl. 6blainvillei Murex.........................p. 55bonelli Strombusbonellii Fusus .............................p. 70bonellii Strombus (Canarium).....p. 37bonellii Strombus (Strombus) ......p. 37borsoni Pleurotoma ....................p. 68bottae Pleurotoma.......................p. 68Brachystomia occidentalis

..................................p. 74 ; p. 79Brachystomia physetum n. sp.

..................................p. 74 ; p. 79Brachystomia turritella . p. 75 ; pl. 79brazieri Ethalia...........................p. 71breigneti Vermetus (Elliptovermetus) .

.............................................p. 29brevicaput Dizoniopsis................p. 49breviculus Murex ........................p. 54brevis Scissurella ........................p. 17brevispira Mitra..........................p. 66brevispira Oliva (Olivella) ..........p. 66brevispira Scabricola..................p. 66brocchi Cypraea .........................p. 41brocchi expansa Zonarina (Prozona-

rina) .....................................p. 41brongniartii Murex .....................p. 56bronni Aphera.............................p. 67bronni Merica (Aphera) ..............p. 67bronnii Cancellaria.....................p. 67bronnii Murex .............................p. 56


brusinai Dalliella ....................... p. 24buccinalis Bulimus ..................... p. 33buccinalis Rissoa........................ p. 33buccinalis Stosicia...................... p. 33buccinalis Stossicia .................... p. 33buccinata n. sp. Xenoskenea ..... p. 72buccinea Ringicula ..................... p. 80Buccinidae................................. p. 60buccinoides Fusus ...................... p. 68buccinoides Pleurotoma ............. p. 68bucklandi Callistoma (Strigosella) .....

............................................. p. 18bucklandi Jujubinus.................... p. 18bucklandi Trochus ...................... p. 18bulimoides Acteon ...................... p. 75bulimoides Odontostomia ........... p. 75bulimoides Rissoa....................... p. 31bullata cf. Akera......................... p. 82bullata Epitonium ....................... p. 52bullatum Epitonium (Globiscala) p. 52Bullidae ..................................... p. 81Bullina cf. benoisti ....... p. 80 ; pl. 36burdigalensis cf.Paroxystele....... p. 18burdigalensis Coralliophila........ p. 60burdigalensis Cypraea ............... p. 42burdigalensis Euthriofusus ......... p. 60burdigalensis Fasciolaria........... p. 60burdigalensis Fossarus (Phasianema)

............................................. p. 77burdigalensis Fusus.................... p. 60burdigalensis Natica .................. p. 43burdigalensis Oxystele ............... p. 18burdigalensis Paroxystele .......... p. 18burdigalensis Trivia (Trivia) ...... p. 42burdigalica Eulimella................. p. 77burdigalica mut. tournoueri Littori-

nopsis................................... p. 30burdigalica var. basterotina Oliva......

............................................. p. 66burdigalina Bela......................... p. 69burdigalina Daphnella (Raphitoma) ...

............................................. p. 69burdigalus Carinorbis ................ p. 77burdigalus Turbo........................ p. 77Bursa tuberosa .............. p. 45 ; pl. 19

Ccabanensis Meioceras ................ p. 34Caecidae.................................... p. 34Caecum banoni..... p. 34 ; p. 31 pl. 14Caecum fibratum.. p. 34 ; p. 31 pl. 14Caecum larieyense n. sp.

................................. p. 34 ; pl. 14calcar Turbo .............................. p. 18calcarata Cymia ......................... p. 59calcarata Ricinula ...................... p. 59calcarata Thais .......................... p. 59calcaratum var. margaritaceus Ceri-

thium.................................... p. 26calcaratum Sistrum .................... p. 59calculosum Cerithium (Chondroceri-

thium) .................................. p. 23calculosum Cerithium (Thericium) .....

............................................. p. 23callomarginata Clypidella .......... p. 17Calyptraeidae ........................... p. 38Calyptraea depressa...... p. 38 ; pl. 15Campanile pseudoobeliscus

................................. p. 22 ; pl. 10Campanilidae............................ p. 22canaliculata Pleurotoma (Hemipleu-

rotoma) ................................ p. 67canaliculatus Sigaretus .............. p. 45Cancellariidae ........................... p. 67cancellarioides Buccinum .......... p. 60cancellarioides Cantharus.......... p. 60cancellarioides Nassa ................ p. 60cancellarioides Tritonidea.......... p. 60cancellata Oniscia...................... p. 64cancellata Sandbergeria............. p. 25canejanense Bittium ................... p. 22canrena Natica........................... p. 43

cantharoides Hadriana (Pseudomu-rex) ...................................... p. 56

Cantharus andrei ......... p. 60 ; pl. 26Cantharus aquitanensis............. p. 60Cantharus cancellarioides

................................ p. 60 ; pl. 26Cardiolucina ? ........................... p. 14Caribiella................................... p. 55carinata cf. Ebala ...................... p. 78carinata Eulimella...................... p. 78carinata Scissurella.................... p. 17Carinorbis burdigalus ... p. 77 ; pl. 36carmatus Vermetus..................... p. 29carocollata Architectonica ......... p. 73carocollatum Solarium ............... p. 73Cassidae (Phaliinae) ................. p. 45castanea Ervilia ...................... p. 6,14castexi Aporrhais ....................... p. 37cathedralis Protoma...............p. 28,29cathedralis Turritella ................. p. 28catticum Cerithium..................... p. 22catticum Telescopium................. p. 22Cavoliniidae .............................. p. 83cazeauxi cf.Ocenebra ................. p. 56cazeauxi Ocenebra..................... p. 56Cepaea suglobosa ...................... p. 85Cerithiella sp. ................ p. 47 ; pl. 19Cerithiopsidae........................... p. 47Cerithiopsis eopachus n. sp.

................................ p. 47 ; pl. 20Cerithiopsis cf. pseudomanzonii

................................ p. 47 ; pl. 19Cerithiopsis vignali......... p. 47 ; p. 48Cerithiidae ................................ p. 22Cerithium calculosum .... p. 23 ; pl. 6Cerithium ferelaeve ........ p. 23 ; pl. 6Cerithium peyroti ............ p. 23 ; pl. 6cestasensis var. excoelata Ocenebra

............................................ p. 56Charonia lampas ventricosa...... p. 46charpentieri Potamides (Telescopium)

............................................ p. 22cheilotoma Orania ..................... p. 58chesapeakensis Buccinofus......... p. 63Chevallieria sp........... p. 34,35 ; p. 39Chicoreus dujardini.................. p. 54childreni Pleurotoma.................. p. 67chinensis Patella ........................ p. 38Chrysallida degrangei

........................... p. 75 ; pl. 34,36Chrysallida interita.................... p. 75Chrysallida sacyi ........... p. 75 ; pl. 36Chrysallida sextona ...... p. 75 ; pl. 34cicatricosa n. sp Ondina............ p. 75cimex Rissoa ..........................p. 31,32cinctum Cerithium...................... p. 26cinctus Tympanotonos ................ p. 26cinerea Terebra.......................... p. 71Circulus subcirculus

....................... p. 33 ; p. 31 pl. 11Cirsope ................................ p. 35Cirsotrema crassicostatum

................................ p. 51 ; pl. 19Cirsotrema subspinosum .......... p. 52cithara Oniscia .......................... p. 64citricus Trophon (Pascula) ......... p. 59Clanculus (Clanculopsis) araonis

.................................. p. 18 ; pl. 4clathrata Bulla ........................... p. 80clathrata Bullinella (Cylichnina) p. 81clathrata Clathrella.................... p. 77clathrata Cylichna...................... p. 80Clathromangelia ........................ p. 69Clausilia maxima ....................... p. 86Clausiliidae ............................... p. 86Clavatula evoluta........... p. 68 ; pl. 30clavula Anazola.......................... p. 66clavula Oliva.............................. p. 66clavula Olivella (Lamprodoma).. p. 66clavula Turbonilla...................... p. 75clypeata Fissurella ..................... p. 17clypeata Fissurellidea (Pupilia) . p. 17

clypeata Lucapinella ...................p. 17coarctata Turbinella ...................p. 63coarctatus Lathyrus (Lathyrulus) p. 63coarctatus Latirulus ....................p. 63cochleare Crepidula....................p. 38cochlearella Rissoa ................p. 32,33cochlearella subcancellata Rissoa

.............................................p. 33cochlearella var B Rissoa ...........p. 32cochlearella var D Rissoa ...........p. 33cochlearis mut. gibbosa Crepidula

(Crypta) ................................p. 38Cochliolepis sp. ..........................p. 33Cochliolepis trigonostoma..........p. 33coelatus Fusus ............................p. 56Colliculus aquitanicus..... p. 18 ; pl. 3colligata var. intortus Vermetus ..p. 30Columbellidae............................p. 63communis Chemnizia ..................p. 75communis Scalaria......................p. 52compacta Daphnella ...................p. 69compressa Ampullaria ................p. 21compressa Ampullina (Cernina)..p. 21compressa Globularia.................p. 21compressa Natica........................p. 21condita Pyrula.............................p. 46conditus Ficus .............................p. 46confusa Amnicola........................p. 35conica Emarginula......................p. 17Conidae (Clathurellinae)...........p. 70Conidae (Coninae) .....................p. 68Conidae (Daphnellinae).............p. 70Conidae (Mangeliinae) ..............p. 69Conocerithium ............................p. 23Conus basteroti ............. p. 68 ; pl. 31Conus cf. berghausi ..... p. 68 ; pl. 31Conus subalsionus ........ p. 68 ; pl. 31Conus trigonulus........... p. 69 ; pl. 31convolutus Triton ........................p. 58Coralliophilidae .........................p. 60Coralliophila burdigalensis

................................ p. 60 ; pl. 25corneum Murex...........................p. 60corneus Helix..............................p. 85cornigera var lainei Pyrula .........p. 62Cornirostridae ...........................p. 71cornu cornu Coretus ...................p. 85cornu solidus Planorbis (Coretus)p. 85cornucopiae Patella ....................p. 40cornuta Melongena .....................p. 62cornuta Pyrula ............................p. 62cornutus Fusus ............................p. 62cornutus Galeodes (Galeodes) ....p. 62coronata Clavatula .....................p. 68Coronia cypris ............................p. 67corrugatum Cerithium.................p. 26corrugatum Triton.......................p. 46costaria Calyptraea (Trochatella) p. 39costaria Calyptraea (Trochita)....p. 39costaria Fissurella ......................p. 17costaria Patella...........................p. 84costaria Trochita.........................p. 39costarium Infundibulum ..............p. 39costata Coralliophila ..................p. 60costata Nerita .............................p. 77costata Purpura ..........................p. 77costata Scissurella ......................p. 16costata Truncatella .....................p. 30costata var. costellata Alaba .......p. 25Costellaria miocenica.... p. 65 ; pl. 29Costellaria semiplicata .. p. 65 ; pl. 29Costellariidae.............................p. 65costellata Alaba ..........................p. 25costellata Pleurotoma .................p. 70costellata Rissoa .........................p. 25costellatus Bulimus .....................p. 25Costoanachis terebralis p. 63 ; pl. 28costulata Turbonilla ....................p. 76crassa Charonia..........................p. 46crassicosta Jania ........................p. 55crassicosta Muricopsis (Risomurex)

.............................................p. 55

crassicostata cf..Scalaria (Cirsotrema)........................................p. 51,52

crassicostata var. fallax Cerithium(Hemicerithium) ...................p. 21

crassicostulifera var. merignacensisSpiniscala .............................p. 52

Crassispira daguini ........p. 68 ; pl. 30Crassispira terebra.....................p. 68crassiuscula Natica.....................p. 43crassiuscula var. tigrina Natica ..p. 43crebistriata Asteracmea ..............p. 16Crepidula cochleare ...... p. 38 ; pl. 15crepidula Crepidula (Janacus)....p. 38cruciatus Trochus .......................p. 18cumulans Xenophora ..................p. 40curta Alvania ..............................p. 31curta Rissoa ................................p. 31curvicosta Murex ........................p. 55curvirostris Rostellaria ...............p. 38cyclopterus Murex (Pteronotus) ..p. 54cyclopterus Murex (Pteropurpura)p. 54cyclopterus Purpurellus ..............p. 54Cylichna clathrata......................p. 80Cylichna sp. ...............................p. 81Cylichna sublaevis .........p. 81 ; pl. 37Cylichna tournoueri ...................p. 81Cylichnella vasatensis ....p. 81 ; pl. 37Cylichnidae ................................p. 80cylindracea Bulla........................p. 80Cyllene desnoyersi..........p. 61 ; pl. 26Cymatiella tritonea........ p. 46 ; pl. 19Cymatium subcorrugatum

.................................p. 46 ; pl. 19Cypraeidae ................................p. 40cypraeola Marginella..................p. 42cypris Coronia ............................p. 67cypris Pleurotoma.......................p. 67Cystiscidae.................................p. 65

Ddaguini Drillia (Crassispira) ......p. 68Dalliella ................................... p. 24Dalliella brusinai .......................p. 24dariae Orbitestella......................p. 73daxensis Zonarina (Pseudozonarina) .

.............................................p. 40declivis balizacensis Planorbis (Gy-

raulus) ..................................p. 85decussata Helix...........................p. 33decussata Varicospira.............p. 7, 15decussatus Jaton .........................p. 55decussatus Murex .......................p. 55deformis Bicatillus ......................p. 38deformis Calyptraea ...................p. 38deformis Crucibulum (Bicatillus) p. 38degrangei Andonia......................p. 70degrangei Chrysallida ................p. 75degrangei Collonia (Circulopsis)p. 19degrangei Cyllene .......................p. 61degrangei Daphnella ..................p. 70degrangei Escoffieria?................p. 27degrangei Homalopoma..............p. 19degrangei Homotoma..................p. 30degrangei Lyria .......................p. 7,15degrangei Metaxia ......................p. 51degrangei Nassa .........................p. 62degrangei Newtoniella? ..............p. 51degrangei Oliva ..........................p. 67degrangei Pyrgulina (Pyrguletta)p. 75degrangei Scaliola ......................p. 25degrangei Terebra ......................p. 71degrangei Turbella (Pusillina) ....p. 32delbosianus Pterynotus ..............p. 4,9delicatula Patella ........................p. 16dentata Rostellaria......................p. 38dentata Rostellaria (Rostellaria) .p. 38dentata Tibia...............................p. 38denticula Gemmula .....................p. 67denticula Pleurotoma (Hemipleuro-

toma) ....................................p. 67depressa Calyptraea ...................p. 38depressa Fissurella .....................p. 17


depressa Reussella ..................... p. 16depressa Scissurella .............. p. 16,17depressa Vaginella ..................... p. 83depressa var.glaucinoides Naticap. 44depressum Infundibulum ............ p. 38derelictus Potamides .................. p. 27derivata var. partitum Cerithium (Se-

mivertagus) .......................... p. 27derivata var. pupaeformis Rhinoclavis

(Semivertagus) ..................... p. 27deshayesi Phorus........................ p. 40deshayesi Xenophora.................. p. 40desmarestina Turritella (Haustator)

............................................. p. 29desmarestina Turritella (Peyrotia)

............................................. p. 29desmoulinsianus Sigaretus ......... p. 44desnoyersi Buccinum.................. p. 61desnoyersi Cyllene ..................... p. 61desnoyersi Nassa........................ p. 61despecta Gyroscala .................... p. 52detmersiana Mangilia................. p. 69detrita Pirenella ......................... p. 51deubeli Odostomia ..................... p. 75dextroversa Triphoris ................. p. 49diadema Buccinum ..................... p. 45diadema Cassis .......................... p. 45diadema var. grateloupi Semicassis

............................................. p. 45Diala.....................................p. 24,25,26Dialidae ..................................... p. 25dianae Acteon ....................................p. 78diaphana Ondina........................ p. 76diastomoides Pyrgostylus ........... p. 76diastomoides Turbonilla ............. p. 76didyma Trachypollia .................. p. 59diemenensis Granulolabiump. 6,13,14diluvian diluviana Jousseaumea . p. 41diluviana Cypraea ...................... p. 41diluviana Jousseaumea............... p. 41diluviana Volema........................ p. 63diluvianus Buccinofusus ............. p. 63diluvianus Fusus......................... p. 63dimidiata Buccinum.................... p. 71Diodora subcostaria ........ p. 17 ; pl. 3disjuncta n. sp Styliferina.......... p. 24dispar Streptochetus .................. p. 4,9distorta Melania ......................... p. 53Dizoniopsis aquitaniensis p. 49; p. 48Dizoniopsis brevicaput

........................ p. 49 ; p. 48 pl. 19dolabrata Trochus ...................... p. 74doliaroides Eutritonium (Lampusia)

............................................. p. 46donaldi Boschistella ................... p. 73Dorsanum baccatum .... p. 61 ; pl. 26Dorsanum lineolatum... p. 61 ; pl. 26Dorsanum plicatum ....... p. 61 ; pl. 26douvillei Julia............................. p. 84dubius Circulus .......................... p. 33duchasteli Neritina ..................... p. 20duclosiana Cypraea (Jenneria) .. p. 42duclosiana duclosiana Crypropterina

............................................. p. 42duclosiana Jenneria (Jenneria) .. p. 42duclosiana Pustularia................. p. 42dufourii fossilis Melanopsis........ p. 22dufourii Melanopsis.................... p. 22dufrenoyi Ceratia ....................... p. 35dufrenoyi Jaton .......................... p. 55dufrenoyi Murex (Inermicosta) ... p. 55dufresnei Melanella.................... p. 53dufresnei Mitra (Mitra) .............. p. 65dufresnei Oliva (Neocylindrus) p. 66,67dufresnei Oliva (Strephona) ....... p. 67dujardini exaquitanicus Chicoreus

................................ p. 54dujardini exaquitanicus Murex (Fa-

vartia) .................................. p. 54dujardini Murex ......................... p. 54dumasi Semicassis ...................... p. 45duminyi Delphinula .................... p. 33

duplicata Terebra....................... p. 71duvergieri Atys ........................... p. 82duvergieri Collonia (Parvirota).. p. 71duvergieri Ocenebra .................. p. 57duvergieri Parvirota................... p. 71duvergieri Ranularia .................. p. 46duvergieri Rotostoma ................. p. 71duvergieri Roxania (Mnestia)..... p. 82

EEbala cf. bezanconi ....... p. 78 ; pl. 35Ebala cf. carinata .......... p. 78 ; pl. 35Ebalidae .................................... p. 78eburnina Fossacypraea .............. p. 41eburnina var annulus Cypraea ... p. 41eburnoides Ampullospira ........... p. 21eburnoides Natica ...................... p. 21eburnoides Pachycrommium ...... p. 21echinata Morula......................... p. 59echinata Turritella ..................... p. 29edentula var. vitulinus Murex ..... p. 58Elachisinidae............................. p. 35elegans Cassis......................... p. 7,15elegans Nerita ............................ p. 30elegans Tectarius .................... p. 7,15elegantissima Bela ..................... p. 69elegantissima Daphnella (Raphitoma)

............................................ p. 69Ellobiidae .................................. p. 85Ellobium (s.l.) sp. .......... p. 85 ; pl. 37elongata Rissoina ....................... p. 32elongata var. cochlearella Rissoa p. 32emarginata Murchisonella ......... p. 78Emarginula cf. squammata

.................................. p. 17 ; pl. 3eolus Buccinum .......................... p. 61eopachus n. sp. Cerithiopsis...... p. 47eopicta Neritina ......................... p. 20Epitonium merignacense p. 52; pl. 19Epitonium rocheri n. sp. p. 52 ; pl. 19Epitonium subscalare.... p. 52 ; pl. 19Epitoniidae................................ p. 51Eratopsis subcypraeola p. 42 ; pl. 16Ergalatax cf. seraphinaep. 58 ; pl. 25erinacea Ocenebra..................... p. 55erinacea Purpura (Tritonalia) .... p. 55erinaceus Murex ....................... p. 55eryna Turritella (Haustator)....... p. 29Eulima (s. l.) sp. ........................ p. 53Eulimella gamachotensis p. 77; pl. 36Eulimella sp.1 ................ p. 77; pl. 36Eulimella sp.2 ................ p. 77; pl. 36Eulimidae .................................. p. 53Eunaticina striatella ...... p. 44 ; pl. 18europaea Cypraea...................... p. 42europea Alvania ......................... p. 31Euthria sp..................... p. 60 ; pl. 26Euthriofusus burdigalensis ....... p. 60evoluta Clavatula ....................... p. 68evoluta Pleurotoma .................... p. 68evolutum Bittium ........................ p. 23exbasteroti Asthenotoma ............ p. 70excavata var. glaucinoides Naticap. 44excisa Favartia .......................... p. 55excoelata Ocenebra (Ocenebrina) p. 56exculptus Cantharus................... p. 60exerta Acteocina......................... p. 80exerta Bullina............................. p. 80expansa Prozonarina ................. p. 41expansa var. brocchi Cypraea (Ber-

nayia)................................... p. 41expansa brocchi Zonarina (Prozona-

rina)..................................... p. 41exquisita Julia ............................ p. 83exsculpta Tritonidea................... p. 60exspectata Circuloscala ............. p. 52exspectata Scala (Circuloscala) . p. 52extinctorium Calyptraea............. p. 38

Ffabagina Cypraea....................... p. 41fallax Cerithium (Hemicerithium) p. 21

fallax Hemicerithium...................p. 21fallax Plesiotrochus.....................p. 21fasciatus Murex...........................p. 56Fasciolariidae ............................p. 63Favartia cf. suboblonga p. 54 ; pl. 24faviai n. sp. Sinum ................p. 44,45femorale Murex...........................p. 46ferelaeve Cerithium.....................p. 23ferelaevigatum mut. raulini Cerithium

(Vulgocerithium)...................p. 23ferussaci Neritina........................p. 20fibratum Caecum.........................p. 34Ficidae........................................p. 46ficulina Voluta.............................p. 64ficulina Volutilithes (Athleta) ......p. 64Ficus conditus ............................p. 46ficus Murex .................................p. 46finlayi Morum .............................p. 65fischeri Escoffieria ......................p. 27fischeri Orania............................p. 58fischeri Pollia..............................p. 58fischeri Tritonidea.......................p. 58fischeriana Homalogyra..............p. 73Fissurella aquensis .....................p. 17Fissurella clypeata......................p. 17Fissurella costaria ......................p. 17Fissurella depressa .....................p. 17Fissurellidae (Emarginulinae)...p. 17Fissurellidae (Diodorinae).........p. 17Fissurellidae (Fissurellinae) ......p. 17fistulosum Cerithium (Gourmya) p. 24fistulosum var geminatum Cerithium

(Gourmya) ............................p. 23flaminea Mitrella ........................p. 64flammulata Oliva ........................p. 66fluctuata Globularia....................p. 21fluviatilis Neritina .......................p. 20fluviatilis Theodoxus ...................p. 20formosa Daphnella......................p. 69fornicata Patella .........................p. 38fortisii Bulla ................................p. 81Fossacypraea apiceproducta

................................ p. 40 ; pl. 16Fossacypraea eburnina . p. 41 ; pl. 16fragilis Lymnaea .........................p. 85fragilis var. terebralis Turritella .p. 29fritschi Cerithium ........................p. 51fritschi Inella...............................p. 51fritschi Norephora (Norephora) ..p. 51fritschi Subuliphora ....................p. 51funata Nerita...............................p. 20fuscatus Murex............................p. 26fuscus Murex...............................p. 59fusulus Murex .............................p. 58fusus Murex ................................p. 38

Ggaleodina Lacuna........................p. 35galliculum Cerithium ..................p. 23galliculum Cerithium (Thericium) p. 23galliculus Haustator....................p. 29gamachotensis Eulimella.............p. 77gambiensis Murex .......................p. 54gastaldii Murex (Pteropurpura) ..p. 54gastaldii Purpurellus...................p. 54geminatum Cerithium..................p. 23gemmata Pleurotoma........................ p. 67gemmata Triphora ......................p. 50Gemmula denticula ....................p. 67gemmulifera Anachis (Retizafra) .p. 64Genota ramosa .............. p. 70 ; pl. 30gibberosum Cerithium.................p. 26Gibberula sp. ................. p. 65 ; pl. 29Gibberula subovulata .... p. 65 ; pl. 29Gibborissoa varicosa ....... p. 25 ; pl. 6gibbosa Cypraea .........................p. 41gibbosula Melanopsis .................p. 22gibbovaricosa Ocenebra .............p. 56gibbovaricosa Ocenebra (Ocenebri-

na) ........................................p. 56giganteum Cerithium...................p. 22gigas Melongena.........................p. 62

gigas Triforis (Ino)......................p. 50girondica aff. Julia......................p. 84girondica Helix ...........................p. 85girondica Helix (Coryda) ............p. 85girondica Julia............................p. 83girondica Limnaea ......................p. 85girondica Risella......................p. 7,15girondicus Cerithium ..................p. 26girondicus Potamides..................p. 26girundica n. sp. Ondina .............p. 76glaber Rissoa? ............................p. 73glaucina Natica...........................p. 44glaucinoides Natica ....................p. 44globosa Natica ............................p. 21Globularia compressa ... p. 21 ; pl. 18goniochila Styliferina..................p. 24Gourmya tuberosa......................p. 23gourmyi Cerithium......................p. 23gracilis var. aquense Dorsanum..p. 61gracillima Syrnola ......................p. 77graecus Potamides ......................p. 27granatina var. calculosum Cerithium

(Thericium)...........................p. 23granifer Clanculus (Clanculopsis) p. 18granifera Pollia ..........................p. 59granifera Trachypollia................p. 59granosus Potamides ....................p. 27granularis Conus ........................p. 69granularis Hemiconus.................p. 69granulatocinctus Conus ..............p. 69granulatocinctus Hemiconus.......p. 69granulatus.Hipponyx...................p. 40granulatus Strombus ...................p. 37granulifer Hemiconus .................p. 69granulifera var. margaritaceum Ce-

rithium..................................p. 26granuliferus Conus .....................p. 69Granulolabium (Tiaracerithium)

thiarella..................... p. 28 ; pl. 8Granulolabium plicatum

..............................p. 27,28 ; pl. 8granulosa Cassis.........................p. 45granulosa Delphinula .................p. 19granulosa Homalopoma..............p. 19granulosa Pileopsis.....................p. 40granulosus Capulus ....................p. 40granulosus Cirsochilus ...............p. 19Graphis sp. .................................p. 53grata var. terebralis Turritella ....p. 29grateloupeana Neritina ...............p. 20grateloupi Bulla ..........................p. 81grateloupi Cassis ........................p. 45grateloupi Hipponyx ...................p. 40grateloupi Littoraria ...................p. 30grateloupi Littorina.....................p. 30grateloupi Littorinopsis...............p. 30grateloupi margaritaceus Tympano-

tonus.....................................p. 26grateloupi mut. lignarius Scaphander

.............................................p. 81grateloupi Olivella ......................p. 66grateloupi Pyramidella ...............p. 74grateloupi Rissoa ........................p. 32grateloupi Rissoina (Pachyrissoina)

.............................................p. 32grateloupi Rissoina (Rissolina) ...p. 32grateloupi Scaphander ................p. 81grateloupi Semicassis .................... p. 45grateloupi var. sublynchoides Cy-

praea (Cavicypraea).............p. 41grateloupiana Nerita...................p. 20grateloupiana Neritina................p. 20grateloupianus Theodoxus (?Calver-

tia)........................................p. 20grateloupii Oliva.........................p. 66gratelupianus Sigaretus ..............p. 44gratteloupi Cerithium..................p. 26gratteloupi Chenopus..................p. 36gratteloupi Pyramidella ..............p. 74gratteloupi Rissoa .......................p. 32gratteloupi Scaphander...............p. 81gratteloupiana Neritina...............p. 20


gravis Conus (Dendroconus)...... p. 68grisebia Voluta ........................... p. 80grossa var. strangulata Turritella

(Peyrotia)............................. p. 29gussoni Ancylus.......................... p. 84

HHaliotidae.................................. p. 16haliotidea Helix.......................... p. 44haliotideus Sigaretus .................. p. 45haliotimorpha Ariella ................. p. 17haliotimorpha Sinezona.............. p. 17Haliotis (Sulculus) benoisti

................................... p. 16 ; pl. 3Haminoea saucatsensis . p. 81 ; pl. 37harpaeforme Morum (Oniscidia) p. 64harpaeformis Cassidaria ............ p. 64harpaeformis Oniscia (Oniscidia)p. 64Harpidae ................................... p. 64Hastula subcinerea........ p. 71 ; pl. 31Helicidae ................................... p. 85helicina Clio............................... p. 82helvetica Xenophora................... p. 40Hemicerithium ........................... p. 23Hemiconus granularis... p. 69 ; pl. 31hemmoorensis aquitanica Erato

(Eratopsis) ........................... p. 42hesselinki Rissoella (Jeffreysina) p. 73hiatula Oliva .............................. p. 66hiatula Voluta............................. p. 66hieroglyphica Cypraea ............... p. 40Hipponicidae ............................. p. 40Hipponyx bistriatus ....... p. 40 ; pl. 15Hipponyx grateloupi ..... p. 40 ; pl. 15Hipponyx striatulus ...... p. 40 ; pl. 16Hipponyx sulcatus ......... p. 40 ; pl. 15Homalocantha pauli .................. p. 54Homalopoma degrangei .. p. 19 ; pl. 4Homalopoma granulosa .. p. 19 ; pl. 4Hyalogyra .................................. p. 72Hyalogyrina .............................. p. 72hydatis Bulla .............................. p. 81Hydrobia andreaei......... p. 35 ; p. 37Hydrobia aturensis ........ p. 35 ; p. 37Hydrobiidae .............................. p. 35Hyalogyrinidae ......................... p. 72hystrix Pleurotoma ..................... p. 70

Iillibrata Helcioniscus ................. p. 15imbricataria Turritella ............... p. 29immaculata var. tigrina Natica ... p. 43inca Rissoina .............................. p. 32incisa Haliotis ............................ p. 16incognita Mitra (Mitra) .............. p. 65incompta Coralliophila .............. p. 53inconstans Cerithium.................. p. 27inconstans Pirenella ................... p. 28incrassata Miltha ....................... p. 10incrassata var. D. marginatum Ceri-

thium.................................... p. 26Inella cf fritschi ............. p. 51 ; pl. 21Inermicosta ................................ p. 56inflexicosta var. Triphora ........... p. 50infrapercincta cf. Seila ............... p. 49infrapercincta trilineata Cerithiopsis

............................................. p. 50infrapercincta trilineata mut. Newto-

niella (Seila)......................... p. 50infrapercincta trilineata Seila..... p. 49inopinata Cornirostra ................ p. 72inopinata Vitrinella .................... p. 72insulanus Strombus .................... p. 37interita Chrysallida ................... p. 75intermedius Murex ..................... p. 55interruptum Cerithium................ p. 26intorta Serpula ........................... p. 30intortus cf. Vermetus .................. p. 30intortus Vermetus (Petaloconcha) p. 30Iravadiidae................................ p. 34

J

japonica Cassis .......................... p. 45Jaton dufrenoyi ............. p. 55 ; pl. 24jauberti Semicassis....................... p. 7Jenneria duclosiana ...... p. 42 ; pl. 17Joculator maestratii .................. p. 49josephinia Neverita .................... p. 43jouanneti Fasciolaria ................. p. 63Jousseaumea diluviana . p. 41 ; pl. 16Jujubinus bucklandi........ p. 18 ; pl. 4Jujubinus subturgidulus.. p. 18 ; pl. 4Julia girondica .............. p. 83 ; pl. 37Juliidae...................................... p. 83

KKestocenebra striaeformis

................................ p. 55 ; pl. 22klipsteini Cerithium.................... p. 23

Llabrosa Chevallieria .................. p. 34lachesis Alvania ......................... p. 31lachesis Rissoa ........................... p. 31lachesis Turbo............................ p. 31lachesis var. curta Alvania ......... p. 31laciniosa Patella ........................ p. 84laevigata Cassis ......................... p. 45laevigata Truncatella ................. p. 30laevigata Xenophora .................. p. 40laevis Bulla ................................ p. 81laevis var. alsiosus Conus .......... p. 68laevis?Bulla................................ p. 81lainei Fusus................................ p. 62lainei Melongena (Melongena)... p. 62lainei Pyrula .............................. p. 62lajonkaireana Acteocina............. p. 80lajonkaireana Bullina................. p. 80lajonkaireana Tornatina............. p. 80lamarcki Murex (Pteropurpura) . p. 54lamarcki Potamides.................... p. 27lamellosa Scissurella.................. p. 16lampas Charonia........................ p. 46lampas ventricosa Charonia ...... p. 46lansbergisi Afer .......................... p. 60larieyense n. sp. Caecum........... p. 34larrieyense Bittium ..................... p. 22larrieyensis var. vignali Bittium . p. 22lassaignei Murex ........................ p. 56lassaignei Ocenebra.................. p. 56lassaignei Purpura ..................... p. 56Latirulus coarctatus ..... p. 63 ; pl. 28laumontiana Oliva...................... p. 66lavatus Fusus ............................. p. 56lemani Cyclostoma ..................... p. 36lemani Fossarulus ...................... p. 36lemani Schuettemmericia ........... p. 36lemani Stalioa ............................ p. 36lentiginosus Strombus ................ p. 37leognanensis Ringicula .............. p. 80leporina calhounensis Tronaleporina Cypraea (Cavicypraea) p. 42leporina leporina Trona ............. p. 42Leucotina ......................................p. 78lignaria Bulla ............................. p. 81lignaria var.Bulla ....................... p. 81Limacinidae .............................. p. 82lineolata Nassa (Uzita)............... p. 61lineolatum Buccinum.................. p. 61lineolatum Dorsanum................. p. 61linguabovis Murex...................... p. 58linguabovis Vitularia.................. p. 58Liostomia sp. .................. p. 75 ; p. 79Litiopidae .................................. p. 24Litiopa ........................................... p. 24Littoraria ................................ p. 30Littorinidae ............................... p. 30Littorinopsis grateloupi . p. 30 ; pl. 12Lucapinella clypeata........ p. 17 ; pl. 3lutetianus Theodoxus.................. p. 20Lymnaea subfragilis ...... p. 85 ; pl. 37Lymnaeidae .............................. p. 85Lyncina peyroti............. p. 41 ; pl. 17Lyncina tumida ............. p. 41 ; pl. 17

lynx Cypraea...............................p. 41lyra Delphinula ...........................p. 77

Mmacandrei Eulima .......................p. 77maculosa Tornatella ...................p. 79maestratii Joculator ....................p. 49major Melanopsis .......................p. 22Mandolina rhomboidalis ............p. 41margaritacea Mesohalina ...........p. 26margaritaceum Cerithium ...........p. 26margaritaceum moniliformis Ceri-

thium ....................................p. 26margaritaceus bearnensis Tympano-

tonus .....................................p. 26margaritaceus calcaratus Tympano-

tonus .....................................p. 26margaritaceus Cerithium ............p. 26margaritaceus grateloupi Tympano-

tonus .....................................p. 26margaritaceus moniliformis Tympa-

notonus .................................p. 26margaritaceus Murex..................p. 26margaritaceus simplicior Potamides

(Tympanotonus) ....................p. 26margaritaceus Tympanotonos p. 26,27margaritaceus typicocalcaratus Tym-

panotonus .............................p. 26margaritaceus typocalcaratus Pota-

mides (Tympanotonus) ..........p. 26Marginellidae ............................p. 65marginalis Auricula ....................p. 85marginalis Plecotrema (Proplecotre-

ma) .......................................p. 85marginalis Proplecotrema...........p. 85mariae Alvania............................p. 31mariae oceani Alvania (Turbona)p. 31mariae Rissoa .............................p. 31marioi Alvania ............................p. 32marmoreus Conus .......................p. 68matoni Trochus ...........................p. 18maxima Clausilia (Triptychia).....p. 86maxima Pupa ..............................p. 86maxima Triptychia (Triptychia)...p. 86media var. eburnoides Natica......p. 21mediana Bithynia ........................p. 36mediana Stenothyroides ..............p. 36mediterraneum Lentidium ........p. 6,14Megalomphalus aturensis p. 39; p. 39megapolitana Patella ..................p. 84Melanella cf. subbrevis p. 53 ; pl. 19Melanella similis ....................... p. 53melaneura Rissoa .......................... p. 25Melanopsis dufourii ....... p. 22 ; p. 31Melanopsidae.............................p. 22Melarhaphe sacyi .......... p. 30 ; p. 31Melongeniidae ...........................p. 62Melongena cornuta ....... p. 62 ; pl. 27Melongena lainei.......... p. 62 ; pl. 28melongena Murex .......................p. 62melongena Pyrula .......................p. 62mercati Conus .............................p. 69Mercuria balizacensis .... p. 35 ; p. 37meridionalis Aporrhais ...............p. 37meridionalis Chenopus ...............p. 37meridionalis var. pespelicani Rostel-

laria......................................p. 37merignacense Epitonium .............p. 52merignacensis Actaeopyramis .....p. 77merignacensis Blauneria (Stolidoma)

.............................................p. 85merignacensis Capulus (Capulac-

maea)....................................p. 84merignacensis Cerithiopsis .........p. 51merignacensis Metaxia ...............p. 51merignacensis Monotigma .....p. 77,78merignacensis Scala (Spiniscala)p. 52merignacensis Spiniscala ............p. 52merignacensis Tritonidea (Cantharus)

.............................................p. 54merignacensis var. excoelata Ocene-

bra (Ocenebrina) ..................p. 56

merignacensis Williamia .............p. 84metaxae Metaxia .........................p. 51Metaxia merignacensis ... p. 51 pl. 19metula Cerithium ........................p. 47michaudi Haliotis........................p. 16michaudi Vermetus .....................p. 29michaudiana Cypraea .................p. 42michelotiana Fasciolaria ............p. 63michelotiana Pleuroploca ...........p. 63michelottiana Fasciolaria ...........p. 63michelottii Phyllocoma................p. 59michelottii Ranella ......................p. 59michelottii Ranella (Miocenia) ....p. 59miliaris Murex ............................p. 58millepunctata var. tigrina Natica p. 43mineuri Caecum..........................p. 34minina Pseudochileutomia ..........p. 78minor Ringicula ..........................p. 80minor var. eburnoides Natica......p. 21minor var. ringens Auricula ........p. 80minor var. sphaericulata Cypraeap. 42minuta Stenothyroides.................p. 36minuteornata Ranella..................p. 59minutisquama Hadrinia ..............p. 58minutus Turbo.............................p. 77miocenica Costellaria .................p. 65miocenica Turricula....................p. 65miorostralis Limacina .................p. 82miorostralis Spiratella ................p. 82miorostralis Spirialis ..................p. 82misera cf Nipteraxis....................p. 73miserum Solarium (Pseudotorinia)p. 73Mitra basteroti............... p. 65 ; pl. 29Mitra dufresnei ............. p. 65 ; pl. 29Mitra incognita ..............p. 65 ; pl. 29mitra Voluta ................................p. 65Mitrella aquitanica........ p. 64 ; pl. 28Mitrella sp. .................... p. 64 ; pl. 28Mitridae (Imbricariinae) ..........p. 66Mitridae (Mitrinae)...................p. 65mitriformis Buccinum..................p. 70Modulidae..................................p. 22Modulus basteroti ........... p. 22 ; pl. 6modulus Trochus.........................p. 22moguntina Valvata ......................p. 35monilifera var. desmarestina Turri-

tella ......................................p. 29moniliformis Neritopsis...............p. 19moniliformis var. margaritaceum

Cerithium ............................ p. 26moniliformis margaritaceum Ceri-

thium ....................................p. 26moniliformis margaritaceus Ceri-

thium ....................................p. 26monitara Bursa .......................... p. 45Monoptygma ...............................p. 78Monotigma ......................................p. 78Monotigma merignacensis

.................................p. 77 ; pl. 36Morula (s. l.) cf. bellardii

.................................p. 59 ; pl. 25Morum (Oniscidia) harpaeforme

.............................................p. 64Morum (Oniscidia) variolosum

.................................p. 64 ; pl. 29multicostata Ranularia................p. 46Murchisonella cf. bezanconi

.................................p. 78 ; pl. 35Muricidae (Ergalataxinae)........p. 58Muricidae (Muricinae)..............p. 53Muricidae (Muricopsinae) ........p. 54Muricidae (Ocenebrinae)..........p. 55Muricidae (Rapaninae) .............p. 59Muricopsis crassicosta ...p. 55 ; pl. 25

NNassariidae ................................p. 61Nassarius aquitanicus ... p. 62 ; pl. 26Nassarius subtesselatus............. p. 62Naticidae (Naticinae).................p. 43Naticidae (Polinicinae) ..............p. 43Naticidae (Sininae) ................... p. 44


Natica crassiuscula ...... p. 43 ; pl. 18Natica neglecta .............. p. 43 ; pl. 18Natica parvuloides ......... p. 43 ; pl. 18naucum Bulla ............................. p. 81nebula Murex ............................. p. 69neglecta Natica .......................... p. 43nemoralis Helix .......................... p. 85neovasconiensis Gyroscala ........ p. 52nerina Rissoa ............................. p. 33Nerita plutonis ................. p. 20 ; pl. 5neritoides Purpura ..................... p. 60neritoides Turbo ......................... p. 30Neritidae (Neritinae) ................ p. 20Neritopsidae .............................. p. 19Neritopsis moniliformis ............ p. 19neuvillei Haliotis ........................ p. 16Neverita semiglobosa..... p. 44 ; pl. 18nilotida Oliva ............................. p. 66nilotida Olivella ......................... p. 66Nipteraxis cf. misera .... p. 73 ; pl. 36Nisostomia ................................. p. 76nitida Marginella ....................... p. 65nitida Rissoa............................... p. 33nitidissima Turbo ....................... p. 78nititissima Skenea....................... p. 74nivea Pleurotoma ....................... p. 70nodifera var. lainei Pyrula.......... p. 62Nodiscala cf. bimonilifera

................................. p. 53 ; pl. 19nodoso plicata Triforis ............... p. 50nodosoplicata Triphora......... p. 50,51nodosoplicata Triphora (Ogiva) . p. 50

Oobelisca var. cathedralis Turritella

............................................. p. 28obeliscus Protama...................... p. 28Obtortio ......................................... p. 24obtusum Solarium....................... p. 73occidentalis Brachystomia.......... p. 74occidentalis var. submarginata

Odostomia............................ p. 74oceani Alvania............................ p. 32Ocenebra cf. cazeauxi ... p. 56 ; pl. 23Ocenebra excoelatap. 56; p. 57 pl. 22Ocenebra lassaignei

........................ p. 56 ; p. 57 pl. 23Ocenebra suberinacea ... p. 56 ; pl. 22Ocenebra sublavata

........................ p. 57 ; p. 57 pl. 23Ocenebra umbilicina

........................ p. 58 ; p. 57 pl. 22Odostomia sp. ................. p. 75 ; p. 79Oliva (Strephona) dufresnei ...... p. 66Olivella nilotida ............. p. 66 ; pl. 29Olivellidae ................................. p. 66Olividae ..................................... p. 66olla subglaucinoides Neverita .... p. 44Omalogyra atomus ..................... p. 74Omalogyridae ........................... p. 73Ondina cicatricosa n. sp.

........................ p. 75 ; p. 79 pl. 34Ondina girundica n. sp.

........................ p. 76 ; p. 79 pl. 34Onimusiro ................................ p. 65oniscus Cassidaria ..................... p. 64Orania fischeri .............. p. 58 ; pl. 25Orbitestella plicatella..... p. 72 ; pl. 33Orbitestellidae .......................... p. 72ordalensis Tibia.......................... p. 38ornata Trochita .......................... p. 39oryza Volvaria............................ p. 65ovata var. tigrina Natica............. p. 43Ovulidae .................................... p. 42ovulata Marginella..................... p. 65owenii Cyllene............................ p. 61

Ppacheia n. sp. Tomura............... p. 72Pachycrommium eburnoides

................................. p. 21 ; pl. 18pagoda Defrancia....................... p. 70

palustris Strombus ..................... p. 26palustris var. b. Lymnaea ........... p. 85papaveracea Triforis.................. p. 50papaveracea Triphora................ p. 50papaveraceum Cerithium ........... p. 26papaveraceus Potamides (Ptychopo-

tamides) ............................... p. 26papilla Nerita............................. p. 44papillosa Morula........................ p. 59papyraceus Tornatella ..................... p. 78paradisiaca Volema ................... p. 63parasitica Cochliolepis .............. p. 33parmophoroides Capulus ........... p. 20Paroxystele sp.................. p. 18 ; pl. 3partita var. pupaeformis Rhinoclavis

(Semivertagus) ..................... p. 27partitum Cerithium (Semivertagus)

............................................ p. 27parva Patella.............................. p. 16parvilis Buccinofusus ................. p. 63parvofusula var. pusilla Rissoina p. 32parvuloides Natica ..................... p. 43parvuloides Natica (Tectonatica) p. 43Pascula ................................ p. 59patula var. haliotideus Sigaretus p. 45patulum Sinum ........................... p. 45paulae Mangilia ......................... p. 69pauli Homalocantha................... p. 54pauli var. heptagonatus Murex (Fa-

vartia).................................. p. 54paulucciae Ringicula.................. p. 80pellucida Skenea ........................ p. 72pellucida Xenoskenea................. p. 72peloronta Nerita......................... p. 20pelouatensis Apollon ..............p. 45,46pelouatensis Strombus (Canarium) p.

37Pelycidiidae.............................. p. 34Pelycidion cf. aciculare .. p. 34 ; p. 31peracuta var. lineolata Nassa (Uzita)

............................................ p. 61perelliptica var. striatum Cryptosto-

ma........................................ p. 45perforata Mangelia .................... p. 69perlonga var. terebralis Anachis p. 63perlongus Murex ........................ p. 54perlongus Pterynotus ................. p. 54perpusilla Andonia ..................... p. 70perpusilla Fesandella................. p. 25perpusilla Pseudomelania .......... p. 25perpusilla Rissoa........................ p. 25perpusilla Sandbergeria............. p. 25Perrona semimarginata............. p. 68perspectivus Trochus.................. p. 73persuturatus Potamides.............. p. 27pertinax mut. aquense Dorsanump. 61pertusa Terebra.......................... p. 71pertusa var B Terebra ................ p. 71perversa cf. Tylodina ................. p. 84perversa Patella ......................... p. 84perversa Triphora ...................... p. 50perversa Tylodina ...................... p. 84pes-carboni Rostellaria .............. p. 36pes-pelecani Chenopus............... p. 36peyroti Callistocypraea (Miolyncina).

............................................ p. 41peyroti Cerithium (Vulgocerithium)....

............................................ p. 23peyroti Lyncina .......................... p. 41peyroti Miolyncina ..................... p. 41peyroti race brusinai Dalliella.... p. 24peyroti Thericium....................... p. 23Phenacolepadidae ..................... p. 20pherousae Mangelia (Agathotoma)

................................ p. 69Plesiotrochidae.......................... p. 21Philine sp......................... p.81 ; p. 79Philinidae .................................. p. 81Phyllocoma michelottii. p. 59 ; pl. 24physetum n. sp. Brachystomia .. p. 74picta Neritina ............................. p. 20picta Pirenella........................... p. 4,9

picta Vitta ...................................p. 20pictus pictus Theodoxus (Vittoclithon)

.............................................p. 20pinguis Actaeonidea....................p. 80pinguis Acteon ............................p. 79pinguis Cypraea (Bernayia) ........p. 42pinguis pinguis Zonarina (Zonarina)

.............................................p. 42pinguis var. annulus Cypraea......p. 42pinguis Zonarina.........................p. 42pinnatus Murex ...........................p. 54pirulatus Hemifusus ....................p. 63Pithocerithium ............................p. 23planaxoides Rissoa......................p. 33planaxoides Stossicia ..................p. 33Planorbarius solidus ..... p. 85 ; pl. 37Planorbidae................................p. 85planulata cf. Pseudotorinia .........p. 73planulata Pseudotorinia ..............p. 73planulatum Solarium (Pseudotorinia)

................................................p. 73Plecotrema marginalis .. p. 85 ; pl. 37Plesiothyreus ancyliformis

.................................. p. 20 ; pl. 5Plesiotrochus .............................p. 23Plesiotrochus fallax....... p. 21 ; pl. 10Pleuroploca michelotiana

................................ p. 63 ; pl. 28pleurotomoides Purpura .............p. 60Pleurotomoides subcostellatus

................................ p. 70 ; pl. 30plicaria Agaronia........................p. 66plicaria Oliva..............................p. 66plicaria Olivancillaria (Agaronia)p. 66plicaria Terebra (Subula)............p. 71plicata Pirenella (Pirenella)........p. 28plicatella Discohelix ...................p. 72plicatella Orbitestella (Omalogyrina)

........................................p. 72,73plicatum Cerithium ...........p. 26,27,28plicatum Dorsanum.....................p. 61plicatum Granulolabium p. 5,26,27,28plicatum Solarium.......................p. 73plicatum var. politum Buccinum..p. 61plicatum var B.Cerithium............p. 28plicatus Turbo.............................p. 75Pliocerithium ..............................p. 23pluriplicata Cymia ......................p. 59pluriplicata Thais........................p. 59plutonis Nerita ............................p. 20podolica Rissoina? ......................p. 32Polinices benoisti........... p. 44 ; pl. 18Polinices turbinoides ..................p. 44politum Buccinum .......................p. 61politum Teinostoma.....................p. 34polycolpata var. merignacensis Spi-

niscala ..................................p. 52Pomatias squamosum .. p. 30 ; pl. 12Pomatiidae .................................p. 30Potamididae ...............................p. 26praecedens Sinezona...................p. 17praecedens var. subvulpecula Daph-

nella (Raphitoma) .................p. 69praerosa Murex ..........................p. 22prestwichi Oliva..........................p. 66prevostina Phasianella .............p. 25,26prima Borsonia ...........................p. 68proto Protoma........................p. 28,29proto Turritella ...........................p. 28Protoma cathedralis ........ p. 28 ; pl. 7Prozonarina expansa ... p. 41 ; pl. 17pseudoscarabeus Cypraea ..........p. 41Pseudocirsope sp. . p. 35 ; p. 39 pl. 15pseudodentifer var. arenarius Ver-

metus (Lemintina) .................p. 30pseudodiluviana Jousseaumea ....p. 41pseudofusus Pleurotoma .............p. 68pseudofusus Pusionella ...............p. 68pseudohirundo Cypraea (Bernayia)

.............................................p. 41pseudolamarcki Murex (Pteropurpu-

ra).........................................p. 54

pseudomanzonii cf. Cerithiopsis .p. 47pseudoobeliscus Campanile ........p. 22pseudoobeliscus Cerithium .........p. 22pseudoobeliscus Telescopium .....p. 22pseudopertusa Terebra ...............p. 71pseudoscarabaeus Fossacypraea p. 41pseudoscarabaeus Pseudozonariap. 41Pseudotaphrus ............................p. 33pseudotiarella Cerithium ............p. 28pseudotiarella Granulolabium (Tiara-

cerithium) .............................p. 28pseudotiarella Pirenella..............p. 28Pseudotorinia cf. planulata

.................................p. 73 ; pl. 36Pterynotus perlongus .... p. 54 ; pl. 24pugilis Strombus .........................p. 37pulchellus Murex ........................p. 53pulchra Daphnella ......................p. 70pulchra Raphitoma .....................p. 70pullus Turbo................................p. 19punctata Planaxis .......................p. 24punctulata Actaeon .....................p. 79punctulata Tornatella..................p. 79punctulata Tylodina ....................p. 84punctulata var. tigrina Natica .....p. 43punctulatus Acteon......................p. 79Pupa striatella ............... p. 80 ; pl. 36pupaeforme Cerithium (Semivertagus)

.............................................p. 27pupaeformis Batillaria? ..............p. 27pupaeformis Cerithiopsis (Dizoniop-

sis)........................................p. 49pupaeformis Rhinoclavis (Semiverta-

gus) ......................................p. 27pupoides Finella ............................p. 25purpurata Oliva ..........................p. 66Purpurellus gastaldii..................p. 54purpusilla Bayania......................p. 25pusilla Ervilia ..........................p. 6,14pusilla Rissoa..............................p. 32pusilla Rissoina...........................p. 32Pusillina sp. ....................p. 32 ; p. 31Pusionella pseudofusus..............p. 68pustulata Cypraea.......................p. 42pustulosa var. subcostaria Fissurella

(Lucapina) ............................p. 17pygmaea Acteon..........................p. 75pygmaea belgica Chrysallida......p. 75pygmaea Chrysallida ..................p. 75pygmaea Turbonilla ....................p. 75Pyramidella gratteloupi..p. 74 ; pl. 36Pyramidellidae (Eulimellinae) ..p. 77Pyramidellidae (Odostominae) .p. 74Pyramidellidae (Pyramidellinae)...................................................p. 74Pyramidellidae (Turbonillinae) p. 76Pyrguletta ...................................p. 75pyrrhacme Finella.......................p. 24pyrula Cypraea...........................p. 41pyrulata Melongena (Pugilina) ...p. 63pyrulata tarbeliana Volema ........p. 63pyrulata Volema..........................p. 63pyrulatus Murex..........................p. 63

Qquadrangulata Favartia ..............p. 55quadricostata Orbitestella ..........p. 73quadricostatus Adeorbis .............p. 72quadrifidus Aporrhais.................p. 36quadrilineata Cerithiopsis ..........p. 51quadriplicata Protoma................p. 28quadriplicata Turritella ..............p. 28

Rradix Strombus............................p. 37ramosa Genota ...........................p. 70ramosa Genotia ..........................p. 70ramosa Pleurotoma.....................p. 70ramosus Murex ...........................p. 54Ranellidae (Bursinae)................p. 45Ranellidae (Cymatiinae) ...........p. 46raphidiopsis Turbonilla (Strioturbo-


nilla) .................................... p. 77Raphitoma pulchra........ p. 70 ; pl. 30Raphitoma sp................. p. 70 ; pl. 30rarispina var. ficulina Volutilithes

(Athleta) ............................... p. 64rarispina Voluta ......................... p. 64Raulinia ................................ p. 78recluzianus Sigaretus ................. p. 45recticostulata Rissoina ............... p. 32resecata var. lainei Pyrula.......... p. 62reticulatum Bittium..................... p. 22reticulatum Strombiformis......... p. 22Retizafra rissoides ........ p. 64 ; pl. 28retortella Pileopsis ..................... p. 40reyti Peasiella?........................ p. 7,15rhomboidalis Cypraea (Mandolina)

............................................. p. 41rigida Mitra................................ p. 65ringens Auricula......................... p. 80ringens var. a Auricula ............... p. 80ringens var. b Auricula............... p. 80ringens var. c Auricula. .............. p. 80Ringicula minor ............ p. 80 ; pl. 37Ringiculidae .............................. p. 80Rissoella sp..................... p. 73 ; p. 79Rissoellidae ............................... p. 73rissoides Anachis........................ p. 64rissoides Brachystomia .............. p. 64rissoides Buccinum..................... p. 64rissoides Columbella .................. p. 64rissoides Nassa .......................... p. 64rissoides Odostomia ................... p. 64rissoides Retizafra...................... p. 64Rissoidae ................................... p. 31Rissoina (Pachyrissoina) grateloupi

................................. p. 32 ; pl. 12Rissoina (Zebinella) subcancellata

................................. p. 33 ; pl. 12Rissoina subconoidea .... p. 32 ; pl. 12rocheri n. sp. Epitonium ........... p. 52rota cf. Ammonicera................... p. 73rota Homalogyra........................ p. 73rothi Cernina.............................. p. 21rothi Globularia ......................... p. 21Rotostoma duvergieri .... p. 71 ; pl. 32rugulosum Cerithium.................. p. 51rusticula Pyrula.......................... p. 64rusticula Tudicla ........................ p. 64rusticulus Murex ........................ p. 64

Ssaburon Cassis ........................... p. 45saburon var a Cassis .................. p. 45sacyi Attiliosa............................. p. 54sacyi Chrysallida........................ p. 75sacyi Fasciolaria (Pleuroploca) . p. 63sacyi Littorina (Melaraphe)........ p. 30sacyi Melarhaphe....................... p. 30sacyi Ocenebra...................... p. 56,57sacyi Pyrgulina .......................... p. 75sacyi Taurasia............................ p. 54saginata Amaura ........................ p. 21salbriacense Eutritonium............ p. 46salbriacensis Vitularia ............... p. 58salmo ferelaevis Cerithium......... p. 23sanctistampaensis n. sp. Stenothy-

roides ................................... p. 36Sandbergeria turrita .................. p. 25sanguineus Turbo....................... p. 19saucatsensis Bulla (Haminea) .... p. 81saucatsensis Haminoea .............. p. 81saucatsensis Natica .................... p. 43scabra Bulla ............................... p. 80scabra Philine ............................ p. 81Scabricola brevispira ..... p. 66 ; pl. 29scalarata Rissoina...................... p. 32scalarata var.(an monst.?) elongata

Rissoina ............................... p. 32scalare Epitonium ...................... p. 52scalarina Aciculina .................... p. 78scalarina Ebala .......................... p. 78Scaliolidae ................................. p. 25

Scaliola degrangei .. p. 25 ; p. 39 pl. 6Scaphander tarbelliana . p. 81 ; pl. 37Schilderia subannularia ............ p. 41Schuettemmericia lemanip. 36 ; p. 37Scissurella cf. transylvanica

............................... p. 16 ; pl. 1-2Scissurella lamellosa .... p. 16 ; pl. 1-2Scissurellidae ............................ p. 16sclera Trachypollia .................... p. 59scorpio Murex ............................ p. 54scutatella Patella ....................... p. 16secalina Melania........................ p. 25secalina Sandbergeria................ p. 25Seila cf. infrapercincta .. p. 49 ; pl. 19Seila sp. ......................... p. 50 ; pl. 19Semicassis grateloupi ................... p. 45semiglabrata Rissoina................ p. 33semiglobosa Neverita ................. p. 44semiglobosa var. glaucinoides Natica

............................................ p. 44semimarginata Clavatula (Perrona)

............................................ p. 68semimarginata Pleurotoma ........ p. 68semiornata Ondina..................... p. 75semiplicata Costellaria .............. p. 65semiplicata Turricula (Uromitra)p. 65semistriata Ondina..................... p. 76semperi Adeorbis? ..................... p. 72semperi Vitrinorbis ................p. 72,73semseyiana Galeodes ................. p. 62semseyiana Melongena .............. p. 62Semseyiana Pyrula ..................... p. 62seraphinae (Pollia) Cantharus ... p. 58seraphinae cf. Ergalatax ............ p. 58seraphinae Pollia ....................... p. 58sextona Chrysallida.................... p. 75sextona Pyrgulina ...................... p. 75sigaretina Ampullaria ................ p. 21Siliquariidae.............................. p. 28similis Eulima ............................ p. 53similis Melanella ........................ p. 53simplex subconoidea Architectonica

............................................ p. 73simplex Teinostoma.................... p. 34Sinezona haliotimorpha ............ p. 17Sinezona praecedens ................. p. 17Sinum faviai n. sp. ........ p. 44 ; pl. 18Sinum patulum .............. p. 45 ; pl. 18Siphonaria bisiphites ..... p. 84 ; pl. 37Siphonaria vasconiensis p. 84 ; pl. 37Siphonariidae............................ p. 84solidus Planorbarius .................. p. 85solidus Planorbis........................ p. 85solutella aff. var. intortus Vermetus

(Petaloconcha)..................... p. 30sonensis Tympanotonus.............. p. 26sowerbianus Plesiotrochus ......... p. 21speciosus Chenopus ................... p. 36spectra Murchisonia (Murchisonella)

............................................ p. 78spiculoides Turbonilla................ p. 77spinato-conicum var. pseudo-

obeliscus Telescopium ......... p. 22Spinucella ................................ p. 55spirata Phasianella (Tricolia) .... p. 19spirata Tricolia .......................... p. 19Spiratella miorostralis .... p. 82 ; p. 83Spiricella unguiculus ..... p. 84 ; p. 83spirillus Murex........................... p. 64spiroplana var. cornuta Melongena

............................................ p. 62spirorbis Helix ........................... p. 85spirullus Pyrula.......................... p. 64squammata cf. Emarginula ........ p. 17squammata Emarginula ............. p. 17squamosum Cyclostoma ............. p. 30squamosum Pomatias................. p. 30stagnalis Helix ........................... p. 85Stenothyridae............................ p. 36Stenothyroides aquitanica ......... p. 36Stenothyroides sanctistampaensis n.

sp.................... p. 36 ; p. 37 pl. 13

Stenothyroides sp. .......................p. 36stephanensis Tritonidea ..............p. 58stercoraria Cypraea....................p. 42Stosicia buccinalis.......... p. 33 ; p. 31strangulata Cleodora ..................p. 83strangulata Turritella..................p. 29strangulata Vaginella..................p. 83striaeformis Kestocenebra ..........p. 55striaeformis Murex (Phyllonotus)p. 55striaeformis Ocenebra ................p. 55striata Monotygma ......................p. 77striatella Auricula .......................p. 80striatella Eunaticina....................p. 44striatella Natica ..........................p. 44striatella Pupa.............................p. 80striatella Tornatella ....................p. 80striatellus Actaeon (Solidulus).....p. 80striatellus Sigaretus (Sigaretotrema)

.............................................p. 44striatulata var. alsiosus Conus ....p. 68striatulus Capulus .......................p. 40striatulus Hipponyx.....................p. 40striatulus Pileopsis......................p. 40striatus Sinum .............................p. 45strigillatum Buccinum .................p. 71Strioterebrum basteroti p. 71 ; pl. 31stromboides Conus......................p. 69Strombidae ................................p. 37Strombus bonellii ......... p. 37 ; pl. 15Styliferina disjuncta n. sp.

....................... p. 24 ; p. 39 pl. 11suavis Gyroscala.........................p. 52subaffinis Fusus ..........................p. 63subalsionus Conus ......................p. 68subalucoides Cerithium...............p. 23subamygdalum Apiocypraea .......p. 42subamygdalum Cypraea (Adusta)p. 42subanceps Aspella.......................p. 53subanceps Eupleura ....................p. 53subanceps Ranella ......................p. 53subangulifera var. burdigalensis Co-

ralliophila.............................p. 60subannularia Cypraea.................p. 41subannularia Schilderia ..............p. 41subannularia subannularia Zonarina

(Prozonarina) .......................p. 41subbrevis cf. Melanella ...............p. 53subbrevis Eulima (Vitreolina) .....p. 53subbrevis Melanella ....................p. 53subcanaliculatus Sigaretus..........p. 45subcancellata cochlearella Rissoa

.............................................p. 33subcancellata Rissoina (Zebinella)

........................................p. 32,33subcinerea Hastula .....................p. 71subcinerea Terebra (Hastula) .....p. 71subcirculus Circulus ...................p. 33subcirculus Tornus......................p. 33subclathrata Emarginula.............p. 17subclathrata Pirula .....................p. 46subclathratum Bittium.................p. 22subclavula Oliva .........................p. 66subclavula Olivella (Lamprodoma)

.............................................p. 66subcochlearella Rissoa ...............p. 32subconoidea Rissoina..................p. 32subconoidea simplex Architectonica

.............................................p. 73subconoidea var. cochlearella Rissoa

.............................................p. 32subconoideum Solarium..............p. 73subconoideum var. simplex Solarium

.............................................p. 73subcorrugata Terebralia .............p. 26subcorrugatum Cerithium ...........p. 26subcorrugatum Cymatium...........p. 46subcorrugatum Eutritonium (Lampu-

sia) .......................................p. 46subcorrugatum Triton .................p. 46subcorrugatus Potamides (Terebralia)

.............................................p. 26subcostaria Diodora ...................p. 17

subcostaria Fissurella (Lucapina)p. 17subcostellata Mangelia (Clathurella)

.............................................p. 70subcostellata Pleurotoma............p. 70subcostellatus Pleurotomoides ....p. 70subcrumena Cypraecassis........p. 7,15subcypraeola Erato (Eratopsis) ..p. 42suberinacea Ocenebra ................p. 56suberinaceus Murex....................p. 56subfoliata cf. Agathotoma ...........p. 69subfoliata Cythara (Mangelia) ....p. 69subfoliata Mangilia.....................p. 69subfragilis Galba (Galba) ...........p. 85subfragilis Lymnaea....................p. 85subfusiformis Terebellum.........p. 7,15subglaucinoides Natica...............p. 44subglobosa Cepaea .....................p. 85subglobosa Helix ........................p. 85subgranosum Cerithium..............p. 23subgranulosa Cassis ...................p. 45subgranulosus Turbo ..................p. 19subharpula Voluta....................p. 7,15sublaevis Bulla............................p. 81sublaevis Bullinella (Cylichnina) .p. 81sublaevis Cylichna ......................p. 81sublavata Ocenebra (Ocenebrina)p. 57sublavata Ocinebrina..................p. 57sublavatum Triton.......................p. 57sublavatus Murex........................p. 57sublignaria Scaphander ..............p. 81sublynchoides Cypraea ...............p. 41submarginata Odostomia............p. 74suboblonga cf. Favartia .........p. 54,55suboblongus Murex (Favartia)....p. 54subovulata Cryptospira (Gibberula)

.............................................p. 65subovulata Marginella ................p. 65subovum Cypraea (Cavicypraea) p. 41subpicta Nerita ...........................p. 20subpolitum Buccinum..................p. 61subpolitum Dorsanum.................p. 61subpurpurea Daphnella (Raphitoma)

.............................................p. 69subpyrenaica Hydrobia..........p. 35,36subscalare Epitonium..................p. 52subscalaris Scalaria....................p. 52subspinosa Scalaria ....................p. 52subspinosum Cirsotrema.............p. 52subsulcatus Trochus....................p. 19subtesselatus Nassarius ..............p. 62subtessellata Nassa (Telasco?) ...p. 62subtriplicata Turritella................p. 29subtuberosa Eutritonium ...............p. 46subtuberosa Ranella ..............p. 45,46subturgidulum Callistoma (Strigosel-

la).........................................p. 18subturgidulus Jujubinus ..............p. 18subturgidulus Trochus ................p. 18subturris Conus .............................p. 68Subula plicaria ...........................p. 71subulatum Buccinum...................p. 71subundata Pleurotoma ................p. 67subvitulenus Murex .....................p. 58Sukashitrochus terquemi

............................... p. 17 ; pl. 1-2sulcata Delphinula......................p. 19sulcata Gadinia...........................p. 40sulcata Natica.............................p. 44sulcata Phasianema ....................p. 77sulcata Pyrula.............................p. 62sulcata Tornatella .......................p. 79sulcatum Cerithium.....................p. 26sulcatus Capulus.........................p. 40sulcatus Hipponyx.......................p. 40sulcatus Patella...........................p. 40sulcatus Sigaretus .......................p. 44sulcilabris Pleurotoma................p. 70sulcosa Cassis.............................p. 45sulcosa Nerita.............................p. 77sulcosa var. texta Cassis .............p. 45suturalis Ceratia .........................p. 35suturalis Sigaretus ......................p. 44


Ttapina mut. clypeata Fissurellidea

(Pupilia)............................... p. 17tarbeliana Pyrula ....................... p. 63tarbeliana pyrulata Volema........ p. 63tarbeliana tarbeliana Pyrula ...... p. 63tarbelliana Bulla ........................ p. 80tarbelliana Scaphander .............. p. 81tarbelliana var. lignaria Bulla .... p. 81tarbellianus Fusus ...................... p. 63tauragranosa var. arenarius Vermetus

(Lemintina) .......................... p. 30taurinensis cf. Tectura................ p. 16tauroconicum Benoistia (Conoceri-

thium) .................................. p. 21tauroelongata var. excoelata Ocene-

bra (Ocenebrina) ................. p. 56Tectura sp.................................. p. 16Teinostoma simplex...... p. 34 ; pl. 12Telescopium ............................... p. 27Tenagodus terebellus................. p. 28tenella Coronia .......................... p. 67tenera Cancellaria ..................... p. 67Tenuicerithium ........................... p. 23terebella Siliquaria..................... p. 28terebellata Pyramidella .............. p. 74terebellum Pyramidella .............. p. 74terebellum Siliquaria.................. p. 28terebellus Tenagodes.................. p. 28terebellus Tenagodus.................. p. 28terebra Drillia (Crassispira) ...... p. 68terebra Pleurotoma .................... p. 68Terebra pseudopertusa .. p. 71 ; pl. 31terebra Turbo............................. p. 29terebrale Buccinum .................... p. 63Terebralia bidentata ........ p. 26 ; pl. 9Terebralia subcorrugata p. 26 ; pl. 8-9terebralis Anachis ...................... p. 63terebralis Costoanachis.............. p. 63terebralis Nassa ......................... p. 63terebralis Turritella.................... p. 29terebralis Turritella (turritella) .. p. 29Terebridae ................................ p. 71teres Pyramidella ....................... p. 74terquemi Scissurella (Schismope)p. 16terquemi Sukashitrochus ....... p. 16,17terquemi Trochotoma ................. p. 17tessellata Cancellaria................. p. 67Thais calcarata ............. p. 59 ; pl. 25thais Cirsotrema......................... p. 52Thais pluriplicata ......... p. 59 ; pl. 25thais Scalaria ............................. p. 52Theodoxus grateloupianus

................................... p. 20 ; pl. 5Thericium ................................ p. 23thiarella Cerithium..................... p. 28thiarella Granulolabium (Tiaraceri-

thium) .................................. p. 28thibaudei Tritonidea................... p. 60thilensis Ocenebra...................... p. 57thorinus Trochus ..................... p. 7,15Tibia dentata.............................. p. 38tigrina Cochlis ........................... p. 43tigrina Natica ............................. p. 43Tomopleura basteroti ................ p. 70Tomura pacheia n. sp.... p. 72 ; pl. 32tornatilis Voluta ......................... p. 79toroensis Strombus ..................... p. 37torulosa Ocenebra...................... p. 56torulosa Purpura........................ p. 56torulosus Murex ......................... p. 56

tournoueri Cerithium ................. p. 27tournoueri Cylichna ................... p. 81tournoueri Littorinopsis ............. p. 30tournoueri Potamides................. p. 27tournoueri Ringicula (Ringiculella)

............................................ p. 80tournoueri Roxania (Acrostemma)p. 81tournoueri Tympanotonos .......... p. 27touzini race merignacensis Cerithiop-

sis ........................................ p. 51Touzinia ...................................p. 26trachaea Dentalium.................... p. 34Trachypollia granifera .. p. 59 ; pl. 25tranquebaricum Buccinum ......... p. 60transiens Sassia.............................p. 46transylvanica cf. Scissurella...p. 16,17transylvanica Scissurella (Scissurella)

............................................ p. 16trapezium Murex ........................ p. 63Trochidae (Trochinae).............. p. 18Trochidae (Umboniinae) .......... p. 18Trochus bucklandi...................... p. 18Tricolia aquensis ....................... p. 19Tricolia spirata ................ p. 19 ; pl. 4trifascialis Murex (Muricopsis?) p. 58trigonostoma Cochliolepis ......... p. 33trigonostoma Delphinula............ p. 33trigonostoma Tornus (Tornus) ?. p. 33trigonostomum Solarium ............ p. 33trigonulus Conus........................ p. 69trigonus Strombus (Tricornis) . p. 7,15trilineata infrapercincta Cerithiopsis

............................................ p. 50trilineata infrapercincta Newtoniella

(Seila) .................................. p. 50trilineata infrapercincta Seila .... p. 49Triphora (s. l.) nodosoplicata

........................... p. 50 ; pl. 19-21Triphora (s. l.) papaveracea

........................... p. 50 ; pl. 19-21Triphora (s. l.) sp....................... p. 50Triphoridae (groupe Inella) ..... p. 50Triphoridae (Metaxiinae)......... p. 51Triphoridae (groupe Triphora) p. 50Triptychia maxima ........ p. 86 ; pl. 37tritonea Cymatiella .................... p. 46tritoneum Eutritonium (Sassia)... p. 46tritoneum Murex......................... p. 46tritonina Fasciolaria (Pleuroploca)

............................................ p. 63tritonina Turbinella.................... p. 63tritonis Murex ............................ p. 46tritonium Perrona ...................... p. 68tritonium Triton.......................... p. 46Trivia burdigalensis................... p. 42Triviidae ................................... p. 42trochiformis Patella ................... p. 39Trochita costaria .......... p. 39 ; pl. 15Trona leporina leporina p. 42 ; pl. 17Truncatella wattebledi

....................... p. 30 ; p. 31 pl. 12Truncatellidae........................... p. 30tubercula volhynica Haliotis ...... p. 16tubercularis Murex..................... p. 47tuberculata Haliotis ................... p. 16tuberculata tuberculata Haliotis. p. 16tuberculata volhynica Haliotis ... p. 16tuberosa Bursa........................... p. 45tuberosa Gourmya ..................... p. 23tuberosa Ranella ....................p. 45,46tuberosum Cerithium (Gourmya) p. 24tuberosum var. Cerithium geminatum

.............................................p. 23Tudicla rusticula ........... p. 64 ; pl. 29tumida Callistocypraea (Miolyncina)

.............................................p. 41tumida Cypraea ..........................p. 41tumida Lyncina ...........................p. 41tumulensis Volvarina...................p. 65turbinella Hinia..........................p. 4,9Turbinellidae (Tudiclinae) ........p. 64Turbinidae (Colloniinae) ...........p. 19Turbinidae (Tricoliinae)............p. 19Turbinidae (Turbininae) ...........p. 18turbinoides Natica (Lunatia) .......p. 44turbinoides Phasianella...............p. 19turbinoides Polinices..............p. 43,44Turbonilla avitensis....... p. 76 ; pl. 36Turbonilla diastomoides p. 76 ; pl. 36Turbonilla raphidiopsis . p. 77 ; pl. 36Turbonilla sp. ................. p. 76 ; p. 79Turbonilla spiculoides ... p. 77 ; pl. 36turgidulus Trochus ......................p. 18turgidulus? Trochus ....................p. 18turonensis Hinia.........................p. 4,9turonensis mut. arenarius Vermetus

(Lemintina) ...........................p. 30turoniensis Cerithiopsis (Metaxia)

.............................................p. 51turrella Pleurotoma.....................p. 70turrella var B Pleurotoma ...........p. 70turriculata Trachypollia..............p. 59Turridae (Clavatulinae) ............p. 68Turridae (Crassispirinae) .........p. 68Turridae (Turrinae) ..................p. 67turris Turritella (Haustator)........p. 29turrita cf. Tornatella ................. p. 78turrita Columbella (Anachis) ......p. 63turrita Sandbergeria ................. p. 25Turritella (Haustator) desmarestina

.................................. p. 29 ; pl. 7turritella Auricula .......................p. 75turritella Brachystomia ..........p. 74,75Turritella terebralis ........ p. 29 ; pl. 7Turritella turris ............... p. 29 ; pl. 7Turritellidae ..............................p. 28turritus Bulimus ..........................p. 25Tylodina cf. perversa...... p. 84 ; p. 83Tylodinidae ................................p. 84Tympanotonos cinctus..... p. 26 ; pl. 9Tympanotonos margaritaceus

.................................. p. 26 ; pl. 9Tympanotonos tournoueri

.................................. p. 27 ; pl. 9

Uumbilicina Ocenebra...................p. 58umbilicina var. sublavata Ocenebra

.............................................p. 58Umbraculidae ............................p. 84undata Pleurotoma......................p. 67unguiculus Capulus.....................p. 84unguiculus Spiricella...................p. 84unguiformis Crepidula ................p. 38unguis Crepidula.........................p. 38unguis mut. crepidula Crepidula (Ja-

nachus) ............................... p. 38unicus Turbo ............................. p. 53uniserialis Pleurotoma .............. p. 67utriculata Cypraea .................... p. 41

VVanikoridae. ..............................p. 39vaginella Creseis ...................... p. 83

Vaginella depressa ......... p. 83 ; p. 83varicosa Gibborissoa.............p. 25,26varicosa Rissoa ......................... p. 25varicosa Scalaria ...................... p. 51varicosa var. calculosum Cerithium

.............................................p. 23varicosa var. costellata Alaba.....p. 25variegata Voluta ....................... p. 66variolosa Voluta ........................ p. 64variolosum Morum (Oniscidia) ...p. 64vasatensis Bullinella (Cylichnella)

.............................................p. 81vasatensis Cylichnella ............... p. 81vasatensis Turritella ? ............... p. 29vasconiensis Scala (Gyroscala)...p. 52vasconiensis Siphonaria..............p. 84veneris Dorsanum......................p. 4,9ventricosa Charonia ...................p. 46ventricosa lampas Charonia .......p. 46ventricosa var. thiarella Cerithium

.............................................p. 28ventricosa var. condita Pirula .....p. 46ventricosum Eutritonium (s. str.) .p. 46ventricosum Triton .................... p. 46Ventrilia sp. .................. p. 67 ; pl. 30ventripotens var. costellata Alaba

.............................................p. 25venus Alvania ............................ p. 32venus Rissoa ............................. p. 32venustulum Pelycidion .............. p. 34Vermetidae ................................p. 29Vermetus carmatus ........ p. 29 ; pl. 7Vermetus cf. arenarius... p. 30 ; pl. 7Vermetus cf. intortus...... p. 30 ; pl. 7verrucosa Oniscia (Oniscidia) ....p. 64verrucosa Triton ....................... p. 46vignali Bittium ..................... p. 22,23vignali Cerithiopsis ................... p. 47villae Attiliosa ........................... p. 54villae Fusus.................................p. 54virginea Nerita............................p. 20vitellus Nerita ........................... p. 43vitilinus Murex............................p. 58Vitta picta ....................... p. 20 ; pl. 5Vitularia linguabovis..... p. 58 ; pl. 24Volema tarbeliana pyrulata

.................................p. 63 ; pl. 27volhynica Haliotis .......................p. 16Volutidae .................................p. 64Volvarina tumulensis .....p. 65 ; pl. 29vulgata Patella .......................... p. 84vulgatissima Cyllene ................ p. 4,9

Wwalkeri Rissoina ........................ p. 32wattebledi Truncatella .............. p. 30wetherelli Acteon ...................... p. 80Williamia merignacensis.p. 84; pl. 37Wingenella .................................p. 74

XXenophoridae .......................... p. 40Xenophora deshayesi .... p. 40 ; pl. 16Xenoskenea buccinata n. sp.

.................................p. 72 ; pl. 33

ZZeacumantus ............................. p. 27Zebina aquitanica .......... p. 33 ; p. 31zonale Cerithium ....................... p. 27Zonarina pinguis ...................... p. 42

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COSSMANNIANA - Freefossile1.free.fr/fossiles/lariey_2001_RG.pdf · 4 Lozouet, Lesport & Renard COSSMANNIANA ABRIDGED ENGLISH VERSION The outcrop of Lariey∗ is located at Saucats,