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CARRERA DE ESPECIALIZACION EN CARRERA DE ESPECIALIZACION EN
BIOTECNOLOGIA INDUSTRIALBIOTECNOLOGIA INDUSTRIAL
FCEyNFCEyN--INTIINTI
Materia de Especialización CEBI_E11
RECUPERACIÓN Y PURIFICACIÓN DE MACROMOLÉCULAS
Docente a cargo: Mariano GRASSELLI
CEBI_E11_6 : Partición en dos fases acuosas
IDEA:
Extracción de productos no proteicos a partir de medios naturales o de caldos de cultivo mediante el uso de solventes orgánicos no miscibles con el agua (Ej. la extracción penicilinas de un cultivo de hongos).
Se llaman dos fases acuosas cuando el contenido de agua en cada fase es superior al 85-90%
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Microbiólogo holandés Beijerinck año 1896
Solución de agar + solución acuosa
concentrada de almidón son inmisibles
El sueco Albertsson en 1961
Desarrollo de los sistemas bifásicos acuosos
Ventajas:
– Económico
– Condiciones suaves de extracción
– Rápido
– Altos rendimientos
– Escalado sencillo
– Capacidad concentradora
Desventajas:
– Tediosa puesta a punto
– Factor de purificación intermedio/bajo
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Polímeros hidrosolubles capaces
de formar 2FA
• POLIETILENGLICOL (PEG)
• AGAR
• ALMIDON
• DEXTRANO (Dx)
• CARBOXIMETILCELULOSA (CMC)
• POLIPROPILENGLICOL (PPG)
• POLIVINILPIRROLIDONA (PVP)
• ALCOHOL POLIVINILICO (PVA)
• POLISACAROSA (FICOLL)
• HIDROXIPROPIL ALMIDON
• (marcas comerciales: REPPAL, AQUAPHASE)
• etc.
Polietilenglicol (PEG)
HO-CH2-CH2-(O-CH2-CH2-O-CH2-CH2-O) n-CH2-CH2-OH
– PEG 600
– PEG 4000
– PEG 8000
– PEG 20000
ATENCION: los polímeros no tienen un PM exacto (es una
distribución de PM)
Son diferentes moléculas !!!
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Componentes de los sistemas 2FA
• Tipo Polímero / polímero
– PEG-dextrán
– PEG-hidroxipropil almidón (PVP o PVA)
• Tipo Polímero/sal
– PEG-fosfato
– PEG-sulfato
– PEG-citrato
0,00
5,00
10,00
15,00
20,00
25,00
0 5 10 15 20 25 30
Pol2 %p/p
Pol1
%p/p Curva binodial
2 fases
1 fase
Ej.= Pol1=PEG Pol2=dextránEj. = Pol1=PEG Pol2=fosfato
Representación gráfica del fenómeno fisicoquímico
Cantidad total en el sistema completo !!
Cantidad total en el sistema completo !!
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Composición global del sistema
Sistema de 1 fase
[Pol1]
Sistema de 2 fases
[Pol1] = ((Pol1)FS * volFS + (Pol1)FI * volFI)/ (vol FS + vol FI )
NOTA: Tanto el Pol1 como el Pol2 se encuentran en las dos fases, sin embargo la concentración en una de las fases será muy superior a la otra con lo cual muchas veces se considera (y/o aproxima a) cero en la fase que se encuentra en menor concentración.
Parámetros de caracterización de
los sistemas 2FA
• 1er parámetro
– Curva binodial
• 2do parámetro
– Rectas de reparto (tie-line)
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Pol2 (%p/p)
Pol1 (%p/p)
Fase SUP
Fase INF
Diagrama de fases
Comportamiento de una proteína
en un sistema de 2 fases acuosas
concentración de P en la fase superior (Cs)
coeficiente de partición (KP) =
concentración de P en la fase inferior (Ci)
Las características moleculares que hacen que las proteínas se repartan diferencialmente en un sistema de 2FA son:
• PESO MOLECULAR• CARGAS ELECTROSTATICAS superficiales• HIDROFOBICIDAD superficial
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Las condiciones que pueden variarse para cambiar la constante de partición de una proteína son :
1) Tipo de polímeros que forman las 2 fases.
2) Concentración de los polímeros que forman las 2 fases.
3) Contenido de agua que acepta el sistema manteniendo las dos fases
Mayor contenido de agua quiere decir que los polímeros están mas concentrados
Como ejemplos generales podemos citar que:
En sist P/P a mayor cc de polímeros, la K se hace más extrema
4) Peso molecular de los polímeros que forman las 2 fases.
A mayor PM polímero la proteína tiende a salir de esa fase.
5) pH. es efectivo solo en los sistemas Polímero/Polímero
6) Temperatura.
Es efectivo solamente con algunos polímeros
termosensibles especiales donde la separación de fases
ocurre a determinada temperatura.
7) Fuerza iónica
8) Tipo de sales en cuya presencia se realiza la extracción
(por adición de otras sales. Por ej. NaCl) se utilizan como
modificantes de la constante K.
9) Unión de ligandos de afinidad a los polímeros.
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Partición de una proteína según PM
Sistema pol/pol
PEG 6000Dx 500
pH = pI de c/proteína
Partición de Ovoalbúmina c/ sales
Sistema pol/pol
PEG 6000Dx 500
Cloruros
SulfatosLi+
K +
Na +
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PROTEÍNA ORGANISMONro de
extraccionesFactor de purificación
Rendimiento (%)
Aspartasa E. coli 3 18 82
Formato dehidrogenasa
Candida
boidini3 4,4 78
FumarasaBrevibacterium
amonigenes2 22 75
Penicilin acilasa E. coli 2 10 78
0,00
5,00
10,00
15,00
20,00
25,00
0 5 10 15 20 25 30
Pol2 %p/p
Pol1
%p/p Rectas de reparto
Punto crítico
Son infinitas líneas paralelas entre sí que unen dos puntos de la binodial (se determinan experimentalmente).
Contenido de agua
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Cómo comparar dos sistemas de
2FA para la purificación de una
proteína?• Determinar
– K de la proteína de interés (KP)
– K de la o las proteínas contaminantes (KC).
Nota: es común utilizar en esta técnica una K que
representa a las proteínas contaminantes como una
sola, aunque este concepto no es correcto ya que cada
proteína tendrá un comportamiento individual diferente.
• Entonces el sistema ideal es
– KP>1 y KC<1
– o alternativamente KP<1 y KC>1.
Calculo del % de recuperación de
la proteína
Si definimos M como la masa de proteína,
MT = MS + MI
Además K = CS / CI = (MS / VS )* (VI /. MI)
Entonces
MI = (MS.* VI )/ (K * VS)
Considerando que MT = 100 %
100 % = MS + (MS.* VI )/ (K * VS)
100 % = MS (1 + VI / (K * VS))
% MS = 100 % / (1 + VI / (K * VS))
Recuperación en fase SUP
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2FA Sistema 1
Homogenato
PEG / salDesechos celulares / Otras proteínas / Ácidos nucleicos
Sal 2FA Sistema 2
FI
Otras proteínas / Ácidos nucleicosFS
FI
Producto
FS
Esquema de un proceso industrial
Los sistemas de dos fases tienen baja tensión superficial, => poca energía para mezclarlos ⇒el equilibrio se logra en minutos⇒La separación por decantación se logra en 30-90 min. (PEG/sal) y 2h-6h para PEG/dextran.
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Sistemas de afinidad
PROTEÍNA LIGANDO DE AFINIDAD
Tripsina Diamino-difenilcarbamilo
Seroalbúmina Ácido graso
β-lactoglobulina Ácido graso
Histona / Miosina Äcido graso
3-oxo- esteroide isomerasa Estradiol
Formaldehído dehidrogenasa NADH
Formato dehidrogenasa NADH
Hemoglobina IDA-metal
Fosfofructokinasa Cibacron blue
Piruvato kinasa Cibacron blue
Hexokinasa Cibacron blue
Lisozima Red HE-3B
Prealbúmina Remazol yellow
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Esquema de un proceso con sistemas de afinidad
Como sacar los polímeros del
producto?
• El agregado de una sal al PEG generará otro sistema de dos fases que extraiga la enzima. Las sales se sacan por UF (o diálisis en lab.).
• Si el PEG es de bajo PM y la proteína alto PM se puede diafiltrar.
• Se puede precipitar la muestra con solvente o sales pero los precipitados siempre van a tener polímero contaminante.
• Extracción con intercambiadores iónicos previo ajuste del pH y fuerza iónica.
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Comportamiento de los
contaminantes más comunes
• Restos celulares Pueden quedar en ambas fases, en una, en la interfase o
sedimentar.
En gral. se concentran en la fase inferior.
• Los ácidos nucleicos y los polisacáridosSe concentran en la fase más hidrofílica
En gral. corresponde a la fase compuesta por dextran o las
sales.
Precipitación vs. Sistema de 2FA
El PEG además de ser utilizado para formar
sistemas de 2FA, también se usa para
precipitar proteínas. Entonces, como saber
que fenómeno esta ocurriendo?
Para diferenciarlos aplicamos concentraciones distintas de extracto a una solución de PEG.
–Si la concentración de la proteína de interés en el sobrenadante (o fase superior) se mantiene constante => precipitación
–En cambio si la concentración de la proteína responde linealmente con la concentración del extracto => sistema de 2FA.
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Sistemas con detergentes
Isooctanol2-etilhexil-sulfosuccinato
agua
Micelas reversas
Se reextrae de la fase orgánica con 1M de KCl
> Cantidad de proteínas
Proteínas q+ en micelas
Problemas: baja capacidad – se requiere baja fuerza iónica
Sistemas de extracción con
detergentes
Detergente: Triton X-100 / Triton X-114 (Cloud point 31 C)Polímero 2: Copolimero de Etileno y Propileno (EOPO)
Proteína de fusión: Hidrofobina-Endoglucanasa
Fase polímero (REPPAL) +
agua
Fase detergente +
agua