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UNIVERSIDAD NACIONAL MAYOR DE SAN MARCOS FACULTAD DE FARMACIA Y BIO QUÍMICA E.A.P. DE FARMACIA Y BIOQUÍMICA Determinación de la actividad antifúngica contra Candida Albicans y Aspergillus Niger de 10 plantas medicinales de 3 departamentos del Perú TESIS para optar el Título Profesional de Químico Farmacéutico AUTOR María Elena Huamaní Achata Julio Reynaldo Ruiz Quiroz ASESOR Mirtha Roque Alcarraz Lima – Perú 2005

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UNIVERSIDAD NACIONAL MAYOR DE SAN MARCOS FACULTAD DE FARMACIA Y BIO QUÍMICA

E.A.P. DE FARMACIA Y BIOQUÍMICA

Determinación de la actividad antifúngica contra

Candida Albicans y Aspergillus Niger de 10 plantas

medicinales de 3 departamentos del Perú

TESIS

para optar el Título Profesional de Químico Farmacéutico

AUTOR

María Elena Huamaní Achata

Julio Reynaldo Ruiz Quiroz

ASESOR

Mirtha Roque Alcarraz

Lima – Perú

2005

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A Dios nuestro más importante guia, por habernos dado la vida y el valor necesario paraafrontarla. A la Dra Mirtha Roque Alcarraz, por su amistad, sus valiosos consejos y el tiempodedicado, muchas gracias. A los miembros del jurado calificador: Presidente : Q.F. Jose IreyNamijira Miembros : Q. F. Rosario Carreño Quispe Mg. Luis Miguel Felix Veliz Q. F. MariaElena Salazar Salvatierra Por sus valiosas sugerencias y consejos.

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El presente trabajo investigo la actividad antifúngica in vitro de doce extractos etanolicoscorrespondientes a diez plantas medicinales peruanas; Annona cherimolia Mill.(hojas), Annonamuricata L.(corteza y hojas), Bidens pilosa L.(partes aéreas), Hypericum laricifolium L.(partesaéreas), Juglans neotropica Diels(corteza), Piper spp. (hojas), Plantago major L.(hojas),Psidium guajava L.(hojas), Schinus molle L.(corteza y hojas) y Spartium junceum L. (plantaentera). Las especies fueron recolectadas en el departamento de Amazonas, excepto Schinusmolle L. (Apurímac) y Annona muricata L. (Lima). La actividad antifúngica se evaluo mediantelos métodos de difusión en agar y dilución en agar para la determinación de la concentraciónmínima inhibitoria (CMI). Los microorganismos de prueba utilizados fueron las levadurasCandida albicans ATCC 10231 y Candida albicans cepa clínica, así como, el hongo filamentosoAspergillus niger ATCC 16404; las cepas fueron proporcionadas por la Cátedra deMicrobiología de la Facultad de Farmacia y Bioquímica de la Universidad Nacional Mayor deSan Marcos. De doce extractos investigados, seis presentaron actividad antifúngica consistentecon un diámetro de halos de inhibición #18mm (Prueba de Difusión en agar) frente a Candidaalbicans ATCC 10231. Ningún extracto mostró actividad consistente frente a la cepa clínica deCandida albicans y Aspergillus niger ATCC 16404. La CMI de los extractos que presentaronactividad consistente frente a Candida albicans ATCC 10231, fue de 250 µg/mL para Hypericumlaricifolium L., Juglans neotropica Diels, Psidium guajava L. y Schinus molle L. (un extracto decorteza y uno de hojas) y de 500µg/mL para Piper spp. No se determino la CMI de los extractos(Juglans neotropica Diels y Psidium guajava L.) que presentaron halos frente al Aspergillusniger ATCC 16404 por considerarlos sin actividad significante (<18mm.). Los antifúngicosNistatina y Fluconazol fueron incluidos en el estudio como controles positivos.

Palabras clave: Actividad antifúngica, plantas medicinales, plantas del Perú, Amazonas,concentración mínima inhibitoria, Candida albicans, Aspergillus niger.

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The present work investigated the antifungal activities in vitro of twelve ethanolic extractscorresponding to ten peruvian medicinal plants; Annona cherimolia Mill. (leaves), Annonamuricata L. (bark and leaves), Bidens pilosa L. (aerial parts), Hypericum laricifolium L. (aerialparts), Juglans neotropica Diels (bark), Piper spp. (leaves), Plantago major L. (leaves), Psidiumguajava L. (leaves), Schinus molle L. (bark and leaves) and Spartium junceum L. (whole plant).The plants were collected in the department of Amazonas, except Schinus molle L (Apurímac)and Annona muricata L. (Lima). The antifungal activities were determinated by the methods ofagar diffusion and agar dilution for the determination of the Minimal Inhibitory Concentration(MIC). The used microorganisms of test were the yeasts Candida albicans ATCC 10231 andCandida albicans clinical isolate, as well as, the filamentous fungus Aspergillus niger ATCC16404; the microorganism were provided by the Chair of Microbiology of Faculty of Pharmacyand Biochemistry of the Universidad Nacional Mayor de San Marcos. Of twelve investigatedextracts, six presented significant antifungal activity with a diameter of inhibition haloes #18mm(Agar Diffusion) against Candida albicans ATCC 10231. No extract showed significant activityagainst to Candida albicans clinical isolate and Aspergillus niger ATCC 16404. The MIC of theextracts that presented significant activity against Candida albicans ATCC 10231, were of250µg/mLfor Hypericum laricifolium L., Juglans neotropica Diels, Psidium guajava L. andSchinus molle L.(bark and leaf extracts) and of 500µg/mL for Piper spp. We do not determinethe MIC of the extracts (Juglans neotropica Diels and Psidium guajava L.) that presented haloesagainst Aspergillus niger ATCC 16404 for considering them without significant activity(<18mm.). The antifungal agents Nistatin and Fluconazole were included in the study as positivecontrols.

Key words: Antifungal activity, medicinal plants, Peruvian plants, Amazonas, minimalinhibitory concentration, Candida albicans, Aspergillus niger.

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