Laboratorio de GenéticaBIOL 3300L

Amplificación de DNA in vitro:

PCR (Polymerase Chain Reaction)

Objetivos

Conocer:

Los fundamentos de la técnica de amplificación de DNA por PCR

Usos y aplicaciones del PCR

Ventajas y desventajas del PCR

Métodos de secuenciación de DNA

PCR Polymerase Chain

Reaction Es la amplificación de DNA in vitro por medio de la polimerización en cadena de DNA utilizando un termociclador.

El propósito del PCR es hacer muchas copias de un fragmento de DNA.

Se realiza la amplificación de un segmento específico de DNA, teniendo poco material disponible.

Polimerasa Chain Reaction: Reacción en Cadena de la

Polimerasa Fue diseñada por el Dr.

Kary Mullis en 1987.

Ganó el premio Nóbel de Química en 1993 por su invento.

Utilizo el PCR para amplificación del gen de -hemoglobina humana, y el diagnostico prenatal de anemia falciforme.

Termociclador

La PCR se realiza en un “Thermo Cycler” Termociclador.

Es una máquina que calienta y enfría la reacción en periodos cortos de tiempo.

1. Desnaturalización: Consiste en separar la doble hebra de DNA y convertirla en hebra sencilla.

-Típicamente se usa una temperatura de 95˚C - 97˚C, por 15 a 40 segundos –el tiempo depende del tamaño del genoma-

El proceso de “PCR” incluye 3 pasos básicos que se repiten 25 veces o más:

2. Apareamiento o “anneling”: Los cebadores “primers” previamente diseñados,

reaccionan con la hebra sencilla de DNA y se pegan en lugares específicos por complementariedad de bases. Para esto, se baja la temperatura -ej: 55˚C por 30 segundos-. La temperatura y el tiempo puede variar entre cebadores según sea el caso.

3. Polimerización o Extensión.

Una Polimerasa de DNA extiende los “primers”, en el

espacio comprendido entre ambos “primers”, y coloca

dinucleotidos trifosfatados (dNTP’s) de 5’a 3’ leyendo el

DNA de 3’a 5’. De estas forma sintetiza la secuencia

complementaria de las hebras de DNA molde

Se efectúa a 70˚C por 1½ minutos (puede variar según

sea necesario)

Los pasos 1, 2 y 3 se repiten cuantas veces sea necesario.

En el PCR hay una amplificación exponencial

Reactivos necesarios para PCR: Amortiguador (Buffer): 50mM KCl, 10mM Tris. Cl (pH

8.3 a temperatura ambiente) y 1.5 mM MgCl2. MgCl2: Puede estar en forma de MgCl2, MgSO4. Se

usa 25mM -Es un cofactor para la función de la polimerasa-

dNTP’s (Dinucleotidos trifosfatados): dATP, dGTP, dCTP, dTTP.

-La concentración de dNTPS, es proporcional al tamaño del fragmento que se desea amplificar. Ej: Si vamos a amplificar un fragmento de 500pb vs uno de 5500 pb, necesitamos más concentración de dNTPS para el de 5500pb.

-Generalmente, se usa una concentración de 200M de cada uno.

Reactivos necesarios para PCR: Cebadores “primers”: Son secuencias cortas de nucleótidos 20-24 nucleótidos de longitud, complementarias a una región del DNA que se quiere amplificar. -Se usa a concentración de 1M-

DNA molde: El DNA a amplificar puede tener desde 50 a 2,000 nucleótidos de longitud.El mínimo va de 10-100 ng. y el máximo entre 400-500 ng.

Polimerasa: Generalmente se usa 2 unidades por reacción.

ADYUVANTES DE LA PCR

Son elementos que mejoran el rendimiento y la especificidad de la PCR.

Se usa DMSO, glicerol o BSA.

El adyuvante más utilizado es el BSA. A concentraciones por encima de 0.8 µg/µl el BSA incrementa la eficiencia de la PCR ya actúa como una proteína captadora de iones que pueden ser inhibidores de la Taq polimerasa

•En un principio, la polimerasa de DNA que se utilizaba era de la bacteria E. coli, pero esta es sensitiva a alta temperatura, por lo que había que añadir enzima fresca al comenzar el tercer ciclo.

•Se reemplazo la enzima por la de la bacteria “Thermus aquaticus” conocida como Taq pol

Polimerasa

Análisis de la Muestra

La detección del producto de la PCR se realiza normalmente mediante corrido electroforético.

Dependiendo del tamaño de la amplificación y la resolución que deseemos utilizaremos diferentes medios (agarosa, poliacrilamida) a distintas concentraciones.

Análisis de la Muestra• La posterior visualización se puede realizar con

bromuro de etidio (lámpara de luz UV), tinción de

plata, fluorescencia, radioactividad Ladder: pesos conocidos

1: Fragmento a 1857 pb

2 y 4: Fragmento a 800 pb

3: No hay producto

5: Multiples bandas (primers inespecíficos se pegan a varios sitios)

Análisis de la Muestra

En algunos casos, los productos amplificados poseen secuencias que son reconocidas por endonucleasas

Hibridación, Southern Blot

Se puede amplificar directamente de: ADN genómico cDNA (RT-PCR)

AplicacionesDetección de agentes infecciosos como: hepatitis B y C, papiloma virus, HIV, entre otros Análisis de DNA de cualquier organismo vivo o muerto, análisis de fósilesMutagénesis dirigida (cambios en la información contenida a través de “primers” con mutaciones)Investigación forensePruebas de paternidad

Aplicaciones

Ejemplo de un caso de criminalística resuelto utilizando electroforesis en gel vertical de acrilamida.

Si se observan los patrones bandas podrá comprobarse como los perfiles obtenidos en las manchas de sangre encontradas en el sombrero (Hat) y pantalón (Jeans) del sospechoso (S) coinciden con el perfil genético de la víctima (V)

Criminalística

Utilidad del PCR

Ventajas del “PCR”

A partir de una muestra pequeña de ADN se puede obtener

una cantidad considerable para el estudio que se vaya a

realizar.

El producto se puede utilizar para clonar, secuenciar y

análisis.

Se puede amplificar ADN de cualquier organismo vivo o

muerto.

Sus aplicaciones son múltiples: medicina forense,

diagnósticos, análisis prenatales, etc.

Desventajas del “PCR” Se puede reproducir solamente partes del genoma en

donde se conoce por lo menos una mínima secuencia de

20 – 40 pb.

Se necesitan “primers” específicos que sean

complementarios al fragmento que se desea sintetizar.

La polimerización puede tener errores al sintetizar el ADN

Puede contaminarse con otro ADN (puede ser del mismo

investigador o de cualquier otro)

Materiales Para PCR

Termociclador “Thermo cycler”

Microcentrífuga

Micropipetas de 2, 20 y 200 ul

Microtubos para “PCR”, estériles

Puntas estériles

Agua destilada, desionizada y

estéril

ADN molde (ADN en estudio)

Primer Forward y Reverse

dNTP’s (dATP, dTTP, dCTP,

dGTP de [25 μM] c/u)

10X buffer para PCR (Solución

amortiguadora para “PCR”)

MgCl2 (25 mM)

BSA

Polimerasa Taq

Fenotipo Puertorriqueño

Herencia del DNA mitocondrial

•Amplificaremos una region hipervariable. Genoma de 16571 pares de bases: Hebra pesada (H), Hebra liviana (L). Primer Directo H34, primer reverso L15829

Procedimiento para extracción del DNA genómico (previamente realizado) Se realizó un frotis bucal El contenido del hisopo “swab” se resuspende en 1000ul de NaCl 0.9% Centrifugar por 5 minutos a 7K Descarta sobrenadante Resuspender el precipitado “pellet” en 500ul de chelex al 10% Incubar a 100˚C por 20 minutos Centrifugar por 5 minutos a 7K Tomar el sobrenadante ( DNA en solución) Dejar la muestra a -20 grados hasta cuando se va a trabajar con ellaNota: El chelex actúa como agente desestabilizador de membranas y quelante.

Diagrama de la extracción del DNA genómico (previamente realizado)

Procedimiento para amplificar el DNA (PCR) Añada los siguientes reactivos en el orden indicado:

Cantidad (ul) Componente

10.3 Agua estéril (dH2O)

3.0 MgCl2 25mM

0.5 BSA 100X

1.5 2.5 Mm de dNTPs

1.0 Primer H34. 5’-3’

1.0 Primer L15829. 3’-5’

2.5 Buffer 10X

0.2 Taq pol

5.0 DNA en estudio

Mix 117.3

Mix 22.7

Total: 25 ul

Condiciones para reacción en el

termociclador:

1 ciclo : 94°C por 2.5 minutos.

32 ciclos: 94 °C por 30 segundos

54 °C por 1 minutos

72 °C por 70 segundos

1 ciclo: 72 °C por 10 minutos

Lleve a reaccionar en el termociclador.

Secuenciación de DNA

Método enzimático de terminación de cadena (método dideoxi de Sanger)

Polimerización interrumpida de ADN Se lleva a cado polimerización de ADN en

presencia de derivados dideoxi que detienen la polimerización en diferente momento, obteniéndose fragmentos de diferente tamaño.

Se examinan en electroforesis, se “lee” secuencia directamente del gel

Método dideoxi de Sanger

Método dideoxi de Sanger (2)

Método dideoxi de Sanger (3)

Método secuenciación automática

Electroferograma de la secuenciación automática

Geles de secuencia

Secuencia automática Secuencia Manual

Direcciones de animaciones

Dirección PCR

http://www.sumanasinc.com/webcontent/anisamples/molecularbiology/pcr.html

Dirección de secuenciación

http://smcg.cifn.unam.mx/enp-unam/03-EstructuraDelGenoma/animaciones/secuencia.swf