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M.Sc. Elmer René Chávez Araujo Amplificación de DNA in vitro: PCR (Polymerase Chain Reaction)

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reacción de la cadena polimesa

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M.Sc. Elmer René Chávez Araujo

Amplificación de DNA in vitro:

PCR (Polymerase Chain Reaction)

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PCR Polymerase Chain

Reaction Es la amplificación de DNA in vitro por medio de la polimerización en cadena de DNA utilizando un termociclador.

El propósito del PCR es hacer muchas copias de un fragmento de DNA.

Se realiza la amplificación de un segmento específico de DNA, teniendo poco material disponible.

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Polimerasa Chain Reaction: Reacción en Cadena de la

Polimerasa Fue diseñada por el Dr.

Kary Mullis en 1987.

Ganó el premio Nobel de Química en 1993 por su invento.

Utilizó el PCR para amplificación del gen de -hemoglobina humana, y el diagnóstico prenatal de anemia falciforme.

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Termociclador

La PCR se realiza en un “Thermo Cycler” Termociclador.

Es una máquina que calienta y enfría la reacción en períodos cortos de tiempo.

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1. Desnaturalización: Consiste en separar la doble hebra de DNA y convertirla en hebra sencilla.

-Típicamente se usa una temperatura de 94˚C - 97˚C, por 15 a 40 segundos.

- el tiempo depende del tamaño del genoma

El proceso de “PCR” incluye 3 pasos básicos que se repiten 25 veces o más:

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2. Apareamiento o “anneling”: Los cebadores “primers” previamente diseñados,

reaccionan con la hebra sencilla de DNA y se pegan en lugares específicos por complementariedad de bases. Para esto, se baja la temperatura -ej: 54˚C por 30 segundos-. La temperatura y el tiempo puede variar entre cebadores según sea el caso.

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3. Polimerización o Extensión.

Una Polimerasa de DNA extiende los “primers”, en el

espacio comprendido entre ambos “primers”, y coloca

dinucleótidos trifosfatados (dNTP’s) de 5’a 3’ leyendo el

DNA de 3’a 5’. De estas forma sintetiza la secuencia

complementaria de las hebras de DNA molde

Se efectúa a 72˚C por 1½ minutos (puede variar según sea

necesario)

Los pasos 1, 2 y 3 se repiten cuantas veces sea necesario.

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En el PCR hay una amplificación exponencial

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Reactivos necesarios para PCR: Amortiguador (Buffer): 50mM KCl, 10mM Tris. Cl (pH

8.3 a temperatura ambiente) y 1.5 mM MgCl2. MgCl2: Puede estar en forma de MgCl2, MgSO4. Se

usa 25mM -Es un cofactor para la función de la polimerasa-

dNTP’s (Dinucleotidos trifosfatados): dATP, dGTP, dCTP, dTTP.

- La concentración de dNTPS, es proporcional al tamaño del fragmento que se desea amplificar. Ej: Si vamos a amplificar un fragmento de 500pb vs uno de 5500 pb, necesitamos más concentración de dNTPS para el de 5500pb.

- Generalmente, se usa una concentración de 200M de cada uno.

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Reactivos necesarios para PCR: Cebadores “primers”: Son secuencias cortas de nucleótidos 20-24 nucleótidos de longitud, complementarias a una región del DNA que se quiere amplificar. -Se usa a concentración de 1M-

DNA molde: El DNA a amplificar puede tener desde 50 a 2,000 nucleótidos de longitud.El mínimo va de 10-100 ng. y el máximo entre 400-500 ng.

Polimerasa: Generalmente se usa 2 unidades por reacción.

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ADYUVANTES DE LA PCR

Son elementos que mejoran el rendimiento y la especificidad de la PCR.

Se usa DMSO, glicerol o BSA. El adyuvante más utilizado es el BSA. A

concentraciones por encima de 0.8 µg/µl el BSA incrementa la eficiencia de la PCR ya actúa como una proteína captadora de iones que pueden ser inhibidores de la Taq polimerasa.

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•En un principio, la polimerasa de DNA que se utilizaba era de la bacteria E. coli, pero esta es sensitiva a alta temperatura, por lo que había que añadir enzima fresca al comenzar el tercer ciclo.

•Se reemplazo la enzima por la de la bacteria “Thermus aquaticus” conocida como Taq pol.

Polimerasa

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Análisis de la Muestra

La detección del producto de la PCR se realiza normalmente mediante corrido electroforético.

Dependiendo del tamaño de la amplificación y la resolución que deseemos utilizaremos diferentes medios (agarosa, poliacrilamida) a distintas concentraciones.

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Análisis de la Muestra• La posterior visualización se puede realizar con

bromuro de etidio (lámpara de luz UV), tinción de

plata, fluorescencia, radioactividad

Ladder: pesos conocidos

1: Fragmento a 1857 pb

2 y 4: Fragmento a 800 pb

3: No hay producto

5: Multiples bandas (primers inespecíficos se pegan a varios sitios)

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Análisis de la Muestra

En algunos casos, los productos amplificados poseen secuencias que son reconocidas por endonucleasas.

Hibridación, Southern Blot

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Se puede amplificar directamente de: ADN genómico cDNA (RT-PCR)

AplicacionesDetección de agentes infecciosos como: hepatitis B y C, papiloma virus, HIV, entre otros Análisis de DNA de cualquier organismo vivo o muerto, análisis de fósilesMutagénesis dirigida (cambios en la información contenida a través de “primers” con mutaciones)Investigación forensePruebas de paternidad

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Aplicaciones

Ejemplo de un caso de criminalística resuelto utilizando electroforesis en gel vertical de acrilamida.

Si se observan los patrones bandas podrá comprobarse como los perfiles obtenidos en las manchas de sangre encontradas en el sombrero (Hat) y pantalón (Jeans) del sospechoso (S) coinciden con el perfil genético de la víctima (V)

Criminalística

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Ventajas del “PCR”

A partir de una muestra pequeña de ADN se puede obtener

una cantidad considerable para el estudio que se vaya a

realizar.

El producto se puede utilizar para clonar, secuenciar y

análisis.

Se puede amplificar ADN de cualquier organismo vivo o

muerto.

Sus aplicaciones son múltiples: medicina forense,

diagnósticos, análisis prenatales, etc.

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Desventajas del “PCR” Se puede reproducir solamente partes del genoma en

donde se conoce por lo menos una mínima secuencia de

20 – 40 pb.

Se necesitan “primers” específicos que sean

complementarios al fragmento que se desea sintetizar.

La polimerización puede tener errores al sintetizar el ADN

Puede contaminarse con otro ADN (puede ser del mismo

investigador o de cualquier otro)

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Materiales Para PCR

Termociclador “Thermo cycler”

Microcentrífuga

Micropipetas de 2, 20 y 200 ul

Microtubos para “PCR”, estériles

Puntas estériles

Agua destilada, desionizada y

estéril

ADN molde (ADN en estudio)

Primer Forward y Reverse

dNTP’s (dATP, dTTP, dCTP,

dGTP de [25 μM] c/u)

10X buffer para PCR (Solución

amortiguadora para “PCR”)

MgCl2 (25 mM)

BSA

Polimerasa Taq

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Procedimiento para amplificar el DNA (PCR) Añada los siguientes reactivos en el orden indicado:

Cantidad (ul) Componente

10.3 Agua estéril (dH2O)

3.0 MgCl2 25mM

0.5 BSA 100X

1.5 2.5 Mm de dNTPs

1.0 Primer H34. 5’-3’

1.0 Primer L15829. 3’-5’

2.5 Buffer 10X

0.2 Taq pol

5.0 DNA en estudio

Mix 117.3

Mix 22.7

Total: 25 ul

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Condiciones para reacción en el

termociclador:

1 ciclo : 94°C por 2.5 minutos.

32 ciclos: 94 °C por 30 segundos

54 °C por 1 minutos

72 °C por 70 segundos

1 ciclo: 72 °C por 10 minutos

Lleve a reaccionar en el termociclador.