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Ministère de la Santé, du Planning
Familial et de la Protection Sociale
Madagascar
Ministère de la Santé, du Planning
Familial et de la Protection Sociale
Madagascar
Anophèles transgéniques dans la lutte contre le paludisme: est-ce
réaliste?
DRAME Papa Makhtar
Etudiant-Chercheur,Centre IRD de Dakar, SENEGAL
EVALUATION
par les FACILITATEURS
2
Introduction
Les mesures actuelles de lutte contre le vecteur visant à rompre la transmission:
Pulvérisation d’insecticides
Mais incidence, morbidité et mortalité palustres augmentent dans de nombreux pays endémiques ces dernières années
Lutte anti-larves (poissons larvivores ou bactéries pathogènes)
Usage des moustiquaires imprégnées insecticides et répulsifs
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Limites socio-économiques et éthiques
Nécessité de nouvelles approches de lutte contrela transmission par le vecteur
� Contre le DDT et la dieldrine années 60 et 70
� Contre les insecticides de nouvelle génération: pyréthrinoïdes
� Résistance croisée DDT et pyréthrinoïdes
� Pas d’alternative au DDT et pyréthrinoïdes
Résistance du vecteur aux insecticides
� En Afrique 15% des enfants - 5 ans dorment sous moustiquaires
� - 2% utilisent des moustiquaires imprégnées d’insecticide
Résistances aux médicaments
Vaccin tarde à venir
Introduction (2)
4
Les moustiques transgéniques (MT)
Naissance du concept: (Boete, 2006)
- Rubin et Spradling (1982): modification génétique de Drosophila grâce à un P-élément.
- début années 90 (Tucson, Arizona-USA): Conférence «Prospects for malaria control
by genetic manipulation of its vectors»
- 1 programme de développement de moustiques génétiquement modifiés sur 20ans
Objectif:
Remplacer les populations de moustiques vectrices par des populations non
vectrices afin de stopper la transmission
Définition:
Organisme dans lequel a été inséré un nouveau gène ou dont
l’expression d’un gène a été modifiée
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Principes
� ciblent différents stades du cycle vital du parasite et du moustique:
- Rendre les moustiques stériles pour contrôler les moustiques normaux
- Rendre le moustique inapte à la transmission:
Bloquer passage du parasite dans l’intestin après repas de sang
Empêcher le passage du Plasmodium du tube digestif aux glandes salivaires
� La connaissance des moustiques et parasites permet
- Identifier et développer des gènes promoteurs
- Identifier les gènes récepteurs d’un pathogène
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Moustiques paratransgéniques
� Manipulation génétique bactéries symbiotiques ou commensales des moustiques
hôtes afin de modifier la transmission des pathogènes
(Yoshida et al., 2001)
Effet d’une recombinante de E. coli, exprimant le gène 13.1 scFv-Shiva-1 (single-chainantibody fragment virus) sur le développement sporogonique
Résultats (1)
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Résultats (2)
� Différentes études ; transformation de plusieurs espèces
moustiques: An. gambiae,An. stephensi...
Chronologie des moustiques transgéniques
(Moreira et al, 2002b)
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�Découverte de la PLA2 (Phospolipase A2):
- protéine de l’épithélium du tube digestif des moustiques.
- An.stephensi transgénique est capable d’exprimer le gène PLA2
- blocage développement du parasite dans des moustiques
(Moreira et al, 2002a)
� Découverte de SM1 (Salivary-gland & Midgut-binding peptid-1):
- Peptide qui se lie exclusivement aux cellules de l’estomac
et des glandes salivaires du moustique.
- Le gène SM1 produit par An.stephensi transgénique: pas de
contamination par les parasites
(Ito et al, 2002)
Résultats (2, suite)
�Découverte de la PLA2 (Phospolipase A2):
- protéine de l’épithélium du tube digestif des moustiques.
- An.stephensi transgénique est capable d’exprimer le gène PLA2
- blocage développement du parasite dans des moustiques
(Moreira et al, 2002a)
� Découverte de SM1 (Salivary-gland & Midgut-binding peptid-1):
- Peptide qui se lie exclusivement aux cellules de l’estomac
et des glandes salivaires du moustique.
- Le gène SM1 produit par An.stephensi transgénique: pas de
contamination par les parasites
(Ito et al, 2002)
11 (Ito et al, 2002)
Diagramme schématique de la construction plasmodique AgCP[SM1]
Résultats (2, suite)
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Inhibition de la formation des oocystes dans le MT par le SM1
(Ito et al, 2002)
Inhibition de la formation des sporozoîtes dans le MT par le SM1
81,6
Résultats (3)
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Inhibition de la formation des oocystes dans le MT par la PLA2
Inhibition de la formation des sporozoîtes dans le MT par la PLA2
(Moreira et al, 2002a)
Résultats (3, suite)
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Model d’interférence entre parasite et hôte
SM1 bloque les récepteurs de l’ookinète et des sporozoites
(Ghosh et al, 2001)
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(Catteruccia et al, 2000)
Capacité des MT à survivre et à se reproduire (la «Fitness»)?
Croisement MT et MN de même souche
� MT capables de transférer le gène de résistance au MNdonner individus hétéro et homogygotes
Ind hétérogygotes:
- même fluorescence que les homogygotes (Ito et al, 2002)
- assurent la transposition du gène (Marelli et al, 2006)
Résultats (4)
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Fécondité de MT et MS piquant des souris infectés par P. berghei
Mortalité de MT et MS piquant des souris infectés par P. berghei
(Marrelli et al, 2007)
Résultats (4, suite)
MT partiellement résistant à P.
berghei: meilleure fitness que les MN sensibles
Fitness of refractoriness (suite)
P= 0,99P= 0,027
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Conclusions
Nouvelles approches dans la lutte antipaludique car réduction de la
transmission
Un excellent outil de laboratoire permettant de caractériser des gènes
d’intérêt.
Les applications de ces recherches peuvent servir à:
- l’utilisation rationnelle des insecticides,
- la mise au points des nouveaux répulsifs anti-moustiques
- la recherche des médicaments
- et peut être de vaccin.
L’utilisation des MT constitue:
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Quelle est l’efficacité de ces gènes en milieu naturel?
(Boete et Koella, 2003)
Comment se fera l’évolution de MT dans le milieu naturel?
Comportement des MT dans l’environnement non étudié?
(Lambrechts et al, 2006 & 2008)
Acceptabilité par les populations, questions socio-éthiques
(Knols et al, 2007)
Vecteurs d’autres maladies parasitaires ou virales?
Origine des parasites résistants?
Mais résultats obtenus uniquement au labo:
Conclusions (2)
19
1- Boete C & Koella JC. Evolutionary ideas about genetically manipulated mosquitoes and malaria Control.
TRENDS in Parasitology Vol.19 No.1 January 2003.
2- Catteruccia F, Nolan T, Loukeris TG, Blass C, Savakis C. Kafatos FC & Crisanti A., 2000. Stable germline
transformation of the malaria mosquito Anopheles stephensi. Nature 405, 959–962.
3- Ghosh AK, Moreira LA & Jacobs-Lorena M. Plasmodium–mosquito interactions, phage display libraries and
transgenic mosquitoes impaired for malaria transmission. Insect Biochemistry and Molecular Biology 32 (2002) 1325–1331.
4- Habeck M. Transgenic mosquitoes to control malaria. THE LANCET Infectious Diseases Vol 1 November 2001
5- Hurd H. Nature or nurture in mosquito resistance to malaria? TRENDS in Parasitology, 2007; 2 (4)
6- Ito, J., Ghosh, A., Moreira, L. A., Wimmer, E. A. and Jacobs-Lorena, M. (2002). Transgenic anopheline
mosquitoes impaired in transmission of a malaria parasite. Nature 417, 452-455.
7- Knols BGJ, Bossin HC, Mukabana WR & Robinson AS. Transgenic Mosquitoes and the Fight Against Malaria: Managing Technology Push in a Turbulent GMO World. Am. J. Trop. Med. Hyg., 77(Suppl 6), 2007, pp. 232–242.
8- Lambrechts L. et al. (2006) Environmental influence on the genetic basis of mosquito resistance to malaria
parasites. Proc. Biol. Sci. 273, 1501–1506
9- Lambrechts L, Koella JC & Boete C. Can transgenic mosquitoes afford the fitness cost? TRENDS in Parasitology,
2008; 24 (1).
10- Marrelli MT, Li C, Rasgon JL & Marcelo Jacobs-Lorena. Transgenic malaria-resistant mosquitoes have a fitness
advantage when feeding on Plasmodium-infected blood. Edited by Anthony A. James, University of California,
February 21, 2007.
Références Bibliographiques
20
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TRENDS in Parasitology Vol.22 No.5 May 2006
12- Michael A. Riehle, Prakash Srinivasan, Cristina K. Moreira and Marcelo Jacobs-Lorena. Towards genetic
manipulation of wild mosquito populations to combat malaria: advances and challenges. 2003.
Journal of Experimental Biology 206, 3809-3816
13- Moreira, L. A., Ito, J., Ghosh, A., Devenport, M., Zieler, H., Abraham, E.G., Crisanti, A., Nolan, T., Catteruccia, F. and Jacobs-Lorena, M. (2002 a). Bee venom phospholipase inhibits malaria parasite development in transgenic
mosquitoes. J. Biol. Chem. 277, 40839-40843.
14- Moreira LA, Ghosh AK, Abraham EG, Jacobs-Lorena M. (2002b). Genetic transformation of mosquitoes: a quest for
malaria control. International Journal for Parasitology 32 (2002) 1599–1605
15- Riehle MA, Srinivasan P, Moreira CK & Jacobs-Lorena M. 2003 Towards genetic manipulation of wild mosquito
populations to combat malaria: advances and challenges. Journal of Experimental Biology 206, 3809-3816
16- Yoshida, S., Ioka, D., Matsuoka, H., Endo, H. and Ishii, A. (2001). Bacteria expressing single-chain immunotoxin inhibit
malaria parasite development in mosquitoes. Mol. Biochem. Parasitol. 113, 89-96.
Références Bibliographiques