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UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR
FACULTAD DE CIENCIAS MÉDICAS
CARRERA DE LABORATORIO CLINICO E
HISTOTECNOLOGICO
Identificación de microorganismos causantes de mastitis en madres lactantes
hospitalizadas que acuden al servicio de banco de leche humana del Hospital
Gineco-Obstétrico Isidro Ayora, en el periodo julio- agosto 2016
Trabajo de Titulación previo a la obtención del título de licenciada en laboratorio
Clínico e Histecnológico.
Autora: Guerrero Arteaga Johana Elizabeth
Tutora: MSc. María Lucrecia Pabón Castillo
D.M. Quito, 2016
ii
DEDICATORIA
El presente trabajo está dedicado a la memoria de mi padre Edmundo Guerrero quien me
enseñó a dejar una huella donde quiera que vaya y a no rendirme jamás sea cual fuere la
circunstancia y a mi querida madre Carmen Arteaga el otro pilar de mi familia ya que es ella
quien me impulsa a esforzarme día tras día.
Con mucho amor para ustedes LA NIÑA DE SUS OJOS.
Quito, 2016
iii
AGRADECIMIENTO
A mí amado YHWH, ya que por su infinito amor y fidelidad hoy veo un sueño más
cumplido.
A mi familia quien me ha dado el impulso para continuar a pesar de las dificultades, y
quienes me han apoyado en cada rumbo de mi vida.
Quiero agradecer también a mi tutora la Msc. Lucrecia Pabón por sus consejos y
paciencia brindados a lo largo de este trabajo.
Y por último pero no menos importante un agradecimiento muy especial al Dr. Gastón
Zambrano, la Msc. Silvia Cóndor y a todo el personal que forma parte tanto del servicio de
Laboratorio Clínico como del servicio de Banco de Leche Humana del HGOIA, quienes me
brindaron la más sincera y desinteresada de las ayudas durante esta etapa.
Guerrero Arteaga Johana Elizabeth
Quito, 2016
iv
AUTORIZACIÓN DE LA PUBLICACIÓN DEL TRABAJO DE TITULACIÓN
Yo, Guerrero Arteaga Johana Elizabeth, en calidad de autora del Trabajo de Investigación o
Tesis sobre: “Identificación de microorganismos causantes de mastitis en madres lactantes
hospitalizadas que acuden al servicio de banco de leche humana del Hospital Gineco-Obstétrico
Isidro Ayora, en el periodo julio- agosto 2016”; por la presente autorizo a la Universidad
Central del Ecuador hacer uso de todos los contenidos que me pertenecen o parte de los que
contiene esta obra, con fines estrictamente académicos o de investigación.
Los derechos que como autora me corresponden, con excepción de la presente autorización,
seguirán vigentes a mi favor, de conformidad con lo establecido en los artículos 5, 6, 8, 19 y
demás pertinentes de la Ley de Propiedad Intelectual y su Reglamento.
Quito, 08 de Noviembre del 2016
Guerrero Arteaga Johana Elizabeth
CI: 0401641030
E-mail: jega9781@gmail.
v
APROBACIÓN DEL TUTOR/A DEL TRABAJO DE TITULACIÓN
En mi calidad de Tutora del Trabajo de Titulación, presentado por JOHANA ELIZABETH
GUERRERO ARTEAGA, para optar por el Grado de Licenciada en Laboratorio Clínico e
Histotecnológico, cuyo título es: IDENTIFICACIÓN DE MICROORGANISMOS
CAUSANTES DE MASTITIS EN MADRES LACTANTES HOSPITALIZADAS QUE
ACUDEN AL SERVICIO DE BANCO DE LECHE HUMANA DEL HOSPITAL
GINECO-OBSTÉTRICO ISIDRO AYORA, EN EL PERIODO JULIO- AGOSTO 2016,
considero que dicho trabajo reúne los requisitos y méritos suficientes para ser sometido a la
presentación pública y evaluación por parte del tribunal examinador que se designe.
En la ciudad de Quito, a los 23 días del mes de agosto de 2016
MSc. María Lucrecia Pabón Castillo
DOCENTE-TUTORA
vi
APROBACIÓN DEL TRIBUNAL
Los miembros del Tribunal Examinador aprueban el informe de titulación “IDENTIFICACIÓN
DE MICROORGANISMOS CAUSANTES DE MASTITIS EN MADRES LACTANTES
HOSPITALIZADAS QUE ACUDEN AL SERVICIO DE BANCO DE LECHE HUMANA
DEL HOSPITAL GINECO-OBSTÉTRICO ISIDRO AYORA, EN EL PERIODO JULIO-
AGOSTO 2016”, presentado por: JOHANA ELIZABETH GUERRERO ARTEAGA.
Para constancia certifican,
MSc. Yolanda Paredes MSc. Mercedes Tapia
PRESIDENTE VOCAL
Dr. Marcelo Chiriboga
VOCAL
vii
TÍTULO: “Identificación de microorganismos causantes de mastitis en madres lactantes
hospitalizadas que acuden al servicio de banco de leche humana del Hospital Gineco-Obstétrico
Isidro Ayora, en el periodo julio- agosto 2016”
Autora: Johana Elizabeth Guerrero Arteaga
Tutora: MSc. María Lucrecia Pabón Castillo
RESUMEN
La OMS y la OPS hoy en día a nivel mundial promueven la lactancia materna exclusiva
durante los primeros seis meses de vida, sin embargo en algunos casos esta puede verse
interrumpida por la presencia de mastitis, la misma que en la práctica médica a diario en los
hospitales materno infantiles neonatales el diagnóstico se basa generalmente en la inspección
visual y no complementan con el diagnóstico microbiológico. Razón por la que se realizó este
estudio prospectivo no experimental de corte transversal en 69 madres lactantes con diagnóstico
clínico presuntivo de mastitis, que acudieron al Banco de Leche Humana del Hospital Gineco
Obstétrico Isidro Ayora durante los meses Julio y Agosto 2016, a las que se les realizo cultivos
de la leche materna para confirmar este diagnóstico. Los resultados que se obtuvieron con el
estudio microbiológico fueron 15 casos positivos (22.74%), de los cuales, 8 correspondieron a
madres menores de 20 años de edad (53,33%) y 7 a mayores de 20 años (46.66%).Además se
encontró que 13 madres eran primíparas (86.67%) y 2 multíparas (13.33%). Los
microorganismos más frecuentes encontrados en los cultivos positivos fueron el Staphylococcus
epidermidis (53.33%), Staphylococcus aureus (33.33%), Serratia liquefaciens (6.67%) y
Enterobacter aerogenes (6.67%). Estos resultados permiten concluir que el 22.74% de madres
lactantes fueron confirmadas con mastitis infecciosa, y recomendar que el diagnóstico clínico
debe complementarse con el diagnóstico de laboratorio.
Palabras clave: MASTITIS INFECCIOSA, CULTIVO, MADRES LACTANTES, BANCO DE
LECHE.
viii
TÍTULO: “Identificación de microorganismos causantes de mastitis en madres lactantes hospitalizadas
que acuden al servicio de banco de leche humana del Hospital Gineco-Obstétrico Isidro Ayora, en el
periodo julio- agosto 2016”
Autora: Johana Elizabeth Guerrero Arteaga
Tutora: MSc. María Lucrecia Pabón Castillo
SUMMARY
The World Health Organization and The Pan American Health Organization, nowadays globally
promotes breastfeeding strictly, however undesirably breastfeeding can be interrupted at an early stage
and one of the main causes is mastitis. The same as in daily medical practice in neonatal maternal and
child hospital diagnosis is usually based on visual inspection and does not complement the
microbiological diagnosis, reason why this prospective non-experimental, cross-sectional study was
conducted in 69 nursing mothers with presumptive clinical diagnosis of mastitis, who attended the Human
Milk Bank of Obstetrician Gynecology Hospital Isidro Ayora, during July and August 2016, to whom
breast milk cultures were made to confirm the diagnosis. The results obtained with the microbiological
study were (15) positive cases (22.74%), of which (8) were to mothers under 20 years of age (53.33%)
and (7) age 20 (46.66%). In addition it was found that 13 mothers were primiparous (86.67%) and 2
multiparous (13.33%). The most common microorganisms found in positive cultures were
Staphylococcus epidermidis (53.33%), Staphylococcus aureus (33.33%), Serratia liquefaciens (6.67%)
and Enterobacter aerogenes (6.67%). These results suggest that 22.74% of nursing mothers were
confirmed with infectious mastitis, and recommend that the clinical diagnosis must be complemented by
laboratory diagnosis.
Keywords: INFECTIOUS MASTITIS, CROP, NURSING MOTHERS, MILK BANK
Dr. Patricio Muñoz. Traductor Intérprete – Jurado. CERTIFICA que la que antecede es la traducción fiel y
completa al idioma inglés de un documento redactado en español.
Firma Sello
ix
ÍNDICE
AUTORIZACIÓN DE LA PUBLICACIÓN DEL TRABAJO DE TITULACIÓN ............................. iv
APROBACIÓN DEL TUTOR/A DEL TRABAJO DE TITULACIÓN ............................................... v
APROBACIÓN DEL TRIBUNAL .......................................................................................................... vi
RESUMEN ............................................................................................................................................... vii
SUMMARY ............................................................................................................................................. viii
ÍNDICE ...................................................................................................................................................... ix
LISTA DE ANEXOS ............................................................................................................................... xii
LISTA DE ILUSTRACIONES .............................................................................................................. xiii
LISTA DE GRÁFICOS .......................................................................................................................... xiv
INTRODUCCIÓN .................................................................................................................................... 1
CAPITULO I ............................................................................................................................................. 2
EL PROBLEMA DE INVESTIGACIÓN ............................................................................................... 2
1.1 PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA .......................................................................................... 2
1.2 FORMULACIÓN DEL PROBLEMA .............................................................................................. 2
1.3 PREGUNTAS DIRECTRICES......................................................................................................... 2
1.4 OBJETIVOS ..................................................................................................................................... 3
1.4.1 OBJETIVO GENERAL ................................................................................................................. 3
1.4.2 OBJETIVOS ESPECÍFICOS ......................................................................................................... 3
1.5 JUSTIFICACIÓN E IMPORTANCIA.............................................................................................. 4
CAPITULO II ........................................................................................................................................... 5
MARCO TEÓRICO ................................................................................................................................. 5
2.1 MARCO LEGAL .............................................................................................................................. 5
2.2 MARCO INSTITUCIONAL ............................................................................................................ 7
2.2.1 Hospital Gineco Obstétrico Isidro Ayora ................................................................................... 7
2.2.2 Servicio de Banco de Leche Humana ......................................................................................... 8
2.3 MARCO CONCEPTUAL ................................................................................................................. 9
2.3.1 LACTANCIA MATERNA ........................................................................................................ 9
2.3.1.1 Complicaciones de la Lactancia Materna ................................................................................ 9
2.3.2. FLORA NORMAL DE LA LECHE MATERNA ................................................................... 10
2.3.3 MASTITIS PUERPERAL........................................................................................................ 11
x
2.3.3.1Tipos de Mastitis puerperal .................................................................................................... 12
2.3.3.2 Causas de las Mastitis ........................................................................................................... 12
2.3.3.3 Etiología de la Mastitis Infecciosa......................................................................................... 13
2.3.3.4 El mito de las Cándidas ......................................................................................................... 14
2.3.3.5 Factores predisponentes de la mastitis ................................................................................... 14
2.3.4 DESCRIPCIÓN GENERAL DE LOS PRINCIPALES MICROORGANISMOS
RELACIONADOS CON MASTITIS INFECCIOSA. .......................................................................... 15
2.3.4.1 Staphylococcus...................................................................................................................... 15
2.3.4.2 Streptococcus ........................................................................................................................ 16
2.3.4.3 Enterobacteriáceas o bacilos entéricos gramnegativos .......................................................... 18
2.3.4.4 Levaduras del género Candida .............................................................................................. 19
2.3.5 DIAGNÓSTICO DE LAS MASTITIS ........................................................................................ 20
2.3.5.1 Diagnóstico Clínico ............................................................................................................... 20
2.3.5.2 Diagnóstico Laboratorial ....................................................................................................... 20
2.3.5.3 MÉTODOS DIRECTOS PARA LA IDENTIFICACIÓN BACTERIANA .............................. 23
2.3.5.3.1 Tinción Gram ..................................................................................................................... 24
2.3.5.3.2 Identificación para bacilos Gram Negativos ....................................................................... 25
2.3.5.3.3 Pruebas de Identificación para Cocos Gram Positivos ....................................................... 26
2.3.5.4 INTERPRETACIÓN DE LOS RESULTADOS ....................................................................... 27
CAPÍTULO III........................................................................................................................................ 28
METODOLOGÍA ................................................................................................................................... 28
3.1 Diseño de Investigación .................................................................................................................. 28
3.2 Área de estudio ............................................................................................................................... 28
3.3 Población y muestra ........................................................................................................................ 28
3.4 Criterios de Inclusión y Exclusión .................................................................................................. 28
3.5 Matriz de caracterización de variables ............................................................................................ 29
3.6 Técnicas e instrumentos de recolección de datos ............................................................................ 31
3.7 Técnicas para el procesamiento de datos y análisis de resultados ................................................... 32
3.8 Consideraciones bioéticas ............................................................................................................... 32
CAPITULO IV ........................................................................................................................................ 33
RESULTADOS ....................................................................................................................................... 33
4.1 INTERPRETACIÓN Y ANÁLISIS ................................................................................................ 33
xi
4.2 DISCUSIÓN ................................................................................................................................... 38
4.3 CONCLUSIONES .......................................................................................................................... 39
4.4 RECOMENDACIONES ................................................................................................................. 40
CAPITULO V ......................................................................................................................................... 41
LA PROPUESTA .................................................................................................................................... 41
5.1 TÍTULO: DIFUSIÓN DE LA IMPORTANCIA DE UN CULTIVO MICROBIOLÓGICO DE LA
LECHE MATERNA EN EL DIAGNÓSTICO Y PREVENCIÓN DE LA MASTITIS PUERPERAL. 41
5.2 JUSTIFICACIÓN ........................................................................................................................... 41
5.3 BENEFICIARIOS........................................................................................................................... 41
5.4 TRÍPTICO DE DIFUSIÓN ............................................................................................................. 41
Bibliografía .............................................................................................................................................. 44
xii
LISTA DE ANEXOS
Anexo 1: Consentimiento informado para las pacientes............................................................... 47
Anexo 2: Acta de Confidencialidad .............................................................................................. 48
Anexo 3: Matriz de recolección de datos ...................................................................................... 49
Anexo 4: Matriz de referencia para pruebas bioquímicas en bacterias Gram Negativas ............. 54
Anexo 5: Cronograma de actividades ........................................................................................... 55
Anexo 6: Costos e insumos. .......................................................................................................... 56
Anexo 7: Fotografías: Servicio de Banco de Leche Humana (Área de toma de muestras). ......... 57
Anexo 8: Fotografías: Área de microbiología .............................................................................. 58
Anexo 9: Oficio de designación de tutor. ..................................................................................... 59
Anexo 10: Oficio de Modificación del tema del Proyecto de Investigación. ............................... 60
Anexo 11: Oficio de aceptación del tutor. .................................................................................... 61
Anexo 12: Oficio para realizar el Proyecto de Investigación en el H.G.O.I.A. ............................ 62
Anexo 13: Oficio de aceptación del H.G.O.I.A. ........................................................................... 63
xiii
LISTA DE ILUSTRACIONES
Ilustración 1: Fotografía del Hospital Gineco- Obstétrico Isidro Ayora ........................................ 7
Ilustración 2: Proceso de la Leche Materna .................................................................................... 8
Ilustración 3: Flora Normal de la Leche Materna ......................................................................... 10
Ilustración 4: Paciente con mastitis, pezón retraído hacia el sitio de infección. ........................... 11
Ilustración 5: Agentes etiológicos de la Mastitis Infecciosa ......................................................... 14
Ilustración 6: Cocos Gram Positivos en racimos .......................................................................... 15
Ilustración 7: Cocos Gram Positivos en cadena ............................................................................ 16
Ilustración 8: Clasificación de los patógenos Streptococcus ........................................................ 17
Ilustración 9: Bacilos Gram Negativos ......................................................................................... 18
Ilustración 10: Levaduras e Hifas ................................................................................................. 19
Ilustración 11: Esquema de principales pasos a seguir para la recogida de muestras de leche,
destinadas a un estudio microbiológico ........................................................................................ 22
Ilustración 12: Medios de cultivo ................................................................................................. 23
Ilustración 13: Diferencias en la pared bacteriana de Gram positivos y negativos ...................... 24
Ilustración 14: Pasos para la coloración Gram ............................................................................. 24
Ilustración 15: Pruebas Bioquímicas para la identificación de bacilos Gram negativos .............. 25
Ilustración 16: Prueba para diferenciar los géneros de los cocos Gram Positivos........................ 26
Ilustración 17: Pruebas de identificación para Staphylococcus .................................................... 26
Ilustración 18: Pruebas de identificación para Streptococcus....................................................... 27
xiv
LISTA DE GRÁFICOS
Gráfico 1 Distribución de madres lactantes que acudieron al Banco de leche Humana del
H.G.O.I.A en el periodo de julio - agosto de 2016 según resultados de cultivos. ........................ 33
Gráfico 2: Frecuencia de microorganismos presentes en cultivos con contaje menor a 1.000
UFC/ml. ........................................................................................................................................ 34
Gráfico 3: Frecuencia de microorganismos presentes en cultivos con contaje mayor a 1.000
UFC/ml. ........................................................................................................................................ 35
Gráfico 4: Frecuencia de cultivos positivos de acuerdo al rango de edad. ................................... 36
Gráfico 5: Frecuencia de cultivos positivos de acuerdo a la paridad. ........................................... 37
1
INTRODUCCIÓN
La lactancia materna juega un papel esencial en el neonato, aportando a su desarrollo
tanto sensorial como cognitivo, es por eso que la OMS recomienda la lactancia materna
exclusiva por lo menos durante los 6 primeros meses de vida (OMS, 2016).
En el Banco de leche Humana del Hospital Gineco-Obstétrico Isidro Ayora (H.G.O.I.A)
se promueve continuamente la lactancia materna, sin embargo ocasionalmente la madre presenta
complicaciones para continuar con esta práctica, y una de las principales patologías causantes del
destete precoz es la llamada mastitis y/o el dolor en los pezones. Problema que ha sido
subestimado por Médicos Gineco- Obstetras, Pediatras y Obstetrices cuya falta de atención dada
a esta patología ha causado un diagnóstico infravalorado basado en la inspección física y no en la
identificación de los microorganismos que causan la mastitis infecciosa (Delgado, Arroyo,
Jiménez, Fernández, & Rodríguez, 2009).
De ahí que es muy importante recalcar que dentro de la estructura y procesos de una casa
de salud, el área de microbiología se encuentra habilitada para determinar la presencia de
microorganismos mediante su aislamiento y cultivo en una muestra, siendo preciso mantener
extremas precauciones que eviten la contaminación tanto de las muestras como del profesional
en laboratorio.
Todos los procesos en el manejo de la muestra, como la recolección, transporte,
recepción, preparación de los diferentes medios de cultivo, siembra de la muestra, identificación
bacteriana y entrega del resultado, deben realizarse tomando en cuenta diferentes protocolos que
garanticen un resultado confiable.
2
CAPITULO I
EL PROBLEMA DE INVESTIGACIÓN
1.1 PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA
La mastitis es la inflamación de uno o varios lóbulos de la glándula mamaria que puede
estar acompañada o no de infección, aunque algunos autores afirman que las mastitis no
infecciosas terminan evolucionando siempre a infecciosas (Beltrán Vaquero, Crespo Garzón,
Rodríguez Bravo, & García Iglesias, 2015).
La mastitis infecciosa aqueja a todas las poblaciones, independientemente de su cultura y
la incidencia varía desde el 10% hasta el 33% a nivel mundial, siendo el 10% el más habitual en
la mayoría de países. Por ser estas mastitis causadas por microorganismos requieren del estudio
microbiológico para su diagnóstico y tratamiento específico (OMS, 2000).
Un incorrecto tratamiento de esta patología puede ser considerado como una
contraindicación por la suspensión en la lactancia del recién nacido. Así, el adecuado diagnóstico
de esta patología dado por un estudio microbiológico previo puede evitar que se llegue a
suspender la lactancia materna o que a su vez esta infección se intensifique hasta convertirse en
un absceso mamario (Delgado, Arroyo, Jiménez, Fernández, & Rodríguez, 2009).
1.2 FORMULACIÓN DEL PROBLEMA
¿Cuáles son los microorganismos más frecuentes causantes de mastitis, en madres
lactantes que se encuentran ingresadas en el H.G.O.I.A y acuden al servicio de Banco de Leche
humana en el periodo Julio y Agosto del 2016?
1.3 PREGUNTAS DIRECTRICES
¿Cuál es el principal agente causal de la mastitis infecciosa?
¿Qué porcentaje de madres lactantes del H.G.O.I.A padecen mastitis infecciosa durante el
periodo Julio y Agosto 2016?
¿Las especies de cándida ocasionan mastitis infecciosa?
¿Cuál es el mecanismo más frecuente de contaminación durante la donación de leche en
el Banco de Leche Humana del H.G.O.I.A en el periodo Julio y Agosto 2016?
3
1.4 OBJETIVOS
1.4.1 OBJETIVO GENERAL
Identificar los microorganismos, causantes de mastitis en madres lactantes hospitalizadas
que acuden al servicio de Banco de Leche Humana del Hospital Gineco- Obstétrico
Isidro Ayora, en el periodo Julio - Agosto 2016.
1.4.2 OBJETIVOS ESPECÍFICOS
Determinar la frecuencia de cultivos positivos y negativos de la leche materna.
Determinar la frecuencia de los microorganismos presentes en la leche materna con un
contaje < 1.000 UFC/ml.
Determinar la frecuencia de los microorganismos presentes en la leche materna con un
contaje > 1.000 UFC/ml.
Interpretar la frecuencia de cultivos positivos de acuerdo al rango de edad y paridad.
4
1.5 JUSTIFICACIÓN E IMPORTANCIA
La leche materna fomenta el desarrollo sensorial y cognitivo del neonato y también
ayuda a proteger al niño de las enfermedades infecciosas y enfermedades crónicas (OMS, 2016).
Existe una patología que afecta a la madre en el periodo de lactancia, que es la mastitis
infecciosa considerada desde el punto de vista médico como una de las principales
contraindicaciones para continuar con la lactancia (Delgado, Arroyo, Jiménez, Fernández, &
Rodríguez, 2009).
En la mayoría de los casos el diagnóstico de las mastitis infecciosas ha sido dado
mediante la inspección visual de los pezones, por la presencia de grietas, enrojecimiento,
tumefacción, induración, acompañados de la sintomatología clásica como fiebre, vómitos,
nauseas, cefaleas y malestar general, que al no tratarlos oportunamente, el dolor se aumenta,
intensificándose innecesariamente y puede convertirse en abscesos mamarios o septicemias, y
con esto llegar a que la lactancia materna se suspenda definitivamente. Es necesario tener en
cuenta que algunas pacientes no presentan toda la sintomatología y lo característico es
únicamente el dolor en los pezones (Vayas Abascal & Carrera Romero, 2012).
Lo expuesto justificó la realización del presente trabajo de investigación, en el que se
ejecutó el estudio microbiológico de la leche materna en las madres lactantes, para proporcionar
el diagnóstico laboratorial que apoyó al diagnóstico clínico y al tratamiento de las mastitis
infecciosas.
5
CAPITULO II
MARCO TEÓRICO
2.1 MARCO LEGAL
En Cuanto se refiere al desarrollo del Proyecto de Investigación de Fin de Carrera, en la
Constitución del Ecuador establecida en el año 2008 se promueve el desarrollo a la investigación
orientada hacia la búsqueda de nuevos conocimientos que sean de beneficio para la sociedad.
Constitución de la República del Ecuador
Art. 343: El sistema nacional de educación tendrá como finalidad el desarrollo de
capacidades y potencialidades individuales y colectivas de la población, que posibiliten el
aprendizaje, y la generación y utilización de conocimientos, técnicas, saberes, artes y cultura. El
sistema tendrá como centro al sujeto que aprende, y funcionará de manera flexible y dinámica,
incluyente, eficaz y eficiente (Asamblea Constituyente, 2008).
Art. 350: El sistema de educación superior tiene como finalidad la formación académica
y profesional con visión científica y humanista; la investigación científica y tecnológica; la
innovación, promoción, desarrollo y difusión de los saberes y las culturas; la construcción de
soluciones para los problemas del país, en relación con los objetivos del régimen de desarrollo
(Asamblea Constituyente, 2008).
Art. 360: El sistema garantizará, a través de las instituciones que lo conforman, la
promoción de la salud, prevención y atención integral, familiar y comunitaria, con base en la
atención primaria de salud; articulará los diferentes niveles de atención; y promoverá la
complementariedad con las medicinas ancestrales y alternativas (Asamblea Constituyente, 2008).
Art. 385: El sistema nacional de ciencia, tecnología, innovación y saberes ancestrales, en
el marco del respeto al ambiente, la naturaleza, la vida, las culturas y la soberanía, tendrá como
finalidad: 1. Generar, adaptar y difundir conocimientos científicos y tecnológicos. 2. Recuperar,
fortalecer y potenciar los saberes ancestrales. 3. Desarrollar tecnologías e innovaciones que
impulsen la producción nacional, eleven la eficiencia y productividad, mejoren la calidad de vida
y contribuyan a la realización del buen vivir (Asamblea Constituyente, 2008).
6
En el estatuto de la Universidad Central del Ecuador se establecen normas y reglamentos
a cumplirse en la ejecución del Proyecto de Investigación de Fin de Carrera, promoviéndose así
el desarrollo del conocimiento científico.
Art. 72: La investigación. Constituye el eje transversal de la enseñanza- aprendizaje, y
tiene como objetivos:
Contribuir al avance de la ciencia básica, aplicada, humanística, artística, incluyendo
saberes ancestrales, con total respeto al ser humano y a la naturaleza, por medio de
investigaciones transdisciplinarias.
Fomentar la generación, aplicación y difusión de conocimientos científicos,
humanísticos, artísticos y tecnológicos, así como el rescate de los saberes ancestrales.
Desarrollar tecnologías e innovaciones que coadyuven al avance de la producción
nacional y frenen la pérdida de los recursos naturales.
Colaborar en la solución de los problemas de la sociedad ecuatoriana, para mejorar
sus niveles de salud, alimentación y calidad de vida.
Elevar la preparación de docentes, investigadores y estudiantes, que propicien la
creación de una cultura y espíritu científicos, éticos y socialmente responsables.
Impulsar la formación de colectivos de investigación interdisciplinarios.
Fortalecer el Sistema Nacional de Ciencia, Tecnología e Innovación (UCE, 2010).
Art. 211: Títulos y grados. La Universidad Central del Ecuador concederá a sus
egresados los títulos y grados correspondientes, mediante el cumplimiento de todos los requisitos
establecidos en la Ley de Educación Superior, su Reglamento General, el Reglamento de
Régimen Académico, el Estatuto y los Reglamentos pertinentes.
Los egresados tendrán un plazo máximo de dos años para titularse, que se contarán desde
la fecha de su egresamiento. En caso contrario, deberán actualizar sus conocimientos de acuerdo
con los programas vigentes (UCE, 2010).
Art. 212: El trabajo de graduación o titulación constituye un requisito obligatorio para la
obtención del título o grado para cualquiera de los niveles de formación. Dichos trabajos pueden
ser estructurados de manera independiente o como consecuencia de un seminario de fin de
carrera.
Para la obtención del grado académico de licenciado o del título profesional universitario
de pre o postgrado, el estudiante debe realizar y defender un proyecto de investigación
7
conducente a una propuesta que resolverá un problema o situación práctica, con características
de viabilidad, rentabilidad y originalidad en los aspectos de aplicación, recursos, tiempos y
resultados esperados (UCE, 2010).
2.2 MARCO INSTITUCIONAL
2.2.1 Hospital Gineco Obstétrico Isidro Ayora
Ilustración 1: Fotografía del Hospital Gineco- Obstétrico Isidro Ayora
Fuente: Moya, W. (2001). Reseña del Servicio de Patología Obstétrica. Recuperado el 15 de Enero de 2016, de
Revista Médico Científica HGOIA: http://www.hgoia.gob.ec/index.php/hospital
La Maternidad Isidro Ayora desde su creación cumplía con las más altas exigencias de un
servicio de Maternidad Programa de Remodelación y Reequipamiento, ahí ya contaba con un
sinnúmero de servicios.
El 30 de Enero de 1980 se cambió el nombre de Maternidad “Isidro Ayora” por el de
Hospital Gineco Obstétrico “Isidro Ayora”, siendo considerado como un Hospital de
Especialidad, y no únicamente que cubre el campo obstétrico sino que también el campo
ginecológico y neonatológico por las frecuentes patologías que atiende. En la actualidad cuenta
con tres especialidades: Obstetricia, Ginecología y Neonatología- Pediátrica, y mantiene las
especialidades anteriores como son Consulta Externa, Hospitalización e Intervenciones
Quirúrgicas (Moya, 2001).
8
2.2.2 Servicio de Banco de Leche Humana
Ilustración 2: Proceso de la Leche Materna
Fuente: SETECI. (2014). Secretaria de Cooperacion Internacional. Recuperado el 25 de Marzo de 2016, de
Ecuador tiene su red de bancos de leche materna gracias a la Cooperación Sur - Sur:
http://www.cooperacioninternacional.gob.ec/wp-content/uploads/downloads/2015/06/Banco-de-Leche-
SETECI.pdf
El Hospital Gineco Obstétrico Isidro Ayora ubicado en la ciudad de Quito fue el primer
hospital en el Ecuador en contar con un servicio de Banco de Leche Humana, el cual funciona a
partir del año 2007 (MSP, 2015).
El banco de leche es un centro especializado en lactancia materna, donde se solucionan
problemas relacionados a la baja producción de leche, mastitis y enfermedades relacionadas con
la no producción de leche. En este servicio se recolecta la leche, se pasteuriza y se distribuye a
los niños que no tienen acceso a ella (MSP, 2015).
Los beneficiados de los bancos de leche humana son los bebés prematuros y de bajo peso
al nacer, los que presentan patologías del tracto gastrointestinal, los recién nacidos de madres con
VIH positivo, hepatitis B y C, citomegalovirus, tuberculosis, los bebes que son portadores de
deficiencias inmunológicas, con enfermedades infecciosas, los trillizos, los hijos de madres que
consumen medicamentos que contraindiquen la lactancia materna y los recién nacidos
abandonados (MSP, 2015).
9
2.3 MARCO CONCEPTUAL
2.3.1 LACTANCIA MATERNA
La lactancia materna contribuye a la salud de la madre y más aun a la del recién nacido,
la recomendación de la OMS es la lactancia materna exclusiva durante los 6 primeros meses de
vida, esto es de gran ayuda al bebe ya que fomenta su desarrollo cognitivo y sensorial, adicional
le ayuda al bebe a protegerse de infecciones y de enfermedades crónicas y se ha evidenciado que
la lactancia natural disminuye en gran numero el nivel de morbilidad y mortalidad infantil, por lo
tanto mantener la lactancia exclusiva constituye un aporte más que suficiente durante los
primeros meses después se recomienda alternar la lactancia con otro tipo de alimentos sin
embargo se recomienda no dejar la lactancia por lo menos durante los dos primeros años (OMS,
2016) .
Si es posible la lactancia materna debe iniciar unos minutos después del parto, la succión
que él bebe realice eleva la producción de los niveles de oxitocina en la madre, esta oxitocina
estimula las contracciones uterinas y ayudara entonces a expulsar la placenta además de que
ayuda a la reducción en la perdida sanguínea, y en los días posteriores al parto la madre debe
estar junto al bebe siempre excepto en casos de enfermedades que así no lo permitan (Latham,
2002).
En los días posteriores al parto la madre produce un líquido de color amarillo este es el
llamado calostro, es altamente nutritivo y posee una gran cantidad de propiedades anti
infecciosas que van a constituir la primera inmunización del niño, en las diferentes culturas se
toma en cuenta que el calostro no es lo mismo que la leche propiamente dicha sin embargo aún
no se considera la importancia que este representa para el recién nacido, lo recomendable es que
él bebe consuma el calostro y en los siguientes días exclusivamente consuma leche natural
(Latham, 2002).
2.3.1.1 Complicaciones de la Lactancia Materna
La lactancia no debe considerarse como algo difícil o complicado, debe ser una
experiencia agradable tanto para la madre como para él bebe, en muchas culturas y sociedades
esta práctica puede tener algunos problemas para desarrollarse sin embargo se deben considerar
10
todas las soluciones posibles, entre los problemas más frecuentes que pueden presentarse se
encuentran:
Pezones cortos o muy largos que interfieren en la alimentación adecuada.
Él bebe puede presentar paladar hendido lo cual le va a dificultar la correcta succión.
Insuficiencia de leche.
Inflamación en los pechos debido a pezones agrietados, debido a mastitis o abscesos, en
este caso se requiere tratamiento con antibióticos.
(Latham, 2002)
2.3.2. FLORA NORMAL DE LA LECHE MATERNA
De manera habitual encontramos bacterias en la leche materna, una mujer sin mastitis
suele tener < 1.000 UFC/ml. El Staphylococcus epidermidis suele estar presente en un número
menor 600 – 800 UFC/ml, el Staphylococcus aureus suele encontrarse en un número inferior a
300 -400 bacterias/ml. Entre los estreptococos tenemos al Streptococcus mitis, Streptococus
salivarius, Streptococus sanguinis y Streptococus oralis, todas estas especies en un número
menor a 500 UFC/ml (Delgado, Arroyo, Jiménez, Fernández, & Rodríguez, 2009)
Género Especie Numero de bacterias por ml
Staphylococcus S. epidermidis < 600-800 UFC/ml
S. aureus < 300-400 UFC/ml l
S. mitis Todas las especies
Streptococcus S. salivarius < 500 UFC/ml
S. sanguinis
S. oralis
Ilustración 3: Flora Normal de la Leche Materna
Fuente: Delgado, S., Arroyo, R., Jiménez, E., Fernández, L., & Rodríguez, J. M. (2009). Mastitis infecciosas
durante la lactancia: un problema infravalorado (I). Acta Pediátrica Española, 77-84.
Elaborado: Guerrero, Johana
11
2.3.3 MASTITIS PUERPERAL
Ilustración 4: Paciente con mastitis, pezón retraído hacia el sitio de infección.
Fuente: Dixon, J. (8 de Octubre de 1994). ABC of Breast Diseases. Recuperado el 15 de Febrero de 2016, de
BREAST INFECTION: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC2541130/pdf/bmj00460-0062.pdf
La mastitis es una afección, esta puede estar acompañada de infección o no; esta afección
es asociada directamente con el periodo de la lactancia y por ello es llamada mastitis de la
lactación o mastitis puerperal, sin embargo también puede presentarse en mujeres que no se
encuentran dando de lactar aunque este hecho es menos común (OMS, 2000).
Dentro de las principales causas del destete precoz esta la mastitis, algunos autores
definen que las mastitis no infecciosas evolucionan a infecciosas, de esta manera directamente se
denominan a las mastitis como un proceso infeccioso (Vayas Abascal & Carrera Romero, 2012).
En algunas ocasiones si esta afección no es tratada adecuadamente puede la infección
convertirse en un absceso mamario que es una complicación más grave.
La obstrucción de un conducto lácteo o los cuadros de ingurgitación así como las grietas
en los pezones han sido consideradas como algunos de los factores predisponentes de la mastitis,
tomando en cuenta las bacterias que se han visto implicadas en la mastitis y que estas por si solas
pueden ocasionar esta infección se ha considerado que la obstrucción de conductos y las grietas
son más manifestaciones propias de la mastitis que factores predisponentes (Vayas Abascal &
Carrera Romero, 2012).
12
En la actualidad poco se conoce acerca de la flora presente en la leche materna, una de las
razones básicas es porque se consideraba que la leche materna era estéril (Vayas Abascal &
Carrera Romero, 2012).
En algunas investigaciones se indica que la mastitis es producida por la disbiosis de la
flora normal de la mama, con un aumento progresivo de los diferentes microorganismos causales
de la enfermedad, con la consecuente desaparición de la flora normal, esto mediante un proceso
de exclusión competitiva (Vayas Abascal & Carrera Romero, 2012).
2.3.3.1Tipos de Mastitis puerperal
Existen dos tipos de mastitis puerperal:
La esporádica, esta se presenta por lo general en mujeres no hospitalizadas, esta infección
afecta al tejido conectivo y adiposo interlobulares, en estos casos la vía de entrada de la
infección es usualmente una lesión o grietas alrededor del pezón. El cuadro clínico está
caracterizado por dolor localizado, hipersensibilidad, eritema y fiebre, en este tipo de
mastitis la leche no se afecta.
La epidémica, por lo general se presenta en mujeres hospitalizadas, esta infección es más
grave que la anterior, sus síntomas y signos son más agudos. En la mastitis epidémica la
transmisión se da por la persona portadora al lactante, y es el lactante a través de la
succión quien extiende la infección al sistema ductal de la madre.
(Patiño Restrepo, 2014)
2.3.3.2 Causas de las Mastitis
Una de las causas principales es la falta de vaciamiento de la leche o el estancamiento de
la leche en los conductos del pecho. Esto puede darse debido a:
Una mal agarre del bebe en el momento del amamantamiento.
No dar de lactar al bebe las veces necesarias.
Entre las causas no asociadas a la falta de vaciamiento tenemos:
Un traumatismo en los senos.
Un piercing en el pecho.
Lesiones alrededor de los pezones.
13
Todos los factores antes mencionados son predisponentes para desarrollar mastitis infecciosa
(Castaño, 2011).
2.3.3.3 Etiología de la Mastitis Infecciosa
Entre los principales agentes etiológicos causantes de mastitis infecciosa encontramos a
dos géneros principales Staphylococcus y Streptococcus (OMS, 2000).
Los estafilococos se han visto implicados en el 75% de los casos, siendo el más frecuente
el Staphylococcus aureus el más frecuente en las mastitis agudas así como también se encuentra
implicado en ocasionar abscesos, y en algunos casos el Staphylococcus epidermidis también se
ha visto implicado pero en menor número (Vayas Abascal & Carrera Romero, 2012).
El otro grupo bacteriano que se encuentra produciendo mastitis en un 10% -15% son los
Streptococcus, aquí siendo el más frecuente el Streptococcus agalactiae, aunque algunos estudios
han demostrado que el Streptococcus mitis, Streptococcus salivaris y el Streptococcus
pneumoniae también se han visto implicados en estas infecciones (Vayas Abascal & Carrera
Romero, 2012).
En un 3% de los microorganismos causantes se han podido aislar algunas corinebacterias
o enterobacterias entre las que tenemos Escherichia coli y Klebsiella pneumoniae, y en un
porcentaje menor a 0.5% encontramos algunas levaduras entre las que destacan algunas especies
de Cándida, siendo la más frecuente la Cándida Albicans (Vayas Abascal & Carrera Romero,
2012).
Cabe mencionar que a pesar de ser tan inferior el porcentaje de especies de cándida que
se han podido aislar en la leche materna, hay un concepto ampliamente distribuido de manera
errónea por parte de los médicos ginecólogos, obstetrices entre otros, los cuales creen que las
levaduras los principales agentes etiológicos causantes de mastitis, tal vez esta idea viene del
hecho que en algunos casos de mastitis (5-6%) coexisten una infección estafilocócica del pecho
de la madre con una candidiasis oral del bebe (Delgado, Arroyo, Jiménez, Fernández, &
Rodríguez, 2009).
14
MICROORGANISMO FAMILIA GRAM PORCENTAJE
S. aureus Staphylococcacea Positivo 75%
S. epidermidis Staphylococcacea Positivo > 75%
S. agalactiae Streptococcaceae Positivo 10-15%
S. mitis Streptococcaceae Positivo Menor
S. salivaris Streptococcaceae Positivo al 10%
S. pneumoniae Streptococcaceae Positivo
E. coli Enterobacteriaceae Negativo Menor
K. pneumoniae Enterobacteriaceae Negativo al 3%
Cándida spp Cryptococcaceae Positivo Menor a o.5%
Ilustración 5: Agentes etiológicos de la Mastitis Infecciosa
Fuente: Vayas Abascal, R., & Carrera Romero, L. (2012). Actualización y manejo de las Mastitis Infecciosas
durante la Lactancia Materna. Revista Clínica de Medicina de Familia, 25-29.
Elaborado: Guerrero, Johana
2.3.3.4 El mito de las Cándidas
Al parecer muchos pediatras, ginecólogos y matronas creen de manera injustificada que
algunas especies de Candida especialmente la Cándida albicans es una de las causas principales
en los casos de mastitis. Sin embargo la glándula mamaria no favorece su desarrollo.
El aislamiento de especies de Candida en casos de mastitis es muy raro, a pesar de que las
levaduras no son microorganismos de difícil aislamiento. Tal vez este mito proviene de que en
algunos casos coexisten una mastitis bacteriana de la madre y una candidiasis oral de su bebe.
El artículo Mastitis infecciosas durante la lactancia: un problema infravalorado (I) refiere
que la participación de las especies de Candida en casos de mastitis es casi inexistente, de
acuerdo a la investigación que realizaron en 4.000 muestras en las cuales solo encontraron 4
casos de mastitis asociada a levaduras. (Delgado, Arroyo, Jiménez, Fernández, & Rodríguez,
2009)
2.3.3.5 Factores predisponentes de la mastitis
a) Edad: Un estudio retrospectivo mostró que era más probable que desarrollaran
mastitis las mujeres de 21 a 35 años que aquellas menores de 21 y mayores de 35. Otro estudio
15
retrospectivo mostró que las mujeres entre 30 y 34 años tenían mayor incidencia de mastitis.
(OMS, 2000)
b) Paridad: En algunos estudios se ha encontrado que la primiparidad es un factor de
riesgo. (OMS, 2000)
2.3.4 DESCRIPCIÓN GENERAL DE LOS PRINCIPALES MICROORGANISMOS
RELACIONADOS CON MASTITIS INFECCIOSA.
2.3.4.1 Staphylococcus
Ilustración 6: Cocos Gram Positivos en racimos
Fuente: Microbitos. (3 de Agosto de 2011). Recuperado el 20 de Enero de 2016, de Microbitos blog:
https://microbitos.wordpress.com/2011/08/03/staphylococcus-aureus-epidermidis-saprophyticus/
Los Staphylococcus son células esféricas, son positivas a la coloración Gram,
generalmente se encuentran dispuestas en racimos.
Muchos se encuentran dispuestos como flora normal de la piel y mucosas mientras que
otros se encuentran ocasionando supuración y abscesos, e incluso están ocasionando septicemia
mortal. Las especies de estafilococos patógenos casi siempre están causando hemolisis y
coagulación de plasma, estos producen varias enzimas y toxinas extracelulares. (Butel, Morse,
Brooks, & Carroll, 2008)
Los staphylococcus son característicos por producir catalasa positiva a diferencia de las
especies de estreptococos, adicional los staphylococcus fermentan muchos carbohidratos y
16
producen ácido láctico mas no producen gas, este género de bacterias es relativamente resiste al
calor y al cloruro de sodio al 9%. Entre las especies de mayor relevancia clínica se encuentras
Staphylococcus aureus, Staphylococcus epidermidis y Staphylococcus saprophyticus, cabe
recalcar que el Staphylococcus aureus es de las especies más prevalentes que se encuentran
asociados a casos de mastitis puerperal, como también se los ha relacionado en diferentes casos
de abscesos mamarios. (Butel, Morse, Brooks, & Carroll, 2008)
Características del Cultivo
Los estafilococos crecen en casi todos los medios en condiciones aerobias o
microaerofílicas, crecen más rápido a 37ºC, las colonias son redondas de color gris o amarillo
dorado. (Butel, Morse, Brooks, & Carroll, 2008)
2.3.4.2 Streptococcus
Ilustración 7: Cocos Gram Positivos en cadena
Fuente: BioImagen Photography. (2010). Recuperado el 20 de Febrero de 2016, de BioImagen Photography:
http://bioimagephotography.com/microscopy.html
Los Streptococcus son descritos en el Bergey’s Manual of Systematic Bacteriology como
bacterias que forman células ovoides o esféricas, grampositivas, catalasa negativas, anaerobias
facultativas, con tendencia a formar cadenas o parejas. Fermentan la glucosa produciendo ácido
láctico y, algunos miembros de este género forman parte de la flora humana. (Butel, Morse,
Brooks, & Carroll, 2008)
17
Clasificación de los Streptococcus
Por el tipo de Hemólisis
La mayoría de las especies de streptococcus puede causar β-hemólisis refiriéndose así a
la destrucción completa de los hematíes. Mientras que otras cepas producen lisis incompleta de
los eritrocitos con reducción de hemoglobina y la formación consecuente de un pigmento verde
recibe el nombre de α hemólisis, y otras cepas no tienen capacidad hemolítica estos son los γ
hemolíticos. (Butel, Morse, Brooks, & Carroll, 2008)
Por sus propiedades serológicas (clasificación de Lancefield)
Es un sistema para la diferenciación serológica de las cepas de los estreptococos beta-
hemolíticos. La mayoría de estas cepas y algunas de alfa, y no hemolíticas tienen antígenos
específicos de grupo que son mayormente carbohidratos en la pared celular.
Grupo A, B, C, F, G: su antígeno de clasificación son polisacáridos de pared celular.
Grupo D y especies de Enterococcus: su antígeno de clasificación son lipoteicoicos de
pared celular. (MedicinABC, 2013)
Por sus Propiedades Bioquímicas
La mayoría de los Streptococcus alfa hemolíticos y no hemolíticos no tienen antígenos
de la pared celular específicos de grupo, así que se clasifican a través de sus propiedades
bioquímicas. (MedicinABC, 2013)
Ilustración 8: Clasificación de los patógenos Streptococcus
Fuente: Valderrama, I. (19 de Julio de 2008). SlideShare. Recuperado el 21 de Marzo de 2016, de Clasificación
Streptococcus: http://es.slideshare.net/pablongonius/clasificacion-streptococcus-ilse-valderrama
18
2.3.4.3 Enterobacteriáceas o bacilos entéricos gramnegativos
Ilustración 9: Bacilos Gram Negativos
Fuente: Baggini, S. (6 de Agosto de 2014). Seguridad Alimentaria, Bromatología y Microbiología de los Alimentos.
Recuperado el 15 de Mayo de 2016, de http://bagginis.blogspot.com/2014/08/las-enterobacterias-parte-1.html
Las enterobacteriáceas son un gran grupo de bacterias en forma de bacilos, que a la
coloración gram se observan de color rosado, tienen como hábitat natural el intestino humano y
de animales, esta familia incluye un sinnúmero de géneros como por ejemplo Escherichia,
Shigella, Salmonella, Enterobacter, Klebsiella, Serratia, Proteus entre otros. (Butel, Morse,
Brooks, & Carroll, 2008)
Principales características microbiológicas de la familia Enterobacteriaceae
Son aerobias y anaerobias facultativas.
No forman esporas.
Reducen los nitratos a nitritos.
Fermentan la glucosa con o sin producción de gas.
Son oxidasa negativa a excepción de Plesiomonas.
Producen catalasa.
La mayoría son móviles.
Su crecimiento no se favorece en la presencia de NaCl.
(Puerta García & Mateos Rodríguez, 2010)
19
Características del Cultivo
La Escherichia coli y mayoría de las otras enterobacterias forman colonias lisas,
circulares, convexas, con bordes bien definidos. Mientras que las colonias de los Enterobacter
son similares sin embargo son un poco más mucoides y si la incubación se prolonga tienden a
confluir entre sí. Las salmonellas y las shigelas producen colonias muy similares a las de
Escherichia coli pero estas no fermentan la lactosa. (Butel, Morse, Brooks, & Carroll, 2008)
2.3.4.4 Levaduras del género Candida
Ilustración 10: Levaduras e Hifas
Fuente: Tangarife, V. (2011). Escuela de Microbiologia Universidad de Antioquia. Recuperado el 15 de Mayo de
2016, de Cándida spp. (Micosis profundas):
http://aprendeenlinea.udea.edu.co/lms/moodle/mod/page/view.php?id=100873
El término levadura se refiere a organismos unicelulares que se reproducen mediante
brotación, cabe mencionar que esta definición no es correcta ya que algunas levaduras se
reproducen por fisión, algunas levaduras producen micelios en ciertas condiciones nutricionales
y ciertos hongos filamentosos pueden presentarse en forma unicelular es decir que existe un
dimorfismo.
Son heterótrofas y suelen vivir a expensas de otros seres vivos o sobre materia orgánica.
Este microorganismo puede producir una infección primaria o secundaria, causada por levaduras
del género Candida, con manifestaciones clínicas extremadamente variables de evolución aguda,
20
subaguda, crónica o episódica, en las cuales el hongo puede causar lesiones cutáneas, muco
cutáneo, profundo o diseminado.
La especie que se presenta con mayor frecuencia es la Candida albicans, pero pueden estar
implicadas otras especies de Candida, como, Candida dubliniensis, Candida glabrata, Candida
famata, Candida krusei; C. lusitaniae, Candida parapsilosis, Candida tropicalis, etc. Levaduras de
otros géneros distintos de Candida como Saccharomyces, Pichia, Rhodotorula pueden dar
cuadros clínicos similares a la Candidiasis. (Biasoli, 2010)
2.3.5 DIAGNÓSTICO DE LAS MASTITIS
2.3.5.1 Diagnóstico Clínico
En la mayoría de casos el diagnostico se realiza mediante la inspección visual de la
mama, si la paciente presenta dolor intenso, enrojecimiento, tumefacción acompañada de fiebre,
escalofríos, malestar general, cefaleas, náuseas y vómitos, el medico asume que se trata de una
mastitis sin embargo solo del 10-15% de mujeres presentan una sintomatología tan extensa,
algunas solo presentan dolor intenso en las mamas acompañadas de grietas, es esta la causa de
que muchos casos hayan sido infra diagnosticados. (Vayas Abascal & Carrera Romero, 2012)
2.3.5.2 Diagnóstico Laboratorial
Tomando en cuenta la información anterior la mejor decisión que el médico podría tomar
es realizar un cultivo microbiológico de la leche materna de todas las pacientes que le refieran
dolor intenso en las mamas
Para la toma de muestra deben tomarse en cuenta los siguientes pasos:
1. Las muestras se deben recoger inmediatamente antes de una toma y, si es posible, tras
haber transcurrido al menos 2 horas desde la toma anterior. Si se van a procesar en el
servicio de microbiología de un hospital, el mejor momento para su recogida seria tras la
primera toma de la mañana (6.00-9.00 h).
2. Tras la toma anterior a aquella en la que se vayan a recoger las muestras para el cultivo,
no se debe aplicar ningún tipo de pomada o solución tópica, ni tampoco utilizar ningún
tipo de accesorio que provoque una acumulación de leche en contacto directo con las
areolas mamarias y los pezones; en caso contrario, se deben lavar dichas partes del pecho
21
con agua templada y jabón neutro, y secarlos con una toalla limpia o una toallita de un
solo uso inmediatamente antes de la recogida.
3. Inmediatamente antes de la recogida, la paciente debe lavarse las manos con agua
caliente y jabón, y secárselas con una toalla de un solo uso.
4. Tras la estimulación previa del pecho, la recogida será mediante presión manual, sin la
ayuda de ningún tipo de accesorio (pezoneras, formadores de pezones...). En ningún caso
se deben emplear extractores (sacaleches) ya que todos estos utensilios pueden ser una
fuente de contaminación.
5. Las muestras de leche se deben recoger en envases estériles. Hay que recoger una
muestra de cada pecho (cada una en un envase independiente), descartando las primeras
gotas de leche (aunque este hecho parece no afectar significativamente al resultado del
análisis microbiológico). El recipiente se debe colocar debajo del pezón, dentro de la
areola mamaria.
6. Evitar tocar el interior del frasco o del tapón con los dedos, así como el contacto con
cuerpos extraños.
7. No utilizar nunca recipientes intermediarios (cucharas, biberones, vasos, botellas, etc.)
para recoger la leche antes de transferirla al envase estéril.
8. El volumen necesario para el cultivo de una muestra de leche es de 1 mL.
Habitualmente, se siembra la muestra sin diluir.
9. Cerrar perfectamente el frasco, previamente rotulado con la identificación del paciente.
10. Las muestras pueden permanecer sin refrigerar un máximo de 1 hora.
(Arroyo, y otros, 2011)
22
Ilustración 11: Esquema de principales pasos a seguir para la recogida de muestras de leche, destinadas a un
estudio microbiológico
Fuente: Arroyo, R., Mediano, P., Martín, V., Jiménez, E., Delgado, S., Fernández, L., y otros. (2011). Diagnóstico
etiológico de las mastitis infecciosas: propuesta de protocolo para el cultivo de muestras. Acta Pediátrica
Española, 276-281.
23
2.3.5.3 MÉTODOS DIRECTOS PARA LA IDENTIFICACIÓN BACTERIANA
En el laboratorio de microbiología de forma tradicional el estudio de los microorganismos
causantes de diferentes infecciones se realiza mediante cultivo de microorganismos y su
identificación se realiza mediante pruebas fenotípicas clásicas como la morfología, la fisiología y
las pruebas bioquímicas. Los medios a utilizarse son selectivos y diferenciales. (Gomez, 2010)
Tomando en cuenta las bacterias más frecuentes asociadas a la mastitis infecciosa los
medios a usarse son:
Agar sangre: Staphylococcus spp y Streptococcus spp.
Agar MacConkay: Enterobacterias
Chromogenic Candida Agar: Cándida: Cándida spp.
En principio, cualquier técnica de siembra de muestras biológicas es aplicable a las
muestras de leche: desde la técnica de siembra con asa calibrada de 5 μl en forma de estría
longitudinal, seguida de agotamiento total de la placa. Todos los medios deben incubarse a 37ºC
excepto el de las levaduras que debe incubarse a 24ºC durante 7 días, el resto de medios con 48
horas de incubación es más que suficiente. (Arroyo, y otros, 2011)
MEDIOS DE CULTIVO TIPO GERMEN
Agar Sangre Enriquecido Todas las
bacterias
Agar MacConkay Diferencial y selectivo Gram Negativos
Chromogenic Candida Agar Diferencial y selectivo Levaduras
Ilustración 12: Medios de cultivo
Fuente: Gomez, J. M. (10 de Noviembre de 2010). AGENTES ETIOLÓGICOS DE INFECCIONES DE PEZONES
Y MASTITIS INFECCIOSAS. Recuperado el 03 de Abril de 2016, de Departamento de
Nutrición,Bromatología y Tecnología de los Alimentos, Universidad Complutense de Madrid, 28040
Madrid:
http://www.durga.org.es/webdelparto/agentes_etiolgicos_de_infecciones_de_pezones_mastitis_infecciosas.
htm
Elaborado: Guerrero, Johana
Al finalizar el tiempo de incubación, si hay desarrollo bacteriano se realizara la
identificación del microorganismo mediante las siguientes pruebas bioquímicas:
24
2.3.5.3.1 Tinción Gram
Esta tinción permite distinguir dos grupos bacterianos: bacterias Gram negativas
(coloración rosada) y Gram positivas (coloración violeta), esta tinción es de gran importancia ya
que se basa en la diferencia de la constitución de la pared bacteriana, adicional a la coloración
también permite observar al microscopio la disposición ce las bacterias.
GRAM POSITIVOS
GRAM NEGATIVOS
Capa densa y uniforme de 200 a 800 A) Capa interna delgada de 20 a 30 A cubierta por
capas externas de densidad menor)
Ácidos teicoicos Lipopolisacáridos
Polisacáridos Lipoproteínas
Proteínas (pocas veces) Proteínas
Glicopéptido (50% del peso seco) Glicopéptido (10% del peso seco)
Ilustración 13: Diferencias en la pared bacteriana de Gram positivos y negativos
Fuente: Analizatelab. (10 de Agosto de 2014). Una clase Microbiología. Recuperado el 14 de Mayo de 2016, de La
Tinción Gram: http://analizatelab.blogspot.com/2014/08/la-tincion-gram.html
Elaborado: Guerrero, Johana
Ilustración 14: Pasos para la coloración Gram
Fuente: Analizatelab. (10 de Agosto de 2014). Una clase Microbiología. Recuperado el 14 de Mayo de 2016, de La
Tinción Gram: http://analizatelab.blogspot.com/2014/08/la-tincion-gram.html
25
2.3.5.3.2 Identificación para bacilos Gram Negativos:
Para la identificación de los bacilos Gram Negativos se realizó diferentes pruebas
bioquímicas mostradas a continuación; la tabla de referencia para determinar la especie de la
bacteria se encuentra en el Anexo 4.
PRUEBA RESULTADO
Kliger
A/A= Todo Amarillo
K/A= pico rojo/fondo Amarillo
K/K= Todo Rojo
H2S Positivo: Color Negro
Negativo: Ausencia de color
Gas Presencia de burbujas en el medio
Citrato Positivo: Color Azul
Negativo: Color Verde
Lisina Positivo: pico violeta/fondo violeta
Negativo: pico violeta/fondo Amarillo
Motilidad Positivo: Turbidez del medio
Negativo: Crecimiento en la línea de estría
Indol Positivo: Color rojo del reactivo
Negativo: Reactivo incoloro
Ornitina Positivo: Color Púrpura
Negativo: Color Amarillo
Urea Positivo: Color rosado
Negativo: Color Naranja
Rojo de Metilo Positivo: Color rojo
Negativo: Color Amarillo
Voges Proskauer Positivo: Color Café
Negativo: Color Amarillo
Fenilalanina Positivo: Color Verde
Negativo: No hay cambio de color
Ilustración 15: Pruebas Bioquímicas para la identificación de bacilos Gram negativos
Fuente: S/A. (10 de Marzo de 2008). T P Nº 5. Recuperado el 25 de Febrero de 2016, de Pruebas Bioquímicas:
http://www.iib.unsam.edu.ar/php/docencia/licenciatura/biotecnologia/2008/MicroBiol/Pruebas%20Bioqui
micas.pdf
Elaborado: Guerrero, Johana
26
2.3.5.3.3 Pruebas de Identificación para Cocos Gram Positivos:
Después de realizar la coloración Gram y de observar al microscopio la morfología y
disposición de las bacterias, ratificando que se trate de cocos Gram positivos se procede a la
diferenciación de géneros mediante diferentes pruebas, las cuales se presentan a
continuación.
PRUEBA RESULTADO GÉNERO
POSITIVO Staphylococcus
CATALASA Micrococcus
NEGATIVO Streptococcus
Enterococcus
Ilustración 16: Prueba para diferenciar los géneros de los cocos Gram Positivos
Fuente: Olmos, A., García, C., Sáez, J., & Valdezate, S. (2010). Procedimientos en Microbiología Clínica .
Recuperado el 10 de Abril de 2016, de Recomendaciones de la Sociedad Española de Enfermedades:
https://www.seimc.org/contenidos/documentoscientificos/procedimientosmicrobiologia/seimc-
procedimientomicrobiologia37.pdf
Elaborado: Guerrero, Johana
PRUEBA S. aureus S. epidermidis S. saprophyticus
COAGULASA + - -
DNAsa + - -
MANITOL + - -
NOVOBIOCINA 5 µg S S R
POLIMIXINA B R R S
Ilustración 17: Pruebas de identificación para Staphylococcus
Fuente: Olmos, A., García, C., Sáez, J., & Valdezate, S. (2010). Procedimientos en Microbiología Clínica .
Recuperado el 10 de Abril de 2016, de Recomendaciones de la Sociedad Española de Enfermedades:
https://www.seimc.org/contenidos/documentoscientificos/procedimientosmicrobiologia/seimc-
procedimientomicrobiologia37.pdf
Elaborado: Guerrero, Johana
27
HEMÓLISIS CAMP
BILIS
ESCULINA
BACITRACINA
0.04 µg
OPTOQUINA
5 µg
GRUPO A β - - S R
GRUPO B β o γ + - R R
GRUPO C,
F Y G β - - V R
GRUPO D
No
Enterococos
α o γ - + R R
Ilustración 18: Pruebas de identificación para Streptococcus
Fuente: Olmos, A., García, C., Sáez, J., & Valdezate, S. (2010). Procedimientos en Microbiología Clínica .
Recuperado el 10 de Abril de 2016, de Recomendaciones de la Sociedad Española de Enfermedades:
https://www.seimc.org/contenidos/documentoscientificos/procedimientosmicrobiologia/seimc-
procedimientomicrobiologia37.pdf
Elaborado: Guerrero, Johana
2.3.5.4 INTERPRETACIÓN DE LOS RESULTADOS
En los casos en los cuales hay presencia de estafilococos coagulasa-negativos
(especialmente S. epidermidis) y estreptococos del grupo viridans es fundamental no considerar
su presencia como ≪flora contaminante≫ o ≪flora saprofita≫, sino como agentes
potencialmente infecciosos. Sin embargo, esta apreciación suele ser habitual y conduce a un
diagnóstico infravalorado. (Arroyo, y otros, 2011)
En condiciones normales, la concentración de estafilococos coagulasa-negativos,
estreptococos del grupo viridans y bacterias afines su concentración puede oscilar entre 100 y
300 UFC/mL, con un límite máximo de 1.000 UFC/mL. En los casos en los cuales este valor
supera esta concentración puede deberse a una mastitis infecciosa.
En el caso de S. aureus y Corynebacterium spp. no suelen estar presentes en la leche así
que su presencia puede provocar mastitis incluso en concentraciones más bajas que las especies
antes mencionadas (<500 UFC/mL).
La presencia de bacterias Gram negativas y levaduras pueden estar asociada a un
protocolo inadecuado de toma de muestras. (Arroyo, y otros, 2011)
28
CAPÍTULO III
METODOLOGÍA
3.1 Diseño de Investigación
La presente investigación es un estudio prospectivo no experimental de corte transversal
debido a que se recolectó las muestras de la leche materna, de las madres hospitalizadas en el
H.G.O.I.A que acudieron al servicio de Banco de Leche Humana en Julio y Agosto del 2016, el
estudio se realizó mediante el cultivo de la leche materna para determinar la existencia de una
alteración en la flora normal de la leche.
3.2 Área de estudio
El área de estudio fue el servicio de Banco de Leche Humana del H.G.O.I.A de la ciudad
de Quito en el periodo Julio y Agosto del 2016.
3.3 Población y muestra
La población estuvo conformada por 350 madres lactantes que acudieron al servicio de
Banco de Leche Humana del Hospital Gineco- Obstétrico Isidro Ayora de la ciudad de Quito
durante el periodo Julio y Agosto de 2016. De las cuales 69 madres lactantes que refirieron dolor
en los pezones constituyeron la muestra de estudio
3.4 Criterios de Inclusión y Exclusión
Criterios de Inclusión
Madres hospitalizadas, que acudieron al Servicio de Banco de Leche Humana en los meses julio
y agosto de 2016.
Criterios de Exclusión
Madres con enfermedades virales (HIV).
29
3.5 Matriz de caracterización de variables
VARIABLES
DEFINICIÓN
CONCEPTUAL
DEFINICIÓN
OPERACIONAL TÉCNICAS
MATERIALES E
INSTRUMENTOS
MASTITIS
La mastitis es una infección
inflamatoria del pecho, la
cual puede ser de origen
bacteriano o micótico.
Inspección visual de
signos, presentes en las
mamas.
Contaje de bacterias
superior a 1.000 UFC/
ml.
Observación de Grietas,
Enrojecimiento, Tumefacción
y presencia de dolor.
Cultivo positivo.
Hoja de recolección de
datos.
Frasco estéril para
recolección de muestra.
BACTERIAS
Microorganismos
unicelulares que presentan
un tamaño de algunos
micrómetros de largo y
diversas formas incluyendo
esferas, barras y hélices.
Tinción Gram Cultivo
de muestra
Pruebas de
identificación
bacteriana
Sembrar las muestras en los
diferentes medios de cultivo.
Realizar placa y coloración
Gram.
Identificación de las bacterias
mediante diferentes pruebas
bioquímicas.
Colorantes para la tinción,
medios de cultivo, cajas
tripetri, asa calibrada,
mechero, peróxido de
hidrógeno, discos de
sensibilidad, medios para
pruebas bioquímicas
30
LEVADURAS
Las levaduras se han
definido como hongos
microscópicos, unicelulares,
la mayoría se multiplican
por gemación y algunas por
escisión.
Cultivo de muestras en
medio específico para
levaduras
Sembrar las muestras en los
diferentes medios de cultivo.
Crecimiento positivo en
medio específico para
levaduras.
Medio de cultivo específico
para levaduras.
EDAD
Tiempo de vida de la
persona desde su
nacimiento.
Número de años Entrevista a la paciente Hoja de recolección de
datos.
PARIDAD Número de embarazos a
término Número de hijos Entrevista a la paciente
Hoja de recolección de
datos.
Elaborado: Guerrero, Johana
31
3.6 Técnicas e instrumentos de recolección de datos
Para el diagnóstico de Mastitis Infecciosa por el laboratorio se realizó cultivos de leche
materna, este estudio fue realizado mediante el uso de diferentes medios de cultivo para la
búsqueda de bacterias Gram positivas, Gram negativas y levaduras.
Toda la información obtenida de los resultados del estudio microbiológico de la leche
materna fue registrada en fichas de recolección de datos elaborados para el presente estudio,
después de haber obtenido los respectivos permisos otorgados por las autoridades del Hospital
Gineco- Obstétrico Isidro Ayora. (ANEXO 3)
Pasos para el Procesamiento de muestras
1. Se recolectó las muestras en el Servicio de Banco de Leche Humana del H.G.O.I.A, de
las pacientes que acudieron a donar su leche materna, en el periodo julio y agosto de
2016
2. Las muestras se obtuvieron mediante extracción manual, previa a un lavado de la mama y
secado con toalla de un solo uso.
3. Cada muestra se recolectó en frascos estériles proporcionados por la investigadora.
4. Las muestras fueron recibidas por la investigadora y fueron matriculadas con un número
e ingresadas en la matriz de recolección de datos en el programa Microsoft Excel 2010.
5. Las muestras recolectadas se transportaron al Laboratorio Clínico del Hospital Gineco-
Obstétrico Isidro Ayora, allí se realizó el estudio microbiológico antes mencionado, los
insumos para realizar dicho estudio fueron proporcionados por la investigadora (ANEXO
6), los equipos que se usaron en esta investigación son de la propiedad del HGOIA.
6. Las muestras de leche materna fueron sembradas en agar sangre, agar MacConkay y
Chromogenic Candida agar.
7. Se observó el crecimiento bacteriano después de 24 y 48 horas posteriores a la siembra de
muestras de leche.
8. Se realizó pruebas de identificación bacteriana a las muestras que presentaron
crecimiento en los cultivos.
9. Se registró el resultado en la matriz de recolección de datos.
32
3.7 Técnicas para el procesamiento de datos y análisis de resultados
El nivel de análisis de la investigación fue cuantitativo y cualitativo, en base a los
resultados obtenidos de los 69 cultivos de la leche materna que se realizaron en el área de
microbiología del H.G.O.I.A. Estos resultados fueron registrados, compilados y tabulados en una
hoja de cálculo del programa Microsoft Excel 2010, y representados en gráficos y tablas
porcentuales, cumpliéndose los objetivos planteados en este estudio.
3.8 Consideraciones bioéticas
Para la presente investigación se obtuvo el consentimiento informado escrito de las 69
pacientes que participaron en el estudio (ANEXO 1).
Por consideraciones éticas en las fichas de datos no constaron los nombres de las
pacientes ni su número de historia clínica, lo cual garantizó la confidencialidad de los datos
recolectados que fueron empleados únicamente en esta investigación (ANEXO 2).
33
CAPITULO IV
RESULTADOS
4.1 INTERPRETACIÓN Y ANÁLISIS
En el mes de Julio y Agosto de 2016 acudieron 350 madres lactantes al Servicio de
Banco de Leche Humana del Hospital Gineco- Obstétrico Isidro Ayora, de las cuales 69 tuvieron
presentaron dolor al amamantar y 15 (21.74%) de ellas tuvieron un diagnóstico confirmado
mediante cultivos de su leche materna.
Gráfico 1 Distribución de madres lactantes que acudieron al Banco de leche Humana del
H.G.O.I.A en el periodo de julio - agosto de 2016 según resultados de cultivos.
Fuente: Servicio de Banco de Leche Humana del Hospital Gineco- Obstétrico Isidro Ayora.
Elaborado: Guerrero, Johana
39,13%
39,13%
1,45%
20,29%
SIN DESARROLLOBACTERIANO/48HS
< 1.000 UFC
> 10.000 UFC
> 100.000 UFC
34
De las 54 pacientes con resultado de cultivo de leche materna con un contaje menor a
1.000 UFC/ml, el 50% de estos no presentaron desarrollo bacteriano, de los cultivos que sí
tuvieron desarrollo bacteriano, el 48,1% estuvo conformado por Staphylococcus spp. y el 1,9%
restante estuvo conformado por Streptococcus spp.
Gráfico 2: Frecuencia de microorganismos presentes en cultivos con contaje menor a 1.000
UFC/ml.
Fuente: Servicio de Banco de Leche Humana del Hospital Gineco- Obstétrico Isidro Ayora.
Elaborado: Guerrero, Johana
50% 48,1%
1,9%
Sin desarrollo bacteriano Staplylococcus spp.
Streptococcus spp.
35
De los 15 cultivos de leche materna positivos, el S. epidermidis con una frecuencia de
53,33% fue el microorganismo encontrado en mayor porcentaje, con un 33,33% el siguiente
microorganismo encontrado fue el S .aureus, y con una frecuencia de 6,67% se encontró Serratia
liquefaciens y Enterobacter aerogenes.
Gráfico 3: Frecuencia de microorganismos presentes en cultivos con contaje mayor a 1.000
UFC/ml.
Fuente: Servicio de Banco de Leche Humana del Hospital Gineco- Obstétrico Isidro Ayora
Elaborado: Guerrero, Johana
53,33% 33,33%
6,67% 6,67%
S.epidermidis S.aureus
Serratia licuefaciens Enterobacter aerogenes
36
Para realizar el análisis de la edad se tomó en cuenta los hallazgos mencionados en el
tratado de Mastitis: causas y manejo llevado a cabo por la OMS en Ginebra. De las 15 pacientes
con resultados positivos hubo predominio en las madres menores de 20 años con una frecuencia
del 53,33%, seguido por las madres mayores de 31 años con una frecuencia de 33,33%, y el
grupo de madres con menor frecuencia fue el comprendido entre 21 y 30 años con una frecuencia
de 13,33%.
Gráfico 4: Frecuencia de cultivos positivos de acuerdo al rango de edad.
Fuente: Servicio de Banco de Leche Humana del Hospital Gineco- Obstétrico Isidro Ayora
Elaborado: Guerrero, Johana
53,33%
13,33%
33,33%
Menores de 20 años 21 años a 30 años 31 años en adelante
37
En base a la frecuencia obtenida, se encontró un predominio de cultivos positivos en
leche materna en pacientes primíparas con una frecuencia de 86,67% y en un rango mucho más
se encontraron pacientes multíparas con una frecuencia del 13,33%.
Gráfico 5: Frecuencia de cultivos positivos de acuerdo a la paridad.
Fuente: Servicio de Banco de Leche Humana del Hospital Gineco- Obstétrico Isidro Ayora
Elaborado: Guerrero, Johana
86,67%
13,33%
Primípara Multípara
38
4.2 DISCUSIÓN
Esta investigación tuvo como propósito identificar que microorganismo se encuentra con
mayor frecuencia causando mastitis infecciosa. Sobre todo se trató de demostrar que aun cuando
las madres lactantes referían como síntoma principal dolor en los pezones, estas podían padecer
mastitis infecciosa.
Tomando en cuenta los resultados obtenidos se establecen los siguientes puntos:
De acuerdo a esta investigación se pudo determinar que únicamente el 1% de las
pacientes con mastitis refería toda la sintomatología de libro, este valor contrapone con el estudio
realizado por S. Delgado, et al, en el 2009 a 4000 pacientes, en el cual se menciona que del 10 al
15% de pacientes presentaron lo antes referido.
Además S. Delgado, et al, en su estudio Mastitis Infecciosas durante la lactancia: un
problema infravalorado (I) realizado en el 2009 mencionan que aproximadamente en el 75%
de los casos las mastitis se deben al Staphylococcus aureus, sin embargo los datos obtenidos
reflejan que el microorganismo más frecuente causando mastitis es el Staphylococcus
epidermidis en un 53,33% ante el Staphylococcus aureus que se encontró en un 33,33%, lo cual
contrapone a dicho estudio.
En cuanto a la presencia de las especies de cándida en pacientes con mastitis, los
resultados de la investigación refieren que ningún cultivo fue positivo para cándida, lo cual se
relaciona directamente a lo encontrado por el equipo de investigación del Departamento de
Nutrición, Bromatología y Tecnología de los Alimentos de la Universidad Complutense de
Madrid, dirigido por Juan Miguel Rodríguez Gómez, en el cual dice que se encontraron 4 casos
de mastitis por levaduras en 4.000 pacientes.
El valor porcentual presentado en mi investigación expresa que el 86,67% de las
pacientes que presentaron mastitis eran primíparas adicional a esto el 53,33% eran menores a 21
años, reafirmando lo mencionado por la OMS en el año 2000 el cual refiere que las mujeres
menores a 21 años y primíparas son más propensas a desarrollar esta patología.
39
4.3 CONCLUSIONES
No se encontraron estudios acerca de la identificación de microorganismos en leche
materna realizados en la ciudad de Quito, para la detección de mastitis humanas.
En el banco de leche humana no se realiza un cultivo microbiológico previo a la
donación.
Las normas de bioseguridad aplicadas en la recolección de la leche materna no son
vigiladas de manera estricta.
Existen pacientes con mastitis infecciosa que no presentan toda la sintomatología que la
literatura refiere.
Algunas mastitis inflamatorias terminan evolucionando a mastitis infecciosas.
40
4.4 RECOMENDACIONES
Por lo expuesto anteriormente, se desprenden as siguientes recomendaciones:
Se sugiere realizar estudios más amplios en la leche materna, para conocer su flora
normal y cuando esta se ve alterada.
Se sugiere implementar un control de calidad de la leche materna previo a la
pasteurización.
Se recomienda capacitar a las madres en temas de bioseguridad al donar la leche, para
evitar cualquier tipo de contaminación.
Se recomienda realizar un cultivo microbiológico de la leche materna a las madres
lactantes que presenten dolor al amamantar ya que no todas las pacientes que generan
mastitis presentan una sintomatología tan florida.
Incentivar y mejorar la difusión acerca de la importancia de la lactancia materna, que
además de ayudar al desarrollo del neonato contribuye en gran manera para evitar la
acumulación de leche y que esta conlleve a una mastitis.
41
CAPITULO V
LA PROPUESTA
5.1 TÍTULO: DIFUSIÓN DE LA IMPORTANCIA DE UN CULTIVO MICROBIOLÓGICO
DE LA LECHE MATERNA EN EL DIAGNÓSTICO Y PREVENCIÓN DE LA MASTITIS
PUERPERAL.
5.2 JUSTIFICACIÓN
De acuerdo a los resultados que se obtuvieron en la presente investigación, el hallazgo de
cultivos positivos en madres sin sintomatología aparente es de gran relevancia.
En base a lo antes mencionado se elaboró un tríptico de difusión con información acerca
de la lactancia materna y la importancia de prevenir la mastitis puerperal, para que las madres
conozcan la relevancia de la lactancia materna, como se presenta la mastitis puerperal y técnica
de amamantamiento que serán de gran ayuda a la madre.
5.3 BENEFICIARIOS
El principal beneficio tendrán las madres, ya que se difundirá el tríptico en el servicio de
Banco de Leche Humana, también se expondrá la importancia del estudio realizado al personal
que conforman dicho servicio para resaltar el interés de manejar adecuadamente madres que
presenten alguna molestia al dar de amamantar.
5.4 TRÍPTICO DE DIFUSIÓN
El contenido del tríptico es básicamente informativo en lo que se refiere a la mastitis
puerperal y a su importancia.
42
Un adecuado vaciamiento de la
leche es importante ya que
puede evitar la acumulación de
la leche y por ende evitamos
llegar a una mastitis puerperal.
TRÍPTICO DE DIFUSIÓN
Prevención Mastitis
Puerperal
QUITO – ECUADOR 2016
UNIVERSIDAD CENTRAL DEL
ECUADOR
FACULTAD DE CIENCIAS MÉDICAS
CARRERA DE LABORATORIO CLÍNICO
E HISTOTECNOLÓGICO
AUTORA: JOHANA GUERRERO
43
LACTANCIA
MATERNA
La lactancia materna contribuye
a la salud de la madre y más aun
a la del recién nacido, la
recomendación de la OMS es la
lactancia materna exclusiva
durante los 6 primeros meses de
vida, esto es de gran ayuda al
bebe ya que fomenta su
desarrollo cognitivo y sensorial,
adicional le ayuda al bebe a
protegerse de infecciones y de
enfermedades crónicas, se ha
evidenciado que la lactancia
natural disminuye en gran
numero el nivel de morbilidad y
mortalidad infantil.
MASTITIS PUERPERAL
La mastitis es una afección, esta puede estar
acompañada de infección o no; esta afección es
una de las principales causas del destete
precoz, entre la sintomatología principal
tenemos dolor en los pezones o mamas, ardor,
grietas, hinchazón, calor en la zona afectada,
cabe resaltar que toda esta sintomatología tan
extensa no siempre está presente.
Los principios del tratamiento de la mastitis son
asesoramiento de apoyo a la madre,
vaciamiento eficaz de la leche, tratamiento
antibiótico adecuado
IMPORTANCIA DE UN
ESTUDIO MICROBIOLÓGICO
EN LA LECHE
En un estudio microbiolóco realizado
durante Julio y Agosto en el año 2016, de
69 pacientes que acudieron al Banco de
Leche Humana del Hospital Gíneco-
Obstétrico Isidro Ayora, 15 pacientes dieron
un resultado positivo, confirmandose el
diagnostico de mastitis infecciosa.
33%
53%
7% 7%
Microorganismos encontrados en la leche materna, en cultivos
positivos.
Staphylococcus aureus
Staphylococcus epidermidis
Enterobacter aerogenes
Serratia licuefaciens
Es importante no interrumpir la
lactancia ya que agravaría el
problema de las mastitis. Se debería
realizar un análisis microbiológico de
la leche de toda mujer lactante que
refiera dolor injustificado en el pecho,
o presencia de grietas y de mastitis
recurrentes.
44
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Infecciosas durante la Lactancia Materna. Revista Clínica de Medicina de Familia, 25-
29.
47
Anexo 1: Consentimiento informado para las pacientes
UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR
FACULTAD DE CIENCIAS MÉDICAS
CARRERA DE LABORATORIO CLÍNICO E HISTOTECNOLÓGICO
CONSENTIMIENTO INFORMADO PREVIO AL USO DE MUESTRAS PARA LA ELABORACIÓN
DEL PROYECTO DE INVESTIGACIÓN “IDENTIFICACIÓN DE MICROORGANISMOS
CAUSANTES DE MASTITIS EN MADRES LACTANTES HOSPITALIZADAS QUE ACUDEN AL
SERVICIO DE BANCO DE LECHE HUMANA DEL HOSPITAL GÍNECO-OBSTÉTRICO ISIDRO
AYORA, EN EL PERIODO JULIO-AGOSTO 2016”.
Información sobre el estudio a realizar
La mastitis es una infección del seno, esta puede darse durante la lactancia materna, se
caracteriza principalmente por el dolor en los senos, grietas y endurecimiento. Esta infección está dada
por la proliferación excesiva de bacterias u hongos, adicional a las molestias que la madre presenta podría
suspenderse la lactancia materna, privando así a su bebe de un alimento excepcional.
El presente estudio tiene como fin investigar la cantidad de bacterias presentes en la leche
materna para determinar la existencia de mastitis, mediante el uso de una muestra de leche materna
obtenida previo un lavado de la mama con agua caliente y jabón y el secado mediante una toalla limpia de
un solo uso.
La toma de muestra de una pequeña cantidad de leche materna no representa ningún riesgo para
la madre.
Por el contrario entre los beneficios obtenidos al realizarse este estudio, es la determinación
precoz de una infección en los senos, la cual podría evitar que se suspenda la lactancia materna, además
de que evitará que la infección se agrave.
Nota: Los datos obtenidos en este estudio son confidenciales y únicamente se utilizaran es esta investigación.
Yo…………………………… paciente del H.G.O.I.A, de número de cédula de
identidad…………………… SI AUTORIZO que se haga uso de las muestras y datos obtenidos en esta
investigación por parte de la Srta. Johana Elizabeth Guerrero Arteaga con cédula de identidad
040164103-0.
……………………………..............
Firma de la Paciente
48
Anexo 2: Acta de Confidencialidad
ACTA DE CONFIDENCIALIDAD
Yo Johana Elizabeth Guerrero Arteaga, en mi calidad de investigadora y en consideración
de la relación que mantengo con el Hospital Gineco Obstétrico Isidro Ayora, así como del
acceso que se me permita a la recolección de muestras a las pacientes hospitalizadas que
acudan al Banco de Leche Humana, constato que:
1. Soy consciente de la importancia de mis responsabilidades en cuanto a no poner en
peligro la integridad, disponibilidad y confidencialidad de la información que será de
uso exclusivo para este Proyecto de Investigación.
2. Me comprometo a cumplir, todas las disposiciones relativas a la política de la
institución en materia de uso y divulgación de información, y a no divulgar ni
proporcionar a terceras personas, verbalmente o por escrito, directa o indirectamente la
información que recolecte a lo largo de mi relación con la institución, subsistiendo este
deber de secreto, aun después de que finalice dicha relación y tanto si esta información
es de su propiedad, quedando absolutamente prohibido obtener copias sin previa
autorización.
3. Entiendo que el incumplimiento de cualesquiera de las obligaciones que constan en el
presente documento, intencionadamente o por negligencia, podrían implicar en su caso,
las sanciones correspondientes por parte de la institución y la posible reclamación por
parte de la misma de los daños causados.
Dado en la Ciudad de Quito, a los 18 días del mes de Julio del 2016.
NOMBRE:
Guerrero Arteaga Johana Elizabeth FIRMA:
CEDULA IDENTIDAD No. 040164103-0
49
Anexo 3: Matriz de recolección de datos
Nº EDAD PARIDAD DOLOR GRIETAS TUMEFACCIÓN
OTRA
SINTOMATOLOGÍA
RESULTADO DEL
CULTIVO GÉRMEN
1 18 PRIMIPARA SI NO SI NO SIN CRECIMIENTO BACTERIANO/48HS
2 20 PRIMIPARA SI NO NO NO SIN CRECIMIENTO BACTERIANO/48HS
3 19 PRIMIPARA SI NO SI NO SIN CRECIMIENTO BACTERIANO/48HS
4 28 PRIMIPARA SI NO NO NO <1.000 UFC Staphylococcus spp.
5 23 PRIMIPARA SI NO SI NO > 100.000 UFC S. aureus
6 33 MULTIPARA SI NO NO NO >100.000 UFC S. aureus
7 18 PRIMIPARA SI SI NO PUNZADAS >100.000UFC S. epidermidis
8 17 PRIMIPARA SI NO NO NO <1.000 UFC Staphylococcus spp.
9 36 MULTIPARA SI SI NO NO SIN CRECIMIENTO BACTERIANO/48HS
10 25 PRIMIPARA SI NO NO NO <1.000 UFC Staphylococcus spp.
11 28 MULTIPARA NO SI NO NO <1.000 UFC Staphylococcus spp.
12 33 PRIMIPARA SI NO NO ARDOR > 100.000 UFC S. epidermidis
50
13 15 PRIMIPARA SI SI NO NO SIN CRECIMIENTO BACTERIANO/48HS
14 31 MULTIPARA SI NO SI NO > 100.000 UFC S. aureus
15 15 PRIMIPARA SI NO NO NO > 100.000 UFC Serratia Liquefaciens
16 30 PRIMIPARA NO NO SI ARDOR SIN CRECIMIENTO BACTERIANO/48HS
17 27 PRIMIPARA SI NO NO NO SIN CRECIMIENTO BACTERIANO/48HS
18 28 MULTIPARA SI NO NO NO <1.000 UFC Staphylococcus spp.
19 21 MULTIPARA SI NO NO NO <1.000 UFC Staphylococcus spp.
20 23 PRIMIPARA SI NO NO ARDOR <1.000 UFC Staphylococcus spp.
21 22 MULTIPARA SI NO NO NO SIN CRECIMIENTO BACTERIANO/48HS
22 31 PRIMIPARA NO SI NO NO <1.000 UFC Staphylococcus spp.
23 20 PRIMIPARA SI SI SI ARDOR <1.000 UFC Staphylococcus spp.
24 32 PRIMIPARA SI NO NO NO <1.000 UFC Staphylococcus spp.
25 39 MULTIPARA SI NO NO NO SIN CRECIMIENTO BACTERIANO/48HS
26 18 PRIMIPARA SI NO NO NO SIN CRECIMIENTO BACTERIANO/48HS
27 17 PRIMIPARA SI NO NO NO SIN CRECIMIENTO BACTERIANO/48HS
28 40 PRIMIPARA NO NO NO ARDOR SIN CRECIMIENTO BACTERIANO/48HS
51
29 22 PRIMIPARA NO SI SI QUEMAZON <1.000 UFC Staphylococcus spp.
30 24 PRIMIPARA NO NO NO NO SIN CRECIMIENTO BACTERIANO/48HS
31 29 MULTIPARA NO NO NO NO <1.000 UFC Staphylococcus spp.
32 15 PRIMIPARA NO NO NO NO <1.000 UFC Staphylococcus spp.
33 17 PRIMIPARA NO SI NO NO SIN CRECIMIENTO BACTERIANO/48HS
34 18 PRIMIPARA SI NO SI NO > 100.000 UFC S. epidermidis
35 23 PRIMIPARA NO NO NO NO <1.000 UFC Staphylococcus spp.
36 24 MULTIPARA NO NO NO NO <1.000 UFC Staphylococcus spp.
37 28 MULTIPARA SI NO NO NO SIN CRECIMIENTO BACTERIANO/48HS
38 17 PRIMIPARA NO NO NO NO <1.000 UFC Staphylococcus spp.
39 35 MULTIPARA SI NO NO NO SIN CRECIMIENTO BACTERIANO/48HS
40 19 PRIMIPARA SI NO NO NO <1.000 UFC Staphylococcus spp.
41 19 PRIMIPARA SI NO NO NO <1.000 UFC Staphylococcus spp.
42 33 MULTIPARA NO NO NO NO <1.000 UFC Staphylococcus spp.
43 18 PRIMIPARA NO NO NO HINCHAZON SIN CRECIMIENTO BACTERIANO/48HS
44 18 PRIMIPARA SI NO NO NO > 10.000 UFC S. aureus
52
45 33 MULTIPARA SI NO NO NO SIN CRECIMIENTO BACTERIANO/48HS
46 18 PRIMIPARA SI NO NO NO > 100.000 UFC S. epidermidis
47 33 PRIMIPARA SI NO NO NO > 100.000 UFC S. epidermidis
48 37 MULTIPARA NO NO NO NO SIN CRECIMIENTO BACTERIANO/48HS
49 22 PRIMIPARA NO NO NO NO SIN CRECIMIENTO BACTERIANO/48HS
50 22 PRIMIPARA NO NO NO NO SIN CRECIMIENTO BACTERIANO/48HS
51 22 PRIMIPARA NO NO NO NO <1.000 UFC Streptococcus spp.
52 27 PRIMIPARA SI NO NO NO <1.000 UFC Staphylococcus spp.
53 17 PRIMIPARA NO NO NO NO <1.000 UFC Staphylococcus spp.
54 41 MULTIPARA NO NO NO NO <1.000 UFC Staphylococcus spp.
55 32 MULTIPARA NO NO NO NO SIN CRECIMIENTO BACTERIANO/48HS
56 30 MULTIPARA SI NO NO NO <1.000 UFC Staphylococcus spp.
57 17 PRIMIPARA NO NO NO HINCHAZÓN <1.000 UFC Staphylococcus spp.
58 20 PRIMIPARA SI NO SI NO > 100.000 UFC S. epidermidis
59 26 PRIMIPARA SI NO SI NO > 100.000 UFC Enterobacter aerogenes
60 32 MULTIPARA NO NO NO PICAZÓN <1.000 UFC Staphylococcus spp.
53
61 18 PRIMIPARA SI NO NO NO SIN CRECIMIENTO BACTERIANO/48HS
62 27 MULTIPARA SI NO NO NO SIN CRECIMIENTO BACTERIANO/48HS
63 36 MULTIPARA NO NO NO NO <1.000 UFC Staphylococcus spp.
64 34 PRIMIPARA SI NO NO NO > 100.000 UFC S. epidermidis
65 23 MULTIPARA NO NO NO NO SIN CRECIMIENTO BACTERIANO/48HS
66 17 PRIMIPARA NO NO NO NO <1.000 UFC Staphylococcus spp.
67 20 PRIMIPARA NO NO NO NO SIN CRECIMIENTO BACTERIANO/48HS
68 20 PRIMIPARA SI NO NO NO > 100.000 UFC S. epidermidis
69 19 PRIMIPARA SI NO SI ARDOR- PICAZÓN > 100.000 UFC S. aureus
Sin crecimiento bacteriano
Menor a 1.000 UFC/ml
Mayor a 10.000 UFC/ml
Mayor a 100.00 UFC/ml
Elaborado: Guerrero, Johana
54
Anexo 4: Matriz de referencia para pruebas bioquímicas en bacterias Gram Negativas
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Kliger K/A K/A K/A K/K K/K K/A K/A K/A K/K K/A K/A K/A K/A K/K K/K K/K K/K A/A K/K K/K A/A A/A K/A K/K A/A A/A A/A K/A K/K K/A K/A K/A K/A
H2S 94 95 -100 -100 -100 -100 99 94 94 60 90 -100 -100 -100 -100 -100 -100 -95 -100 -100 -100 -100 -100 -100 -100 -100 -100 -100 -100 -100 -100 -100 -100
Gas 86 96 95 -100 -88 86 99 96 -97 95 91 98 95 -97 -97 -100 -100 92 -100 -100 96 96 64 -100 99 97 96 93 -79 99 73 53 -65
Citrato -89 59 98 93 96 -100 -100 89 -100 -100 90 99 95 -100 -100 -100 -100 -99 -100 -100 97 97 -68 -100 99 100 93 97 67 -94 94 98 88
Lisina -100 -100 -100 -100 -100 -99 100 95 100 90 -100 -100 -100 -100 -100 -100 -100 83 -100 -100 97 97 -52 -100 -100 -100 98 64 -100 99 64 99 61
Motilidad 95 95 96 86 94 86 97 94 99 100 96 91 90 -100 -100 -100 -100 62 -100 -100 -100 -100 -100 -100 92 94 92 97 99 94 93 96 88
Indol 98 -98 99 99 100 99 99 -99 -100 -100 -90 100 100 -56 50 -71 -100 96 100 -100 -100 100 -100 -100 -100 -84 -99 -100 -81 -100 -98 -99 -98
Ornitina -100 99 -99 -100 -100 97 99 97 -100 100 -78 100 -100 -100 -100 -98 99 65 91 -100 -100 -100 -96 -100 94 97 96 100 -100 99 100 99 -100
Urea 95 88 -100 100 99 98 -100 -100 -100 -100 70 86 70 -100 -100 -100 -100 -99 91 100 95 95 -85 -100 75 -100 -95 100 -72 -93 -96 -60 -96
Rojo de Metilo 93 99 99 100 93 97 100 100 100 100 99 100 99 99 100 100 100 99 98 100 -89 -89 98 100 -97 -78 -98 -64 -56 -65 64 -82 -69
Voges Proskauer
-100 -84 -100 -100 -100 -100 -100 -100 -100 -100 -100 -100 -100 -100 -100 -100 -100 -100 -100 -100 94 94 -100 -100 100 97 100 100 59 84 50 99 92
Fenilalanina 99 98 98 95 98 95 -100 -100 -100 -100 -100 -100 -100 -100 -100 -100 -100 -100 -100 -100 -100 -99 -100 -100 -100 50 -100 -100 -100 -100 -100 -100 -100
Fuente: (Farmer III, y otros, 2001)
Elaborado: Guerrero, Johana
55
Anexo 5: Cronograma de actividades
Nº ACTIVIDAD TIEMPO Enero Febrero Marzo Abril Mayo Junio Julio Agosto Septiembre
1 2 3 4 1 2 3 4 1 2 3 4 1 2 3 4 1 2 3 4 1 2 3 4 1 2 3 4 1 2 3 4 1 2 3 4
1 Elaboración del proyecto X
2 Realización del protocolo X
3 Presentación del protocolo X
4 Estudio y aprobación del tema de investigación
X
5 Aprobación del tutor X
6 Desarrollo del borrador bajo tutorías X X X X X X X X X X X X X X X X X X X X
7 Entrega de solicitud para la aprobación de la recolección de muestras
X X
8 Recolección de muestras y análisis de datos
X X X X X X X X
9 Conclusiones y recomendaciones de la investigación
X
10 Revisión de tesis por el tutor
X
11 Entrega del proyecto X
Elaborado: Guerrero, Johana
56
Anexo 6: Costos e insumos.
DETALLE COSTO
PAPELERIA 90
INTERNET 294
MEDIOS DE
CULTIVO 285
CAJAS PETRI 30
ENVASES DE
RECOLECCIÓN 17,75
TUBOS DE VIDRIO 5
MOVILIZACIÓN 40
OTROS 40
TOTAL 801,75
Elaborado: Guerrero, Johana
57
Anexo 7: Fotografías: Servicio de Banco de Leche Humana (Área de toma de
muestras).
Área de lavado de manos y senos (Bioseguridad).
Pacientes recolectando la muestra de leche materna, para el cultivo microbiológico.
Paciente con signos de mastitis.
Fuente: Servicio de Banco de Leche Humana del Hospital Gineco- Obstétrico Isidro
Ayora.
Fotografiado por: Guerrero, Johana
58
Anexo 8: Fotografías: Área de microbiología
Siembra de muestras de leche humana en medios de cultivo.
Prueba bioquímica para identificación de Gram positivos.
Prueba bioquímica para identificación de Gram negativos
Fuente: Área de microbiología del Hospital Gineco- Obstétrico Isidro Ayora..
Fotografiado por: Guerrero, Johana