Upload
others
View
8
Download
0
Embed Size (px)
Citation preview
DAFTAR PUSTAKA
AOAC. 1980. Official Methods of Analysis of the Association of Official of
Analytical Chemist. Washington. Becker J and Boles E. 2003. A Modified Saccharomyces cereviiae Strain That
Consumes L-Arabinose and Produces Ethanol. Appl Environ Microbiol 69(7): 4144-4150.
Budiyanto A, Martosuyono P, Richana N. 2006. Optimasi Proses Produksi
Tepung Gula Kasava dari Pati Ubi Kayu Skala Laboratorium. Bogor: Buletin Balai Besar Pasca Panen 2(1) 28-35.
Chandel AK, Kapoor RK, Rudravaram R. 2006. Production of Bioethanol from
Typha latifolia Enzymatic Hydrolysates Under Batch and Fed-batch Fermentation Condition. J Fuel 3317:6 pages.
Crueger W, Anneliese C. 1984. Biotechnology A Textbook of Industrial
Microbiology. Madison: Science Tech, Inc. Dai D, Hu Z, Pu G, Li H, Wang C. 2006. Energy Efficiency and Potential of
Cassava Fuel Ethanol in Guangxi of China. Energy Convers Manage 47 (13-14):1686-1699.
Deptan. 2006. Perbandingan Karakteristik Tanaman Umbi. [terhubung berkala].
http://www.deptan.go.id.html [25 Okt 2007] Duryatmo S, Helmina A, Wigunan I, Marliani L, Artdiyasa N. 2007. Soekani
Sukses Mengembangkan Agroindustri Bioetanol di Sukabumi. Majalah Trubus [terhubung berkala]. http://www.pusatagroindustri.com.html [18 Jan 2008]
Duryatmo S, Helmina A, Wigunan I, Marliani L, Artdiyasa N. 2008. Bensin
Singkong dari Halaman Rumah. Majalah Trubus [terhubung berkala]. http://www.trubus.co.id.html [11 Jun 2008]
Fardiaz, S. 1988. Fisiologi Fermentasi. Bogor: Pusat Antar Universitas, Institut
Pertanian Bogor. Gaptista CMSG, Coias JMA, Oliveira ACM, Oliveira NMC, Rocha JMS,
Dempsey MJ, Lannigan KC, Benson PS. 2006. Natural Immobilitation of Microorganisms for Continous Ethanol Production. Enzyme Microb Technol 40:127-131.
Heux S, Sablayrolles JM, Cachon R, Dequin S. 2006. Engineering a
Saccharomyces cerevisiae Wine Yeast That Exhibits Reduced Ethanol Production during Fermentation under Controlled Microoxygenation Conditions. Appl Environ Microbiol 72(9): 5822-5828.
54
Hidayat D. 2007. Bensin Dioplos Singkong. Koran Tempo [terhubung berkala]. http://www.tempo.co.id.html [18 Jan 2008].
Higins IC, Best DJ, Jones J. 1984. Biotechnology Principles and Application.
London: Balckwell scientific publ. Jamai L, Sendide K, Ettayebi K, Errachidi F, Alami OH, Jouti MAT, McDermott
T, Ettayebi M. 2001. Physiological Difference during Ethanol Fermentation between Calcium Alginate-Immobilizad Candida tropicalis and Saccharomyces cerevisiae. FEMS Microbiol Lett 204(2):375-379.
Judoamidjojo RM, Said EG, Hartoto L. 1989. Biokonversi. Bogor : Pusat Antar
Universitas Bioteknologi. Judoamidjojo RM. 1990. Teknologi Fermentasi. Bogor: Pusat Antar Universitas
Bioteknologi. Krishna SH, Prasanthi K, Chowdary GV, Ayyanna C. 1998. Simultanoues
Saccharification and Fermentation of Pretreated Sugar Cane Leaves to Ethanol. J Process Biochem 33(8):825-830.
Lingga P, Sarwono B, Rahardi I, Rahardjo PC, Afriastini JJ, Wudianto R, Apriadji
WH. 1986. Bertanam Umbi-umbian. Jakarta: Penebar Swadaya. Maarel MJECVD, Veen BVD, Uitdehaag JCM, Leemhuis H, Dijkhuizen L. 2002.
Properties and applications of starch-converting enzymes of the _-amylase family. J Biotechnology 94(2):137-155.
Machfud, Said EG, Krisnani. 1989. Fermentor. Bogor: Pusat Antar Universitas,
Institut Pertanian Bogor. Maiden AM. 1970. Food and Fermentation Application of Starch Hydrolysates.
Di dalam Birch, Green LF, Voulson GB (eds.). Glucose Syrups and Related Carbohydrates. London: Elsevier Publ. Co. Ltd.
Maoka T, Akimoto N, Ishiguro K, Yoshinaga M, Yoshimoto M. 2007.
Carotenoids with a 5,6-dihydro-5,6-dihydroxy-b-end group, from yellow sweet potato ‘‘Benimasari’’, Ipomoea batatas LAM. J Phytochemistry 68(13):1740-1745.
Morales S, Alvares H, Sanchez C. 2008. Dynamic Models for tha Production of
glukose Syrups from Cassava Starch. J Food Bioproducts Process 86:25-30. Musaddad A. 2005. Teknologi Produksi Kacang-Kacangan dan Umbi-Umbian
(Kedelai, Kacang Tanah, Kacang Hijau, Ubi Kayu, Ubi Jalar). Malang: Balai Penelitian Tanaman Kacang-Kacangan dan Umbi-Umbian.
55
Narendranath NV and Power R. 2005. Relationship between pH and Mediu Dissolved Solids in Terms of Growth and Metabolism of Lactobacilli and Saccharomyces cerevisiae during Ethanol Production. Appl Environ Microbiol 71(5):2239-2243.
Ohgren K, Bengtsson O, Grauslund MFG, Galbe M, Hagerdal BH, Zacchi G.
2006. Simultaneous Saccharification and Co-Fermentation of Glucose and Xylose in Steam-Pretreated Corn Stover at High Fiber Content with Saccharomyces serevisiae TMB 3400. J Biotechn 126(4):488-498.
Paturau JM. 1981. By Product of the Cane Sugar Industry : An Introduction to
Their Industrial Utilization. Amsterdam: Elsevier Scientific Publ Co. Peppler HJ, Perlman D. 1979. Microbial Technology Fermantation Technology.
New York: Academic Press, INC. Pina C, Santos C, Couto JA, Hogg T. 2004. Ethanol Tolerance of Five non-
Saccharomyces Wine Yeast in Comparison with a Strain of Saccharomyces cerevisiae – Influence of Differenet Culture Conditions. J Food Microbiol 21:439-447.
Prasad S, Singh A, Joshi HC. 2007. Ethanol as an Alternative Fuel From
Agricultural, Industrial and Urban Residues. Resources, Conserv Recycling 50(1):1-39.
Prescott SC and Dunn M. 1981. Industrial Microbiology. New York: Mc Graw
Hill Book Co Ltd. Puslittan (Pusat Penelitian dan Pengembangan Tanaman Pangan). 2008. Ubi Jalar
Varietas Unggulan: Sukuh. [terhubung berkala]. http:// www.puslittan.bogor.net.html . [18 Jan 2008]
Ratledge C, Kristiansen B. 2001. Basic Biotechnology second edition. London:
Cambridge University Press. Sa`id EG. 1985. Pengantar Bioindustri. Bogor: Agroindustri Press, Jurusan TIN –
FATETA IPB. Sa`id EG. 1987. Bioindustri Penerapan Teknologi Fermentasi. Jakarta: PT
Mediyatama Sarana Perkasa. Sheehan J and Himmel M. 1999. Enzymes, Energy, and the Environment: A
Strategic Perspective on the U.S. Department of Energy’s Research and Development Activities for Bioethanol. J Biotechnol. Prog 15: 817-827.
Shintawaty A. 2006. Prospek Pengembangan Biodiesel dan Bioetanol Sebagai
Bahan Bakar Alternatif di Indonesia. Economic Review No. 23 Maret 2006.
56
Shuler ML, Kargi KF. 1992. Bioprocess Engineering Basic Concepts. New Jersey: Prentice Hall.
Stanbury PF, Whitaker A. 1993. Priciples of Fermentation Technology. New
York: Pergamon Press. Sudjana MA. 1985. Disain dan Analisis Eksperimen. Bandung: Tarsito. Swain MR, Kar S, Sahoo AK, Ray RC. 2007. Ethanol Fermentation of Mahula
(Madhuca latifolia L) Flowers using Free and Immobilized Yeast Saccharomyces cerevisiae. J Microbiol Res 162(2):93-98.
Tjokroadikoesoemo PS. 1986. HFS dan Industri Kayu lainnya. Jakarta: Gramedia. Wang DIC, Cooney CL, Demain AL, Dunnill P, Humphrey AE dan Lilly MD.
1979. Fermentation and Enzyme Technology. New York: John Wiley & Sons. Wendhausen R, Fregonesi A, Moran PJS, Joekes I, Augusto J, Rodrigues R,
Tonella E, Althoff K. 2001. Continous Fermentation of Sugar Cane Syrup using Immobilized Yeast Cells. J Bioscience Bioeng 91(1):48-52.
Winarno FG. 1992. Kimia Pangan dan Gizi. Jakarta: Gramedia. Yoshida F, Yamane T, Nakamoto K. 1973. Fed-batch Hydrocarbon Fermentation
with Colloidal Emulsion Feed. Biotech. Bioeng. 15. 257-270. You KM, Rosenfield CL, Knipple DC. 2003. Ethanol Tolerance in the Yeast
Saccharomyces cerevisiae Is Dependent on Cellular Oleic Acid Content. J Appl Environ Microbiol 69(3): 1499-1503.
Yu B, Zhang F, Zheng Y, Wang P. 1996. Alcohol Fermentation from the Mash of
dried Sweet Potato with Its Dregs Using Immobilised Yeast. J Process Biochem 31(1): 1-6.
Zaldivar J, Roca C, Foll CL, Hagerdal BH, Olsson L. 2005. Ethanolic
Fermentation of Acid Pre-treated Starch Industry Effluents by Recombinant Saccharomyces cerevisiae Strains. J Bioresource Technol 96(15):1670-1676.
58
LAMPIRAN
58
%100ker((%) xSegarSampelBobot
ingsegarSampelBobotAirKadar −=
%100(%) xKeringSampelBobot
AbuBobotAbuKadar =
%100(%) xKeringSampelBobot
TerekstrakLemakBobotLemakKadar =
Lampiran 1 Analisa proximat ubi jalar dan pati ubi jalar (AOAC, 1980)
A Kadar Air
Sebanyak 1 gram sampel segar dalam botol timbangan dimasukkan ke
dalam oven pada suhu 105 0C selama 8 jam, lalu ditimbang. Kadar air
dihitung dengan rumus:
B Kadar Abu
Sebanyak 1 gram sampel kering ditempatkan dalam wadah porselin dan
dibakar sampai tidak berasap. Kemudian diabukan dalam tanur bersuhu 600 0C selama 1 jam, lalu ditimbang. Kadar abu dihitung dengan rumus:
C Kadar Lemak Kasar
Sebanyak 2 gram sample kering disebar di atas kapas yang beralas
kertas saring dan digulung membentuk thimble, lalu dimasukkan dalam labu
soxhlet. Kemudian dilakukan ekstraksi selama 6 jam dengan menggunakan
pelarut lemak berupa heksana sebanyak 150 ml. Lemak yang terekstrak
kemudian dikeringkan dalam oven pada suhu 100 0C selama 1 jam. Kadar
lemak kasar dihitung dengan rumus:
D Kadar Protein Kasar
Sebanyak 0.25 gram sample kering, ditempatkan dalam labu Kjeldahl
100 ml dan ditambahkan 0.25 gram Selenium dan 3 ml H2SO4 pekat.
Kemudian dilakukan dekstruksi (pemanasan dalam keadaan mendidih) selama
1 jam sampai larutan jernih.
59
%1001000
14)(% xxw
xHClNxBSN −=
Setelah dingin ditambahkan 50 ml aquades dan 20 ml NaOH 40 %, lalu
didestilasi. Hasil destilasi ditampung dalam Erlenmeyer yang berisi campuran
10 ml H3BO3 2 % dan 2 tetes indicator Brom Cresol Green – Methyl Red
berwarna merah muda. Setelah volume hasil tampungan (destilat) menjadi 10
ml dan berwarna hijau kebiruan, destilasi dihentikan dan destilat dititrasi
dengan HCl 0.1 N sampai berwarna merah muda. Perlakuan yang sama
dilakukan juga terhadap blanko. Dengan metode ini diperoleh kadar Nitrogen
total yang dihitung dengan rumus:
Ket :
S : Volume titran sample (ml)
B : Volume titran blanko (ml)
W : Bobot sample kering (mg)
Kadar protein diperoleh dengan mengalikan kadar Nitrogen dengan 4.38
(faktor perkalian untuk jamur umum). Faktor perkalian untuk berbagai bahan
pangan berkisar 5.18 – 6.38.
E Kadar Serat Kasar
Sebanyak 1 gram sample kering dilarutkan dengan 100 ml H2SO4
1.25 %, dipanaskan hingga mendidih lalu dilanjutkan dengan dekstruksi
selama 30 menit. Kemudian disaring menggunakan kertas saring whatman
(Φ : 10 cm) dan dengan bantuan corong Buchner. Residu hasil saringan dibilas
dengan 20 – 30 ml air mendidih dan dengan 25 ml air sebanyak 3 kali. Residu
didekstruksi kembali dengan 100 ml NaOH 1.25 % selama 30 menit. Lalu
disaring dengan cara seperti di atas dan dibilas berturut – turut dengan 25 ml
H2SO4 1.25 % mendidih, 2.5 ml air sebanyak 3 kali, dan 25 ml alcohol.
Residu beserta kertas saring dipindahkan ke cawan porselin dan dikeringkan
dalam oven 130 0C selama 2 jam. Setelah dingin residu beserta cawan porselin
ditimbang (A), lalu dimasukkan dalam tanur 600 0C selama 30 menit,
didinginkan dan ditimbang kembali (B).
Ket:
60
%100ker
(%) xingsampelbobot
kasarseratbobotKasarSeratKadar =
Bobot serat kasar = w – w0
W = bobot residu sebelum dibakar dalam tanur
= A – (bobot kertas saring + cawan);
A = bobot residu + kertas saring + cawan
W0 = bobot residu setelah dibakar dalam tanur
= B - (bobot cawan)
B = bobot residu + cawan
F Kadar Karbohidrat
Kadar karbohidrat total ditentukan dengan metode carbohydrate by
difference yaitu : 100% - (kadar air + abu + protein + lemak). Kadar
karbohidrat N-free menunjukkan besarnya kandungan karbohidrat yang dapat
dicerna dari suatu bahan pangan. Ditentukan dengan cara 100% - (kadar air +
abu + protein + lemak + serat kasar).
G Kadar Pati
Sebanyak kurang lebih 5 gram contoh ditimbang dan dimasukkan ke
dalam Erlenmeyer. Kemudian ditambahkan 200 ml larutan HCl 3 % dan
dididihkan selama 3 jam dengan pendingin tegak. Selanjutnya didinginkan dan
dinetralkan dengan larutan NaOH 30 % (indicator lakmus atau fenoftalein),
dan ditambahkan sedikit CH3COOH 3 % agar suasana larutan sedikit asam. Isi
dipindahkan ke dalam labu ukur 500 ml dan diencerkan hingga tanda tera,
kemudian disaring. Sebanyak 10 ml larutan dipipet ke dalam Erlenmeyer 500
ml dan ditambahkan 25 ml larutan Luff (dengan pipet) dan beberapa butir batu
didih serta 15 ml air suling. Campuran dipanaskan dengan nyala tetap,
diusahakan agar larutan dapat mendidih dalam waktu 3 menit (digunakan stop
watch). Campuran terus didihkan selama tepat 10 menit (dihitung dari saat
mulai mendidih) kemudian dengan cepat didinginkan dalam bak berisi es.
Setelah dingin ditambahkan 15 ml larutan KI 20 % dan 25 ml H2SO4 25 %
secara perlahan – lahan. Penitaran dilakukan secepatnya dengan larutan
61
%1001 xw
fpxwGlukosaKadar =
sodium tiosulfat 0.1 N dengan indicator larutan kanji 0.5 %. Pekerjaan yang
sama dilakukan juga terhadap blanko.
Perhitungan :
(Blanko – Penitar) x N sodium tiosulfat x 10
Setara dengan terusi yang tereduksi. Kemudian dengan daftar Luff Schoorl
dilihat jumlah mg gula yang terkandung untuk ml sodium tiosulfat yang
digunakan.
Keterangan :
w1 : Bobot contoh (mg)
w : Glukosa yang terkandung untuk ml sodium tiosulfat yang
dipergunakan (mg)
fp : faktor pengenceran
Tabel 11 Penetapan Gula Berdasarkan Luff Schoorf
Na2S2O3 0.1 N (ml)
Glukosa, Fruktosa, Gula Invert (mg)
Laktosa (mg)
Maltosa (mg)
1 2.4 3.6 3.9 2 4.8 7.3 7.8 3 7.2 11.0 11.7 4 9.7 14.7 15.6 5 12.2 18.4 19.6 6 14.7 22.1 23.5 7 17.2 25.8 .27.5 8 19.8 29.5 31.5 9 22.4 33.2 35.5
10 25.0 37.0 39.5 11 27.6 40.8 43.5 12 30.3 44.6 47.5 13 33.0 48.4 51.6 14 35.7 52.2 55.7 15 38.5 56.0 59.8 16 41.3 59.9 63.9 17 44.2 63.8 68.0 18 47.1 67.7 72.2 19 50.0 71.1 76.5 20 53.0 75.1 80.9 21 56.0 79.8 85.4 22 59.1 83.9 90.0 23 62.2 88.0 94.6
Sumber : SNI 01 – 2891 – 1992
62
kurva standar total gula(metode fenol)
y = 0.0132x - 0.0029R2 = 0.9977
00.10.20.30.40.50.60.70.80.9
0 10 20 30 40 50 60 70
total gula (g/l)
abso
rban
si
Lampiran 2 Prosedur analisis sirup glukosa
Penetapan Total Gula Metode Fenol H2SO4
Sebelum melakukan pengujian sample maka perlu diketahui kurva standar
fenol yang digunakan. Pembuatan kurva standar fenol adalah sebagai berikut:
2 ml larutan glukosa standar yang mengandung 0, 10, 20, 30, 40, 50,dan 60
µg glukosa masing-masing dimasukkan ke dalam tabung reaksi, ditambahkan 1
ml larutan fenol 5 persen dan dikocok. Kemudian 5 ml asam sulfat pekat
ditambahkan dengan cepat. Biarkan selama 10 menit, kocok lalu tempatkan dalam
penangas air selama 15 menit. Absorbansinya diukur pada 490 nm, pengujian
sample sama dengan pembuatan kurva standar fenol hanya 2 ml larutan glukosa
diganti dengan 2 ml sample.
Gambar 19 Kurva standar total gula (metode fenol)
Tabel 12 Kurva standar total gula
kandungan glukosa nilai absorbansi 0 0.088 10 0.235 20 0.328 30 0.478 40 0.599 50 0.757 60 0.881
63
Lampiran 3 Prosedur analisis parameter fermentasi
1. pH
Pengukuran pH dilakukan dengan pH meter.
2. Penetapan Total Gula Metode Fenol H2SO4
Sebelum melakukan pengujian sample maka perlu diketahui kurva
standar fenol yang digunakan. Pembuatan kurva standar fenol adalah sebagai
berikut:
2 ml larutan glukosa standar yang mengandung 0, 10, 20, 30, 40,
50,dan 60 µg glukosa masing-masing dimasukkan ke dalam tabung reaksi,
ditambahkan 1 ml larutan fenol 5 persen dan dikocok. Kemudian 5 ml asam
sulfat pekat ditambahkan dengan cepat. Biarkan selama 10 menit, kocok lalu
tempatkan dalam penangas air selama 15 menit. Absorbansinya diukur pada
490 nm, pengujian sample sama dengan pembuatan kurva standar fenol hanya
2 ml larutan glukosa diganti dengan 2 ml sample.
3. Biomasa
Pengukuran massa sel dilakukan dengan menggunakan bobot sel
kering. Sampel yang akan diukur dimasukkan ke dalam effendorf, kemudian
disentrifuse. Setelah itu dicuci dengan menggunakan larutan buffer atau air
dan dikeringkan 80 0C selama 24 jam atau 110 0C selama 8 jam.
4. OD
Pengukuran OD dilakukan dengan menggunakan spektrofotometer
pada panjang gelombang 660 nm.
5. Kadar Etanol
Pengukuran kadar etanol sampel dilakukan menggunakan GC (Gas
Chromatography). Penentuan dilakukan dengan membandingkan waktu
retensi sample dengan waktu retensi standar etanol. Standar etanol yang
64
[ ]darsxdarsareaLuas
sampelareaLuasoleKadar tantan
tan =
diinjeksikan dengan konsentrasi 99.8 % (v/v). Kadar etanol yang terdapat
dalam sample dihitung dengan menggunakan persamaan berikut:
Kondisi analisis pengukuran etanol dengan menggunakan GC adalah
sebagai berikut:
• Instrument : Hitachi
• Kolom : OV - 17
• Gas Pembawa : N2
• Detektor : FID, 250 0C
• Volume injeksi : 2 µl
• Suhu
a. Suhu Final : 100 0C
b. Suhu Initial : 100 0C
c. Suhu Injector : 200 0C
d. Suhu Detector : 250 0C
65
Kurva standar biomasa Vs OD reaktor
y = 0.0032x + 0.0053R2 = 0.9898
0
0.002
0.004
0.006
0.008
0.01
0 0.2 0.4 0.6 0.8 1OD
Bio
mas
a (g
/l)
OD vs BiomasLinear (OD vs Biomas)
Lampiran 4 Kurva pertumbuhan standar S. cerevisiae
Tabel 13 Kurva pertumbuhan standar S. cerevisiae
Biomasa terukur OD 0.0059 0.176 0.006 0.269 0.0066 0.42 0.0067 0.486 0.007 0.528 0.0073 0.633 0.0074 0.657 0.0073 0.659 0.0078 0.8085
Gambar 20 Kurva pertumbuhan standar S. cerevisiae
66
Lampiran 5 Deskripisi tanaman ubi jalar varietas Sukuh yang digunakan (Puslittan
2008)
Asal : Persilangan bebas dari klon induk betina AB 940 Tipe tanaman : Kompak Umur panen : 1-1.5 bulan Diameter buku ruas : Tipis Panjang buku ruas : Pendek Warna dominan sulur : Hampir semua berwarna ungu Warna sekunder sulur : Hijau pada pucuk Bentuk kerangka daun : Berbentuk hati Kedalam cuping daun : Tidak ada Jumlah cuping : Bercuping satu Bentuk cuping pusat : Gerigi Ukuran daun dewasa : Sedang Warna tulang daun permukaan bawah
: Semua tulang daun berwarna ungu
Warna daun dewasa : Hijau dengan tulang tulang daun ungu pada permukaan atas helai daun
Warna daun muda : Hijau denganwarna ungu melingkari tepi daun Pigmentasi pada tangkai daun
: Sebagian besar tangkai ungu hijau sedikit
Panjang tangkai daun : Pendek Bentuk umbi : Ellip membulat Susunan pertumbuhan umbi
: Terbuka
Panjang tangkai umbi : Pendek Warna kulit umbi : Kuning Warna daging umbi : Putih Rasa umbi : Enak Serat : 0.85% Bahan kering : 35.0% Protein : 1.62% Gula total : 4.56% pati : 31.16% Vitamin C : 19.21 mg/100 gram Beta carotene : 36.59 mkg/100 gram Ketahanan terhadap hama
: Agak tahan hama boleng (Cylas formicarius) dan tahan hama penggulung daun
Ketahanan terhadap penyakit
: Agak tahan penyakit kudis (Sphaceloma batatas) dan bercak daun (Cercospora,sp)
Keterangan lain : Bahan kering umbi tinggi , warna daging putih, sangat baik untuk digunakan sebagai tepung ubi jalar,
cocok ditanam pada lahan tegalan dan sawah
67
Gambar 21 Areal perkebunan ubi jalar varietas sukuh
Gambar 22 Ubi jalar varietas Sukuh
68 68
Lampiran 5 Data penelitian pada sistem batch
A Perlakuan normal
Tabel 14 Data penelitian utama perlakuan normal sistem batch
Jam ke Biomasa TG pH Etanol
0 5.5816 ± 0.054306 218.864 ± 6.428243 4.9
6 6.1192 ± 0 104.508 ± 1.071374 4.6
12 6.6696 ± 0.054306 93.333 ± 3.214122 4.3
18 7.1112 ± 0.33036 76.288 ± 5.892557 3.9
24 7.1272 ± 0.273792 62.462 ± 2.946278 3.8
30 7.156 ± 0.251164 61.326 ± 5.35687 3.6
36 7.156 ± 0.002263 35 ± 5.892557
42 7.1912 ± 0.108612 12.273 ± 0.535687 3.3
48 7.1752 ± 0.339411 4.4697 ± 3.481965 3.2
54 7.1672 ± 0.21496 2.568 ± 1.607061
60 7.3512 ± 0.079196 3.022 ± 1.205296 2.9
66 7.2712 ± 0.067882 3.856 ± 2.410591 2.7
72 7.0632 ± 0.045255 1.524 ± 1.071374 2.5 9.07 ± 0.735
69 69
B Perlakuan stop aerasi
Tabel 15 Data penelitian utama perlakuan stop aerasi sistem batch
Jam ke Biomasa TG pH Etanol
0 5.6136 225.303 ± 10.17805 5.1
6 5.9816 ± 0.040729 171.894 ± 5.892557 4.8
12 6.5576 ± 0.076933 132.5 ± 7.499617 4.3
18 6.796 ± 0.011314 129.469 ± 4.821183 4.1
24 6.788 ± 0.174231 102.196 ± 8.035304 3.8
36 6.82 ± 0.022627 98.03 ± 1.071374 3.5
42 6.836 ± 0.101823 71.136 ± 4.285496 3.4
48 6.932 ± 0.056569 62.045 ± 6.96393 3.4
54 7.1176 59.393 ± 8.035304 3.3
60 7.076 ± 0.079196 28.712 ± 1.893939 3.3
66 7.2136 19.621 ± 4.821183 3.3
72 7.204 ± 0.09051 22.272 ± 3.212479 3.3 10.27 ± 0.424
70 70
C Perlakuan stop aerasi dan agitasi
Tabel 16 Data penelitian utama perlakuan stop aerasi dan agitasi sistem batch
Jam ke Biomasa TG pH Etanol
0 5.9976 ± 0.027153 224.545 ± 8.570991 5.1
6 6.596 ± 0.076933 149.166 ± 12.27322 4.8
12 7.0952 ± 0.022627 120.378 ± 2.678435 3.4
18 7.4456 ± 0.056569 100.303 ± 9.106678 2.8
24 7.4936 ± 0.056569 59.773 2.7
36 7.3608 ± 0.054306 38.182 ± 0.267843 2.6
42 7.4584 ± 0.038467 32.879 ± 7.767461 2.6
48 7.2712 ± 0.027153 31.364 ± 6.96393 2.6
60 7.4776 ± 0.011314 20 ± 0.267843 2.6
66 7.3096 ± 0.009051 19.621 ± 5.35687 2.6
72 7.316 ± 0.081459 14.318 ± 1.339217 2.6 8.46 ± 0.438
71 71
Lampiran 6 Data penelitian pada sistem fed batch
A Perlakuan normal
Tabel 17 Data penelitian utama perlakuan normal sistem fed batch
Jam ke- Biomasa TG pH Etanol
0 5.7512 ± 0.022627 215.833 ± 1.607061 4.7
6 6.4136 ± 0.009051 159.015 ± 2.142748 4.2
12 7.3352 ± 0.011314 114.697 ± 1.536351 2.6
18 7.6072 ± 0.013576 82.5 ± 6.96393 2.1 6.46 ± 0.7637
24 7.5912 ± 0.045255 99.924 ± 1.473139 2
30 7.6552 ± 0.015839 87.045 ± 5.624713 2
36 7.7352 ± 0.39598 52.197 ± 0.776746 1.9
42 7.7032 ± 0.138027 63.939 ± 4.285496 2.1
48 7.7032 ± 0.036204 35.530 ± 3.214122 2.1
54 7.676 37.046 ± 0.535687 2.2
66 7.876 24.924 ± 1.071374 2.1
72 7.796 ± 0.011314 12.803 ± 1.339217 2.1 17.23 ± 1.796
72 72
B Perlakuan stop aerasi
Tabel 18 Data penelitian utama perlakuan stop aerasi sistem fed batch
Jam ke- Biomasa TG pH Etanol
0 5.4456 ± 0.005091 237.045 ± 7.231774 4.7
6 6.2088 ± 0.048366 132.5 ± 7.231774 4.3
18 7.17 ± 0.025456 93.864 ± 8.8388 2.4 6.46 ± 0.7637
24 7.116 ± 0.025456 100.5 ± 1.787604 2.4
30 7.188 ± 0.012728 95.36 ± 5.892557 2.4
42 7.242 ± 0.012728 67.348 ± 5.089026 2.3
48 7.152 ± 0.001273 22.652 ± 7.499617 2.4
54 7.161 ± 0.025456 30.378 ± 2.678435 2.4
66 7.188 ± 0.114551 17.348 ± 1.838458 2.4
72 7.008 ± 0.025456 11.288 ± 2.303456 2.5 21.385 ± 0.57
73 73
C Perlakuan stop aerasi dan agitasi
Tabel 19 Data penelitian utama perlakuan stop aerasi dan agitasi sistem fed batch
Jam ke- Biomasa TG pH Etanol
0 5.8452 ± 0.0245456 215.833 ± 2.678435 5
6 6.3744 ± 0.020365 135.151 ± 8.303148 4
18 6.981 ± 0.08655 88.371 ± 5.35687 2.6 6.46 ± 0.7637
24 6.936 ± 0.005091 135.909 ± 1.594287 2.6
30 6.792 ± 0.020365 120.378 ± 1.50889 2.7
42 6.5508 ± 0.005091 124.167 ± 5.969547 2.8
48 6.5616 ± 0.030547 112.045 ± 9.106678 2.8
54 6.5364 ± 0.005091 99.167 ± 2.142748 2.8
66 6.5724 ± 0.005091 109.399 ± 3.41398 3
72 6.5904 ± 0.020365 88.561 ± 3.274502 3 13.275 ± 0.78
74
Lampiran 8 Konversi ubi jalar menjadi bioetanol
Gambar 23 Diagram alir pembuatan bioetanol dari ubi jalar varietas Sukuh
Ubi jalar 10 000g
Ekstraksi pati (rendemen 22.53 ± 1.48 %)
Pati ubi jalar 2253g
Pembuatan sirup glukosa (Efisiensi 97.47 ± 1.27 %)
Sirup glukosa 2195.99g
Pembuatan cairan fermentasi 240g/l
Cairan fermentasi 9.15 liter
Fermentasi 72 jam (kadar etanol 21.385 ± 0.573% v/v)
Etanol (100%) 1.96 liter