DAFTAR PUSTAKA - core.ac.uk. Jamilah B, Shu CE, Kharidah M, Dzulkifly MA, ... Buku pintar bertanam buah naga [Internet ... Suriawinata AA, Thung SN. Liver pathology an atlas and

60

DAFTAR PUSTAKA

1. Reiter P. Climate change and mosquito-borne disease. Environmental Health

Perspectives. 2001;109:141–61.

2. Mulla MS, Thavara U, Tawatsin A, Kong-Ngamsuk W, Chompoosri J.

Mosquito burden and impact on the poor: measures and costs for personal

protection in some communities in Thailand. Journal of the American

Mosquito Control Association. 2001;17(3):153–9.

3. Krieger RI, Dinoff TM, Zhang X. Octachlorodipropyl ether (S-2) mosquito

coils are inadequately studied for residential use in Asia and illegal in the

United States. Environmental Health Perspectives. 2003;111(12):1439–42.

4. Badan Penelitian dan Pengembangan Kesehatan. Riset kesehatan dasar.

2013;306.

5. Gupta G, Chaitanya RK, Golla M, Karnati R. Allethrin toxicity on human

corneal epithelial cells involves mitochondrial pathway mediated apoptosis.

Toxicology in Vitro. Elsevier Ltd; 2013;27:2242–8.

6. Madhubabu G, Yenugu S. Allethrin induces oxidative stress, apoptosis and

calcium release in rat testicular carcinoma cells (LC540). Toxicology in

vitro : an international journal published in association with BIBRA. Elsevier

Ltd; 2014;28(8):1386–95.

7. Narendra M, Kavitha G, Kiranmai A, Rao N, Varadacharyulu N. Chronic

exposure to pyrethroid-based allethrin and prallethrin mosquito repellents

alters plasma biochemical profile. Chemosphere. 2008;73(3):360–4.

8. Romero A, Ramos E, Castellano V, Martínez MA, Ares I, Martínez M, et al.

Cytotoxicity induced by deltamethrin and its metabolites in SH-SY5Y cells

can be differentially prevented by selected antioxidants. Toxicology in Vitro.

Elsevier Ltd; 2012;26(6):823–30.

9. Ibiam UA, Nzubechukwu E, C UOP. Hepatotoxicity of rambo and cork

mosquito-coil snoke and the protective effects of G. latifolium leaf extract.

2015;5(1):13–9.

10. Jaya IKD. Morphology and physiology of pitaya and it future prospects.

61

America. 2010;44–50.

11. Jamilah B, Shu CE, Kharidah M, Dzulkifly MA, Noranizan A. Physico-

chemical characteristics of red pitaya ( Hylocereus polyrhizus ) peel.

International Food Research Journal. 2011;286:279–85.

12. Fathir A. Pengaruh ekstrak jahe merah (Zingiber officinale Rosc) terhadap

kadar SGPT dan gambaran histopatologis hepar tikus putih (Rattus

norvegicus) yang terpapar allethrin. Jurusan Biologi FST UIN Malang. 2010.

13. Nasution AS, Wirjatmadi B, Adriani M, Studi P, Ilmu M, Masyarakat K, et

al. Efek preventif pemberian ekstrak kulit buah naga berdaging super merah

(Hylocereus costaricensis) terhadap malondialdehid tikus wistar yang

dipapar asap rokok. 29(1):21–4.

14. Moore KL, Dalley AF, Agur AMR. Clinically oriented anatomy. 6th ed.

Elsevier; 2010. 1079 p.

15. Borley NR, Collins P, Alan R, Gatzoulis MA, Healy JC, Johnson D. Gray’s

anatomy: the anatomical basis of clinical practice. 40th ed. Spain: Elsevier;

2008.

16. Sherwood L. Fisiologi manusia dari sel ke sistem. 7, editor. Jakarta: EGC;

2012. 123-147 p.

17. Barret KE, Barman SM, Boitano S, Brooks HL. Ganong’s review of medical

physiology. 23rd ed. 2010. 689 p.

18. Mescher AL. Junqueira’s Basic Histology Text & Atlas. 13th ed. McGraw

Hill Education; 2013.

19. Kumar V, Cotran RS, Robbins SL. Buku ajar patologi. Jakarta: EGC; 2013.

20. Matsumoto T, Fukuhara K. Non-Alcoholic Steatohepatitis ( NASH )

Influences the Disease Progression of Chronic Hepatitis C ( CH-C ):

Histopathological Study of Liver Biopsies in 400 Cases with CH-C.

2014;1(1):1–4.

21. Mani H, Kleiner DE. Liver biopsy findings in chronic hepatitis B.

Hepatology (Baltimore, Md). 2009;49(5):61–71.

22. Safitri GR, Saktini F. Pengaruh pemberian susu kambing terhadap gambaran

mikroskopis hepar dan kadar SGPT tikus wistar yang terpapar asap

62

kendaraan bermotor. Media Medika Muda. 2015;4(3):218–28.

23. Derudi M, Rota R, Nano G. Characteristics of PAH emitted from incense,

candle, and mosquito coils burning. In: XXXVI Meeting of the Italian

Section of the Combustion Institute. Milano; 2013.

24. Marjuki MI. Daya bunuh beberapa obat nyamuk bakar terhadap kematian

nyamuk Anopheles aconitus. Pharmacon. 2009;10(1):17–21.

25. Iswara A, Christijanti W, Utami NR. Pengaruh pemberian antioksidan

vitamin C dan E terhadap kualitas spermatozoa tikus putih terpapar allethrin.

Biosaintifika: Journal of Biology & Biology Education. 2009;2(1).

26. Widyatmoko BS. Aktivitas antioksidan vitamin C dan E pada kadar SGOT

dan SGPT serum darah tikus putih yang terpapar allethrin. Universitas

Negeri Semarang; 2009.

27. Juhryyah SRI. Gambaran histopatologi organ hati dan ginjal tikus pada

intoksikasi akut insektisida (metofluthrin, d-phenothrin, d-allethrin) dengan

dosis bertingkat. Institut Pertanian Bogor; 2008.

28. Armalina D, Witjahjo RBB, Susilaningsih N. Pengaruh paparan inhalasi d-

allethrin dalam obat nyamuk elektrik terhadap gambaran mikroskopis hepar

dan ginjal mencit betina bunting serta efek teratogenik pada fetus mencit

Balb/c. 2013;

29. Hadiyani M. Keracunan karbon monoksida. Sentra Informasi Keracunan

Nasional. 2010;1:1–19.

30. Sugiarti. Gas pencemar udara dan pengaruhnya bagi kesehatan manusia.

Jurnal Chemica. 2009;10:50–8.

31. Mochitate K, Kaya K, Miura T, Kubota K. In vivo effects of nitrogen dioxide

on membrane constituents in lung and liver of rats.

32. Gold V. International union of pure and applied chemistry compendium of

chemical terminology. Iupac. 2014;1670.

33. Jovanovic O, Pashkovskaya AA, Annibal A, Vazdar M, Burchardt N,

Sansone A, et al. The molecular mechanism behind reactive aldehyde action

on transmembrane translocations of proton and potassium ions. Free Radical

Biology and Medicine. Elsevier; 2015;89:1067–76.

63

34. Ahmad F. Kandungan senyawa polisiklik aromatik hidrokarbon (PAH) di

teluk jakarta. Ilmu Kelautan. 2012;17(4):199–208.

35. Achmad V. Virosa, Mohammad F. Rahman AYPW. Identifikasi polisiklik

aromatik hidrokarbon (PAH) dalam emisi kendaraan bermotor dengan

menggunakan whatman filter paper PM 2.5. Kimia Studentjournal.

2014;2(2):499–505.

36. Wang B, Jin L, Ren A, Yuan Y, Liu J, Li Z, et al. Levels of polycyclic

aromatic hydrocarbons in maternal serum and risk of neural tube defects in

offspring. Environ Sci Technol. 2015;49(1):588–96.

37. Winarsi H. Antioksidan alami dan radikal [Internet]. Yogyakarta: Kanisius;

2007. Available from:

https://books.google.co.id/books?id=AlC1KQ2Oaj0C

38. Sari AR, Hardiyanti R. Antioxidant level and sensory of dragon fruit

(Hylocereus undatus) peel tea infusion made by partially fermented process.

2013;2(1):63–8.

39. Kristanto D. Berkebun buah naga [Internet]. 1st ed. Jakarta: Penebar

Swadaya Grup; 2014. Available from:

https://books.google.co.id/books?id=xJ4PBwAAQBAJ

40. Warisno KD. Buku pintar bertanam buah naga [Internet]. Jakarta: PT

Gramedia Pustaka Utama; 2010. Available from:

https://books.google.co.id/books?id=ZdtOYrn9f9kC

41. Luders L, Mcmahon G. The pitaya or dragon fruit (Hylocereus undatus).

Agnote [Internet]. 2006;1–4. Available from:

http://www.nt.gov.au/d/Content/File/p/Fruit/778.pdf

42. Tenore GC, Novellino E, Basile A. Nutraceutical potential and antioxidant

benefits of red pitaya (Hylocereus polyrhizus) extracts. Journal of Functional

Foods. Elsevier Ltd; 2012;4(1):129–36.

43. Handayani PA, Rahmawati A. Pemanfaatan kulit buah naga sebagai pewarna

alami makanan pengganti pewarna sintetis. Jurnal Bahan Alam Terbarukan.

2012;1(2):19–24.

44. Cai Y, Luo Q, Sun M, Corke H. Antioxidant activity and phenolic

64

compounds of 112 traditional Chinese medicinal plants associated with

anticancer. Life Sciences. 2004;74(17):2157–84.

45. Nurliyana R, Syed Zahir I, Mustapha Suleiman K, Aisyah MR, Kamarul

Rahim K. Antioxidant study of pulps and peels of dragon fruits: A

comparative study. International Food Research Journal. 2010;17(2):367–

75.

46. Wu LC, Hsu HW, Chen YC, Chiu CC, Lin YI, Ho JAA. Antioxidant and

antiproliferative activities of red pitaya. Food Chemistry. 2006;95:319–27.

47. Umayah E, Moch. Amrun. Uji aktivitas antioksidan ekstrak buah naga

(Hylocereus undatus). Ilmu Dasar. 2007;8(1):83–90.

48. Riska B, Palupi S, Azminah. Perbandingan daya antioksidan ekstrak etanol

kulit buah naga daging buah merah (Hyloreceus polyrhizus) dan putih

(Hyloreceus undatus) terhadap DPPH (1,1-Diphenyl-2-Picrylhidrazyl).

Universitas Surakarta; 2013.

49. Kosem N, Han Y-H, Moongkarndi P. Antioxidant and cytoprotective

activities of methanolic extract from Garcinia mangostana Hulls.

ScienceAsia. 2007;33(3):283.

50. Pontis J, Costa L, Silva S, Flach A. Color, phenolic and flavonoid content,

and antioxidant activity of honey from Roraima, Brazil. Food Science and

Technology. 2014;34(1):69–73.

51. Paixão N, Perestrelo R, Marques JC, Câmara JS. Relationship between

antioxidant capacity and total phenolic content of red, rosé and white wines.

Food Chemistry. 2007;105(1):204–14.

52. Quideau S, Deffieux D, Douat-Casassus C, Pouységu L. Plant polyphenols:

chemical properties, biological activities, and synthesis. Angewandte

Chemie International Edition. 2011;50(3):586–621.

53. Pandey KB, Rizvi SI. Plant polyphenols as dietary antioxidants in human

health and disease. Oxidative medicine and cellular longevity [Internet].

2009;2(5):270–8. Available from:

http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/20716914\nhttp://www.pubmedcentr

al.nih.gov/articlerender.fcgi?artid=PMC2835915

65

54. Redha A. Flavonoids: structure, antioxidative properties and its role in

biological systems. Jurnal Berlian. 2010;9(2):196–202.

55. Ali Ghasemzadeh. Flavonoids and phenolic acids: role and biochemical

activity in plants and human. Journal of Medicinal Plants Research.

2011;5(31):6697–703.

56. Miguel MG. Anthocyanins : antioxidant and/or anti-inflammatory activities.

Journal of Applied Pharmaceutical Science. 2011;01(06):7–15.

57. Konczak I, Zhang W. Anthocyanins: more than nature’s colours.

2004;5:239–40.

58. Wybraniec S, Platzner I, Geresh S, Gottlieb HE, Haimberg M, Mogilnitzki

M, et al. Betacyanins from vine cactus hylocereus polyrhizus.

Phytochemistry. 2001;58(8):1209–12.

59. Strack D, Vogt T, Schliemann W. Recent advances in betalain research.

Phytochemistry. 2003;62(3):247–69.

60. Mohd Adzim KR, Norhayati AH, Rokiah MY, Asmah R, Nasir MTM, Siti

Muskinah M. Proximate composition and selected mineral determination in

organically grown red pitaya (Hylocereus sp.). Journal of Tropical

Agricultural and Foos Science. 2006;34(2):269–75.

61. Youngson R. Antioksidan: manfaat vitamin C & E bagi kesehatan [Internet].

Jakarta: Arcan; 2005. Available from:

https://books.google.co.id/books?id=rSntUqD1dNcC

62. Drouin G, Godin J-R, Page B. The genetics of vitamin C loss in vertebrates.

Current Genomics. 2011;12(5):371–8.

63. Guaiquil VH, Vera JC, Golde DW. Mechanism of vitamin C inhibition of

cell death induced by oxidative stress in glutathione-depleted HL-60 cells.

The Journal of biological chemistry. 2001;276(44):40955–61.

64. Lwanga S.K., Lemeshow S. Sample size determination in health studies A

practicle manual. World Health Organization. 1991. p. 38.

65. Leary S, Underwood W, Lilly E, Anthony R, Cartner S, Corey D, et al.

AVMA Guidelines for the Euthanasia of Animals : 2013 Edition. 2013.

66. Library USN, Institutes MN. Formulation and application of a numerical

66

scoring system for assessing histological activity in asymptomatic chronic

active hepatitis . Cited by over 100 PubMed Central articles PubMed

Commons. 1981;1(5):14–5.

67. Dahlan MS. Statistik untuk kedokteran dan kesehatan. Jakarta: Salemba

Medika; 2011.

68. Kumar A, Kumar P, Al-khedhairy AA, Musarrat J, Shukla Y. Allethrin-

induced genotoxicity and oxidative stress in Swiss albino mice. Mutation

Research - Genetic Toxicology and Environmental Mutagenesis [Internet].

Elsevier B.V.; 2012;747(1):22–8. Available from:

http://dx.doi.org/10.1016/j.mrgentox.2012.03.003

69. Abheri Das Sarma, Anisur Rahaman Mallick, Ghosh A. Free Radicals and

Their Role in Different Clinical Conditions : An Overview. International

Journal of Pharma Sciences and Research. 2010;1(3):185–92.

70. Narendra M, Kavitha G, Padmavathi P, A HK, Varadacharyulu NC.

Allethrin-induced biochemical changes and properties of human erythrocyte

membrane. 2008;2(January):24–9.

71. Ramadori G, Moriconi F, Malik I, Dudas J. Physiology and pathophysiology

of liver inflammation, damage and repair. 2008;107–17.

72. Jaeschke H. Reactive oxygen and mechanisms of inflammatory liver injury :

Present concepts. 2011;26:173–9.

73. Suriawinata AA, Thung SN. Liver pathology an atlas and concise guide.

New York: DemosMedical; 2011.

74. Moyo B, Oyedemi S, Masika PJ, Muchenje V. Polyphenolic content and

antioxidant properties of Moringa oleifera leaf extracts and enzymatic

activity of liver from goats supplemented with Moringa oleifera leaves / sun

fl ower seed cake. MESC [Internet]. Elsevier Ltd; 2012;91(4):441–7.

Available from: http://dx.doi.org/10.1016/j.meatsci.2012.02.029

75. Heim KE, Tagliaferro AR, Bobilya DJ. Flavonoid antioxidants: chemistry,

metabolism and structure-activity relationships. The Journal of Nutritional

Biochemistry. 2002;13(10):572–84.

67

Lampiran 1. Metode ekstraksi kulit buah naga putih.

A. Persiapan Bahan

1) Memisahkan kulit buah naga dari daging buahnya.

2) Mengiris kulit buah naga menjadi irisan kecil-kecil.

3) Mengeringkan kulit buah naga dengan memanaskan di bawah sinar

matahari secara tidak langsung.

4) Menempatkan kulit buah naga yang telah kering ke dalam gelas kimia.

5) Menimbang dengan neraca digital.

B. Perendaman

1) Menempatkan kulit buah naga ke dalam tabung erlenmeyer.

2) Menambahkan pelarut etanol 70% sampai ekstrak kulit buah naga

terendam seluruhnya.

3) Menggojok tabung erlenmeyer.

4) Mendiamkan selama 24 jam dengan menghindarkan dari sinar.

5) Menyaring hasil ekstrak cair.

6) Mengulangi perendaman dan penyaringan hingga hasil penyaringan

berwarna bening.

C. Pemanasan

1) Meletakkan hasil penyaringan di waterbath

2) Memanaskan hasil penyaringan hingga perlarut menguap.

3) Menghentikan pemanasan apabila telah mendapatkan hasil ekstraksi

berupa gel kental.

68

Lampiran 2. Metode baku histologis pemeriksaan jaringan.

A. Pengambilan Jaringan

Mengambil jaringan sesegera mungkin setelah mencit mati (maksimal 2

jam) dengan ukuran 1 cm3.

B. Fiksasi

Memasukkan ke dalam larutan fiksasi, yaitu merendam jaringan dalam

larutan formalin 10%.

C. Dehidrasi

Mengeluarkan air dari jaringan, dengan cara :

1) Merendam jaringan dalam alkohol 30% masing-masing selama 20 menit

dalam 3 botol yang berbeda.

2) Merendam jaringan dalam alkohol 40% selama 1 jam.







D. Clearing (Penjernihan)

Memasukkan jaringan yang telah didehidrasi ke dalam larutan penjernih

agar parafin cair mudah masuk ke dalam jaringan, dengan cara :

1) Merendam jaringan dengan larutan alkohol 96% dan xylol (1:1) selama

2x20 menit.

2) Merendam jaringan dengan larutan xylol I selama 20 menit.

69

3) Merendam jaringan dengan larutan xylol II selama 20 menit.

4) Merendam jaringan dengan larutan xylol III selama 20 menit.

E. Embedding (Pengikatan)

Mengikat jaringan dengan parafin, dengan cara :

1) Blocking

a. Memasukkan jaringan dalam parafin cair dan xylol (1:1) selama 20

menit tiap 24 jam dan dimasukkan dalam oven 60oC agar tidak beku.

b. Memasukkan jaringan dalam parafin I selama 20 menit.

c. Memasukkan jaringan dalam parafin II selama 20 menit.

d. Memasukkan jaringan dalam parafin III selama 20 menit.

e. Memasukkan jaringan dalam cetakan berbahan logam.

f. Mendinginkan jaringan dalam air es sehingga cetakan dapat dibuka.

2) Trimming

Memotong balok-balok parafin yang dalamnya berisi jaringan.

F. Sectioning (Pemotongan)

1) Menyiapkan object glass bersih.

2) Memotong balok parafin yang sudah disiapkan menggunakan mikrotom,

dengan ketebalan 3-10 mikron.

3) Mengambil jaringan yang telah dipotong dengan menggunakan jarum

dan memasukkan dalam water bath yang berisi air hangat 40-45oC.

4) Mengambil jaringan menggunakan object glass yang sudah diberi

glisserin albumin.

5) Mengeringkan jaringan dan object glass.

6) Menambahkan timol setelah menutup jaringan dengan deck glass untuk

mencegah pembusukan.

70

G. Staining (Pewarnaan)

1) Deparafinasi

a. Memasukkan slide jaringan dalam xylol I selama 2 menit.

b. Memasukkan slide jaringan dalam xylol II selama 2 menit.

2) Rehidrasi

a. Memasukkan slide jaringan dalam alkohol absolute I selama 1

menit.

b. Memasukkan slide jaringan dalam alkohol absolute II selama 1

menit.

c. Memasukkan slide jaringan dalam alkohol 96% selama 1 menit.

d. Memasukkan slide jaringan dalam alkohol 70% selama 1 menit.

e. Membilas dengan air mengalir sampai bersih.

f. Merendam dengan aquades selama 2-4 menit.

3) Pulasan Utama

a. Merendam slide jaringan dalam Haematoxyline Modified Lillie’s

MAYER selama 5-7 menit.

b. Membilas dengan air mengalir sampai bersih.

c. Merendam dengan aquades selama 2-4 menit.

d. Membilas dengan air mengalir sampai bersih.

4) Dehidrasi

a. Memasukkan slide jaringan dalam alkohol 70% selama 1 menit.

b. Memasukkan slide jaringan dalam alkohol 96% selama 1 menit.

c. Mencelupkan slide jaringan dalam Eosin-Phloxine sebanyak 15

kali.

d. Memasukkan slide jaringan dalam alkohol 96% selama 1 menit.

e. Memasukkan slide jaringan dalam alkohol absolute I selama 1

menit.

f. Memasukkan slide jaringan dalam alkohol absolute II selama 1

menit.

5) Memasukkan slide jaringan dalam xylol I selama 2 menit.

6) Memasukkan slide jaringan dalam xylol II selama 2 menit.

71

7) Mengeringkan preparat dengan kertas saring.

8) Membersihkan kotoran yang ada di sekitar jaringan dengan kapas

alkohol.

H. Mounting

9) Menambahkan Entellan sebagai mounting medium.

10) Menutup preparat dengan deck glass.

72

Lampiran 3. Hasil pengamatan mikroskopis hepar

Sampel LP

Nekrosis

periportal dan

bridging necrosis

Skor degenerasi

intralobuler dan

fokal nekrosis

Skor Inflamasi

Porta Skor Fibrosis

Jumlah

Skor Per

LP

Jumlah

Skor Per

Sampel

K1-1 1 3 1 3 0 7

14

2 0 1 1 0 2

3 0 1 1 0 2

4 0 1 0 0 1

5 0 1 1 0 2

K1-2 1 5 1 3 0 9

17

2 0 1 1 0 2

3 0 1 1 0 2

4 0 1 1 0 2

5 0 1 1 0 2

K1-3 1 0 0 1 0 1

2

2 0 0 0 0 0

3 0 0 0 0 0

4 0 0 0 0 0

5 0 0 1 0 1

K1-4 1 0 0 0 0 0

4

2 0 1 0 0 1

3 0 1 0 0 1

4 0 1 0 0 1

5 0 1 0 0 1

K1-5 1 0 0 1 0 1

5

2 0 0 1 0 1

3 0 0 1 0 1

4 0 0 1 0 1

5 0 0 1 0 1

73

K2-1 1 4 1 3 1 9

45

2 5 3 3 3 14

3 4 1 3 1 9

4 0 1 0 0 1

5 5 1 3 3 12

K2-2 1 5 1 3 3 12

24

2 1 1 3 1 6

3 0 1 1 0 2

4 0 1 1 0 2

5 0 1 1 0 2

K2-3 1 0 1 3 0 4

38

2 4 1 3 1 9

3 5 1 3 3 12

4 4 3 3 1 11

5 0 1 1 0 2

K2-4 1 4 1 3 1 9

14

2 0 1 1 0 2

3 0 1 0 0 1

4 0 1 0 0 1

5 0 1 0 0 1

K2-5 1 0 1 1 0 2

22

2 1 1 1 1 4

3 0 1 1 0 2

4 5 1 3 3 12

5 0 1 1 0 2

74

P1-1 1 0 0 0 0 0

6

2 1 1 1 0 3

3 0 1 0 0 1

4 0 0 1 0 1

5 0 0 1 0 1

P1-2 1 0 0 1 0 1

7

2 0 1 1 0 2

3 0 1 0 0 1

4 1 0 1 0 2

5 0 0 1 0 1

P1-3 1 1 0 1 0 2

4

2 1 0 1 0 2

3 0 0 0 0 0

4 0 0 0 0 0

5 0 0 0 0 0

P1-4 1 1 0 1 0 2

9

2 0 0 0 0 0

3 3 0 3 0 6

4 0 0 1 0 1

5 0 0 0 0 0

P1-5 1 0 0 1 0 1

4

2 0 0 1 0 1

3 0 0 0 0 0

4 0 1 0 0 1

5 0 0 1 0 1

75

P2-1 1 0 0 1 0 1

1

2 0 0 0 0 0

3 0 0 0 0 0

4 0 0 0 0 0

5 0 0 0 0 0

P2-2 1 0 0 1 0 1

2

2 0 0 1 0 1

3 0 0 0 0 0

4 0 0 0 0 0

5 0 0 0 0 0

P2-3 1 0 1 0 0 1

5

2 0 1 0 0 1

3 0 1 0 0 1

4 0 1 0 0 1

5 0 1 0 0 1

P2-4 1 0 0 1 0 1

2

2 0 1 0 0 1

3 0 0 0 0 0

4 0 0 0 0 0

5 0 0 0 0 0

P2-5 1 0 0 1 0 1

3

2 0 1 0 0 1

3 0 0 1 0 1

4 0 0 0 0 0

5 0 0 0 0 0

76

P3-1 1 0 0 0 0 0

0

2 0 0 0 0 0

3 0 0 0 0 0

4 0 0 0 0 0

5 0 0 0 0 0

P3-2 1 0 0 1 0 1

2

2 0 1 0 0 1

3 0 0 0 0 0

4 0 0 0 0 0

5 0 0 0 0 0

P3-3 1 0 1 0 0 1

1

2 0 0 0 0 0

3 0 0 0 0 0

4 0 0 0 0 0

5 0 0 0 0 0

P3-4 1 0 0 0 0 0

0

2 0 0 0 0 0

3 0 0 0 0 0

4 0 0 0 0 0

5 0 0 0 0 0

P3-5 1 0 0 0 0 0

1

2 0 0 0 0 0

3 0 0 0 0 0

4 0 1 0 0 1

5 0 0 0 0 0

77

Lampiran 4. Hasil analisis statistik

1. Karakteristik sampel

Case Processing Summary

Kelompok Cases

Valid Missing Total

N Percent N Percent N Percent

Total Skor Knodell

Kontrol 1 5 100,0% 0 0,0% 5 100,0%

Kontrol 2 5 100,0% 0 0,0% 5 100,0%

Perlakuan 1 5 100,0% 0 0,0% 5 100,0%

Perlakuan 2 5 100,0% 0 0,0% 5 100,0%

Perlakuan 3 5 100,0% 0 0,0% 5 100,0%

Descriptives

Kelompok Statistic Std. Error

Total Skor Knodell

Kontrol 1

Mean 8,40 2,977

95% Confidence Interval for

Mean

Lower Bound ,14

Upper Bound 16,66

5% Trimmed Mean 8,28

Median 5,00

Variance 44,300

Std. Deviation 6,656

Minimum 2

Maximum 17

Range 15

Interquartile Range 13

Skewness ,601 ,913

Kurtosis -2,497 2,000

Kontrol 2

Mean 28,60 5,636


Mean

Lower Bound 12,95

Upper Bound 44,25


Median 24,00

Variance 158,800


Minimum 14

78

Maximum 45

Range 31


Skewness ,363 ,913

Kurtosis -1,659 2,000

Perlakuan 1

Mean 5,80 1,068


Mean

Lower Bound 2,84

Upper Bound 8,76


Median 6,00

Variance 5,700


Minimum 3

Maximum 9

Range 6


Skewness ,206 ,913

Kurtosis -1,117 2,000

Perlakuan 2

Mean 2,60 ,678


Mean

Lower Bound ,72

Upper Bound 4,48


Median 2,00

Variance 2,300


Minimum 1

Maximum 5

Range 4


Skewness 1,118 ,913

Kurtosis 1,456 2,000

Perlakuan 3

Mean ,80 ,374


Mean

Lower Bound -,24

Upper Bound 1,84

5% Trimmed Mean ,78

79

Median 1,00

Variance ,700

Std. Deviation ,837

Minimum 0

Maximum 2

Range 2


Skewness ,512 ,913

Kurtosis -,612 2,000

2. Uji normalitas data

Tests of Normality

Kelompok Kolmogorov-Smirnova Shapiro-Wilk

Statistic df Sig. Statistic df Sig.

Total Skor Knodell

Kontrol 1 ,295 5 ,178 ,865 5 ,248

Kontrol 2 ,242 5 ,200* ,942 5 ,682

Perlakuan 1 ,175 5 ,200* ,974 5 ,899

Perlakuan 2 ,254 5 ,200* ,914 5 ,492

Perlakuan 3 ,231 5 ,200* ,881 5 ,314

*. This is a lower bound of the true significance.

a. Lilliefors Significance Correction

3. Uji homogenitas

Test of Homogeneity of Variances

Total Skor Knodell

Levene Statistic df1 df2 Sig.

1,598 4 18 ,218

80

4. Uji One Way ANOVA

ANOVA

Total Skor Knodell

Sum of Squares df Mean Square F Sig.

Between Groups 4,295 4 1,074 15,617 ,000

Within Groups 1,238 18 ,069

Total 5,532 22

5. Uji Post Hoc

Multiple Comparisons

Dependent Variable: Total Skor Knodell

LSD

(I) Kelompok (J) Kelompok Mean Difference

(I-J)

Std. Error Sig. 95% Confidence Interval

Lower Bound Upper Bound

Kontrol 1

Kontrol 2 -,625* ,166 ,001 -,97 -,28

Perlakuan 1 ,064 ,166 ,702 -,28 ,41

Perlakuan 2 ,440* ,166 ,016 ,09 ,79

Perlakuan 3 ,695* ,191 ,002 ,29 1,10

Kontrol 2

Kontrol 1 ,625* ,166 ,001 ,28 ,97

Perlakuan 1 ,689* ,166 ,001 ,34 1,04

Perlakuan 2 1,065* ,166 ,000 ,72 1,41

Perlakuan 3 1,320* ,191 ,000 ,92 1,72

Perlakuan 1

Kontrol 1 -,064 ,166 ,702 -,41 ,28

Kontrol 2 -,689* ,166 ,001 -1,04 -,34

Perlakuan 2 ,376* ,166 ,036 ,03 ,72

Perlakuan 3 ,631* ,191 ,004 ,23 1,03

Perlakuan 2

Kontrol 1 -,440* ,166 ,016 -,79 -,09

Kontrol 2 -1,065* ,166 ,000 -1,41 -,72

Perlakuan 1 -,376* ,166 ,036 -,72 -,03

Perlakuan 3 ,255 ,191 ,199 -,15 ,66

Perlakuan 3

Kontrol 1 -,695* ,191 ,002 -1,10 -,29

Kontrol 2 -1,320* ,191 ,000 -1,72 -,92

Perlakuan 1 -,631* ,191 ,004 -1,03 -,23

Perlakuan 2 -,255 ,191 ,199 -,66 ,15

*. The mean difference is significant at the 0.05 level.

81

Lampiran 5. Dokumentasi penelitian.

1. Pembuatan ekstrak kulit buah naga putih

Gambar 25. Kulit buah naga yang

sudah dipotong dan dikeringkan.

Gambar 26. Penimbangan.

Gambar 27. Penyaringan.

Gambar 28. Pemanasan dengan

waterbath.

82

2. Pemeliharaan dan perlakuan hewan coba

Gambar 29. Ekstrak kulit buah naga

yang telah diencerkan.

Gambar 30. Hewan coba.

Gambar 31. Pemberian ekstrak kulit

buah naga per oral.

Gambar 32. Pemberian paparan

asap obat nyamuk bakar.

3. Terminasi dan pengambilan organ hewan coba

Gambar 33. Terminasi hewan coba.

Gambar 34. Pengambilan organ

hepar.

83

4. Pembuatan preparat

Gambar 35. Hepar mencit dalam

tabung berisi BNF 10%

Gambar 36. Fiksasi, dehidrasi, dan

clearing.

Gambar 37. Mendinginkan jaringan.

Gambar 38. Sectioning

(pemotongan).

Gambar 39. Staining (pengecatan).

Gambar 40. Preparat yang telah

ditutup deck glass.

5. Pembacaan preparat

84

Lampiran 6. Surat keterangan pemeriksaan kesehatan hewan coba.

85

Lampiran 7. Surat izin penelitian laboratorium Biologi FMIPA UNNES.

86

Lampiran 8. Surat keterangan telah melaksanakan penelitian di laboratorium

Biologi FMIPA UNNES.

87

Lampiran 9. Ethical clearance.

88

Lampiran 10. Surat izin penelitian laboratorium PA RSUD. Dr. Soeratno

Gemolong.

89

Lampiran 11. Biodata mahasiswa.

Identitas

Nama : Nisa El Purwatari

NIM : 22010112130163

Tempat/tanggal lahir : Pati, 13 Juni 1994

Jenis Kelamin : Perempuan

Agama : Islam

Alamat : Jl. Ki Mangun Sarkoro no. 32 BJI Mekarsari, Bekasi

Nomor Telepon : 021-88348734

Nomor HP : 081321347725

E-mail : [email protected]

Riwayat Pendidikan Formal

1. SD : SD Muhammadiyah 1 Sidoarjo Lulus tahun : 2006

2. SMP : SMPN 1 Bekasi Lulus tahun : 2009

3. SMA : SMA KORPRI Bekasi Lulus tahun : 2012

4. FK UNDIP : Masuk tahun : 2012

mailto:[email protected]

Documents

DAFTAR PUSTAKA - core.ac.uk. Jamilah B, Shu CE, Kharidah M, Dzulkifly MA, ... Buku pintar bertanam buah naga [Internet ... Suriawinata AA, Thung SN. Liver pathology an atlas and