BOLETIN DEL MUSEO ENTOMOLÓGICO · 2011-06-28 · (McMahan 1982, 1983), or millipedes in Ectrichodiinae (Miller 1953, Carpintero and Maldonado 1996). The morphological diversity exhibited

BOLETIN DEL MUSEO ENTOMOLÓGICOFRANCISCO LUÍS GALLEGOISSN 2027-4378

Volumen 3 • Número 1Marzo • 2011

Publicación trimestral del Museo Entomológico Francisco Luís Gallego de la Universidad Nacional de Colombia Sede Medellín

Ninfa de HarpactorinaeFotografía de Dimitri ForeroUniversidad de California, Riverside, Estados Unidos.

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Volumen 3, Número 1Marzo, 2011

Boletín del Museo Entomológico Francisco Luís Gallego

bol.mus.entomol.Francisco Luis Gallego. ISSN 2027-4378

Publicación trimestral del Museo Entomológico Francisco Luís Gallego de la Universidad Nacional de Colombia sede Medellín.

Los artículos se presentan bajo responsabilidad de los autores, quienes editan sus propios trabajos. Las citaciones, copias de figuras, tablas y demás elementos que requieran autorización del autor para ser reproducidas, son responsabilidad del autor del documento, más no del Boletín.

Director del Museo y del BoletínSergio Orduz

[email protected]

Comité EditorialAlvaro Mauricio Flórez, Universidad de

Santander, Bucaramanga, Colombia.Natalia Neerdaels, Driscoll’s Strawberry

Associates Inc. Estados Unidos. Sergio Orduz, Universidad Nacional de

Colombia, Medellín, Colombia.John Albeiro Quiroz, Universidad Nacional de

Colombia, Medellín, Colombia.Allan Smith, United States Department of

Agriculture, San Francisco, CA, Estados Unidos.

Sandra Uribe, Universidad Nacional de Colombia, Medellín, Colombia.

Marta Wolff, Universidad de Antioquia, Medellín, Colombia.

Museo Entomológico Francisco Luís Gallego MEFLG

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http://www.unalmed.edu.co/~mentomol/

Misión

El Museo de Entomología Francisco Luís Gallego (MEFLG) tiene como misión colectar investigar, conservar, preservar y difundir el conocimiento derivado del estudio de las colecciones entomológicas de los insectos de Colombia.

Visión

Para el 2019, el Museo de Entomología Francisco Luís Gallego (MFLG) se posicionará a nivel local, nacional e internacional como una de las mejores colecciones de entomología agrícola, tendrá una imagen nueva con laboratorios especializados en sistemática molecular y bioinformática, con nuevas estrategias de proyección hacia la sociedad, preservando los principios de docencia investigación y extensión de la Universidad Nacional de Colombia.

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BOLETIN DEL MUSEO ENTOMOLÓGICOFRANCISCO LUÍS GALLEGO

Contenido

Artículo de opinión 5 Bacteria del lago Mono propone paradigmas adicionales a la Biología moderna.

Álvaro Mauricio Flórez, M.Sc., Ph.D., Jairo Quijano, Ph.D, Sergio Orduz, M.Sc., Ph.D.

Artículo original 9

Classification of Harpactorinae, assassin bugs (Hemiptera: Heteroptera: Reduviidae)

Dimitri Forero, M.Sc., Ph.D.

Reporte de los Fondos del Museo Entomológico Francisco Luís Gallego. 25

Harpactorinae (Hemiptera: Reduviidae) del MEFLG

John Alveiro Quiroz, Manyer Ana Luisa Carmona

Notas del Museo Entomológico Francisco Luís Gallego. 45

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ARTÍCULO DE OPINIÓN

BACTERIA DEL LAGO MONO PROPONE PARADIGMAS ADICIONALES A LA BIOLOGÍA MODERNA

Alvaro Mauricio Flórez. M.Sc. Ph.D. Director del Laboratorio de Biología Molecular y Biotecnología de la Facultad de Medicina de la Universidad de Santander, UDES, Bucaramanga, Campus Universitario, Lagos del Cacique, Bloque Arahuaco 201, [email protected]

Jairo Quijano. Ph.D. Profesor Titular, Escuela de Química, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional de Colombia, Sede Medellín. Calle 59A No. 63-20. Medellín, Colombia, Edificio 19A-208, [email protected].

Sergio Orduz. M.Sc. Ph.D. Profesor Asociado, Escuela de Biociencias, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional de Colombia, Sede Medellín. Calle 59A No. 63-20. Medellín, Colombia, Edificio 11-113-1, [email protected]

Los primeros fósiles bacterianos que datan de hace 3.000 mi-llones de años aún mantienen una semblanza similar en su morfología y apariencia física con las cianobacterias existentes hoy día (McArthur 2006); no obstante, para la biología evolu-tiva esto no ocurre a nivel bioquímico pues la multiplicidad de vías y mecanismos en este campo explica la variedad genéti-ca y adaptativa de los microorganismos. Este es el caso de la capacidad de ciertas bacterias para metabolizar compuestos tóxicos, en donde la modificación y diversificación ha llevado a crear nuevas formas de vida, adaptando mecanismos de selec-ción natural y con ello, mutaciones selectivas en su genoma. El intercambio génico como una manera que la información sea trasmitida a toda su descendencia garantiza que se mantengan los patrones de selección propios del hábitat en donde se en-cuentran (McArthur 2006).

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La vida que conocemos depende de 6 elementos mayores (C, H, N, O, S y P) y otros elementos que están presentes en menor proporción y que cumplen fun-ciones celulares muy importantes como transporte de Oxígeno y cofactores de enzimas. No obstante, se sabe de va-rios casos en los que algunos de estos elementos menores son sustituidos por otros, incluyendo el Cu por el Fe para el transporte de oxígeno en moluscos y ar-trópodos.

Recientemente se ha reportado que una bacteria de la familia Halomonadacea denominada GFAJ-1, aislada del Lago Mono al oeste de California, es capaz de soportar pH alcalinos y condiciones hi-persalinas, no solo tiene la capacidad de crecer en arsénico (Wolfe-Simon et al. 2011), tal como lo hacen otras bacterias que han elaborado procesos bioquími-cos para metabolizar elementos tóxicos (Silver et al. 1989), sino que también ha evolucionado hasta desarrollar un siste-ma bioquímico funcional que le permite usar el arsénico en forma de arseniato (AsO4

3-) y sustituir el fósforo (PO43-), in-

corporando AsO43- en el metabolismo

de las biomoléculas relevantes para su sobrevivencia como lípidos, ADN y pro-teínas.

Con el descubrimiento de la bacteria GFAJ-1 se demuestra algo nunca antes descrito, en donde la evolución decide entre dos elementos químicamente se-mejantes, siendo la forma oxidada del arsénico (la forma tóxica para los seres vivos), utilizada selectivamente como un elemento análogo para reemplazar el fósforo en las biomoléculas. La bac-teria GFAJ-1 cuando está en presencia de arsénico no solo metaboliza la forma oxidada sino que desarrolla la capaci-

dad de formar vacuolas ricas en polihi-droxibutirato, su genoma tiene 23 veces menos fósforo e igualmente puede estar presente en metabolitos de pequeño peso molecular como NADH y ATP entre otros, y en una menor proporción en el ARN (Wolfe-Simon et al. 2011).

Con la información hasta hoy conoci-da se puede decir que el genoma de la bacteria GFAJ-1 puede además de es-tar conformado por enlaces polianioni-cos arsenodiester asemejando los en-laces fosfodiester descritos por Waston y Crick (1953), ser funcional y estable. Las condiciones que convierten a esta bacteria en un organismo especial ra-dican principalmente en su estabilidad bioquímica, la cual depende de una re-ducción de agua en su ambiente intrace-lular, disminuyendo la susceptibilidad a la hidrólisis, y con ello, aumentando la estabilidad de las biomoléculas (Fekry et al. 2011). Al ser el arsénico un elemen-to análogo al fósforo, pues está debajo de éste en la tabla periódica (grupo VA), tiene similar radio iónico, idéntica elec-tronegatividad y su forma más común en sistemas biológicos es fosfato (PO4

3-) y arseniato (AsO4

3-), lo que hace a este último bastante toxico, pues son indis-tinguibles en procesos metabólicos. No obstante lo anterior, existe una marcada diferencia en la reactividad de las molé-culas cuando se incorpora el arseniato en lugar de fosfato. Las fuerzas de enla-ce P-O y As-O no son diferentes (143 y 115 Kcal/mol respectivamente), lo que confiere cierta inestabilidad termodiná-mica a los compuestos de AsO4

3-, pero la poca reactividad de éstos probablemen-te se debe a la escasa afinidad de las fosfatasas en su sitio activo para los en-laces As-O. Esta bacteria ha evoluciona-do hasta tener un ambiente intracelular

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en equilibrio en un potencial de óxido-reducción que no representa un serio problema para las funciones celulares (Fekry et al., 2011) y especialmente ha evolucionado hasta obtener condiciones propias del ambiente donde se desarro-lla manteniendo la función vital del ADN. El descubrimiento de la bacteria GFAJ-1 abre una caja de pandora sobre la exis-tencia de formas microbiana que han evolucionado desarrollando ambientes intracelulares impensables para la vida como la conocemos hoy, una constante que solo a la evolución le corresponde decidir y que para los científicos sigue siendo relativamente incierta. Ahora son más las preguntas que respuestas sobre ésta nueva forma de vida.

Bibliografía

Fekry M.I., Tipton P.A. y K.S. Gates. 2011. Kinetic consequences of repla-cing the internucleotide phosphorous atoms in DNA with arsenic. ACS Chemi-cal Biology. 6: 127-130.

McArthur J.V. 2006. Microbial Ecology, An evolutionary approach, Academic Press, Elsevier, San Diego, USA. Pg 13-15.

Silver S., Nucifora G., Chu L. y T.K. Misra. 1989. Bacterial resistance ATPases: pri-mary pumps for exporting cations and anions. Trends in Biochemical Science. 14: 76-80.

Watson J.D. y F.H.C. Crick. 1953. Mole-cular structure of nucleic acids: a struc-ture for deoxyribose nucleic acid. Natu-re. 171: 737-738.

Wolfe-Simon F., Switzer Blum J., Kulp T.R., Gordon G.W., Hoeft S.E, Pett-Ridge

J., Stolz J.F., Webb S.M., Weber P.K., Da-vies P.C.W., Anbar A.D. y R.S. Oremland. 2010. A bacterium that can grow by using arsenic instead of phosphorus. Science Express. Published online, 2 December 2010 [DOI:10.1126/scien-ce.1197258].

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CLASSIFICATION OF HARPACTORINAE, ASSASSIN BUGS (HEMIPTERA: HETEROPTERA: REDUVIIDAE)

Dimitri Forero, Ph.D. Heteropteran Systematics Laboratory, Department of Entomology, University of California Riverside, Riverside, CA 92521, USA. E-mail: [email protected]

ARTÍCULO ORIGINAL

Abstract

A brief synopsis on the classification of the Harpactorinae is presented. The two tribes found in the Neotropical region are discussed and future directions for research are highlighted.

Introduction

Reduviidae, or assassin bugs, have more than 6.000 described species, and is one of the three most speciose families of Hemiptera (Forero 2008), and the second largest of Heteroptera, exhibiting a range of life histories (Schuh and Slater 1995, Weirauch and Schuh 2011). Species in this family are mostly predatory, although species of Triatominae are hematophagous, in which some are important vectors of Chagas disease in Latin America (Lent & Wygodzinsky 1979). Although generally polyphagous, some of the predatory groups show affinities for particular prey, such as ants in Holoptilinae (Jacobson 1911, Miller 1953, Poinar 1991), termites in Salyavata (Salyavatinae) (McMahan 1982, 1983), or millipedes in Ectrichodiinae (Miller 1953, Carpintero and Maldonado 1996).

The morphological diversity exhibited by Reduviidae is also reflected in the number of subfamilies so far proposed, which ranges from 21 to 32 (Maldonado 1990, Putshkov and Putshkov 1985). Recent phylogenetic analysis of the family might help to clarify and stabilize several of the classification issues (Weirauch 2008).

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Of all Reduviidae subfamilies, Harpactorinae is by far the largest in terms of numbers of species described, with more than 2.000 species described (Maldonado 1990, Putshkov and Putshkov 1985, 1988). Species of Harpactorinae are largely predatory, feeding on a variety of arthropods (Ambrose 2000, Ishikawa et al. 2007, Miller 1953, Readio 1927), but a rare case of phytophagy has been reported (Bérenger and Pluot-Sigwalt 1997). Some species have the potential (Ambrose 2002, Ambrose et al. 2009), or have already become successful agents in biological control programs (Grundy and Maelzer 2003, Grundy 2007). Despite its predatory habits, Harpactorinae are also usually closely associated with plants (Bérenger and Pluot-Sigwalt 1997), using them either as a preferred place to capture prey, as oviposition substrate, or as a source of exogenous resin (Bérenger and Pluot-Sigwalt 1997, Choe and Rust 2007, Forero et al. 2011).

Harpactorinae is monophyletic (Weirauch 2008, Weirauch and Munro 2008), and is supported by the following morphological synapomorphies: quadrate cell on the forewing, reduction of the vermiform gland on the bursa copulatrix of the female genitalia, absence of the dorsal connexival suture, and by absence of the metathoracic scent gland and its opening (Weirauch 2008).

In this paper, I briefly review the history of classifications proposed for Harpactorinae and provide an overview on the current taxonomy of the two tribes found in the Neotropical region.

Classification of Harpactorinae

Given its large size, it is not surprising that many classification schemes have been proposed for species of this subfamily. Harpactorinae was first recognized as a group by Amyot and Serville (1843), calling them “Harpactorides”. The group was composed of several genera, including the genus Harpactor Laporte. They also recognized three other generic groupings now included within Harpactorinae, the “Saccodérides” (including what is now Notocyrtus Burmeister among others), the “Zelides” (including Zelus Fabricius among other genera), and the “Apiomerides” (Apiomerus Hahn and related genera). Amyot and Serville (1843) distinguished them all from the “Harpactorides” mainly by the body shape, and head and pronotum structure.

Dohrn (1859a) considered the higher groupings of Amyot and Serville (1843) mostly wrong, basically for being too heterogeneous. He circumscribed the Harpactorinae to those genera with “serrate” claws, which were lacking in all the other genera. This character actually is a synapomorphy for a subordinate group within Harpactorinae that include what are now referred as Diaspidiini, Tegeini, and Harpactorini (Weirauch 2008). Dohrn’s (1859a) new conception of Harpactorinae included both the Saccodérides and Zelides groups of Amyot and Serville (1843), as well as the genus Lophocephala Laporte, placed by Amyot & Serville in a non related group (Conorhinides). Dohrn (1859a) kept as a separate group the “Apiomeridae”. In the same year, Dohrn (1859b) published a catalog of Hemiptera, and formalized some of his groupings. He named

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five groups under his “Harpactorina”: Lophocephalidae (only Lophocephala), Sycanidae (Eulyes Amyot and Serville, Sycanus Amyot and Serville, and Yolinus Amyot and Serville), Saccoderidae, Haematocharidae (only Haematochares Stål) and Harpactoridae (many genera, including Harpactor). In the same catalog (Dohrn 1859b) placed the Apiomeridae under his “Reduvina”, including not only Apiomerus and other Neotropical genera, but also the Asian Ectinoderus.

Stål (1859a), based on the presence or absence of a tubercle in the mesopleura, pointed out that these two groupings might correspond to what Amyot and Serville (1843) called “Harpactorides” and “Zelides”. Stål (1859c) actually use the name “Hezida” for those with a tubercle (Heza, Arilus, Isocondylus, and related genera), and relegated those without a tubercle under his omnibus “Reduviida” (including Harpactor, Zelus and related genera). In his later, and probably most influential works, Stål (1872, 1874) dropped the name “Hezida”, favoring a more inclusive “Reduviida”, but still used the tubercle on the mesopleura as an important character to separate a number of Harpactorini genera in his keys.

Stål (1859c) proposed Apiomerinae as a subfamily within Reduviidae, but did not mention which genera should be included, probably following Amyot & Serville (1843) for this. Later on, Stål (1866) proposed Ectinoderinae as a subfamily to include Ectinoderus Westwood, Amulius Stål, and Diaspidius Westwood, separating those genera from his Apiomerinae. Nonetheless, Apiomerinae was later again treated by some authors to include ectinoderines (e.g., Distant 1904).

Stål (1859b) proposed the “Dicrotelida” to accommodate Nyllius Stål and Dicrotelus Erichson. It was not mentioned in the literature until much later (see below). Stål (1862) suggested the Bactrodinae (as “Bactrodida”) to accommodate the Neotropical genus Bactrodes Stål. He mentioned that it was close to the Saicinae (“Saicidis”). The affinities of this group remained unexplored until Davis (1969) analysis.

Distant (1904) used Amyot and Serville name “Harpactorides” over Stål’s “Reduviida” for the Harpactorinae. He proposed (Distant 1904) a number of generic groupings within this subfamily that are equivalent to tribal level ranking: Rhaphidosomaria, Harpactoraria, Vesbiaria, Velinaria, Sycanaria, Yolinaria, Euagorasaria, Panthousaria, Coranusaria, Pristhesancusaria, and Polididusaria. His groupings were based mostly on fauna from the Indian subcontinent, although for Raphidosomaria he noticed that some African genera might group with Rhaphidosoma Amyot and Serville. Jeannel (1919) elevated to tribal level the “Rhaphidosomaria” of Distant. Most of Distant’s (1904) names have remained unused since their publication, although were consistently used by Hsiao and Ren (1981).

Villiers (1948) proposed Tegeinae as a subfamily, including only in this subfamily the genus Phonolibes Stål. He indicated the similarity in forewing venation of this group with the Harpactorinae. Miller (1952) later proposed Phonolibinae, as a separate subfamily from Tegeinae, to include Phonolibes and Lophocephala. He also redefined the Tegeinae to include only Tegea Stål. In the same

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paper he described Perissorhynchinae to accommodate his new genus Perissorhynchus Miller. He discussed the relationships of Phonolibinae, Tegeinae, and Perissorhynchinae and regarded them as different groupings within Reduviidae. China and Miller (1959), without comment, synonymized Perissorhynchinae under the Phonolibinae.

Miller (1959) proposed the Diaspidiinae to include Cleontes Stål, Rodhainiella Schouteden, and Diaspidius. He discussed some of the characters that differentiate these genera from Apiomerinae, restricting the concept of Apiomerini to include only Neotropical genera, and that of Ectinoderini for Ectinoderus and Amulius.

Davis (1969), in a seminal paper, studied a group of eight subfamilies that he generically named the “harpactoroids”: Harpactorinae, Rhaphidosominae, Tegeinae, Phonoloibinae, Apiomerinae, Diaspidiinae, Ectinoderinae, and Bactrodinae and analyzed several morphological traits present in these groups, compared them to other Reduviidae subfamilies, and proposed a redefined Harpactorinae, in which he included as tribes the redefined groups formerly ranked as subfamilies, Harpactorini, Rhaphidosomini, Apiomerini, Tegeini (including phonolibines), Diaspidiini, and Ectinoderini. He still considered Bactrodinae as a separate subfamily because of the number of different characters compared to his Harpactorinae, but yet related to it. Davis (1969) was the first to use tribal level ranking within Harpactorinae. He redefined previously recognized groups,

for instance the Rhaphidosomini is a modification of the “Rhaphidosomaria” of Distant (1904), and the Tegeini is a redefined group that includes the Tegeinae of Villiers (1948) and the Phonolibinae of Miller (1952). Davis (1969) acknowledged that his redefined Harpactorini was the most generalized group, which in his view lacked any synapomorphies. He also suggested that probably additional tribes should be separated from this tribe, implying that it might not be monophyletic. Despite his important observations, Davis failed to mention or discuss the dicrotelines. Dicrotelini as a tribe was used before Davis’s (1969) paper by Miller (1954), who expanded Stål’s (1859b) concept on the group to include additional genera. Dicrotelini has been subsequently used by several authors (Hsiao and Ren 1981, Malipatil 1988, Cai 1995, Tomokuni and Cai 2002), but its relationships with other members of the Harpactorinae remain uncertain. The classification of the Harpactorinae of Davis (1969) has been widely accepted (Schuh and Slater 1995, Weirauch 2008), and therefore is the one used for the discussion of the Neotropical tribes below.

Villiers (1982) proposed the tribe Rhinocorini (sic) for those genera without a tubercle on the mesopleura. Later, he used Harpactorini (Villiers 1983) for all the remaining genera with such a tubercle. Thus, the Rhinocorini of Villiers is equivalent to Stål’s (1859c) “Reduviida” and his Harpactorini to Stål’s (1859c) “Hezida”.

In an unpublished catalog of Reduviidae, Putshkov and Putshkov (1985) listed all tribal names (mostly following Davis 1969) as synonyms under Harpactorinae.

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Similarly, Maldonado (1990) discussed the classification of Harpactorinae and the problems with applying tribal names to some genera. Unlike Putshkov and Putshkov (1985), Maldonado (1990) regarded Harpactorinae in a somewhat restricted sense, including not only the Harpactorini, but also the Dicrotelini, Tegeini, and Rhaphidosomini. He segregated the Diaspidiini, Ectinoderini, and Apiomerini, ranking them as subfamilies. Both catalogs regard Bactrodinae as a separate subfamily (Putshkov and Putshkov 1985, Maldonado 1990).

A morphological phylogenetic analysis of Reduviidae (Weirauch 2008) gave support to Davis (1969) idea of having an inclusive Harpactorinae with several tribes. Weirauch (2008) found support for a monophyletic Harpactorinae, as well as for the tribes Apiomerini and Harpactorini. Ectinoderini, Diaspidiini and Tegeini had one representative each, so their monophyly could not be tested. More recently, Weirauch and Munro (2009) using molecular characters recovered a monophyletic Harpactorinae, but Harpactorini was rendered paraphyletic with the inclusion of one species of Rhaphidosomini sister to Coranus.

Future phylogenetic analysis of Harpactorinae in which critical taxa are included, such as Dicrotelini, and more species of Diaspidiini, Ectinoderini, and Rhaphidosomini, should test the monophyly of Harpactorinae, whether or not Harpactorini is paraphyletic with respect to other proposed tribes such as Rhaphidosomini and Dicrotelini, and the placement of Bactrodinae. More importantly, a much denser taxon

sampling of Harpactorini is needed in order to test the ideas exposed above with respect to its suprageneric classification.

Harpactorinae in the Neotropical region

In the Neotropical region two tribes of Harpactorinae are known (following Davis 1969): Apiomerini and Harpactorini (Davis 1969, Maldonado 1990, Putshkov and Putshkov 1985, 1988) (see table 1).

Apiomerini. This is a relatively small group with 12 extant genera (Maldonado 1990, Gil-Santana et al. 2002, 2003, Bérenger 2006) and one fossil genus described from Dominican Amber (Maldonado et al. 1993). Apiomerini have about 150 species, of which most belong to the large genus Apiomerus Hahn. Many of the genera are monotypic (e.g., Beharus Amyot and Serville, Ponerobia Amyot & Serville, Calliclopius Stål) or have very few species (e.g., Agriocleptes Stål). Only Heniartes Spinola is moderate in size, with 31 described species (Forero and Gil-Santana 2003, Gil-Santana and Forero 2010, Wygodzinsky 1947a). Species of Apiomerini are known from the United States south to Argentina, but most of the diversity is concentrated in tropical South America (Gil-Santana et al. 2003). Gil-Santana et al. (2003) provided a synopsis of the genera of Apiomerini, and a key to separate the genera.

Apiomerus, being the largest, has the most problems taxonomically. Champion (1899) treated the Central American species and provided schemes of the external male genitalia for many species. Later Costa Lima and collaborators (Costa Lima et al. 1951, 1952, Costa

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Lima and Mendes 1952) described many South American taxa. Costa Lima’s work was close to a revision, but still many problems subsist, in particular regarding the correct application of names and the documentation for species. These problems make close to impossible to identify any of the species of Apiomerus with confidence. Nonetheless, a revision of the crassipes and spissipes groups has been finished, and is close to submission (Berniker et al. in prep), and a monograph for the whole genus is now being prepared (Forero and Weirauch, in prep.).

Harpactorini. Stål (1872) provided the only known key to separate the genera of Harpactorini of the Neotropical region.

This key is now badly dated. Many genera have been renamed, a few others have been redefined, and many more have been described since its publication. All these makes very difficult to identify them without all the pertinent literature and a good reference collection.

In the Neotropical region, 51 genera of Harpactorini are found (Bérenger 2003, 2007, Carvalho et al. 2001, Forero et al. 2004, Gil-Santana and Forero 2009, Maldonado 1990, 1992, Maldonado and Farr 1977). Fitchia Stål, 1859 is endemic to the Nearctic region and is not found in the Neotropical region. All other genera of Harpactorini from the Nearctic region are shared with the Neotropics.

Table 1. Checklist of the Neotropical genera of Harpactorinae.

HARPACTORINI APIOMERINI

Acanthischium Amyot & Serville, 1843 Agriocleptes Stål, 1866

Acholla Stål, 1862 Agriocoris Stål, 1866

Ambastus Stål, 1872 Amaurocopius , 1868

Amphibolus venator (Klug, 1830) * ApicrenusMaldonado, Santiago-Blay & Poinar, 1993 †

Arilus Hahn, 1831 Apiomerus Hahn, 1831

Aristathlus Bergroth, 1831 Beharus Amyot & Serville, 1831

Atopozelus Elkins, 1954 Calliclopius Stål, 1868

Atrachelus Amyot & Serville, 1843 Foucartus Bérenger, 2006

Carmenula Maldonado, 1992 Heniartes Spinola, 1840

Castolus Stål, 1858 Manicocoris Stål, 1866

Cidoria Amyot & Serville, 1843 Micrauchenus Amyot & Serville, 1843

Coilopus Elkins, 1969 Ponerobia Amyot & Serville, 1843

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Corcia Stål, 1859 Sphodrolestes Stål, 1866

Cosmoclopius Stål, 1866

Debilia Stål, 1859

Diarthrotarsus Bergroth, 1905

Doldina Stål, 1859

Ecelenodalus Elkins & Wygodzinsky, 1957

Erbessus Stål, 1872

Graptocleptes Stål, 1866

Harpactor Laporte, 1833

Harpactorella Wygodzinsky, 1947

Heza Amyot & Serville, 1843

Hiranetis Spinola, 1837

Iquitozelus Bérenger, 2003

Ischnoclopius Stål, 1868

Isocondylus Amyot & Serville, 1843

Lindus Stål, 1860

Loboplusius Bergroth, 1909

Marjoriana Bérenger, 2007

Montina Amyot & Serville, 1843

Mucrolicter Elkins, 1962

Myocoris Burmeister, 1835

Neotropiconyttus Kirkaldy, 1909

Nesocastolus Bruner & Barber, 1937

Notocyrtus Burmeister, 1835

Orbella Maldonado, 1987

Pirnonota Stål, 1859

Ploeogaster Amyot & Serville, 1843

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Pselliopus Bergroth, 1905

Pyrrhosphodrus Stål, 1866

Repipta Stål, 1859

Ricolla Stål, 1859

Rocconota Stål, 1859

Sava Amyot & Serville, 1843

Sindala Stål, 1861

Sinea Amyot & Serville, 1843

Sosius Champion, 1899

Thysanuchus Bergroth, 1918

Xystonyttus Kirkaldy, 1909

Zelus Fabricius, 1803

* This species has been introduced from the Old World (Forero et al. 2004).† This is a fossil genus (Maldonado et al. 2003).

The following genera have been described after the publication of Stål’s key (1872): Atopozelus (Elkins 1954a), Carmenula (Maldonado 1992), Coilopus (Elkins 1969), Ecelenodalus (Elkins and Wygodzinsky 1957), Harpactorella (Wygodzinsky 1947b), Iquitozelus (Bérenger 2003), Marjoriana (Bérenger 2007), Mucrolicter (Elkins 1962), and Orbella (Maldonado 1987).

Of all genera of Harpactorini in the Neotropical region, just a few have been either revised taxonomically or redescribed, whereas others have been treated in just a synoptic way, Aristathlus Bergroth (Forero et al. 2009), Atopozelus Elkins (Hart 1972b), Atrachelus Amyot and Serville (Elkins 1954b), Castolus Stål (Maldonado 1976b), Diarthrotarsus

Bergroth(Wygodzinsky 1948), Doldina Stål (Hussey and Elkins 1955), Erbessus Stål(Wygodzinsky 1947b), Harpactor Laporte (Wygodzinsky 1947b), Heza Amyot and Serville (Maldonado 1976a, 1983), Ischnoclopius Stål (Hart 1975), Nesocastolus (Maldonado 1993), Notocyrtus Burmeister (Carvalho and Costa 1992, 1993), Sosius Champion (Maldonado and Carpintero 1993), and Sava Amyot and Serville (Coscarón et al. 1999). Hart (1986, 1987) treated the speciose genus Zelus Fabricius for North America and the West Indies, but more than 20 new species remain unpublished (Hart 1972a).

Some genera have been treated partially, dealing either with species from a particular geographic area

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(e.g., the Mexican species of Pselliopus [Brailovsky and Barrera 2004, Brailovsky et al. 2007]), or dealing with a particular group of species (e.g., Cosmoclopius [Melo and Coscarón 2002]). But at least is a beginning for a full taxonomic revision.

In many cases genera are not well studied, and even sometimes only the original description is known with no reference to an illustration of its habitus or morphological details. Some of these taxa are badly known because they might be really rare in nature (e.g., Cidoria), and therefore in collections, or because the habitats they occur have not yet being targeted by collectors. A few genera have never been mentioned again in the literature, for instance Loboplusius Bergroth and Thysanuchus Bergroth. Some have never been illustrated, and in a few even the type has been either lost or misplaced (Jansson & Coscarón 1989), complicating the identification of the taxa. Taxonomic revisions are important because they provide a more thorough view on the taxa. For instance, Notocyrtoides Carvalho, Costa and Gil-Santana which was described as close to Notocyrtus (Carvalho et al. 2001), was later found to be a synonym of Coilopus (Gil-Santana and Forero 2009).

Even for those genera which have been revised, many species might still be undescribed. For instance, Notocyrtus was revised by Carvalho and Costa (1992, 1993), but still a number of new species have been added afterwards: N. ricciae (Gil-Santana and Costa 2001), N. tibanae (Costa and Gil-Santana 2001), and N. costai (Gil-Santana and Forero 2009).

One of the great challenges is that many of the genera lack good diagnostic characters. Therefore, taxonomic revisions are needed in many cases to provide good documentation of characters. After taxonomic revisions are provided, it still remains the question of the relationships of these taxa with other Harpactorinae of other geographic regions. For instance, we do not know yet if some of the Neotropical taxa are more related to other taxa of the same region or to other regions such as Africa or Asia. Most generic concepts in Harpactorinae are geographically biased, making it difficult to predict when a given genus is a natural group or not.

Future research in Harpactorini has to focus on taxonomic revisions, not only to provide names for new taxa, but also to document characters that allow phylogenetic analysis of the species, and let assess their relationships with other members of the subfamily. A strong emphasis should be put on detailed documentation of male and female genitalia, to make easy future comparisons.

ACKNOWLEDGEMENTS

I thank Guanyang Zhang for the comments provided on a draft of this paper.

REFERENCES

Ambrose D.P. 2000. Chapter 29. Assassin bugs (Reduviidae excluding Triatominae). In: Schaefer, C.W. and Panizi, A.R. (eds.) Heteroptera of Economic Importance, CRC Press, Boca Raton, Florida. 829 p.

18


Ambrose D.P. 2002. Assassin bugs (Heteroptera: Reduviidae) in integrated pest management programme: success and strategies. In: Ignacimuthu, S. & Sen, A. (eds.). Strategies in integrated pest management: current trends and future prospects. Phoenix Publishing House PVT Ltd. Pp: 73-85.

Ambrose D.P., Sebasti Rajan X.J., Nagarajan K., Singh V.J. and S.S. Krishnan. 2009. Biology, behaviour and functional response of Sphedanolestes variabilis Distant (Insecta: Hemiptera: Reduviidae: Harpactorinae), a potential predator of lepidopteran pests. Entomologia Croatica 13: 33-44.

Amyot C.-J.-B. and A. Serville. 1843. Histoire naturelle des insectes. Hémiptères. Librairie encyclopédique de Roret; Fain et Thunot, Paris. lxxvi + 675 + 12 pls.

Bérenger J.M. 2003. Iquitozelus couturieri, nouveau genre et nouvelle espèce d’Harpactorinae du Pérou (Heteroptera, Reduviidae). Nouvelle Revue d’Entomologie (N. S.) 20: 23-27

Bérenger J.M. 2006. Un noveau genre d’Apiomerini du Brésil (Heteroptera, Reduviidae, Harpactorinae). Nouvelle Revue d’Entomologie (N. S.) 22: 369-375.

Bérenger J.M. 2007. Hétérotpères Reduviidae noveaux de Guyane française. II – Harpactorinae, Harpactorini. Bulletin de la Societé Entomologique de France 112: 29-40.

Bérenger J.M. and D. Pluot-Sigwalt. 1997. Relations privilégiées de certains Heteroptera Reduviidae prédateurs avec

les végétaux. Premier cas connu d’un Harpactorinae phytophage. Comptes Rendus de l’Académie des Sciences, Series III, Sciences de la Vie 320: 1007-1012.

Brailovsky H. and E. Barrera. 2004. New species of Pselliopus (Hemiptera: Heteroptera: Reduviidae: Harpactorinae) from Mexico. Anales del Instituto de Biología Universidad Nacional Autónoma de México Serie Zoología 75: 313-330.

Brailovsky H., Marino R. and E. Barrera. 2007. Five new species of Pselliopus (Hemiptera: Heteroptera: Reduviidae: Harpactorinae) from Mexico. Revista Mexicana de Biodiversidad 78: 85-98.

Cai W. 1995. Yangicoris, a new genus of Dicrotelini (Heteroptera: Reduviidae: Harpactorinae) from China. Entomotaxonomia 17 (suppl.): 1-5.

Carpintero D.J. and J. Maldonado.1996. Diagnostic characters and key to the genera of American Ectrichodiinae (Heteroptera, Reduviidae). Caribbean Journal of Science 32: 125-141.

Carvalho J.C.M. and L.A.A. Costa. 1992. Descriptions of new species of Notocyrtus Burmeister, 1835 (Hemiptera-Heteroptera, Reduviidae, Harpactorinae). Anais da Academia Brasileira de Ciências 64: 71-78.

Carvalho J.C.M. and L.A.A. Costa. 1993. Revision of the known species of Notocyrtus Burmeister, 1835 (Hemiptera-Heteroptera, Reduviidae; Harpactorinae). Revista Brasileira de Biologia 53: 365-384.

Carvalho J.C.M., Costa, L.A.A. and H.R.

19


Gil-Santana. 2001. A new genus and species of Neotropical Harpactorinae (Hemiptera-Heteroptera, Reduviidae). Boletim do Museu Nacional, Nova Série, Zoologia 441: 1-4.

Champion, G. C. 1899 [1897–1901]. Insecta Rhynchota. Hemiptera-Heteroptera, Vol II. In: Godman, F.D. and O. Salvin (eds.). Biologia Centrali Americana. Taylor & Francis, London, xiv + 1–416, 22 plates.

China W.E. and N.C.E. Miller. 1959. Check-list and keys to the families and subfamilies of the Hemiptera-Heteroptera. Bulletin of the British Museum (Natural History) Entomology 8: 1-45.

Choe D.-H. and M.K. Rust. 2007. Use of plant resin by a bee assassin bug, Apiomerus flaviventris (Hemiptera: Reduviidae). Annals of the Entomological Society of America 100: 320-326.

Coscarón M.C., Barrera E. and H. Brailovsky. 1999. Redescription of Sava Amyot & Serville 1848 (Heteroptera: Reduviidae: Harpactorinae). Proceedings of the Entomological Society of Washington 101: 827-831.

Costa L.A.A. and H.R. Gil-Santana. 2001. Espécie nova de Notocyrtus Burmeister, 1835 (Hemiptera, Reduviidae, Harpactorinae). Boletim do Museu Nacional, Nova Série, zoologia 439: 1-4.

Costa Lima A.d. and D. Mendes. 1952. Sobre uma coleção de Apiomeros do museu Argentino de ciencias naturales “Bernardino Rivadavia” (Hem. Reduviidae). Revista de la Sociedad Entomológica Argentina 15: 207-210.

Costa Lima A.d., Seabra C.A.C. and C.R. Hathaway. 1951. Estudo dos Apiômeros (Hemiptera: Reduviidae). Memórias do Instituto Oswaldo Cruz 49: 273-442.

Costa Lima, A.d., Seabra, C.A.C. and C.R. Hathaway, 1952. Aditamento ao trabalho sôbre o gênero Apiomerus (Hemiptera: Reduviidae). Memórias do Instituto Oswaldo Cruz 50: 265-267.

Davis N.T. 1969. Contribution to the morphology and phylogeny of the Reduvioidea. Part IV. The Harpactoroid complex. Annals of the Entomological Society of America 62: 74-94.

Distant W.L. 1904. The fauna of British India, including Ceylon and Burma. Rhynchota-vol. II (Heteroptera). Taylor and Francis, London. xvii + 503 p.

Dohrn A. 1859a. Beitrag zur Kennitss der Harpactoridae. Entomologische Zeitung 20: 91-99.

Dohrn A. 1859b. Catalogus hemipterorum. Entomologischer Verein in Stettin, Buchdruckerei von Herrcke & Lebeling, Stettin. 112 p.

Elkins,J. C. 1954a. A new American Harpactorine [sic] genus (Hemiptera, Reduviidae). Texas Reports on Biology and Medicine 12: 39-48.

Elkins J. C. 1954b. A synopsis of Atrachelus (Hemiptera, Reduviidae). Proceedings of the Entomological Society of Washington 56: 97-120.

Elkins J.C. 1962. A new Harpactorinae genus (Hemiptera: Reduviidae). Journal of the Kansas Entomological Society 35: 360–363.

20


Elkins J.C. 1969. A new genus of Hemipteran wasp mimics (Reduviidae, Harpactorinae). Journal of the Kansas Entomological Society 42: 456-457.

Elkins J.C. and P. Wygodzinsky. 1957. A new neotropical Harpactorine genus (Reduviidae, Hemiptera). Revista Brasileira de Biologia 17: 203–210.

Forero D. 2008. The systematics of the Hemiptera. Revista Colombiana de Entomologia 34: 1-21.

Forero D., Weirauch C. and M. Baena. 2004. Synonymy of the reduviid (Hemiptera: Heteroptera) genus Torrealbaia (Triatominae) with Amphibolus (Harpactorinae), with notes on Amphibolus venator (Klug, 1830). Zootaxa 670: 1-12.

Forero D., Gil-Santana H.R. and P.H. van Doesburg. 2008. Redescription of the Neotropical genus Aristathlus (Heteroptera, Reduviidae, Harpactorinae). In: Grozeva, S. & Simov, N. (eds.). Advances in Heteroptera research: festschrift in honor of 80th anniversary of Michail Josifov. Pensoft, Sofia-Moscow, pp. 85-103.

Forero D. and H.R. Gil-Santana. 2003. Revalidation of Heniartes australis Wygodzinsky, 1947 (Hemiptera-Heteroptera: Reduviidae: Apiomerinae). Entomología y Vectores 10: 281-286.

Forero D., Choe D.H. and C. Weirauch. 2011. Resin gathering in Neotropical resin bugs (Insecta: Hemiptera: Reduviidae): Functional and comparative morphology. Journal of Morphology 272: 204-229.

Forero D., Gil-Santana H.R. and van P.H. Doesburg. 2008. Redescription of the Neotropical genus Aristathlus (Heteroptera, Reduviidae, Harpactorinae). In: Grozeva, S. and Simov, N. (eds.), Advances in Heteroptera research: festschrift in honor of 80th anniversary of Michail Josifov. Pp: 85-103.

Gil-Santana H.R. and L.A.A. Costa. 2001. Descrição de uma espécie nova de Notocyrtus Burmeister, 1835, do estado de Rondônia, Brasil (Hemiptera, Reduviidae, Harpactorinae). Boletim do Museu Nacional, nova série, zoologia 452: 1-6.

Gil-Santana H.R. and D. Forero. 2009. A new species of Notocyrtus, a new synonym of Coilopus, and new records and notes on other Harpactorini (Hemiptera: Heteroptera: Reduviidae: Harpactorinae) from South America. Zootaxa 2148: 55-67.

Gil-Santana H.R. and D. Forero. 2010. Taxonomical and biological notes on Neotropical Apiomerini (Hemiptera: Heteroptera: Reduviidae: Harpactorinae). Zootaxa 2331: 57-68.

Gil-Santana H.R., Costa L.A.A., Forero D. and S.O. Zeraik. 2003. Sinopse dos Apiomerini, com chave illustrada para os gêneros (Hemiptera-Heteroptera, Reduviidae, Harpactorinae). Publicações Avulsas do Museu Nacional 97: 3-21.

Gil-Santana H.R., Costa L. A.A. and S.O. Zeraik. 2002. Sinonimização de Paramanicocoris Lima, Hathaway & Seabra, 1948 e Manicocoris Stål, 1866, com redescrição de M. rubroniger (Lima, Hathaway & Seabra, 1948), comb. nov.

21


(Hemiptera, Reduviidae, Harpactorinae, Apiomerini). Boletim do Museu Nacional, Nova Série, Zoologia 490: 1-7.

Grundy P.R. 2007. Utilizing the assassin bug, Pristhesancus plagipennis (Hemiptera: Reduviidae), as a biological control agent within an integrated pest management programme for Helicoverpa spp. (Lepidoptera: Noctuidae) and Creontiades spp. (Hemiptera: Miridae) in cotton. Bulletin of Entomological Research 97: 281-290.

Grundy P.R. and D.A. Maelzer. 2003. Towards the on-farm conservation of the assassin bug Pristhesancus plagipennis (Walker) (Hemiptera: Reduviidae) during winter using crop plants as refuges. Australian Journal of Entomology 42: 153-158.

Hart E.R. 1972a. A systematic revision of the genus Zelus Fabricius (Hemiptera: Reduviidae). Ph.D. dissertation, Dep. Entomology Texas A&M University: xviii + 1–595., 2 vols.

Hart E.R. 1972b. A new species of the genus Atopozelus Elkins, with a review of the genus. Journal of the Kansas Entomological Society 45: 392-396.

Hart E.R. 1975. A new species of Ischnoclopius Stål, with notes on the systematic position of the genus (Hemiptera: Reduviidae). Proceedings of the Entomological Society of Washington 77: 419-425.

Hart E.R. 1986. Genus Zelus Fabricius in the United States, Canada, and Northern Mexico (Hemiptera: Reduviidae). Annals of the Entomological Society of America 79: 535-548.

Hart E.R. 1987. The genus Zelus Fabricius in the West Indies (Hemiptera: Reduviidae). Annals of the Entomological Society of America 80: 293-305.

Hsiao T.-Y. and S.-Z. Ren. 1981. Reduviidae. In: Hsiao, T.-Y. et al. (eds.) A handbook for the determination of the Chinese Hemiptera-Heteroptera II. Science Press [in Chinese, with English abstract], Beijing, pp. 390-538.

Hussey R.F. and J.C. Elkins. 1955. Review of the genus Doldina Stål (Hemiptera: Reduviidae). Journal of the Florida Academy of Sciences 18: 261-278.

Jacobson E. 1911. Biological notes on the Hemipteron Ptilocerus ochraceus. Tidjschrift voor Entomologie 54: 175-179.

Jeannel R. 1919. Insectes Hemipteres, iii. Henicocephalidae et Reduviidae. In: Voyage de Ch. Alluaud et R. Jeannel en Africa Orientale (1911-1912), Paris, pp. 133-313.

Lent H. and P. Wygodzinsky. 1979. Revision of the Triatominae (Hemiptera: Reduviidae) and their significance as vectors of Chagas’ disease. Bulletin of the American Museum of Natural History 163: 123-520.

Maldonado J. 1976a. The genus Heza (Hemiptera: Reduviidae). Journal of Agriculture of the University of Puerto Rico 60: 403-433.

Maldonado J. 1976b. Three new species of Castolus and a key to the species (Hemiptera: Reduviidae). Proceedings of the Entomological Society of Washington 78: 435-446.

22


Maldonado J. 1983. Concerning new and old species of Heza (Hemiptera: Reduviidae). Journal of Agriculture of the University of Puerto Rico 67: 407-418.

Maldonado J. 1987. Orbella, a new Harpactorinae genus (Hemiptera: Reduviidae). Journal of Agriculture of the University of Puerto Rico 71: 193-198.

Maldonado J. 1990. Systematic catalogue of the Reduviidae of the World Caribbean Journal of Science, Special publication No. 1, University of Puerto Rico, Mayagüez. 964 p.

Maldonado J. 1992. A new Harpactorinae genus from French Guiana, northern South America (Heteroptera: Reduviidae). Caribbean Journal of Science 28: 38-40.

Maldonado J. 1993. Redescription of Nesocastolus nigrocoris (Fracker and Bruner) and notes on the genus (Heteroptera: Reduviidae: Harpactorinae). Proceedings of the Entomological Society of Washington 95: 562-563.

Maldonado J. and D. J. Carpintero. 1993. Redescription of the Harpactorinae genus Sosius Champion 1899, with the description of a new species (Heteroptera: Reduviidae). Proceedings of the Entomological Society of Washington 95: 223–227.

Maldonado, J. and Farr, T. H. 1977. Assassin bugs of Jamaica (Hemiptera: Reduviidae). Sloanea 2: 1-18.

Maldonado J., Santiago-Blay J.A. and G.O. Poinar. 1993. Apicrenus fossilis n.

gen & n. sp. (Heteroptera: Reduviidae: Apiomerinae) from dominican amber (lower Oligocene - upper Eocene). Entomologica Scandinavica 24: 139-142.

Malipatil M.B. 1988. Revision of Australian Dicrotelini with the description of three new genera (Hemiptera: Reduviidae). Beagle 5: 135-145.

McMahan E.A. 1982. Bait-and-capture strategy of a termite-eating assassin bug. Insects Sociaux, Paris 29: 346-351.

McMahan E.A. 1983. Bugs angle for termites. Natural History 92: 40-47.

Miller N.C.E. 1952. Three new sub-families of Reduviidae. EOS, Revista Española de Entomología 28: 85-90.

Miller N.C.E. 1953. Notes on the biology of the Reduviidae of Southern Rhodesia. Transactions of the zoological Society of London 27: 541-672.

Miller N.C.E. 1954. The genera Henricohahnia Breddin, Dicrotelus Erichson, Nyllius Stål, Orgetorixa China and allied new genera. Bulletin of the British Museum (Natural History) Entomology 3: 445-488. Miller N.C.E. 1959. A new subfamily, new genera and new species of Reduviidae (Hemiptera-Heteroptera). Bulletin of the British Museum (Natural History), Entomology 8: 47-117, 4 pls.

Poinar G.O. 1991. Praecoris dominicana gen. n. sp. n. (Hemiptera: Reduviidae: Holoptilinae) from Dominican amber, with an interpretation of past behavior based on functional morphology.

23


Entomologica Scandinavica 22: 193-199.

Putshkov V.G. and P.V. Putshkov. 1985. A catalogue of assassin-bug genera of the World (Heteroptera, Reduviidae). Published by the authors, deposited in VINITI [All-Union Institute of Sci. & Techn. Information], No. 4738-B 85. [Russian preface, English main text], Kiev. 138 p.

Putshkov V.G. and P.V. Putshkov. 1988. A catalogue of assassin-bugs of the World (Heteroptera, Reduviidae). III. Harpactorinae. Published by the authors, deposited in VINITI [All-Union Institute of Sci. & Techn. Information], No. 286-В 88. [Russian preface, English main text], Kiev. 264 p.

Readio P.A. 1927. Studies on the biology of the Reduviidae of America North of Mexico. The University of Kansas Science Bulletin 17: 5-291.

Schuh R.T. and J.A. Slater. 1995. True bugs of the world (Hemiptera: Heteroptera): classification and natural history. Comstock Publishing Associates, Cornell University Press, Ithaca. 336 pp.

Stål C. 1859a. Till kännedomen om Reduvini. – Öfversigt af Kongliga Vetenskaps-Akademiens Förhandlingar 16: 175-204.

Stål C. 1859b. Till kännedomen om Reduvini. Öfversigt af Kongliga Vetenskaps-Akademiens Förhandlingar 16: 363-386.

Stål C. 1859c. Nova methodus Reduviina (Burm.) disponendi. Berliner entomologische Zeitschrift 3: 328.

Stål C. 1862. Hemiptera mexicana enumeravit speciesque novas descripsit (continuatio). Entomologische Zeitung 23: 437-462.

Stål C. 1866. Bidrag till Reduviidernas kännedom. Öfversigt af Kongliga Vetenskaps-Akademiens Förhandlingar 9: 235-302.

Stål C. 1872. Enumeratio Hemipterorum. Bidrag till en förteckning öfver alla hittills kända Hemiptera, jemte systematiska meddelanden. 2. Kongliga Svenska Vetenskaps-Akademiens Handlingar 10: 1-159.

Stål C. 1874. Enumeratio Hemipterorum. Bidrag till en förteckning öfver alla hittills kända Hemiptera, jemte systematiska meddelanden. 4. Kongliga Svenska Vetenskaps-Akademiens Handlingar 12: 1-186.

Swadener S.O. and T.R. Yonke. 1973. Immature stages and biology of Apiomerus crassipes (Hemiptera: Reduviidae). Annals of the Entomological Society of America 66: 188-196.

Tomokuni M. and W. Cai. 2002. Asiacoris pudicus, gen. & sp. n. of Dicrotelini (Heteroptera, Reduviidae, Harpactorinae) from Vietnam. Deutsche Entomologische Zeitschrift 49: 209-212.

Villiers A. 1948. Hémiptères Réduviides de l’Afrique Noire. Faune de l’Empire Français 9: 1-488.

Villiers A. 1982. Hémiptères Reduviidae africains. Localisations et descriptions. 3. Harpactorinae, Rhinocorini. Revue Francaise d’Entomologie (Nouvelle Serie) 4: 126-136.

24


Villiers A. 1983. Hémiptères Reduviidae africains. Localisations et descriptions. 4. Harpactorinae, Harpactorini. Revue Francaise d’Entomologie (Nouvelle Serie) 5: 10-14.

Weirauch C. 2008. Cladistic analysis of Reduviidae (Heteroptera: Cimicomorpha) based on morphological characters. Systematic Entomology 33: 229-274.

Weirauch C. and J.B. Munro. 2009. Molecular phylogeny of the assassin bugs (Hemiptera: Reduviidae), based on mitochondrial and nuclear ribosomal genes. Molecular Phylogenetics and Evolution 53: 287-299.

Weirauch C. and R.T. Schuh. 2011. Systematics and evolution of Heteroptera: 25 years of progress. Annual Review of Entomology 56: 487-510.

Wygodzinsky P. 1947a. Contribuiçao ao conhecimento do gênero Heniartes Spinola, 1837 (Apiomerinae, Reduviidae, Hemiptera). Arquivos do Museu Nacional 41: 3-65.

Wygodzinsky P. 1947b. Sobre um novo gênero de Harpactorinae do Brasil, com notas sobreos gêneros Harpactor Laporte e Erbessus Stål (Reduviidae, Hemiptera). Revista de Entomologia 17: 401-417.

Wygodzinsky P. 1948. El género “Diarthrotarsus” Bergroth, 1905 (Harpactorinae, Reduviidae, Hemiptera). Acta Zoológica Lilloana 6: 201-213.

25


REPORTE DE LOS FONDOS DEL MEFLG

Harpactorinae (Hemiptera: Reduviidae) del Museo Entomológico “Francisco Luis Gallego” de la Universidad Nacional de Colombia, sede Medellín.

John Alveiro Quiroz Gamboa1, Manyer Ana Luisa Carmona Maya2.

1 Técnico/ Curador MEFLG, Universidad Nacional de Colombia – Medellín, 2 Estudiante Ingeniería Agronómica, estudiante auxiliar del MEFLG, Universidad Nacional de Colombia – Medellín. de Colombia – Medellín.

Las “chinches asesinas” pertenecientes a la subfamilia Harpactorinae, están representadas en el Museo Entomológico Francisco Luis Gallego (MEFLG) por 630 individuos, pertenecientes a la tribu Harpactorini, incluidos 15 géneros (Arilus, Castolus, Corcia, Debilia, Doldina, Heza, Montina, Neotropiconyttus, Notocyrtus, Orbella, Pselliopus, Repipta, Ricolla, Sinea y Zelus) y la tribu Apiomerini con 8 géneros (Agriocleptes, Agriocoris, Amauroclopius, Apiomerus, Beharus, Calliclopius, Micrauchenus y Ponerobia). De los Harparctorinae neotropicales, conformados por cincuenta 51 géneros de la tribu Harpactorini y 13 géneros de la tribu Apiomerini.

Los especímenes que están depositados en el MEFLG proceden: Antioquia 410 individuos (65.1%), Valle del Cauca 73 individuos (11.6%), Chocó 42 individuos (6.7%), Santander 17 individuos (2.7%), Córdoba 10 individuos (1.6%), Cundinamarca y Bolívar 8 individuos cada uno (2.6%). De otros departamentos se tiene el 9.7% restante.

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Tabla. Listado de Harpactorinae (Hemiptera: Reduviidae) en el MEFLG(IND: Información no disponible)

Especie Colector Identificador País Departamento Municipio Fecha Cantidad N° Catálogo

Agriocleptes albosparsus

A. Madrigal D. Forero Colombia Antioquia Tarazá /07/1975 1 2975


F. Gallego D. Forero Colombia AntioquiaSanta Fé de Antioquia

/11/1963 1 2975


F. Gallego D. Forero Colombia Antioquia S. Andrés /02/1951 1 2975


R. Vélez D. Forero Colombia Antioquia Sopetrán /05/1972 2 2975


R. Vélez D. Forero Colombia Antioquia Sopetrán /03/1973 2 2975


A. Madrigal D. Forero Colombia Antioquia Sopetrán /10/1971 1 8635

Agriocoris flavipesM. Delgado, Z. Gil

D. Forero Colombia Antioquia Porce 06/08/1997 2 5672









Agriocoris flavipes R. Bernal D. Forero Colombia Chocó Ichó /07/1981 1 5704

Agriocoris flavipes R. Vélez D. Forero Colombia Antioquia Mutatá /09/1972 1 5704

Agriocoris flavipes R. Vélez D. Forero Colombia Chocó Tutunendo /11/1983 2 5704

Agriocoris flavipes R. Vélez D. Forero Colombia Antioquia San Luis /06/1986 1 5704

Amauroclopius ornatus

R. Vélez D. Forero Colombia Antioquia Turbo /02/1965 1 6842

Apiomerus erythromelas

F. Gallego IND ColombiaOccidente Antioqueño

IND /03/1947 1 2977

Apiomerus guevarai F. Gallego D. Forero Colombia Cundinamarca Quetame /11/1946 1 5641

Apiomerus lanipes F. Gallego H. Barber Colombia Magdalena IND /12/1940 3 798

27


Apiomerus lanipes F. Gallego H. Barber Colombia Atlántico IND /12/1940 1 798

Apiomerus lanipes G. Morales H. Barber Colombia Antioquia Carepa 13/09/01 3 798

Apiomerus lanipes G. Morales H. Barber Colombia Antioquia Carepa 13/09/01 4 798

Apiomerus lanipes A. Madrigal A. Molina Colombia Antioquia Apartadó /04/1981 1 6836

Apiomerus lanipes F. Gallego A. Molina Colombia Bolivar El Carmen /09/1943 1 6836

Apiomerus lanipes F. Gallego A. Molina Colombia Antioquia Cáceres /10/1953 7 6836

Apiomerus lanipes R. Añez A. Molina Colombia Cauca Tierradentro /10/1975 1 6836

Apiomerus lanipes R. Vélez A. Molina Colombia Antioquia Rio León /12/1970 1 6836

Apiomerus lanipes F. Gallego A. Molina Colombia Antioquia Caucasia /02/1951 2 6836

Apiomerus lanipes F. Gallego A. Molina Colombia Antioquia La Pintada /09/1948 1 6836

Apiomerus lanipes F. Gallego A. Molina Colombia Antioquia Zaragoza /10/1964 1 6836

Apiomerus lanipes A. Madrigal A. Molina Colombia Córdoba Puerto Rico /12/1971 1 6836

Apiomerus lanipes R. Vélez A. Molina Colombia Antioquia Mutatá /09/1972 1 6836

Apiomerus lanipes R. Vélez A. Molina Colombia Antioquia Tarazá /07/1972 1 6836

Apiomerus lanipes F. Gallego A. Molina Colombia Antioquia Zaragoza /11/1964 1 6836

Apiomerus lanipes F. Gallego A. Molina Colombia Antioquia Río León /11/1966 2 6836

Apiomerus ochropterus

L. Richter IND Colombia Santander Cararé /03/1939 1 5642

Apiomerus ochropterus

F. Gallego IND Colombia AntioquiaPiedras Blancas

/06/1946 1 2978

Apiomerus pictipes F. Gallego IND Colombia Antioquia Cisneros /12/1969 1 2979

Apiomerus pictipes F. Gallego IND Colombia MagdalenaSan Fernando

/01/1944 1 2979

Apiomerus pictipes E. Vallejo IND Colombia Antioquia Medellín /05/1971 1 2979

Apiomerus pictipes F. Gallego IND Colombia Antioquia Sopetrán /05/1954 1 2979

Apiomerus pictipes F. Gallego IND Colombia AntioquiaSan Jerónimo

/07/1955 1 2979

28


Apiomerus pictipes E. Rendón IND Colombia Antioquia Medellín /10/1971 1 2979

Apiomerus pictipes F. Gallego IND ColombiaCosta Atlántica

IND /07/1950 1 2979

Apiomerus pictipes F. Gallego IND Colombia AntioquiaSan Jerónimo

/06/1955 1 2979

Apiomerus pictipes J. Villa IND Colombia Antioquia La Pintada /06/19- 1 2979

Apiomerus pilipes F. Gallego R. Sailer Colombia Antioquia Medellín /12/1943 1 1045

Apiomerus pilipes F. Gallego R. Sailer Colombia Antioquia Guadalupe /12/1943 1 1045

Apiomerus pilipes O. Ortega R. Sailer Colombia Antioquia Andes 26/03/1997 1 1045

Apiomerus pilipes O. Ortega R. Sailer Colombia Antioquia Andes 26/03/1997 1 1045

Apiomerus pilipes R. Vélez A. Molina Colombia AntioquiaPiedras Blancas

/04/1966 1 7029

Apiomerus pilipes F. Gallego A. Molina Colombia AntioquiaPiedras Blancas

/06/1953 1 7029


/07/1965 1 7029


/04/1965 1 7029


/04/1966 1 7029

Apiomerus pilipes F. Gallego A. Molina Colombia AntioquiaPiedras Blancas

/04/1946 1 7029

Apiomerus pilipes A. Madrigal A. Molina Colombia Antioquia San Vicente /05/1972 4 7029

Apiomerus pilipes R. Vélez A. Molina Colombia Antioquia San Vicente /05/1972 4 7029

Apiomerus pilipes A. Madrigal A. Molina Colombia Antioquia El Retiro /02/1975 1 7029

Apiomerus pilipes F. Gallego A. Molina Colombia Magdalena Sevilla /07/1942 1 7029

Apiomerus pilipes R. Vélez A. Molina Colombia Antioquia Donmatías /02/1980 1 7029

Apiomerus pilipes F. Gallego A. Molina Colombia Antioquia Rio Grande /06/1952 1 7029

Apiomerus pilipes F. Serna A. Molina Colombia Antioquia Granada /04/1988 1 7029

Apiomerus pilipes F. Gallego A. Molina Colombia Antioquia Medellín /03/1950 1 7029

Apiomerus pilipes F. Gallego A. Molina Colombia Antioquia Medellín /07/1954 1 7029

29


Apiomerus sp. A. Upegui IND Colombia CundinamarcaLa Esperanza

/12/1949 1 7028

Apiomerus sp. R. Vélez J. Herrring Colombia Antioquia Caldas /08/1973 2 2587

Apiomerus sp. R. Vélez IND Colombia Antioquia Mutatá /09/1972 1 2672

Apiomerus sp. F. Gallego IND Colombia Antioquia Dabeiba /07/1943 1 2672

Apiomerus sp. R. Vélez J. Herrring Colombia Antioquia Caldas /11/1973 2 2586

Apiomerus sp. R. Vélez J. Herring Colombia Antioquia Caldas /01/1974 1 2586

Apiomerus sp. R. Vélez A. Molina Colombia Antioquia Alejandría /02/1973 1 2980

Apiomerus sp. F. Gallego A. Molina Colombia Boyacá Zotaquirá /02/1944 1 2980

Apiomerus sp. F. Gallego A. Molina Colombia Magdalena Sevilla /07/1942 1 2980

Apiomerus sp. F. Gallego A. Molina Colombia Chocó Itsmina /06/1947 1 2980

Apiomerus sp. R. Vélez A. Molina Colombia Antioquia Turbo /01/1965 1 2980

Apiomerus sp. R. Vélez A. Molina Colombia Antioquia Pto León /01/1965 1 2980

Apiomerus sp. R. Vélez A. Molina Colombia Antioquia Cocorná /08/19-- 1 2980

Apiomerus sp. R. Vélez A. Molina Colombia Córdoba Tres Palmas /06/1973 1 2980

Apiomerus sp. A. Madrigal A. Molina Colombia Antioquia Tarazá /06/1975 1 2980

Apiomerus sp. F. Gallego A. Molina Colombia Cundinamarca Mesitas /01/1950 1 2980

Apiomerus sp. F. Gallego A. Molina Colombia Huila Neiva /12/1953 1 2980

Apiomerus sp. F. Gallego A. Molina Colombia Cerro IND /01/1946 1 2980

Apiomerus sp. A. Madrigal A. Molina Colombia Córdoba Planeta Rica /12/1971 1 2980

Apiomerus sp. F. Gallego F. Dimitri Colombia Antioquia Yalí /05/1955 1 7289

Apiomerus sp.M. Delgado, Z. Gil

F. Dimitri Colombia Antioquia Porce 09/07/1997 2 5702

Apiomerus sp.M. Delgado, Z. Gil

F. Dimitri Colombia Antioquia Porce 1997 3 5702

Apiomerus sp. J. Suescun F. Dimitri Colombia Antioquia Sopetrán /03/1981 1 5693

Apiomerus sp. A. Jaramillo F. Dimitri Colombia Antioquia Valledupar /08/1981 1 5693

Apiomerus sp. F. Gallego J. Maldonado Colombia Antioquia Medellín /09/194- 1 7027

30


Apiomerus sp. F. Gallego J. Maldonado Colombia Antioquia Turbo /12/1948 1 7027

Apiomerus sp. R. Vélez F. Dimitri Colombia Chocó Itsmina /11/1983 3 7271

Apiomerus sp. F. Serna F. Dimitri Colombia Chocó Itsmina /11/1983 1 7271

Apiomerus sp. M. Restrepo F. Dimitri Colombia Chocó Itsmina /11/1983 2 7271

Apiomerus sp. F. Serna F. Dimitri Colombia Chocó Tutunendo /11/1983 1 7271

Apiomerus sp. F. Serna F. Dimitri Colombia Chocó Yuto /11/1983 1 7271

Apiomerus sp. R. Vëlez F. Dimitri Colombia Antioquia San Carlos /03/1987 1 7272

Apiomerus sp. R. Ricardo F. Dimitri Colombia Antioquia Copacabana /08/1989 1 7272

Apiomerus sp. F. Gallego F. Dimitri Colombia Antioquia Cocorná /08/1956 1 7273

Apiomerus sp. F. Gallego F. Dimitri Colombia MagdalenaCiénaga Sevilla

/07/1942 1 7274

Apiomerus sp. N. Botero F. Dimitri Colombia Antioquia El Retiro /04/1992 2 7268

Apiomerus sp. J. Quiroz F. Dimitri Colombia Antioquia La Ceja 06/09/1985 1 7268

Apiomerus sp. R. Vélez F. Dimitri Colombia Antioquia Tarazá /07/1972 1 7269

Apiomerus sp. F. Gallego F. Dimitri Colombia Antioquia Cáceres /11/1963 1 7269

Apiomerus sp. G. Munera F. Dimitri Colombia Antioquia Barbosa /10/1984 1 7269

Apiomerus sp. F. Gallego F. Dimitri Colombia Antioquia Cerro /01/1946 1 7270

Apiomerus sp. S. Orozco F. Dimitri Colombia Antioquia Amalfi 15/10/2000 1 7265

Apiomerus sp. R. Vélez F. Dimitri Colombia Chocó Tutunendo /11/1983 1 7287

Apiomerus sp. F. Serna F. Dimitri Colombia Chocó Yuto /11/1983 1 7287

Apiomerus sp. R. Vélez F. Dimitri Colombia Antioquia San Luis /08/1983 1 7287

Apiomerus sp. F. Diaz F. Dimitri Colombia Antioquia Medellín /08/1982 1 7288

Apiomerus venezuelensis

F. Gallego IND Colombia Antioquia Medellín /07/1943 1 2981

Arilus gallus N. Delgado A. Molina ColombiaValle del Cauca

Palmira /05/1956 2 6843

Arilus gallus R. Adarve A. Molina ColombiaValle del Cauca

Guacarí /02/1963 1 6843

Arilus gallus A. V. P A. Molina Colombia Cesar Curumaní /06/1971 1 6843

Arilus gallus R. Vélez A. Molina Colombia Caquetá Florencia /01/1965 1 6843

31


Arilus gallus F. Gallego A. Molina Colombia Santander San Gil /02/1944 1 6843

Arilus gallus L. Richter IND Colombia Santander Carare 18/02/1939 1 5657

Arilus gallus F. Gallego H. Barber ColombiaValle del Cauca

IND /07/1939 1 438

Beharus cylindripes R. Vélez D. Forero Colombia Antioquia Rio León /01/1965 1 5643

Beharus cylindripes R. Vélez D. Forero Colombia Antioquia Turbo /02/1965 1 5643

Beharus cylindripes F. Gallego D. Forero Colombia Antioquia Rio León /08/1964 1 5643

Calliclopius nigripes

A. Madrigal D. Forero Colombia Magdalena Pivijay /11/1985 1 7266

Calliclopius nigripes

F. Gallego D. Forero Colombia O. Antioqueño IND /08/1947 1 7266

Calliclopius sp. A. Madrigal D. Forero Colombia Bolivar Monmpox /12/1994 1 5639

Calliclopius sp. L. Mejía D. Forero Colombia Bolivar Monmpox /12/1994 1 5639

Calliclopius sp. F. Gallego D. Forero ColombiaCosta Atlántica

IND /05/1950 1 5639

Calliclopius sp. F. Gallego D. Forero Colombia MagdalenaSan Fernando

/01/1944 1 5639

Calliclopius sp. F. Gallego D. Forero Colombia Antioquia Medellín /07/1954 1 5639

Castolus plagiaticollis

F. Gallego H. Barber Colombia Antioquia Medellín /03/1937 2 113

Castolus sp. F. Gallego IND Colombia Antioquia Medellín /07/1945 1 2982

Castolus subinermis

F. Gallego R. Saileer Colombia Antioquia Medellín /08/1943 1 1039

Castolus subinermis

F. Gallego A. Molina Colombia Antioquia Guadalupe /05/1949 1 6844

Castolus subinermis

J. Vallejo A. Molina Colombia Antioquia Caldas /08/1989 1 6844

Castolus subinermis

F. Gallego A. Molina Colombia Santander Cimitarra /08/1945 1 6844

Corcia columbica Dimachi A. Molina Colombia Antioquia Medellín /11/1989 1 2589

Corcia columbica D. Muñoz A. Molina Colombia Antioquia Caldas /08/1989 1 2589

Corcia columbica G. Morales A. Molina Colombia Antioquia Frontino 07/90 3 2589

Corcia columbica G. Morales A. Molina Colombia Antioquia Frontino /06/1990 2 2589

Corcia columbica A. Madrigal A. Molina Colombia Antioquia Urrao /10/1976 4 2589

Corcia columbica R. Vélez A. Molina Colombia Antioquia Caldas 21/01/1989 2 2589

32


Corcia columbica G. Morales A. Molina Colombia Antioquia Caldas /01/1989 1 2589

Corcia columbica J. Pérez A. Molina Colombia AntioquiaSanta Fé de Antioquia

/03/1989 1 2589

Corcia columbica F. Gallego A. Molina Colombia Antioquia Medellín /04/1946 1 2589

Corcia columbica F. Gallego A. Molina Colombia Risaralda Pereira /04/1957 1 2589

Corcia columbica F. Gallego A. Molina Colombia Antioquia Bolombolo 20/11/1989 1 2589

Corcia columbica J. Mazo A. Molina Colombia AntioquiaSanta Fé de Antioquia

/11/1989 1 2589

Corcia columbica C. Ochoa A. Molina Colombia Antioquia Concepción IND 1 2589

Corcia columbica G. Pérez D. Forero Colombia Antioquia Caldas 22/04/1992 1 7297

Corcia columbica R. Vélez D. Forero Colombia AntioquiaSanta Rosa de Osos

/12/1989 2 7297

Corcia columbica V. Cortés D. Forero Colombia Antioquia La Estrella /04/1985 1 7297

Corcia columbica L. Sánchez D. Forero Colombia Antioquia Caldas 05/02/1998 2 7297

Corcia columbica P. Rodríguez D. Forero Colombia Antioquia Caldas 28/02/1998 1 7298

Corcia columbica R. Vélez J. Herring Colombia Antioquia Caldas /04/1973 1 2588



Corcia columbica C. Higuita A. Molina Colombia Antioquia Caldas /08/1989 1 2589

Corcia columbica F. Gallego A. Molina Colombia Cundinamarca IND /08/1946 1 2589

Corcia columbica F. Gallego A. Molina Colombia Cundinamarca Quetame 01/08/194- 1 2589

Debilia sp. E. Urueta R. Froeschner

Colombia Antioquia Turbo 16/04/1971 1 5659



Debilia sp. S. Mejía R. Froeschner




Debilia sp. R. Vélez A. Molina Colombia AntioquiaPuerto Triunfo

/12/1970 1 6846

Debilia sp. A. Madrigal A. Molina Colombia Antioquia Tarazá /04/1971 1 6846

Doldina sp. F. Gallego IND ColombiaValle del Cauca

Buga /12/1943 2 2984

Heza sericans F. Gallego D. Forero Colombia Antioquia Medellín /12/1952 1 2988

Heza sericans N. Delgado A. Molina Colombia Antioquia Medellín /06/1953 1 2988

33


Heza sericans F. Gallego A. Molina Colombia Santander Cimitarra /10/1945 1 2988

Heza sericans F. Gallego A. Molina Colombia Antioquia Medellín /09/1945 1 2988

Heza sericans R. Vélez A. Molina Colombia Antioquia Andes /02/1980 1 2988

Heza sericans M. Suarez A. Molina Colombia Antioquia Medellín 15/10/1992 1 2988

Heza sericans F. GallegoP. Wygodzinsky

Colombia Antioquia Medellín /09/194- 1 7054

Heza similis E. Urueta R. Froeschner


Heza similis F. Gallego A. Molina Colombia Antioquia Medellín /09/1945 1 2989

Heza similis F. Gallego A. Molina ColombiaValle del Cauca

Palmira /07/1946 2 2989

Heza similis F. Gallego A. Molina ColombiaCosta Atlántica

IND /09/1943 1 2989

Heza similis R. Vélez A. Molina Colombia Antioquia San Carlos /03/1987 1 2989

Heza similis R. Vélez A. Molina Colombia AntioquiaSan Jerónimo

/07/1967 2 2989

Heza similis F. Gallego A. Molina Colombia Tolima Líbano /12/1956 1 2989

Heza similis J. Escobar A. Molina Colombia Antioquia Urabá /02/1988 3 2989

Heza similis F. Gallego A. Molina ColombiaValle del Cauca

Buga /11/1943 1 2989

Heza similis F. Gallego A. Molina Colombia Antioquia Sopetrán /06/1945 1 2989

Heza sp.M. Delgado, Z. Gil


Heza sp.G. Morales, C. Mantillo

D. Forero Colombia Antioquia Frontino /07/1987 1 7281

Heza sp. J. Quiroz D. Forero Colombia Antioquia Sopetrán /09/1985 1 7281

Micrauchenus lineola

G. Morales D. Forero Colombia Antioquia Fredonia /11/1994 8 7267

Micrauchenus lineola

G. Ramiro D. Forero Colombia Antioquia El Santuario 08/06/1996 1 7267

Micrauchenus lineoloa

L. Richter IND Colombia Santander Carare 07/05/1919 1 5689

Micrauchenus sp. R. Vélez D. Forero ColombiaValle del Cauca

/01/1965 1 6869

Montina nigripes L. Richter R. Saileer Colombia Santander Landázuri 18/11/1938 1 6847

Montina nigripes F. Gallego IND Colombia Antioquia Mutatá 09/194- 3 6848

Montina nigripes N. Delgado IND Colombia Antioquia Mutatá /10/1953 1 6848

34


Montina nigripes R. Vélez IND ColombiaValle del Cauca

Bolo Abajo /01/1965 2 6848

Montina nigripes F. Gallego IND Colombia AntioquiaOccidente Antioqueño

/09/1947 1 6848

Montina nigripes F. Gallego IND Colombia Antioquia Cocorná /04/1956 1 6848

Montina nigripes F. Gallego IND Colombia Antioquia Cocorná /08/1956 2 6848

Montina nigripes F. Gallego IND Colombia Antioquia Turbo 09/194? 1 6848

Montina nigripes F. Gallego IND Colombia AntioquiaOccidente Antioqueño

/09/1947 1 6848

Montina sp. F. Serna D. Forero Colombia Chocó Quibdó /11/1983 2 7279

Montina sp. J. Hurtado A. Molina Colombia Antioquia Mutatá /04/1988 1 6893

Montina sp. G. Morales A. Molina Colombia Valle del Cauca

Calima /09/1995 1 6893

Montina sp. F. Gallego A. Molina Colombia Antioquia Medellín /11/1947 1 6894

Montina sp. F. Gallego D. Forero Colombia Antioquia El Bagre 10/194- 1 7277

Montina sp. Saldarriaga D. Forero Colombia Antioquia Caldas 19/08/1989 1 7276

Montina sp. F. Serna D. Forero Colombia Chocó Quibdó /11/1983 1 7280

Montina sp. R. Vélez D. Forero Colombia Chocó Quibdó /11/1983 1 7280

Montina sp. R. Vélez D. Forero Colombia Chocó Istmina /11/1983 1 7280

Neotropiconyttus sp.

F. Gallego D. Forero ColombiaValle del Cauca

Palmira /06/1946 1 7282

Neotropiconyttus sp.

A. Madrigal D. Forero Colombia Antioquia Encarnación /12/1980 1 7282

Notocyrtus bactrianus

A. Molina D. Forero Colombia AntioquiaSanta Fé de Antioquia

/01/1977 1 6878

Notocyrtus camellus

Julian D. Forero Venezuela Anmazonas IND 27/05/1950 1 2992

Notocyrtus dorsalis R. Vélez D. Forero Colombia Antioquia Sopetrán /10/1971 1 8623

Notocyrtus dorsalisA. Madrigal, J. Quiroz

D. Forero Colombia Bolivar Mompós /12/1994 4 6849

Notocyrtus dorsalis F. Gallego D. Forero Colombia CesarAgustín codazzi

/09/1953 1 6848

Notocyrtus dorsalis M. Cano D. Forero Colombia Antioquia Medellín /09/1971 1 6848

Notocyrtus dorsalis R. Vélez D. Forero Colombia Córdoba Montería /06/1973 1 6849

Notocyrtus foveatus R. Vélez D. Forero Colombia AntioquiaSanta Fé de Antioquia

/02/1984 2 7283

35


Notocyrtus foveatus R. Vélez D. Forero Colombia Chocó Yuto /11/1983 2 7283

Notocyrtus foveatus C. Bohorquez D. Forero Colombia AntioquiaSanta Fé de Antioquia

/02/1989 1 7283

Notocyrtus foveatus A. Molina D. Forero Colombia AntioquiaSanta Fé de Antioquia

/01/1977 1 6877

Notocyrtus foveatus A. Madrigal D. Forero Colombia AntioquiaSan Jerónimo

/08/1975 1 6877

Notocyrtus gibbus R. Vélez D. Forero Colombia Chocó Quibdó /11/1983 1 7286

Notocyrtus gibbus R. Vélez D. Forero Colombia Chocó Yuto /11/1983 3 7286

Notocyrtus gibbus R. Vélez D. Forero Colombia Chocó Istmina /11/1983 1 7286

Notocyrtus gibbus F. Serna D. Forero Colombia Chocó Istmina /11/1983 1 7286

Notocyrtus gibbus A. Saldarriaga D. Forero Colombia Chocó Tutunendo /11/1983 1 7286

Notocyrtus gibbus F. Serna D. Forero Colombia Chocó Tutunendo /11/1983 1 7286

Notocyrtus gibbus R. Vélez D. Forero Colombia Antioquia Sopetrán /10/1971 3 7286

Orbella lugubrisM. Delgado, Z. Gil


Ponerobia bipostulata

R. Vélez D. Forero Colombia Antioquia Turbo /02/1965 1 8640

Pselliopus ornaticesps

L. Richter IND Colombia Meta Río Meta /12/1939 1 3008

Pselliopus ornaticesps

R. Vélez A. Molina Colombia Meta Villavicencio /12/1963 1 6850

Pselliopus punctipes

F. Gallego A. Molina Colombia SantanderPuerto Araujo

01/08/1945 1 6851


L.Ortiz A. Molina Colombia AntioquiaSanta Fé de Antioquia

01/08/1975 1 6851


A. Madrigal A. Molina Colombia Antioquia Tarazá 01/04/1971 1 6851


R. Vélez A. Molina Colombia Antioquia Sopetrán 01/05/1972 1 6851


F. Gallego A. Molina Colombia AntioquiaSan José del Nus

01/06/1943 1 6851


M. Olano A. Molina Colombia Antioquia Medellín 01/02/1989 1 6851


F. Gallego H. Barber ColombiaValle del Cauca

Palmira /11/1937 2 305

Pselliopus sp. R. VélezR. Froeschner

Colombia Antioquia San Pedro /12/1970 2 1862

Pselliopus sp. A. Jaramillo A. Molina Colombia Cesar Valledupar /08/1981 1 6852

Pselliopus sp. F. Gallego A. Molina Colombia Antioquia Caucasia /05/1953 2 6852

Pselliopus sp. T. Daza A. Molina Colombia Tolima Espinal /02/1963 1 6852

36


Pselliopus sp. F. Gallego A. Molina Colombia Huila Neiva /12/1953 2 6852

Pselliopus sp. F. Gallego A. Molina Colombia Antioquia Medellín /02/1947 1 6879

Pselliopus sp. R. Vanegas D. Forero Colombia AntioquiaSanta Fé de Antioquia

07/09/1997 1 7298

Pselliopus sp. M. Restrepo D. Forero Colombia Antioquia Betania 07/08/1997 1 7298

Pselliopus sp. R. Vélez D. Forero Colombia AntioquiaSanta Bárbara

01/07/1986 3 7298

Pselliopus sp. Villegas D. Forero Colombia Antioquia Medellín 15/07/1998 1 7298

Repipta sp. IND IND Colombia IND IND IND 1 5673

Repipta sp. R. Vélez A. Molina Colombia Antioquia Sopetrán /10/1971 2 2999

Repipta sp. A. Madrigal A. Molina Colombia Antioquia Apartadó /03/1981 2 2999

Repipta sp. G. Montoya A. Molina Colombia Chocó Riosucio /09/1984 1 2999

Repipta sp. W. Ocampo A. Molina Colombia Antioquia La Unión /10/1989 1 2999

Repipta taurus F. Gallego J. Maldonado ColombiaValle del Cauca

Puerto tejada

/07/1952 1 7057

Repipta taurus F. Gallego IND ColombiaValle del Cauca

Palmira /07/1952 1 3000


Buga /10/1943 1 3000


Palmira /03/1946 1 3000

Repipta taurus F. GallegoP. Wygodzinsky

ColombiaValle del Cauca

Palmira /06/1946 1 7058

Ricolla pallidinervis J. Maldonado J. Maldonado Venezuela Anaben Colombia 06/06/1950 1 7059

Ricolla pallidinervis F. Gallego Wygodzinsky Colombia SantanderPuerto Araujo

/09/1945 2 7059

Ricolla pallidinervis F. Gallego A. Molina Colombia Antioquia Medellín /06/1953 1 3003

Ricolla pallidinervis F. Gallego A. Molina Colombia Antioquia Medellín /07/1945 1 3003

Ricolla pallidinervis F. Gallego A. Molina Colombia Antioquia Dabeiba /02/1947 1 3003

Ricolla pallidinervis R. Vélez A. Molina Colombia Meta San Martín /12/1963 1 3003

Ricolla pallidinervis F. Gallego A. Molina Colombia Antioquia Mutatá /10/1947 3 3003

Ricolla pallidinervis F. Gallego A. Molina Colombia Antioquia Mutatá /09/1947 2 3003

Ricolla pallidinervis F. Gallego A. Molina Colombia Antioquia Turbo /08/1955 2 3003

Ricolla pallidinervis R. Vélez A. Molina Colombia ChocóBahia Solano

/12/1963 3 3003

37


Ricolla pallidinervis R. Vélez A. Molina Colombia ChocóBahia Solano

/12/1965 1 3003

Ricolla pallidinervis R. Vélez A. Molina Colombia Antioquia La Pintada /10/1971 1 3003

Ricolla pallidinervis R. Vélez A. Molina Colombia AntioquiaPuerto Valdibia

/01/1979 2 3003

Ricolla pallidinervis F. Gallego A. Molina Colombia Cundinamarca Quetame 10/194- 1 3003

Ricolla pallidinervis F. Gallego A. Molina Colombia Antioquia Medellín 10/194- 1 3003

Ricolla pallidinervis R. Vélez A. Molina Colombia Meta Granada /12/1963 1 3003

Ricolla pallidinervis C. Mantilla A. Molina Colombia Antioquia San Luis /09/1988 1 3003

Ricolla pallidinervis R. Vélez A. Molina Colombia Chocó Nuquí 26/05/1995 1 3003

Ricolla pallidinervis F. Gallego A. Molina Colombia Antioquia Caucasia /03/1951 1 3003

Ricolla pallidinervis F. Gallego A. Molina Colombia Antioquia San Andrés /05/1952 2 3003

Ricolla pallidinervis G. Morales A. Molina ColombiaValle del Cauca

Calima /09/1995 1 3003

Ricolla pallidinervis R. Vélez A. Molina Colombia Antioquia La Pintada /10/1971 1 3003

Ricolla pallidinervis R. Vélez A. Molina Colombia AntioquiaPuerto Valdivia

/01/1979 2 3003

Ricolla pallidinervis J. Montoya A. Molina Colombia AntioquiaPuerto Valdivia

/08/1982 2 3003

Ricolla pallidinervis F. Gallego A. Molina Colombia Antioquia Dabeiba /03/1947 1 3003

Ricolla pallidinervis R. Vélez A. Molina Colombia Antioquia Rio Claro /09/1988 1 3003

Ricolla pallidinervis A. Madrigal A. Molina Colombia Antioquia Tarazá /04/1971 1 3003

Ricolla pallidinervis A. Madrigal A. Molina Colombia Antioquia Cocorná /08/1981 1 3003

Ricolla pallidinervis R. Vélez A. Molina Colombia Meta Granada /12/1963 2 3003

Ricolla quadrispinosa

J. Maldonado J. Maldonado Venezuela AmazonasPuerto Ayacucho

12/03/1950 1 3004

Ricolla simillisima F. Gallego R. Sailer Colombia MagdalenaZona Bananera

/07/1943 1 1035

Ricolla simillisima F. Gallego R. Sailer Colombia Antioquia Venecia /04/1942 1 1052

Ricolla sp. A. Madrigal A. Molina Colombia Antioquia Urrao /10/1976 1 6899

Ricolla sp. J. Montoya A. Molina Colombia AntioquiaPuerto Valdivia

/08/1982 1 5699

Ricolla sp. F. Gallego A. Molina Colombia Antioquia Cáceres /10/1963 1 5699

Ricolla sp. R. Vélez A. Molina Colombia Córdoba Tres Palmas /09/1972 2 5699

Ricolla sp. R. Vélez A. Molina Colombia Antioquia Tarazá /07/1975 1 5694

38


Ricolla sp. G. Morales A. Molina Colombia AntioquiaSan Jerónimo

/03/1982 1 5694

Ricolla sp. R. Vélez A. Molina Colombia AntioquiaSanto Domingo

/07/1995 1 6898

Ricolla sp. R. Vélez A. Molina Colombia Antioquia Caldas 21/01/1989 1 5688

Ricolla sp. A. Madrigal A. Molina Colombia Antioquia Urrao /10/1976 1 6896


Ricolla sp. R. Vélez A. Molina Colombia Antioquia Turbo /07/1971 1 5700

Ricolla sp. R. Vélez A. Molina Colombia Antioquia Mutatá /02/1972 1 5700

Ricolla sp. F. Gallego A. Molina Colombia Antioquia Medellín /10/1945 1 5646

Ricolla sp. F. Gallego A. Molina Colombia Antioquia Turbo /09/1947 1 5646

Ricolla sp. F. Gallego A. Molina Colombia SantanderPuerto Araujo

/09/1945 1 5646

Ricolla sp. R. Vélez A. Molina Colombia Meta San Martín /10/1963 1 5646

Ricolla sp. F. Gallego A. Molina ColombiaValle del Cauca

Guacarí /07/1952 1 5646

Ricolla sp. L.Ortiz A. Molina Colombia Chocó Euriche /10/1979 1 5646

Ricolla sp. F. Gallego A. Molina Colombia Antioquia Turbo /11/1947 1 5646



Ricolla sp. A. Madrigal A. Molina Colombia Antioquia Tarazá /04/1971 2 5646

Ricolla sp. A. Madrigal A. Molina Colombia Córdoba Tres Palmas /07/1976 1 5646

Ricolla sp. A. Madrigal A. Molina Colombia Antioquia Tarazá /07/1975 1 5646

Ricolla sp. F. Gallego A. Molina Colombia Bolivar Pinillos /07/1946 1 5646

Ricolla sp. G. Morales D. Forero Colombia Antioquia San Luis /07/1983 2 7299

Ricolla sp. R. Vélez D. Forero Colombia Chocó Yuto /11/1983 2 7299

Ricolla sp. F. Serna D. Forero Colombia Chocó Quibdó /11/1983 1 7299

Ricolla sp. A.Saldarriaga D. Forero Colombia Chocó Tutunendo /11/1983 1 7299

Ricolla sp.A. Saldarriaga M. Restrepo

D. Forero Colombia Chocó Istmina /11/1983 1 7299

Ricolla sp.M. Delgado, Z. Gil

D. Forero Colombia Antioquia Porce /07/1997 1 7299

39


Ricolla sp. R. Vélez D. Forero Colombia Antioquia Rio Claro /05/1985 1 7299

Ricolla sp. R. Vélez D. Forero Colombia Antioquia San Luis /07/1983 4 7299

Ricolla sp. J. Hurtado D. Forero Colombia Antioquia Concepción /02/1997 1 7299

Ricolla sp. E. Vergara D. Forero Colombia Antioquia Medellín 05/09/1999 1 7299

Ricolla sp. A. Gutiérrez D. Forero Colombia AntioquiaSanta Fé de Antioquia

06/10/2000 1 7299

Ricolla sp.

A. Botero, A. Gutiérrez, L. Arias, J. Guevara

D. Forero Colombia AntioquiaSanta Fé de Antioquia

06/10/2000 2 7299

Ricolla sp. R. Vélez D. Forero Colombia AntioquiaSan Jerónimo

/08/1983 1 7285

Ricolla sp. G. Morales D. Forero Colombia Antioquia Río Claro /08/1988 1 6900

Ricolla sp. C. Madrigal A. Molina Colombia Antioquia Urrao /10/1976 1 6897

Ricolla sp. R. Vélez A. Molina Colombia Antioquia Mutatá /09/1992 1 5650

Ricolla sp. F. Gallego A. Molina Colombia Santander /09/1943 1 5652

Ricolla sp. F. Gallego A. Molina Colombia Antioquia Venecia /07/1943 1 5652

Sinea diadema J.M. J. Maldonado USA OhioHovking College

21/05/1953 1 3006

Sinea sp. F. Gallego A. Molina Colombia Antioquia Turbo 11/194- 14 3007

Sinea sp. R. Vélez A. Molina Colombia Antioquia Sopetrán /10/1971 1 3007

Sinea sp. A. Madrigal A. Molina Colombia Antioquia Sopetrán /05/1976 1 3007

Sinea sp. R. Vélez A. Molina Colombia Antioquia Támesis /06/1972 1 3007

Sinea sp. A. Madrigal A. Molina Colombia Córdoba Montería /09/1972 1 3007

Sinea sp. R. Vélez A. Molina Colombia Córdoba Montería /09/1972 1 3007

Sinea sp. R. Vélez A. Molina Colombia Antioquia Tarazá /06/1975 2 3007

Sinea sp. A. Vásquez A. Molina Colombia Sucre Tolú /12/1975 1 6880

Sinea sp. F. Gallego A. Molina Colombia Valle del Cauca

Palmira /09/1942 1 6880

Sinea sp. F. Serna A. Molina Colombia Guajira Uribia /09/1990 1 6881

Sinea sp.M. Delgado - Z. Gil


Sinea sp. F. GallegoP. Wygodzinsky

Colombia Antioquia Medellín /03/1953 1 7061

40


Sinea sp. J. Ramos D. Forero Colombia AntioquiaSanta Fé de Antioquia

/10/1987 1 7284

Zelus errans B. Losada IND ColombiaValle del Cauca

Palmira 25/06/1943 2 5674

Zelus longipes J. Maldonado J. Maldonado Venezuela AmazonasL. Tortuguero

20/11/1944 1 3015

Zelus longipes R. Vélez J. Herring Colombia Antioquia Caldas /09/1973 1 2590

Zelus longipes A. Unigarro A. Unigarro ColombiaValle del Cauca

Palmira /08/1956 12 5687

Zelus longipes M. Orellana D. Forero Colombia AntioquiaSanta Fé de Antioquia

/09/2000 1 7309

Zelus means R. Vélez J. Herring Colombia Antioquia Caldas /04/1973 1 2592

Zelus means R. Vélez IND Colombia Antioquia Barbosa /06/1980 3 6853

Zelus obscuridorsis F. GallegoP. Wygodzinsky

Colombia Valle del Cauca

Buga /09/1943 1 7062

Zelus obscuridorsis F. GallegoP. Wygodzinsky

Colombia Antioquia Medellín /10/1945 1 7062

Zelus obscuridorsis R. Vélez A. Molina Colombia Antioquia Sopetrán /10/1971 1 3017

Zelus obscuridorsis A. Madrigal A. Molina Colombia Antioquia Urrao /10/1976 3 3017

Zelus obscuridorsis R. Vélez A. Molina Colombia Córdoba Tres Palmas /09/1972 1 3017

Zelus obscuridorsis F. Gallego A. Molina Colombia Antioquia Medellín /09/1945 1 3017

Zelus obscuridorsis F. Gallego A. Molina Colombia Antioquia El Retiro /11/1945 1 3017

Zelus obscuridorsis R. Vélez A. Molina Colombia Antioquia Tarazá /07/1975 2 3017

Zelus obscuridorsis F. Gallego A. Molina Colombia Valle del Cauca

Palmira /06/1946 1 3017

Zelus obscuridorsis F.Serna A. Molina Colombia AntioquiaSanta Fé de Antioquia

/09/1985 1 3017

Zelus obscuridorsis F. Gallego A. Molina Colombia Antioquia Medellín /02/1946 1 3017

Zelus obscuridorsis R. Vélez A. Molina Colombia Antioquia Sopetrán /05/1972 1 3017

Zelus obscuridorsis A. Madrigal A. Molina Colombia Antioquia Tres Palmas /07/1976 1 3017

Zelus obscuridorsis F. Gallego A. Molina Colombia SantanderPuerto Araujo

/08/1945 2 3017

Zelus obscuridorsis F. Gallego A. Molina Colombia SantanderPuerto Araujo

/09/1945 1 3017



41


Zelus obscuridorsis F. Gallego A. Molina Colombia Valle del Cauca

Palmira /07/1952 1 3017

Zelus obscuridorsis A. Madrigal A. Molina Colombia Antioquia Urrao /06/1991 1 3017

Zelus rubidus F. Gallego IND Colombia Valle del Cauca

Palmira /07/1952 3 6854


Palmira /10/1956 2 6854

Zelus rubidus R. Vélez IND Colombia Valle del Cauca

Palmira /11/1976 2 6854


Palmira /05/1946 1 6854


Palmira /04/1956 1 6854

Zelus rubidus F. Gallego IND Colombia Antioquia Medellín /07/1945 1 6854


Cartago /12/1941 1 6854

Zelus rubidus F. Gallego IND Colombia AntioquiaSan José del Nus

/12/1943 1 6854

Zelus rubidus F. Gallego IND Colombia AntioquiaSanta Bárbara

/03/1946 1 6854

Zelus rubidus F. Gallego IND Colombia Tolima Santa Isabel /12/1952 1 6854

Zelus rubidus F. Gallego IND Colombia Antioquia Rionegro 09/194- 1 6854


Buga /09/1943 1 6854


Buga /11/1943 2 6854

Zelus rubidus F. Gallego IND Colombia Antioquia San Vicente /06/1942 1 6854

Zelus rubidus F. Gallego H. Barber Colombia Antioquia Medellín /11/1937 1 304

Zelus rubidus F. Gallego H. Barber Colombia Valle del Cauca

Palmira /11/1937 2 304

Zelus ruficeps F. Gallego H. Barber Colombia Antioquia Medellín /12/1940 1 797

Zelus sp. F. Gallego D. Forero Colombia Caldas Manizales /01/1946 2 5671

Zelus sp. F. Gallego D. Forero Colombia Antioquia Medellín /07/1941 1 2987

Zelus sp. N. Delgado D. Forero ColombiaValle del Cauca

Palmira /05/1956 2 2987

Zelus sp. H. Arroyave D. Forero Colombia AntioquiaSanta Bárbara

17/02/1991 1 2987


Zelus sp. F. Otoya IND Colombia Cundinamarca Anolaima /05/1941 1 5675

42


Zelus sp. A. Toro IND Colombia Antioquia Támesis /12/1981 1 2675

Zelus sp. R. Vélez IND Colombia Antioquia Río Claro /09/1988 2 2675

Zelus sp. F. Gallego IND Colombia Antioquia Villa Arteaga /11/1947 1 2675

Zelus sp. R. Vélez A. Molina Colombia Sucre Sn Pedro /08/1997 8 2681

Zelus sp. F. Gallego A. Molina Colombia SantanderPuerto Araujo

/08/1945 2 2681

Zelus sp. F. Gallego A. Molina Colombia Antioquia Turbo 11/194- 1 2681

Zelus sp. Muñoz A. Molina Colombia Valle del Cauca

/12/1981 1 2681

Zelus sp. N. Delgado A. Molina Colombia Valle del Cauca

Palmira /07/1956 2 2681

Zelus sp. S. Torres A. Molina Colombia Antioquia La Estrella /03/1990 1 2681

Zelus sp. H. Arroyave A. Molina Colombia AntioquiaSanta Bárbara

/09/1990 2 2681

Zelus sp. F. Gallego A. Molina Colombia Costa Atlántica

IND /08/1943 1 2681

Zelus sp. R. Vélez A. Molina Colombia Antioquia Titiribí /06/1972 1 2681

Zelus sp. N. Delgado A. Molina Colombia Valle del Cauca

Palmira /06/1956 1 2681

Zelus sp. F. Gallego A. Molina Colombia Valle del Cauca

Palmira /07/1952 1 2681

Zelus sp. F. Gallego IND Colombia Antioquia Caldas /08/1946 1 2680

Zelus sp. R. Vélez J. Herring Colombia Antioquia Caldas /08/1963 2 2595

Zelus sp. F. Gallego IND Colombia Antioquia Medellín /07/1946 1 6855



Zelus sp. R. Vélez A. Molina Colombia Antioquia Sopetrán /09/1971 1 6856

Zelus sp. F. Gallego A. Molina Colombia Antioquia El Retiro 10/194- 1 5685

Zelus sp. A. Madrigal A. Molina Colombia Antioquia Granada /06/1992 1 6895

Zelus sp. N. Delgado A. Molina Colombia Antioquia La Ceja /06/1953 6 6895

Zelus sp. R. Vélez A. Molina Colombia Antioquia Jardín /02/1980 1 5653

Zelus sp. F. Gallego A. Molina Colombia AntioquiaSanta Bárbara

/04/1946 1 5653

43


Zelus sp. H. Arroyave A. Molina Colombia AntioquiaSanta Bárbara

03/09/1990 1 5695

Zelus sp. N. Delgado A. Molina ColombiaValle del Cauca

Palmira /06/1956 1 5695

Zelus sp. R. Vélez A. Molina Colombia Antioquia Jardín /02/1980 1 5680

Zelus sp. M. Ballen A. Molina Colombia Antioquia San Pedro /11/1980 1 5651

Zelus sp. F. Gallego A. Molina Colombia Antioquia Cocorná /09/1946 1 5686

Zelus sp. E. Vergara A. Molina Colombia Antioquia Titiribí /06/1972 1 5686

Zelus sp. R. Bernal A. Molina Colombia Chocó Ichó /07/1981 1 5696

Zelus sp. F. Gallego D. Forero Colombia Cundinamarca Quetame 08/194- 1 7300

Zelus sp. R. Vanegas D. Forero Colombia Antioquia Chigorodó /07/1997 1 7304

Zelus sp. F. Gallego R. Sailer Colombia Antioquia Medellín /12/1942 1 1048

Zelus sp. F. Gallego D. Forero Colombia Magdalena Sevilla /07/1942 1 7305

Zelus sp. G. García D. Forero Colombia Risaralda Arabia /01/1986 1 7303

Zelus sp. A. Vallejo D. Forero Colombia AntioquiaSan Jerónimo

/04/1986 1 7303

Zelus sp. F. Gallego D. Forero Colombia Antioquia Fredonia /07/1943 1 1053


Zelus sp. F. Gallego D. Forero ColombiaValle del Cauca

Buga /11/1943 1 1053

Zelus sp. R. Vélez D. Forero Colombia Antioquia Sopetrán /09/1971 1 7301

Zelus sp. R. Vélez D. Forero Colombia Antioquia Sopetrán /03/1988 1 7301

Zelus sp. G. Abril D. Forero Colombia Antioquia Sopetrán /10/1986 1 7302

Zelus sp. G. García D. Forero Colombia Risaralda Arabia /01/1986 1 7302

Zelus sp. M. Restrepo D. Forero Colombia Antioquia Támesis /09/1984 1 7302

Zelus sp.F. Serna, J. Hurtado

D. Forero Colombia Antioquia Concepción /02/1997 1 7306

Zelus sp. R. Vélez D. Forero Colombia Antioquia Barbosa /06/1980 4 7307

Zelus sp. S. Jaramillo D. Forero Colombia Antioquia Andes 24/09/2000 1 7308

Zelus vespiformis E. Urueta D. Forero Colombia Antioquia Chigorodó 02/03/1972 1 5658

44


Zelus vespiformis A. Arango D. Forero Colombia AntioquiaSanta Bárbara

/03/1990 2 6845

Zelus vespiformis N. Delgado D. Forero ColombiaValle del Cauca

Palmira /06/1956 3 6845


Palmira /07/1956 1 6845


Palmira /05/1956 2 6845

Zelus vespiformis F. Gallego D. Forero Colombia AntioquiaOccidente Antioqueño

/05/1947 1 6845

Zelus vespiformis F. Gallego D. Forero ColombiaCosta Atlántica

IND /09/1943 1 6845

Zelus vespiformis F. Gallego D. Forero ColombiaValle del Cauca

Buga /09/1943 1 6845

Zelus vespiformis F. Gallego D. Forero Colombia Boyacá Zetaquirá /02/1944 1 6845

Zelus vespiformis F. Gallego D. Forero ColombiaValle del Cauca

Cali /10/1963 1 6845

Zelus vespiformis D. Muñoz D. Forero Colombia AntioquiaSanta Fé de Antioquia

/10/1989 1 6845

45


Notas del MEFLG

Continuación del Proyecto WikInsecta

Desde comienzos del 2010, el MEFLG participa junto con Cenicafé, con financiación de RENATA, en el desarrollo de una Wiki sobre insectos de importancia en agricultura y salud pública en Colombiay sus enemigos naturales. Este proyecto presentará sus resultados en el Congreso de la Sociedad Colombiana de Entomología en Manizales, 2011.

Visitas guiadas en el MEFLG

Extensión académica, orientación a estudiantes de Tecnología Agropecuaria del Servicio Nacional de Aprendizaje SENA Seccional Urabá, por petición del profesor William Darío López Tamayo.

Extensión académica, charla sobre “Manejo Integrado de Plagas en Granos Almacenados” estudiantes de Ingeniería Agropecuaria de la Universidad de Antioquia, Sede Oriente, por petición del profesor José Alejandro Rodas Cadavid.

Identificaciones

Servicio de identificación de insectos para el trabajo de grado titulado “Incidencia de plagas y enfermedades en un cultivo de pepino (Cucumis sativus) bajo un sistema aeropónico”, a cargo de la estudiante de Ingeniería Agronómica Adriana Carpio Londoño, dirigido por el profesor Juan Gonzalo Morales.

Servicio de Identificación de insectos para el trabajo de grado titulado “Reconocimiento de la artropofauna asociada al cultivo de Jatropha curcas en el municipio de Santa Fé de Antioquia (Antioquia)” a cargo de los estudiantes de Ingeniería Agronómica Manyer Ana Luisa Carmona Maya y Norman Correa Z. dirigido por el profesor Francisco Cristóbal Yepes.

46


Identificación de ejemplares de esca-rabajos tigre (Coleoptera: Cicindelidae) correspondientes a la tesis realizada por el estudiante Deivys Moisés Álvarez de la Universidad de Sucre.

Servicio de identificación de insectos para el trabajo de grado titulado “Estu-dio sobre la mosca (Díptera: Lonchaei-dae) de la gulupa Passiflora edulis edu-lis en el municipio de Jardín, Antioquia”, a cargo de la estudiante de Ingeniería Agronómica Claudia Patricia Uribe Co-rrea, dirigido por el profesor Francisco Cristóbal Yepes.

Donaciones hechas por el MEFLG

Donación de 18 escolitinos pertenecien-tes a 9 géneros de la tesis: Scolytinae, (Coleóptera: Curculionidae) asociados a las maderas de Jacaranda copaia (Big-noniaceae) y Cedrela odorata (Melia-ceae), realizada por el estudiante Jhon Alexander Pulgarín, al Museo Entomoló-gico del Centro de Investigación del Café (Cenicafé).

Visitas realizadas al MEFLG

Revisión de las familias Tenuchidae y Sphyngidae (Lepidoptera) por el doctor Fernando Hernández Baz de la Universi-dad Veracruzana de México.

Eventos

Entre el 2 y el 27 de Mayo del 2011 se realizaran varias actividades para con-memorar el día Internacional de los Museos en el Espacio del Hombre en la Biblioteca Efe Gómez de la Universidad Nacional de Colombia sede Medellín.

Documents

BOLETIN DEL MUSEO ENTOMOLÓGICO · 2011-06-28 · (McMahan 1982, 1983), or millipedes in Ectrichodiinae (Miller 1953, Carpintero and Maldonado 1996). The morphological diversity exhibited