Upload
vandien
View
222
Download
0
Embed Size (px)
Citation preview
Mechanisms of blood vessels formation
Formation of bloodvessels de novo
Incorporation to pre-existingvessels
paracrine stimulationof endothelial cells(VEGF, bFGF, IL-8…)
Carmeliet P. Nat Med, 2000
Liu & Velazquez. Antioxid Redox Signal 2008
Mobilizacja EPC ze szpiku
- EPC: komórki progenitorowe śródbłonka- VEGF: vascular endothelial growth factor- MMP-9: matrix metalloproteinase-9- eNOS: endothelial nitric oxide synthase
SDF-1
EPC
EPC
Liu & Velazquez. Antioxid Redox Signal 2008
Regulacja mobilizacji EPC w hipoksji
- W cukrzycy zmniejszony jest poziom fosforylacji eNOS przez kinazy PI3K/Akt, przez co zmniejsza się produkcja NO.
- Nasilony stres oksydacyjny i zwiększona produkcja anionorodnika ponadtlenkowego prowadzi do nasilonej syntezy nadtlenoazotynu (ONOO-) i zmniejszenia dostępności NO.
- W ranach cukrzycowych osłabiona jest synteza SDF-1, co zmniejsza napływ komórek progenitorowych do uszkodzonych tkanek. To przyczynia się do upośledzenia angiogenezy i opóźnia gojenie.
- Cukrzyca powoduje również zmniejszenie liczby EPC w szpiku.
WT db/db
Endothelial progenitor cells
WT
db/db
EPC
wt db0.0000
0.0001
0.0002
0.0003
0.0004
0.0005
0.0006
0.0007
*
% k
omór
ekPeripheral blood
CD45(-), Sca-1(+), KDR(+)
% of
cel
ls
Kotlinowski et al. In preparation; Grochot-Przeczek et al. PLoS One 2009
db/db WT
Day 1
Day 3
Day 8
Day 17
Day 0
Wounded skin
Proangiogenic progenitor cells%
of c
ells
Num
ber
of c
ells
Num
ber
of c
onne
ctio
ns
Tota
l len
gth
of s
prou
ts
proliferation migration tube formation
control diabeticN
umbe
rof
con
nect
ions
paracrine angiogenicactivity
emptymedium
growthymedium
WT db/db
spheroid outgrowthtube formationmigration
control db/dbdb/db
Kotlinowski et al., in preparation
spheroid outgrowth
control control db/db
Normal and diabetic PPC in vascular reendothelialization
Caballeroet al. Diabetes 2007
healthy micehealthy huPPC
Homing intoarea of injury
healthy micedb huPPC
Odtwarzanie krążenia w mięśniu myszy z cukrzycą
Ebrahimian et al. Am J Pathol 2006
diabetes diabetes + NAC
diabetes + NAC diabetes
NAC - N-acetylocyteina
Aktywność oksygenaz hemowych
oksygenaza hemowa
Ferritin
uszkodzenie tkanek
białkahemowe
Fe2+uszkodzenie tkanek
bilirubina ochronabiliwerdyna
CO
ochrona
rozpuszczalna cylazaguanylanowa
cGMPGTP
pompa żelazowa
ochrona
Hem
ochronap38
BvR
Skutki braku HO-1 u myszyNa istotność HO-1 wskazuję skutki jej braku u myszy: zwiększona peroksydacja lipidów, uszkodzenie śródbłonka i wątroby, niedorozwój gonad, niepłodność, przedwczesna śmierć.
- Fibroblasty myszy HO-1-/- są bardzo wrażliwe na stres oksydacyjny.
After Poss & Tonegawa, PNAS 1997.
0
100
200
300
400
HO-1+/+
Enhanced free radicals production by murine HO-1-/- fibroblasts
% F
luor
esce
neof
unt
reat
ed c
ells
cells treated with 50 M hemin for 24 h
0
20
40
60
80
100
Reduced survival of murine HO-1-/- fibroblasts
cells treated with 100 M hemin for 24 h
% S
urvi
val
HO-1-/- HO-1+/+ HO-1-/-
*
*
Yet et al. FASEB J. 2003.
Brak HO-1 nasila tworzenie blaszek miażdżycowych
lesion
lesion
lipid accumulations
Yet et al. FASEB J. 2003.
Brak HO-1 u człowiekaU dwóch znanych pacjentów pozbawionych HO-1:
* obecność wysoce oksydowanych lipoprotein niskiej gęstości (LDL) we krwi
* bardzo duża wrażliwość komórek śródbłonka na uszkodzenia
Nasilające się reakcje zapalne i ciągły stres oksydacyjny prowadzą do:
* poważnych uszkodzeń śródbłonka
* tworzenie nacieków tłuszczowych i blaszek miażdżycowych w tętnicach
Nadekspresja HO-1 zwiększa syntezę VEGF poprzez aktywację promotora
(komórki HMEC-1 transfekowane przejściowo pcDNA-HO1)
Jozkowicz et al. Antioxidant Redox Signal 2003
VEG
F [%
of
cont
rol]
0
50
100
150
200
250
300
*
VEGF protein
control b-gal HO-10
0.3
0.6
0.9
1.2
1.5
VEG
F/G
APD
H r
atio
*
VEGF mRNA
control b-gal HO-1
Lum
ines
cenc
e[%
of
cont
rol]
0
100
200
300
400
b-gal HO-1
*
VEGF promoter activity
pGL2-VEGF
Józkowicz et al. Antioxid Redox Signal 2003, 2007
0
50
100
150
200
250
300
VEGFbgal cDNA CORM
cum
ulat
ive
leng
thof
spr
outs
[% o
f re
fere
nce]
* *
VEGFHO-1 cDNA
VEGF VEGF
HO-1
CO
cGMP
p38
PKG CREB
PKA
AP-1AP-1
PI3K Akt
VEGF HO-1 cDNA
gal cDNA
VEGF +
VEGF + VEGF + CORM
Nadekspresja HO-1 lub podanie CO ułatwia tworzenie kapilar
Grochot-Przeczek et al., under revision.
Wpływ braku HO-1 na proliferację EPC[PCNA staining]
EPC WT EPC KOVEGF VEGFcontrol control
**
0
20
40
60
80
100
Control
% o
f po
siti
vece
lls WTKO
VEGF30 ng/ml
Lectin
AcLDL
KO control KO VEGF
WT control WT VEGF
**
Grochot-Przeczek, under revision, Deshane et al. J Exp Med, 2007
WT
KO
WT
KO
0
10
20
30
40
50
num
ber
of c
ells
control SDF-1 CM
**
*
control SDF-1 CM
HO-1 ułatwia migrację EPC
Control H2O2 50 uM
Ann
exin
V po
siti
vece
lls[%
of
cont
rol]
*
** #
0
100
200
300
400
500
600
700
800
900 HO-1 +/+
HO-1 -/-
Wpływ braku HO-1 na wrażliwość EPC na stres oksydacyjny
Grochot-Przeczek et al., under revision.
Apoptosis[Annexin V staining]
HO-1+/+
Rh-agglutinin Merged PKH 67
Deshane et al. J Exp Med, 2007
HO-1-/-
Rh-agglutinin Merged PKH 67
Wpływ braku HO-1 na aktywność EPC
Taha et al. ATVB, 2010
HO-1 efficacy is variable in human population because of (GT)n promoter polymorphism
(GT)n
Exon 10
0.05
0.1
0.15
0.2
0.25
0.3
21 22 23 24 25 26 27 28 29 30 31 32 33 34 35 36 37 38
alle
le f
requ
ency
number of GT repeats
S M L
Promoter polymorphism and HO-1 expression
Taha et al., ATVB 2010.
*
***
0
0.004
0.008
0.012
S M L
0
0.06
0.12
0.18
S M L
**
***
control
H2O2
0
0.2
0.4
0.6
S M L
CoPP
***
00.40.81.21.6
S MHem
eox
ygen
ase-
1 m
RNA
expr
essi
on(H
O-1
/EF2
)
15d-PGJ2
***
L
H2O2 [uM]control 100 200 400 800
***
*** *** ***
*******
*
0
20
40
60
80
100
120
MTT
[%
of
cont
rol]
S M L
*
0
5
10
15
20
25
S M L
GSH
: G
SSG
[nm
ol/m
g]
GSH : GSSG
viability
***
**
0
100
200
300
400Br
dUre
duct
ion
[% o
f co
ntro
l]
S M Lcontrol
Wpływ polimorfizmu HO-1 na proliferację śródbłonka
VEGF
Taha et al. ATVB 2010.
[ELISA]
IL-1
#
#
*
*
0
50
100
150
200
250
S M L
IL-1β
[pg/
ml]
Allele
#
#
Control
LPS
Wpływ polimorfizmu promotora na reakcję zapalną
Taha et al. ATVB 2010.
Oksygenaza hemowa-1
Skutki indukcji HO-1:
• Cytoprotekcja (oporność na stres oksydacyjny)
• Immunomodulacja(zahamowanie zapalenia, regulacja komórek Treg)
• Modulacja angiogenezy
heme
HGF
inflammatorycytokines
oxidants hypoxia
irradiation
chemo-therapy
after Otterbein et al. 2003
heme
Berberat et al. Clin Cancer Res 2005
Ekspresja HO-1 w liniach raka trzustki
Panc-1 MIAPaCa Colo 357 SU.86.86
Red - PCNA Blue - DAPI Green - lectin
Waś et al. Free Radicals Biol Med. 2011
Dwuetapowy model karcinogenezy chemicznej
10 20 300
100100
125
150
* * * * * ** ***** *
Time [weeks]
Wei
ght
incr
ease
[%] +/+
+/--/-
HO-1 +/+ HO-1 -/+ HO-1 -/-
10 20 300
25
50
75
100
w 4 w 6
w17 w 26 w 27
Time [weeks]
Mic
e w
ith
tum
ors[
%]
+/++/--/-
10 20 300
25
50
75
100
Time [weeks]
Surv
ival
[%]
+/++/--/-
Dwuetapowy model karcinogenezy chemicznej
Waś et al. Free Radicals Biol Med. 2011
papilloma
carcinoma
papilloma
carcinoma
HO-1 +/+
HO-1 -/+
HO-1 -/-
Dwuetapowy model karcinogenezy chemicznej
Waś et al. Free Radicals Biol Med. 2011
Was et al. Am J Pathol 2006, Was et al. in preparation
HO-1 overexpression in B16(F10) melanoma cellsmRNA
0
40
80
120
0 25 50 100 200 400 800
% o
f liv
ing
cells
H2O2 [M]
HO-1
control
-gal
* **
*
viability
Endothelial cells incubated in conditioned media
0
0.1
0.2
0.3
0.4
0.5
0.6
control
Prol
ifer
atio
n[O
D] proliferation*
H2O2[50 M]
*
#
0
20
40
60
80
0 1 2 3weeks after injection
numberofmetastases WT
HO-1
p=0.054
*
*
HO-1 zwiększa liczbęprzerzutów w płucach
Waś et al. Am J Pathol, 2006.
*
*
Wpływ HO-1 na przerzutowanie czerniaka
Day of experiment
0
20
40
60
80
10 20 30 40 50
Surv
ival
rate
[%]
WT
HO-1
100
P=0.017
Waś et al. Am J Pathol, 2006.
Wpływ nadekspresji HO-1 w komórkach czerniaka na przeżywalność myszy
HO-1 increases metastatic potential of melanomas
Was et al. in preparation
0
100
200
Mig
rati
on[%
of
cont
rol]
control
*
HO-1
Migration
0
100
200
Inva
sion
[% o
f co
ntro
l]
*
control HO-1
Invasion
control HO-1
0
0.002
0.004
0.006
0.008
0.01
0.012
control HO-1
mel
anin
[m
g/1x
106
cells
]
melanin content
HO-1 and melanogenesis
TYRP-1
TRP-
1/EF
2
0.0
1.0
2.0
3.0
4.0
Normoxia Hypoxia
B16(F10)-luc-GFP
B16(F10)-luc-GFP-HO1
Tyrosinase
Tyrosinase TYRP1
TYRP2
TYRP-2
0.0
2.0
4.0
6.0
8.0
TYRP
-2/E
F2
Normoxia Hypoxia
*#
0.0
0.1
0.2
0.3
Normoxia
Tyro
sina
se/E
F2
Hypoxia
* #
Tyrosinase
Was et al. in preparation
0
400
800
1200
1600
2000
Normoxia Hypoxia
NO
DA
L/EF
2
NODAL
ROS and melanogenesis
0
10
20
30
40
50
60
control controlNAC
HO-1 HO-1NAC
RLU
/g
prot
ein
*
Effect of HO-1 on ROS production Effect of H2O2 on melanin content
Mel
anin
[m
g/10
6ce
lls]
0
0.002
0.004
0.006
0.008
control 0.5 5.0H2O2 [M]
*
*
Effect of NAC on melanin content
0
0.002
0.004
0.006
0.008
0.01
0.012
control 1.0 5.0NAC [mM]
Mel
anin
[m
g/10
6ce
lls] ctrl
NAC-1NAC-5
*
*
0
20
40
60
80
100
control 1 5NAC [mM]
Tyr/
EF2
Effect of NAC on tyrosinase expression
*
Was et al. in preparation
ROS and melanogenesis
0
10
20
30
40
50
60
control controlNAC
HO-1 HO-1NAC
RLU
/g
prot
ein
*
Effect of HO-1 on ROS production Effect of H2O2 on melanin content
Mel
anin
[m
g/10
6ce
lls]
0
0.002
0.004
0.006
0.008
control 0.5 5.0H2O2 [M]
*
*
Effect of NAC on melanin content
0
0.002
0.004
0.006
0.008
0.01
0.012
control 1.0 5.0NAC [mM]
Mel
anin
[m
g/10
6ce
lls] ctrl
NAC-1NAC-5
*
*
0
20
40
60
80
100
control 1 5NAC [mM]
Tyr/
EF2
Effect of NAC on tyrosinase expression
*
Was et al. in preparation
HO-1 may promote progression of melanoma throughincreased cell survival and proliferation under oxidativestress, increased angiogenesis, and by formation of less mature and more invasive cells, what can be associated withreduced production of ROS.
Kozakowska et al. Antioxid Redox Signal 2012
Effect of HO-1 on viability and proliferation of C2C12 cells
HO
-1/E
F2
*
Tubulin
HO-1
0
3
6
9
12
WT Luc-GFP Luc-GFP-HO1
Luc-GFP Luc-GFP-HO1WT
HO-1DAPI
NCHO-1
Luc-GFP-HO1
*
0
300
600
900
1200
HO
-1 a
ctiv
ity
[% o
f co
ntro
l]
Luc-GFPWT Luc-GFP-HO1
*
+NAC
*
0
40000
80000
120000
**
Luc-GFP Luc-GFPHO-1
fluo
resc
ence
[AU
]
+NAC
LDH
rel
ease
[% o
f co
ntro
l]
* #
#
0
200
400
600
800
0.5 1.0 2.0
Luc-GFP
Luc-GFP-HO1
H2O2 [mmol/L]
0
40
80
120
PCN
A p
osit
ive
cells
[%]
Luc-GFP Luc-GFP-HO1
*
ROS
mortality
proliferation
HO-1 overexpression and survival of C2C12 cellsinjected intramuscularly into SCID mice
C2C12-Luc-GFP
day 2
day 11
day 22
C2C12-Luc-GFP-HO1
Kozakowska et al. Antioxid Redox Signal 2012
HO-1 overexpression and survival of C2C12 cellsinjected intramuscularly into SCID mice
*
*
0
4000000
8000000
12000000
16000000
20000000
0 2 11 22
tota
lluc
ifer
ase
acti
vity
[RLU
]
Luc-GFP
Luc-GFP-HO1
days after transplantation
Muscles *
0
1000000
2000000
3000000
4000000
Luc-GFP
Luci
fera
seac
tivi
ty[R
LU/m
g of
pro
tein
]
Luc-GFP-HO1
Lungs
0
4
8
12
16
20
Luc-GFP
*
Luc-GFP-HO1
Luci
fera
seac
tivi
ty[R
LU/m
g of
pro
tein
]
Kozakowska et al. Antioxid Redox Signal 2012
HO-1 overexpression and growth of C2C12 cellsinjected intramuscularly into SCID mice
**
0
2
4
6
8
10
GFP-Luc
Num
ber
of m
itos
es/f
ield day 11
day 22
GFP-Luc-HO1
Luc-GFP-HO1
Luc-GFP day 22
day 11 day 22
day 11
mitotic index
PCNA staining
H&E staining
Kozakowska et al. Antioxid Redox Signal 2012
GFP staining
Luc-GFP
HO-1 overexpression and growth of C2C12 cellsinjected intramuscularly into SCID mice
negative control
Luc-GFP-HO1
Kozakowska et al. Antioxid Redox Signal 2012
Expression of HO-1, SDF-1, MyoD and myogenin inC2C12 cells injected intramuscularly into SCID mice
HO-1 *
0
0.04
0.08
0.12
0.16
0.2
GFP-Luc
HO
-1/E
F2
GFP-Luc-HO1
*
0
0.01
0.02
0.03
0.04
SDF-
1/EF
2
GFP-Luc GFP-Luc-HO1
*
0
0.01
0.02
0.03
0.04
Myo
D/E
F2
GFP-Luc GFP-Luc-HO10
0.01
0.02
Myo
geni
n/EF
2
GFP-Luc GFP-Luc-HO1
SDF-1
MyoD Myogenin
Kozakowska et al. Antioxid Redox Signal 2012
HO-1 overexpression reduces formation of myotubes by C2C12 cells
Confluent C2C12 cells, cultured for 5 days in 10% FBS (control medium)
Confluent C2C12 cells, cultured for 5 days in 2% Horse Serum (differentation medium)
C2C12 WT
C2C12 WT
C2C12-Luc-GFP
C2C12-Luc-GFP
C2C12-Luc-GFP-HO1
C2C12-Luc-GFP-HO1
Kozakowska et al. Antioxid Redox Signal 2012
HO-1 inhibits myoblast differentiation
#
0
0.02
0.04
0.06
GFP-Luc GFP-Luc-HO1
Mef
2/EF
2
Mef2 #
0
0.01
0.02
0.03
0.04
Myf
5/EF
2
GFP-Luc GFP-Luc-HO1
Myf5
#
0
0.02
0.04
0.06
Myo
D/E
F2
*#
GFP-Luc GFP-Luc-HO1*
MyoD
*
0
0.0001
0.0002
0.0003
0.0004
Myf
6/EF
2
GFP-Luc GFP-Luc-HO1
Myf6
#
*#0
0.1
0.2
0.3
Myo
geni
n/EF
2
GFP-Luc GFP-Luc-HO1
myogenin
00.0001
0.0002
0.0003
0.0004
MH
C/EF
2
0.0005 #
* *#
GFP-Luc GFP-Luc-HO1
MHC
Growthmedium
Differentiationmedium
MyoD myogenin Myf6
Myf5Myf6
CPK, MHCMef2
Kozakowska et al. Antioxid Redox Signal 2012
Effect of HO-1 on DGCR8
Luc-GFPLuc-GFP-HO-1
DGCR8
tubulin
Kozakowska et al. Antioxid Redox Signal 2012
Effect of HO-1 on pre-miRNA and miRNA pool
18% miRNA differentially expressed
Kozakowska et al. Antioxid Redox Signal 2012
Effect of HO-1 on myomirs
0
2
4
6
Luc-GFP Luc-GFP-HO1
#
* *
miR
-1/U
6
#
* *0
0.002
0.004
0.006
Luc-GFP Luc-GFP-HO1
miR
-133
a/U
6
0
2
4
6
miR
-133
b/U
6
#
* *
Luc-GFP Luc-GFP-HO10
10
20
30
miR
-206
/U6
Luc-GFP Luc-GFP-HO1
#
* *
miR-1 miR-133a
miR-133b miR-206
Growth mediumDifferentiation medium
Kozakowska et al. Antioxid Redox Signal 2012
Myoblast differentation depends on myomiRs
*#
0
0.2
0.4
0.6
0.8
1
Luc-GFP HO-1 miR-133b miR-206 scRNA
Myo
D/E
F2
*
*
*#
0
0.2
0.4
0.6
0.8
1
1.2
myo
geni
n/EF
2
A
Luc-GFP miR-133b miR-206 scRNA
B
*
*#*#
0
0.001
0.002
0.003
0.004
0.005
myo
sin/
EF2
Luc-GFP miR-133b miR-206 scRNA
C
*#
HO-1
HO-1
Growth mediumDifferentiation medium
Kozakowska et al. Antioxid Redox Signal 2012
Effect of HO-1 is mimicked by SDF-1 but not by NAC
SDF-1
0
0.010.020.030.040.050.06
SDF-
1/EF
2
GFP-Luc GFP-Luc-HO1
0
0.1
0.2
0.3
0.4
0.5
Myo
geni
n/EF
2M
yoD
/EF2
##
*0
0.01
0.02
0.03
0.04
0.05
Luc-GFP Luc-GFP-HO1
Luc-GFP+ NAC
Growth medium
Luc-GFP Luc-GFP-HO1
Luc-GFP+ NAC
# #
*
Differentiation medium
MyoD
myogenin
Kozakowska et al. Antioxid Redox Signal 2012
HO-1 activity reduces formation of myotubes by C2C12 cells
Staining for myosin
Kozakowska et al. Antioxid Redox Signal 2012
Myoblast differentation is inhibited by HO-1 products
#
##
0
0.02
0.04
0.06
0.08
Luc-GFP CoPP bilirubin biliverdin FeCl3 iCORM CORM
Myo
D/E
F2
# #
0
0.04
0.08
0.12
0.16
myo
geni
n/EF
2
Luc-GFP CoPP bilirubin biliverdin FeCl3 iCORM CORM
Luc-GFP CoPP bilirubin biliverdin FeCl3 iCORM CORM
#
#
#
0
0.0005
0.001
0.0015
0.002
MH
C/EF
2
Growthmedium
Differentiationmedium
MyoD
myogenin
MHC
Kozakowska et al. Antioxid Redox Signal 2012
HO-1 influences cGMP and p38 kinase
Luc-GFPHO-1
Luc-GFPctrl
Luc-GFPCORM
Luc-GFPiCORM
phospho-p38
total-p38
Activity of p38 kinase
MyoD
0,0000
0,0020
0,0040
0,0060
0,0080
0,0100
Luc-GFP Luc-GFP-HO-1
Luc-GFP-HO-1 + ODQ
Myo
D/E
F2
0,0000
0,0500
0,1000
0,1500
0,2000
0,2500
Mygenin/EF2
Myogenin
Luc-GFP Luc-GFP-HO-1
Luc-GFP-HO-1 + ODQ
MHC
0,0000
0,0010
0,0020
0,0030
Luc-GFP Luc-GFP-HO-1
Luc-GFP-HO-1 + ODQ
MHC/EF2
No effect of cGMP
Kozakowska et al. Antioxid Redox Signal 2012
HO-1 inhibitis c/EBPTranslocation of c/EBP
c/EBP binding to myoD promoter
c/EBPoverexpression
miR-206/U6
Kozakowska et al. Antioxid Redox Signal 2012