ASPEK BIOLOGI, PEMROSESAN DAN APLIKASI KLINIS SEL PUNCA

MESENKIMAL

STEMCELLSANDTISSUEENGINEERINGRESEARCHCENTER IndonesianMedicalEducationandResearchInstitute(IMERI)

FakultasKedokteranUniversitasIndonesiaRSUPNDr.CiptoMangunkusumo

1

2

3

4

Aspek Biologi, Pemrosesan dan Aplikasi Klinis Sel Punca Mesenkimal

Penyusun:

Prof. dr. Jeanne Adiwinata Pawitan, MS, PhD Ria Anggraeni, SSi dr. Gita Pratama, SpOG(K), MRepSc Wildan Mubarok, SSi, MSi dr. Ahmad Aulia Jusuf, AHK, PhD Tera Kispa dr. Isabella Kurnia Liem, M.Biomed, PhD, PA Fajar Mujadid, SSi, MBiomed Dr. dr. Ismail Hadisoebroto Dilogo, SpOT(K) Novialdi, S.Farm, Apt Dr. drg. Decky Joesiana Indrani, MDSc Muthia Rizkita, SSi Evah Luviah, SSi, M.Biomed

ISBN: 978-602-9459-14-2

Penyunting:

Wildan Mubarok, SSi, MSi Ria Anggraeni, SSi Evah Luviah, SSi, M.Biomed

Penerbit:

Continuing Medical Education-Continuing Professional Development (CME-CPD) Unit Fakultas Kedokteran Universitas Indonesia

Redaksi:

Stem Cell & Tissue Engineering Research Center, Indonesian Medical Education and Research Institute, Fakultas Kedokteran Universitas Indonesia Gedung IMERI Tower A (Riset) Lt 8 Jl Salemba Raya No 6, Jakarta Pusat 10430 Indonesia scte.imeri@gmail.com

Cetakan Pertama: Jakarta, 2018

Jumlah Halaman: 64 hal dicetak dengan kertas ukuran A4

Hak Cipta dilindungi undang-undang.

Dilarang memperbanyak karya tulis ini dalam bentuk apapun tanpa seijin tertulis dari penulis

dan penerbit.

1

Kata Pengantar

Sel punca (stem cell) adalah sel induk yang menjadi asal dari segala jenis sel di tubuh

manusia. Karena sifat tersebut, sel punca diyakini dapat digunakan untuk mengisi dan

memperbaharui jaringan yang rusak akibat berbagai penyakit degeneratif, autoimun dan

keganasan, misalnya, memperbaiki sel otot dan jaringan jantung yang mati pada pasien

serangan jantung, menumbuhkan sel pada jaringan otak atau saraf dan pembuluh darah baru

pada pasien stroke, memperbaharui organ ginjal yang rusak, terapi anti penuaan dan mengganti

kulit pada pasien luka bakar. Penemuan sel punca pada tubuh manusia memberikan harapan

baru bagi pengobatan penyakit regeneratif dan penyakit yang tidak ada obatnya, seperti kanker,

autoimun, kerusakan syaraf tulang belakang, sakit persendian, diabetes, cerebral palsy,

alzheimer, penyakit jantung, penyakit kelainan genetik dan lain-lain.

Riset dan terapi sel punca berkembang dengan pesat di berbagai belahan dunia

termasuk di Indonesia. Di Indonesia, beberapa pusat riset mulai mengembangkan penelitian

tentang sel punca, salah satunya adalah Stem Cell and Tissue Engineering Research Center

(SCTE-RC) di Indonesian Medical Education and Research Institute (IMERI) Fakultas

Kedokteran Universitas Indonesia (FK UI) bekerja sama dengan RSUPN Dr. Cipto

Mangunkusumo.

Sel punca mesenkimal adalah sel yang bersifat multipoten dan dapat berdiferensiasi

menjadi berbagai sel seperti sel tulang (osteoblasts), sel tulang rawan (chondrocytes), sel otot

(myocytes) dan sel lemak (adipocytes) dan lain lain. Buku ini dimaksudkan untuk memberikan

pemahaman dasar mengenai aspek biologi, cara pemrosesan dan contoh aplikasi klinis dari sel

punca mesenkimal. Kami berharap buku ini bermanfaat untuk para peneliti, mahasiswa dan

masyarakat ilmiah yang tertarik untuk melakukan penelitian dasar mengenai sel punca

mesenkimal.

Tim Penulis

2

Daftar Isi

Kata Pengantar .................................................................................................................... 1

Daftar Isi ............................................................................................................................. 2

Bab 1 : Aspek Biologi Sel Punca Mesenkimal ................................................................... 6

Bab 2 : Potensi Sel Punca Mesenkimal Dalam Aplikasi Klinis .......................................... 12

Bab 3 : Isolasi dan Propagasi Sel Punca Mesenkimal ........................................................ 20

Bab 4 : Flow Cytometry: Analisis dan Pemilahan Sel ....................................................... 28

Bab 5 : Protokol: Isolasi, Pemrosesan dan Kultur Sel Punca Mesenkimal ......................... 36

Penutup ............................................................................................................................... 54

3

4

5

6

BAB 1

ASPEK BIOLOGI SEL PUNCA MESENKIMAL

dr. Ahmad Aulia Jusuf, AHK, PhD

PENDAHULUAN

Ilmu pengetahuan dewasa ini semakin maju dan semakin berkembang pesat seiring

dengan upaya manusia untuk memperbaiki dan meningkatkan kualitas kehidupannya. Salah

satu ilmu pengetahuan yang berkembang sangat pesat dalam bidang bioteknologi adalah sel

punca/sel induk (stem cell). Ditingkat dunia sel punca dan rekayasa jaringan (tissue

engineering) merupakan salah satu fokus penelitan khususnya dalam kaitannya dengan terapi

sel dan pengobatan regeneratif. Sebelum adanya pemanfaatan sel punca pengobatan penyakit

dilakukan secara konvensional yaitu dengan pemberian obat atau senyawaan kimia lainnya.

Pengobatan menggunakan obat atau senyawaan kimia lainnya disatu sisi diharapkan akan

menyembuhkan suatu penyakit tetapi disisi lain dapat juga menimbulkan efek samping yang

tidak diinginkan. Pengobatan menggunakan sel punca merupakan harapan terapi di masa depan

dan akan menggeser paradigma pengobatan dari terapi kimia konvensional ke arah terapi

menggunakan sel punca.

Sel punca adalah sel yang tidak/belum terspesialisasi dan mempunyai potensi untuk

berkembang menjadi berbagai jenis sel yang spesifik yang membentuk berbagai jaringan tubuh.

Sel punca mempunyai 2 ciri khas yaitu (1) kemampuan untuk berdifferensiasi menjadi sel lain

(differentiate) dan (2) kemampuan untuk memperbaharui atau meregenerasi dirinya sendiri

(self renew/self regenerate). Kemampuan untuk berdifferensiasi memungkinkan sel punca

berkembang menjadi berbagai sel lain misalnya sel saraf, sel otot sel saraf dan lain-lainnya.

Proses differensiasi sel punca menjadi sel lain dipengaruhi faktor internal seperti genetik dan

faktor eksternalseperti faktor lingkungan sekitar (microenviroment) seperti faktor tumbuh

nutrisi, oksigen dan lain--lainnya. Sebaliknya kemampuan untuk meregenerasi atau

memperbaharui dirinya sendiri memungkinkan sel punca membuat salinan dirinya sendiri

melalui pembelahan sel. Kemampuan memperbanyak diri dapat dilakukan berulang kali

bahkan diduga tidak terbatas dan dapat dipertahankan dalam waktu lama.

Berdasarkan kemampuannya untuk berdifferensiasi sel punca dibedakan menjadi (1)

totipotent yaitu sel punca yang mampu berdifferensiasi menjadi berbagai jenis sel baik sel

intraembrionik maupun sel ekstraembrionik termasuk plasenta dan tali pusat, (2) pluripotent

yaitu sel punca yang mampu berdifferensiasi menjadi berbagai sel intraembrionik tetapi tidak

7

mampu berdifferensiasi menjadi sel ekstraembrionik seperti plasenta dan tali pusat. Sel punca

ini mampu berdiferensiasi menjadi sel yang membentuk tiga lapisan embrionik (ektoderm,

mesoderm, dan endoderm); (3) multipotent yaitu sel punca yang mampu berdiferensiasi

menjadi berbagai sel pada satu lapis embrionik, (4) unipotent merupakan sel yang hanya dapat

menghasilkan satu jenis sel tertentu. Berbeda dengan non-stem cell, stem cell unipoten

mempunyai sifat dapat memperbaharui atau meregenerasi diri (self-regenerate/self-renew).

Berdasarkan sumber didapatkannya sel punca dibagi menjadi 4 jenis yaitu sel punca

embrio (embryonic stem cell); sel punca dewasa (adult stem cell); sel punca fetus fetal stem

cell) dan sel punca pluripotent yang diinduksi (induced pluripotent stem cells / iPSc). Sel punca

embrio merupakan sel induk yang diperoleh dari massa sel dalam (inner cell mass) blastosit.

Blastosit adalah embrio yang terdiri atas 50-150 sel yang terbentuk selama masa embrio. Sel

punca embrionik ini mempunyai sifat pluripotent yang dapat berkembang menjadi sel yang

berasal dari 3 lapis germinal (ektoderm mesoderm dan endoderm). Sel punca dewasa

merupakan sel punca yang ditemukan di antara sel-sel lain yang telah berdifferensiasi. Sel

punca ini diduga berperan dalam menjaga homeostasis (keseimbangan) jaringan. Sel punca

dewasa mempunyai sifat plastis yang berarti selain berdifferensiasi menjadi sel yang sesuai

dengan jaringan asalnya juga dapat berdifferensiasi menjadi sel jaringan lain. Sel punca dewasa

dibedakan menjadi 2 jenis yaitu sel punca hematopoetik (hematopoetic stem cells) dan sel

punca mesenkimal (mesenchymal stem cells). Sel punca hematopoetik adalah sel punca

pembentuk darah yang mampu membentuk sel darah merah, sel darah putih dan keping darah

yang sehat. Sel punca jenis ini berasal dari sumsum tulang, darah tepi dan darah tali pusat. Sel

punca mesenkimal adalah sel punca multipotensi yang dapat berdifferensiasi menjadi sel tulang

otot ligamen, tendon dan lemak. Ada dugaan bahwa sel punca mesenkimal bersifat pluripotensi

sehingga tidak hanya dapat berubah menjadi jaringan mesodermal tetapi juga ektoderm dan

endodermal. Sel punca jenis ini dapat ditemukan pada stroma sumsum tulang, jaringan adiposa

dan darah tali pusat. Sel punca fetal adalah sel punca yang ditemukan pada organ-organ fetus

(janin). Sel punca ini juga bersifat pluripotent yang dapat berkembang menjadi ektoderm,

mesoderm dan endoderm. Induced pluripotent stem cells (iPSc) merupakan sel punca

pluripotent yang diperoleh dari sel yang sudah matur yang di program ulang sehingga bersifat

seperti sel punca embrionik.

Makalah ini akan membahas lebih jauh tentang sel punca mesenkimal khususnya dari

aspek biologi dan beberapa aspek lainnya yang berhubungan dengan sel punca mesenkimalnya.

8

DEFINISI SEL PUNCA MESENKIMAL

Sel punca mesenkimal (Mesenchymal Stem Cells) adalah sel punca berbentuk spindel

melekat pada plastik dan bersifat multipotent yang dapat berdifferensiasi menjadi sel tulang,

tulang rawan dan lemak. Sel punca multipotent ini ditemukan di seluruh organ tubuh terutama

di daerah perivaskular dan terbanyak ditemukan pada stroma sumsum tulang, jaringan adiposa

dan darah tali pusat. Sel punca mesenkimal di dapatkan pertama kali tahun 1980 oleh

Friedenstein dan Petrakova dari sumsum tulang.

Sel punca mesenkimal mempunyai banyak nama lain yang digunakan oleh para peneliti

seperti tertera pada tabel 1.

Tabel 1. Beberapa nama yang diberikan untuk sel punca mesenkimal (mesenchymal stem cells)

Name Definition

Precursor of non-hematopoietic tissue Bone marrow adhesion cells: including fibroblast-quasi cells, endothelial cells and monocyte and macrophages cells.

CFU Colonies of fibroblast cells in the presence of monocyte and macrophages cells

MSCs Cells which are identified with the property of their adhesiveness to the solid surfaces.

Marrow Stromal Cells Bone marrow adhesion cells which include fibroblast-quasi cells, endothelial cells and colonies of monocyte/macrophages.

BMSSCs and/or SPCs Non-hematopoietic cells with mesenchymal origin which is similar to fibroblast cells morphologically.

RS-2،RS-1 RS – 1: thin-shaped spindle cell, RS-2: relatively thin spindle cells

mMSCs mMSCs: wider spindle cells

MAPCs Progenitor cells derived from cultured bone marrow

CFU : Colony Forming Unit –Fibroblast BMSSC : Bone Marrow Stromal Stem Cells SPCs : Stromal Progenitor Cells RS : Recycling Stem Cell MAPC : Multipotent Adult ProgenitorCcells.

KARAKTERISTIK SEL PUNCA MESENKIMAL

Sel punca mesenkimal mampu berdifferensiasi menjadi sel adipogenik, miogenik

kardiomiogenik, kondrogenik dan osteogenik. Karakteristik yang khas dari sel punca jenis ini

adalah tidak adanya penanda sel punca hematopoetik (Hematopoetic Stem Cells). Sel punca

mesenkimal mempunyai kemampuan untuk melekat pada wadah kultur dan mampu

berproliferasi secara invitro pada medium kultur di laboratorium.

9

Gambar-1. Kultur sel punca mesenkimal manusia memperlihatkan sel berbentuk spindel seperti fibroblas (gambar atas). Di bawah kondisi yang sesuai sel-sel tersebut akan berdifferensiasi menjadi sel lemak yang ditandai oleh globul lemak, differensiasi kondrogenik yang diperlihatkan dengan pulasan untuk kolagen tipe-2 atau differensiasi osteogenik seperti diperlihatkan dengan kalsium.

(M.F. Pittenger, A.M. Mackay, S.C. Beck, et al. Multilineage potential of adult human mesenchymal stem cells Science, 1999, 284, pp. 143)

Sel punca mesenkimal manusia adalah sel punca yang memenuhi 3 kriteria menurut

International Society for Cellular Therapy (ISCT) yaitu

1. Pada kondisi kultur yang normal, sel punca mesenkimal harus melekat ke dasar wadah

kultur plastik.

2. Sel punca mesenkimal harus mengekspresikan marker permukaan (Cluster of

Differentiation) CD 73, CD 90 dan CD 105 dan harus tidak mempunyai indikator

hematopoetik khususnya CD45, CD34 dan indikator lain seperti CD14 atau CD11beta,

CD79 alpha atau CD19 dan HLA-DR.

3. Sel punca mesenkimal harus dapat berdifferensiasi menjadi sel-sel lemak (adipogenik),

tulang rawan (Kondrogenik) dan tulang (Osteogenik) secara invitro.

Meskipun demikian karakteristik sel punca mesenkimal ini masih banyak dipertanyakan

terutama menyangkut protein permukaan yang terdapat pada permukaan sel, misalnya ketidak

sesuaian keberadaan CD29, CD44 dan CD 166. Sel punca mesenkimal yang berasal dari

jaringan adiposa menunjukkan adanya ekspresi CD 34 dan CD 54 pada permukaannya.

10

KEMAMPUAN DIFFERENSIASI SEL PUNCA MESENKIMAL

Sel punca mempunyai kemampuan untuk berdifferensiasi menjadi berbagai sel yang

merupakan turunan mesoderm. Sel punca mesenkimal manusia dapat berdifferensiasi menjadi

kardiomiosit dengan bantuan hormon dan faktor tumbuh. Proses differensiasi sel punca

mesenkimal menjadi sel-sel tulang rawan tulang dan lemak membutuhkan molekul Cbfa-1 and

Peroxisome Proliferator-Activated Receptors (PPARy2). Disamping itu proses differensiasi

sel punca mesenkimal untuk menjadi sel-sel tulang diperlukan alkalin fosfat, osteopontin,

osteocalcin dan kolagen tipe-1; untuk menjadi sel –sel tulang rawan diperlukan kolagen tipe2

dan 9 serta untuk menjadi sel-sel lemak (adiposit) diperlukan adipsin4 leptin dan lipoprotein

lipase.

Pada penelitian di laboratorium sel punca mesenkimal dapat berdifferensiasi menjadi sel-

sel yang merupakan turunan ektoderm dan endoderm. Sel punca mesenkimal yang berasal dari

sumsum tulang tikus mampu berdifferensiasi menjadi sel punca saraf. Sel punca mesenkimal

yang berasal dari sumsum tulang tikus dan mencit mampu berdifferensiasi menjadi hepatosit.

Sel punca mesenkimal manusia yang berasal dari sumsum tulang dan jaringan lemak mampu

berdifferensiasi menjadi sel-sel hati pada media kultur yang ditambahkan faktor tumbuh.

LINGKUNGAN MIKRO (MICROENVIROMENT) SEL PUNCA MESENKIMAL

Lingkungan mikro (microenviroment)/Niche dari sel punca mesenkimal adalah faktor-

faktor lingkungan yang terdapat di daerah sekitar sel punca tersebut. Faktorfaktor tersebut

sangat penting untuk memelihara dan meregulasi keberlangsungan hidup, proliferasi dan

differensiasi sel. Pengetahuan tentang lingkungan mikro ini masih belum banyak diteliti. Sel

punca mesenkimal membentuk niche yang khas melalui kerjasama dan terinteraksi dengan sel-

sel lainnya.

11

DAFTAR PUSTAKA

1. The Stem cells-stem cell information-the official National Institute of Health Resource for Stem cell Research

2. Anatomy 101: Stem Cells-Reeeve Irvine Research Center- http://www.reeve.uci.edu/anatomy /stemcells.php

3. Bongso A & Lee EH. Stem Cells: From Bench to Bedside.Singapore: World Scientific Publishing Co. Pte. Ltd, 2005

4. Halim D, Murti H, Sandra F, Boediono A, Djuwantono T, Setiawan B. Stem cell-dasar teori & aplikasi klinis. Jakarta: Penerbit Erlangga 2010

5. Ghoraishizadeh P, Raikar S, Ghorishizadeh A, Boroojerdi MH, Daneshvar N. Biology, properties and clinical application of Mesenchymal stem cells. Russian Open Medical Journal 2014; 3: 0202.

6. Friedenstein AJ, Piatetzky-Shapiro II, Petrakova KV. Osteogenesis in transplants of bone marrow cells. J Embryol Exp Morphol 1966; 16(3): 381–390

7. Baksh D, Song L, Tuan RS. Adult mesenchymal stem cells: characterization, differentiation, and application in cell and gene therapy. Journal of cellular and molecular medicine 2004; 8(3): 301–316.

8. Kemp KC, Hows J, Donaldson C. Bone marrow-derived mesenchymal stem cells. Leukemia & lymphoma 2005; 46(11): 1531–1544.

9. Alhadlaq A, Elisseeff JH, Hong L, Williams CG, Caplan AI, Sharma B, et al. Adult stem cell driven genesis of human-shaped articular condyle. Annals of Biomedical Engineering 2004; 32(7): 911–923

10. Keating A. Mesenchymal stromal cells. Current Opinion in Hematology 2006; 13(6): 419–425. 11. Stem Cell and Developmental Biology Writing Group's Report. 2004. Natl Inst Diabetes &

Digestive & Kidney Dses, NIH. 2004; 1-27 12. Caplan AI. The mesengenic process.Clin Plast Surg 1994; 21: 429-435 13. Jiang Y, Jahagirder BN, Reindhardt RL, et al. 2002. Pluripotency of mesenchymal stem cells

derived from adult bone marrow. Nature 2002; 418:41-49 14. Kaebisch C, et al, The role of purinergic receptors in stemcell differentiation, Comput Struct

Biotechnol J, 2014 15. Kern S, Eichler H, Stoeve J, Kluter H, Bieback K. Comparative analysis of mesenchymal stem cells

from bone marrow, umbilical cord blood, or adipose tissue. Stem Cells. 2006; 24:1294-301. 16. Calvi LM, Adams GB, Weibrecht KW, Weber JM, Olson DP, Knight MC, et al. Osteoblastic cells

regulate the haematopoietic stem cell niche. Nature 2003; 425(6960): 841–846. 17. Li W, Liu SN, Luo DD, Zhao L, Zeng LL, Zhang SL, Li SL. Differentiation of hepatocytoid cell

induced from whole-bone-marrow method isolated rat myeloid mesenchymal stem cells. World J Gastroenterol 2006; 12(30): 4866–4869.

18. Oh SH, Miyazaki M, Kouchi H, Inoue Y, Sakaguchi M, Tsuji T, et al. Hepatocyte growth factor induces differentiation of adult rat bone marrow cells into a hepatocyte lineage in vitro. Biochemical and Biophysical Research Communications 2000; 279(2): 500–504.

19. Shim WS, Jiang S, Wong P, Tan J, Chua YL, Tan YS, et al. Ex vivo differentiation of human adult bone marrow stem cells into cardiomyocyte-like cells. Biochemical and Biophysical Research Communications 2004; 324(2): 481–488.

20. Xaymardan M, Tang L, Zagreda L, Pallante B, Zheng J, Chazen JL, et al. Platelet-derived growth factor-AB promotes the generation of adult bone marrow-derived cardiac myocytes. Circulation Research 2004; 94(5): E39–E45.

21. Minguell JJ, Conget P, Erices A. Biology and clinical utilization of mesenchymal progenitor cells. Braz J Med Biol Res 2011; 33(8): 881–887.

12

BAB 2

POTENSI SEL PUNCA MESENKIMAL DALAM APLIKASI KLINIS

dr. Gita Pratama, MRepSci

Terapi dengan menggunakan sel punca (stem cells) telah menjadi paradigma baru

dalam penatalaksanaan berbagai penyakit. Hingga saat ini, telah banyak dilakukan uji klinis

dengan menggunakan sel punca mesenkimal (mesenchymal stem cells/ MSC) di berbagai

negara. MSC adalah sel stromal yang bersifat multipoten dan dapat berdiferensiasi menjadi

berbagai sel seperti sel tulang (osteoblasts), sel tulang rawan (chondrocytes), sel otot

(myocytes) dan sel lemak (adipocytes) dan lain lain. Banyak penelitian telah menunjukkan

keamanan dan efikasi dalam terapi pada manusia. Uji klinis telah dilakukan untuk berbagai

kondisi penyakit seperti penyakit kardiovaskular dan dalam pencegahan graft-versus-host-

disease (GVHD). Aplikasi klinis MSC pada dasarnya dikaitkan dengan karakteristik

biologisnya yaitu kemampuan migrasi menuju lokasi inflamasi setelah terjadinya cedera

jaringan; berdiferensiasi menjadi berbagai tipe sel; mensekresikan molekul-molekul bioaktif

yang mampu merangsang pemulihan jaringan yang cedera, menghambat inflamasi serta

berperan pada mekanisme imunomodulator.

KARAKTERISTIK BIOLOGIS SEL PUNCA MESENKIMAL YANG DIHUBUNGKAN DENGAN EFEK TERAPEUTIK

A. Kemampuan untuk migrasi dan berkembang

Pada administrasi secara sistemik, MSC memiliki kemampuan untuk bermigrasi ke

lokasi inflamasi. Ortiz LA et al menunjukkan bahwa pada hewan model, MSC dapat bermigrasi

menuju lokasi kerusakan sel sebagai respons terhadap cedera, mengadopsi fenotip mirip epitel,

dan mengurangi fibrosis pada paru-paru tikus yang mengalami kerusakan pasca pemberian

bleomisin.1 Pada penelitian lain juga ditemukan bahwa MSC yang ditransplantasikan dapat

bermigrasi ke jaringan otot yang cedera pada tikus.2

Migrasi sel bergantung pada sinyal-sinyal yang bervariasi mulai dari faktor

pertumbuhan (growth factors) yang disekresikan oleh sel yang cedera dan/atau sel-sel imun.3

Penelitian telah menunjukkan bahwa migrasi MSC berada di bawah kendali berbagai faktor

pertumbuhan golongan reseptor tirosin kinase seperti platelet derived growth factor (PDGF)

atau insuline-like growth factor (IGF-1) dan kemokin seperti CCR2, CCR3, CCR4 atau CCL5.4

13

B. Kemampuan untuk berdiferensiasi

Selain berdiferensiasi menjadi sel-sel yang berasal dari lini mesenkimal, beberapa

penelitian menunjukkan bahwa MSC juga dapat berdiferensiasi menjadi sel- sel yang berasal

dari lini endodermal dan ektodermal. Beberapa penelitian yang menggunakan hewan

percobaan telah menujukan kemampuan MSC yang dapat berdiferensiasi menjadi sel

pneumosit tipe 1, sel epitel tipe 2, dan hampir seluruh tipe sel paru-paru lainnya. 1, 5, 6 Kopen

et al melaporkan bahwa MSC dapat berdiferensiasi dan beradaptasi secara morfologik dan

fenotipik menjadi sel astrosit dan neuron.7 Hal ini didukung juga oleh beberapa penelitian

lanjutan yang mengkonfirmasi kemampuan MSC untuk berdiferensiasi menjadi sel-sel sistem

saraf, saluran kemih, jantung dan sistem rangka. 2, 8-10

C. Kemampuan untuk mensekresi molekul-molekul bioaktif

MSC dapat mensekresi molekul-molekul bioaktif termasuk faktor pertumbuhan,

sitokin, dan kemokin yang masing-masing memiliki fungsi pada dinamika seluler. Takashi et

al melaporkan bahwa MSC yang berasal dari sumsum tulang dapat memproduksi sejumlah

sitokin yang berkontribusi terhadap perbaikan fungsi otot jantung yang telah mengalami infark.

Sitokin-sitokin yang diproduksi MSC dapat membantu untuk mempertahankan kapasitas

kontraksi miokardium, menghambat proses apoptosis sel kardiomiosit, dan memicu proses

angiogenesis.11, 12

D. Peran MSC sebagai imunomodulator

Kemampuan MSC memodulasi sistem imun telah dikenali ketika Liechty et al

menemukan bahwa MSC memiliki keunikan karekteristik imunologik yang dapat bertahan

pada lingkungan xerogenik.13 MSC dapat berinteraksi dengan berbagai macam sel imun yaitu

diantaranya adalah sel limfosit T, limfosit B, sel natural killer, dan sel dendritik sehingga

memiliki potensi untuk menjadi alternatif terapi untuk berbagai kelainan imunologik seperti

GVHD.14

PERAN MSC PADA PENYEMBUHAN CEDERA JARINGAN

Proses penyembuhan cedera jaringan merupakan suatu proses kompleks yang

melibatkan aktivitas mitosis, inflamasi, angiogenesis, sintesis dan remodeling dari matriks

ekstraselular.15 Ketika proses penyembuhan luka tidak berjalan sempurna, maka pemberian

intervensi tambahan akan dipertimbangkan. MSC dapat memicu respons pro- dan anti-

inflamatorik serta memicu proses angiogenesis.16 Banyak penelitian telah dilakukan untuk

14

mengetahui efek MSC pada penyembuhan cedera baik pada pemberian langsung di tempat

luka atau pemberian sistemik. 17 Pada beberapa penelitian yang telah dilakukan, MSC dapat

mencapai lokasi cedera dengan mengikuti sinyal spesifik dari ligan kemokin 7 (CCL7).18, 19

Dalam perjalanan meunuju lokasi cedera, pemberian MSC secara sistemik dapat melewati

organ-organ ekskresi seperti hepar, limpa, paru dan ginjal sehingga mengurangi efek

terapeutiknya. Hal ini akan menyebabkan MSC lebih lama mencapai lokasi dan mengurangi

jumlah MSC yang sampai ke lokasi cedera. Pemberian MSC langsung ke lokasi cedera

menjadi metode yang menjadi favorit para peneliti dan klinisi untuk kondisi-kondisi medis

seperti inkontinensi urin, artritis dan sejumlah kelainan saraf.20

Pada penelitian yang telah dilakukan oleh Sorrell et al telah dilaporkan bahwa MSC

dapat memicu proses penyembuhan dengan aktivasi oleh sejumlah sitokin yaitu granulocyte

colony stimulating factor (G-CSF), tumor necrosis factor-alpha (TNF-a) atau interferon-

gamma (IFN-g). Penelitian tersebut juga menunjukkan bahwa ketika teraktivasi oleh IFNg,

MSC mensekresikan faktor-faktor solubel yang membantu kerja sel limfosit T dan sel

dendritik.17, 21

APLIKASI MSC PADA BIDANG ORTOPEDI

Pada penelitian yang dilakukan pada hewan model kelinci, Shafiee et al melaporkan

bahwa terjadi proses penyembuhan dan regenerasi pada defek tulang rawan berat yang dinilai

melalui pemeriksaan mikroskopis.22 Hasil penelitian tersebut juga menunjukkan adanya

perbaikan klinis yang signifikan walaupun belum dapat ditemukannya pembentukan hyalin.23

Penelitian yang menggunakan allograft yang mengandung MSC telah dilakukan pada kasus

rekonstruksi kaki dan pergelangan kaki dan memiliki efek terapeutik yang cukup baik.23

Tantangan terbesar pada bidang ortopedi yaitu pada kasus-kasus dengan defek tulang yang

luas seperti pada kasus infeksi, tumor, trauma berat serta kondisi dengan vaskularisasi yang

kurang baik seperti pada kasus diabetes osteomyelitis.24 Karena suplai darah yang minimal

pada tulang, penggunaan graft tulang autologous menjadi suatu kesulitan.24 Aplikasi MSC

pada kasus-kasus tersebut mejadi salah satu alternatif terapi.25

Pada penelitian yang dilakukan oleh Granero-Molto pada hewan model tikus, MSC

memicu proses penyembuhan pada lokasi fraktur, berdiferensiasi menjadi sel-sel osteosit dan

berkontribusi secara aktif untuk meredakan proses inflamasi .24, 25 Dilogo et al melaporkan

penggunaan MSC autologous yang berasal dari sumsum tulang pada kasus dengan kelainan

osteofibrous dysplasia.26 Delapan puluh empat minggu pasca penyambungan defek tulang

15

dengan penggunaan hydroxyapatite, bone morphogenic- 2 (BMP-2) dan MSC, terdapat

perbaikan fungsi mencapai 90% tanpa adanya tanda-tanda rekurensi maupun efek samping

yang berarti.26 Demikian juga penggunaan MSC yang berasal dari tali pusat (umbilical cord-

derived MSC) pada non-union fraktur femur menunjukkan proses regenerasi tulang yang lebih

cepat dan penyembuhan yang lebih optimal.27

PERAN MSC PADA PENYAKIT PARU

Pada penyakit yang menyebabkan pembentukan fibrosis pada paru, MSC dapat

berperan untuk mengurangi penumpukan matriks ekstraselular dan pembentukan kolagen

sehingga terjadi perbaikan dan remodeling struktur jaringan paru-paru (Gambar 1). 28-30

Penurunan penumpukan kolagen dan reaksi inflamasi telah dilaporkan pada penelitian yang

dilakukan oleh Tzouvelekis et al dengan hewan percobaan yang diberi bleomycin untuk

menjadi model paru-paru yang memiliki morfologi yang sama seperti pada penyakit paru

idiopatik.30-32

Gambar 1. Pada penggunaan di bidang pulmonologi, MSC memiliki potensi sebagai alternatif terapi untuk membantu regenerasi jaringan paru dan mengurangi proses inflamasi.28

MSC juga dapat menjadi pilihan terapi pada penyakit paru-paru lainnya yang cukup

berat dengan angka morbiditas dan mortalitas tinggi seperti pada acute lung injury (ALI) dan

penyakit paru obstruktif kronik (PPOK).30, 33 Pada ALI terdapat cedera pada epitelium alveolar,

endotel vaskular dan sekresi eksotoksin yang dapat dihambat dengan pemberian MSC. MSC

16

dapat menurunkan kadar sitokin inflamatorik namun juga dapat meningkatkan kadar sitokin

anti-inflamatorik.32, 33 Pada pasien PPOK, kadar C-reactive protein (CRP) berkurang seiring

dengan pemberian MSC melalui jalur sistemik.33

Penyakit paru-paru lainnya yang dapat diobati dengan pemberian MSC yaitu asma

dan alergi. Asma kronik merupakan suatu penyakit inflamatorik kronik yang menyebabkan

peradangan jalan napas dan hipersekresi bronkus. Pada perjalanan penyakitnya, asma kronik

akan menyebabkan kerusakan jaringan paru.28, 34, 35 Seperti yang telah dijelaskan sebelumnya,

MSC memiliki efek anti-inflamatorik dan memicu pertumbuhan jaringan sehingga MSC

menjadi terapi yang sangat menarik bagi para klinisi untuk dapat menyembuhkan asma kronik.

Sebuah studi observasi yang dilakukan oleh Laboratorium Weiss dari Massachusetts Institute

of Technology pemberian MSC pada hewan model menurunkan hiper-responsivitas jalan

napas dan kadar eosinofil.36 MSC juga mempengaruhi respon sel limfosit T untuk menjauhi

sitokin sel T helper (Th2) sehingga menurunkan hiperplasia epitel bronkus inflamasi dan

penumpukan matriks ekstraselular.32, 35, 36

PERAN MSC PADA KELAINAN BAWAAN DAN KELAINAN NEUROLOGI

Penelitian menunjukkan bahwa MSC juga dapat berdiferensiasi menjadi neuron dan

sel astrosit.37 MSC dapat menghambat proses kerusakan neurologis dan meningkatkan angka

kesintasan pada hewan model tikus dengan penyakit neurodegeneratif.38 Berdasarkan hasil

observasi tersebut, Giordano et al melakukan transplantasi MSC pada pasien dengan

amylotriphic lateral sclerosis (AML), suatu kelainan degeneratif neuron motorik yang

menyebabkan seseorang kehilangan kekuatan otot-ototnya.38 Setelah penyuntikan MSC ke

korda spinalis dan pemantauan pasien berkala pada bulan ke-3 dan ke-6, didapatkan

peningkatan kekuatan otot walaupun belum dapat disimpulkan sampai kapan efek tersebut

dapat dipertahankan.37

Pada bidang neurologi, MSC menunjukkan efek terapeutik positif upada kondisi-

kondisi kelainan sistem saraf pusat seperti pada kasus stroke, trauma, Parkinson's Disease, dan

kelainan genetik bawaan seperti pada sindrom Hurler. 39, 40

17

DAFTAR PUSTAKA

1. Ortiz LA, Gambelli F, McBride C, Gaupp D, Baddoo M, Kaminski N, et al. Mesenchymal stem cell engraftment in lung is enhanced in response to bleomycin exposure and ameliorates its fibrotic effects. Proc Natl Acad Sci U S A. 2003;100(14):8407-11.

2. Liu Y, Yan X, Sun Z, Chen B, Han Q, Li J, et al. Flk-1+ adipose-derived mesenchymal stem cells differentiate into skeletal muscle satellite cells and ameliorate muscular dystrophy in mdx mice. Stem Cells Dev. 2007;16(5):695-706.

3. Spaeth E KA, Dembinski J, Andreeff M, Marini F. Inflammation and tumor microenvironments: defining the migratory itinerary of mesenchymal stem cells. Gene Therapy. 2008;15:730-8.

4. Yagi H, Soto-Gutierrez A, Parekkadan B, Kitagawa Y, Tompkins RG, Kobayashi N, et al. Mesenchymal stem cells: Mechanisms of immunomodulation and homing. Cell Transplant. 2010;19(6):667-79.

5. Kotton DN, Ma BY, Cardoso WV, Sanderson EA, Summer RS, Williams MC, et al. Bone marrow-derived cells as progenitors of lung alveolar epithelium. Development. 2001;128(24):5181-8.

6. Rojas M, Xu J, Woods CR, Mora AL, Spears W, Roman J, et al. Bone marrow-derived mesenchymal stem cells in repair of the injured lung. Am J Respir Cell Mol Biol. 2005;33(2):145-52.

7. Kopen GC, Prockop DJ, Phinney DG. Marrow stromal cells migrate throughout forebrain and cerebellum, and they differentiate into astrocytes after injection into neonatal mouse brains. Proc Natl Acad Sci U S A. 1999;96(19):10711-6.

8. Deng J, Petersen BE, Steindler DA, Jorgensen ML, Laywell ED. Mesenchymal stem cells spontaneously express neural proteins in culture and are neurogenic after transplantation. Stem Cells. 2006;24(4):1054-64.

9. Wislet-Gendebien S, Hans G, Leprince P, Rigo JM, Moonen G, Rogister B. Plasticity of cultured mesenchymal stem cells: switch from nestin-positive to excitable neuron-like phenotype. Stem Cells. 2005;23(3):392-402.

10. Li K, Han Q, Yan X, Liao L, Zhao RC. Not a process of simple vicariousness, the differentiation of human adipose-derived mesenchymal stem cells to renal tubular epithelial cells plays an important role in acute kidney injury repairing. Stem Cells Dev. 2010;19(8):1267-75.

11. van Poll D, Parekkadan B, Cho CH, Berthiaume F, Nahmias Y, Tilles AW, et al. Mesenchymal stem cell-derived molecules directly modulate hepatocellular death and regeneration in vitro and in vivo. Hepatology. 2008;47(5):1634-43.

12. Takahashi M, Li TS, Suzuki R, Kobayashi T, Ito H, Ikeda Y, et al. Cytokines produced by bone marrow cells can contribute to functional improvement of the infarcted heart by protecting cardiomyocytes from ischemic injury. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2006;291(2):H886-93.

13. Liechty KW, MacKenzie TC, Shaaban AF, Radu A, Moseley AM, Deans R, et al. Human mesenchymal stem cells engraft and demonstrate site-specific differentiation after in utero transplantation in sheep. Nat Med. 2000;6(11):1282-6.

18

14. Popp FC, Eggenhofer E, Renner P, Slowik P, Lang SA, Kaspar H, et al. Mesenchymal stem cells can induce long-term acceptance of solid organ allografts in synergy with low-dose mycophenolate. Transpl Immunol. 2008;20(1-2):55-60.

15. A.I Caplan DC. The MSC: An Injury Drugstore. Cell Stem Cell. 2011;9(1):11-5. 16. Bonfield TL, Lennon D, Ghosh SK, DiMarino AM, Weinberg A, Caplan AI. Cell based

therapy aides in infection and inflammation resolution in the murine model of cystic fibrosis lung disease. Stem Cell Discovery. 2013;Vol.03No.02:15.

17. Sorrell JM, Baber MA, Caplan AI. Influence of adult mesenchymal stem cells on in vitro vascular formation. Tissue Eng Part A. 2009;15(7):1751-61.

18. Meirelles Lda S, Fontes AM, Covas DT, Caplan AI. Mechanisms involved in the therapeutic properties of mesenchymal stem cells. Cytokine Growth Factor Rev. 2009;20(5-6):419-27.

19. Ren G, Zhang L, Zhao X, Xu G, Zhang Y, Roberts AI, et al. Mesenchymal stem cell-mediated immunosuppression occurs via concerted action of chemokines and nitric oxide. Cell Stem Cell. 2008;2(2):141-50.

20. Murphy MB, Moncivais K, Caplan AI. Mesenchymal stem cells: environmentally responsive therapeutics for regenerative medicine. Exp Mol Med. 2013;45:e54.

21. Ghannam S, Bouffi C, Djouad F, Jorgensen C, Noel D. Immunosuppression by mesenchymal stem cells: mechanisms and clinical applications. Stem Cell Res Ther. 2010;1(1):2.

22. Shafiee A, Soleimani M, Chamheidari GA, Seyedjafari E, Dodel M, Atashi A, et al. Electrospun nanofiber-based regeneration of cartilage enhanced by mesenchymal stem cells. J Biomed Mater Res A. 2011;99(3):467-78.

23. Hyer RSaCF. Role of cellular allograft containing mesenchymal stem cells in high risks foot and ankle reconstruction. Foot and Ankle Surgery. 2013;52(1):32-5.

24. Schmitt A, van Griensven M, Imhoff AB, Buchmann S. Application of stem cells in orthopedics. Stem Cells Int. 2012;2012:394962.

25. Granero-Molto F, Weis JA, Miga MI, Landis B, Myers TJ, O'Rear L, et al. Regenerative effects of transplanted mesenchymal stem cells in fracture healing. Stem Cells. 2009;27(8):1887-98.

26. Dilogo IH, Kamal AF, Gunawan B, Rawung RV. Autologous mesenchymal stem cell (MSCs) transplantation for critical-sized bone defect following a wide excision of osteofibrous dysplasia. Int J Surg Case Rep. 2015;17:106-11.

27. Dilogo IH PM, Pawitan JA, Liem IK. Modified Masquelet technique using allogeneic umbilical cord-derived mesenchymal stem cells for infected non-union femoral shaft fracture with a 12 cm bone defect: A case report. Int J Surg Case Rep. 2017;34:11-6.

28. Bonfield TL, Caplan AI. Adult mesenchymal stem cells: an innovative therapeutic for lung diseases. Discov Med. 2010;9(47):337-45.

29. Brody AR, Salazar KD, Lankford SM. Mesenchymal stem cells modulate lung injury. Proc Am Thorac Soc. 2010;7(2):130-3.

30. Tzouvelekis A, Antoniadis A, Bouros D. Stem cell therapy in pulmonary fibrosis. Curr Opin Pulm Med. 2011;17(5):368-73.

19

31. Toonkel RL, Hare JM, Matthay MA, Glassberg MK. Mesenchymal stem cells and idiopathic pulmonary fibrosis. Potential for clinical testing. Am J Respir Crit Care Med. 2013;188(2):133-40.

32. Neuringer IP, Randell SH. Lung stem cell update: promise and controversy. Monaldi Arch Chest Dis. 2006;65(1):47-51.

33. Krasnodembskaya A, Song Y, Fang X, Gupta N, Serikov V, Lee JW, et al. Antibacterial effect of human mesenchymal stem cells is mediated in part from secretion of the antimicrobial peptide LL-37. Stem Cells. 2010;28(12):2229-38.

34. Bonfield TL, Nolan Koloze MT, Lennon DP, Caplan AI. Defining human mesenchymal stem cell efficacy in vivo. J Inflamm (Lond). 2010;7:51.

35. Bonfield TL, Koloze M, Lennon DP, Zuchowski B, Yang SE, Caplan AI. Human mesenchymal stem cells suppress chronic airway inflammation in the murine ovalbumin asthma model. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 2010;299(6):L760-70.

36. Weiss DJ, Kolls JK, Ortiz LA, Panoskaltsis-Mortari A, Prockop DJ. Stem cells and cell therapies in lung biology and lung diseases. Proc Am Thorac Soc. 2008;5(5):637-67.

37. Pittenger MF, Mackay AM, Beck SC, Jaiswal RK, Douglas R, Mosca JD, et al. Multilineage potential of adult human mesenchymal stem cells. Science. 1999;284(5411):143-7.

38. Giordano A, Galderisi U, Marino IR. From the laboratory bench to the patient's bedside: an update on clinical trials with mesenchymal stem cells. J Cell Physiol. 2007;211(1):27-35.

39. Chao TI, Xiang S, Chen CS, Chin WC, Nelson AJ, Wang C, et al. Carbon nanotubes promote neuron differentiation from human embryonic stem cells. Biochem Biophys Res Commun. 2009;384(4):426-30.

40. Koc ON, Day J, Nieder M, Gerson SL, Lazarus HM, Krivit W. Allogeneic mesenchymal stem cell infusion for treatment of metachromatic leukodystrophy (MLD) and Hurler syndrome (MPS-IH). Bone Marrow Transplant. 2002;30(4):215-22.

20

BAB 3

ISOLASI DAN PROPAGASI SEL PUNCA MESENKIM

(MESENCHYMAL STEM CELLS)

Prof. dr. Jeanne Adiwinata Pawitan, MS, PhD

Pendahuluan

Sel punca mesenkim (SPM) atau mesenchymal stem cells (MSCs) adalah sel punca

dewasa yang di dalam tubuh (in vivo) menjadi cikal bakal semua sel jaringan ikat, misalnya

fibroblast, sel lemak, sel tulang rawan (kondrosit), sel tulang (osteosit), dsb.

Sel punca mesenkim berbeda dari sel punca embrional dalam kemampuan

memperbaharui diri (self renewal) dengan cara bermitosis (proliferasi, membelah) dan

kemampuan diferensiasinya. Bila sifat sel punca embrional mampu berproliferasi tidak

terbatas, maka SPM hanya mampu berproliferasi dalam jumlah terbatas, dan batas kemampuan

ini disebut batas Hayflick (Hayflick limit). Apabila batas Hayflick tercapai, maka SPM tidak

lagi mampu membelah karena sudah menua (aging, senescent). Kemampuan proliferasi ini

dinilai dengan jumlah pasase (subkultur, tanam ulang). Bila asalnya dari individu lebih muda,

maka SPM dapat dipasase lebih banyak kali dibanding yang berasal dari individu usia lanjut.

Contohnya SPM asal tali pusat, sampai pasase-17 masih dapat di pasase terus dan belum menua.

Bila sel punca embrional dapat berdiferensiasi menjadi semua jenis sel di dalam tubuh

(bersifat pluripoten), maka kemampuan diferensiasi SPM lebih terbatas, karena hanya dapat

berdiferensiasi menjadi semua sel jaringan ikat (bersifat multipoten). Akan tetapi,

dibandingkan sel punca embrional, SPM lebih banyak digunakan pada berbagai uji klinik untuk

berbagai kelainan atau penyakit degenerative, karena dianggap lebih aman dan tidak

menimbulkan masalah etik.

Banyaknya penggunaan SPM ini menimbulkan kebutuhan untuk mengisolasi dan

memperbanyaknya (propagasi), karena untuk terapi dibutuhkan SPM dalam jumlah besar.

Karena itu, makalah ini akan membahas tentang cara isolasi dan propagasi berbagai SPM,

utamanya SPM asal tali pusat.

21

Isolasi sel punca mesenkim (SPM)

Sel punca mesenkim dapat diisolasi dari berbagai jaringan, baik jaringan yang sifatnya

cair (darah tepi yang sebelumnya dilakukan mobilisasi sel punca dari sumsum tulang, darah

tali pusat, dan sumsum tulang), maupun jaringan yang sifatnya padat. Isolasi SPM dari bahan

cair dapat dilakukan dengan beberapa cara, yaitu:

• Dicuci dengan medium komplit, disentrifus, dan pelletnya langsung ditanam. Dalam

hal ini supernatan disentrifus dan peletnya ikut ditanam, untuk mengetahui kapan SPM

melekat dan dapat dilakukan penggantian medium.

• Diambil sel mononuklirnya baru ditanam. Untuk mengambil sel mononuklir, dapat

dilakukan dengan cara gravitasi, sentrifugasi tanpa ficoll, ataupun sentrifugasi dengan

ficoll. Pada cara gravitasi, saat sel darah merah baru mengendap, plasma yang

mengandung sel mononuklir diambil. Pada sentrifugasi, buffy coat yang terbentuk yang

diambil.

Isolasi dari jaringan yang sifatnya padat, misalnya tali pusat, jaringan lemak, plasenta,

pulpa gigi, dsb. Jaringan lemak dapat berasal dari jaringan utuh hasil insisi, atau jaringan halus

hasil sedot lemak (liposuction). Bila berupa jaringan lemak utuh, maka jaringan harus dicacah

sampai halus. Jaringan lemak halus, baik yang berasal dari insisi maupun dari sedot lemak,

perlu dicuci agar bebas dari sel darah merah, lemak yang keluar dari sel lemak matur, dan obat

yang digunakan saat sedot lemak yang toksik terhadap SPM. Isolasi dari plasenta, sebaiknya

dipisahkan dulu bagian anak (vilus korialis) dari bagian ibu (desidua) dengan menggunakan

mikroskop diseksi. SPM terdapat di bagian tengah vilus korialis. Isolasi dari pulpa gigi

umumnya dilakukan pada gigi susu yang tanggal, dan karenanya rawan terkontaminasi. Karena

itu perlu dilakukan langkah dekontaminasi, sebelum dilakukan isolasi. Isolasi SPM dari

jaringan yang sifatnya padat dapat dilakukan dengan dua cara, yaitu cara enzimatik dan cara

eksplan.

Jaringan yang SPMnya akan diisolasi, saat diambil dari kamar bedah atau kamar

bersalin, harus dibawa di dalam medium transport, supaya jaringan bertahan dan mengurangi

resiko kontaminasi. Medium transport dibuat menggunakan medium basal tanpa serum, dengan

penambahan antibiotik dan antimikotik dengan dosis tiga kali lipat dosis biasa.

Pada isolasi cara enzimatik, jaringan dicuci, dicacah dan didigesti menggunakan

enzim yang sesuai untuk mendigesti matriks antar sel. Dalam hal isolasi dari jaringan tali pusat,

karena matriksnya mengandung terutama kolagen dan asam hialuronat, maka pertama-tama

didigesti dengan kolagenase, dan dilanjutkan dengan digesti menggunakan hialuronidase.

22

Larutan hasil digesti kemudian disaring dengan saringan berpori 70-100 µ, untuk

menghilangkan sisa jaringan. Hasil saringan disentrifugasi, dan pelletnya diresuspensi dalam

medium komplit, kemudian ditanam.

Isolasi SPM dari tali pusat cara eksplan

Bila tali pusat berasal dari kelahiran seksio, maka tali pusat dapat dianggap steril dan

dapat langsung diproses, sedangkan bila berasal dari kelahiran normal (partus spontan) maka

perlu didekontaminasi terlebih dulu. Dekontaminasi dilakukan dengan mencelupkan jaringan

di dalam PBS pH 7,4 yang mengandung povidone iodine 0.5% beberapa kali, dilanjutkan

dengan mencelupkan beberapa kali dalam alkohol 70% dan terakhir PBS pH 7,4 untuk

menghilangkan povidone iodine dan darah, dan selanjutnya diproses (Gambar-1).

Gambar 1. Pencucian tali pusat

Tali pusat dibuka diseksi sambil dibasahi medium komplit, arteri dan vena umbilikalis

dibuang, kemudian jaringan dicacah sehingga diameternya seukuran 2-5 mm (Gambar-2).

Kemudian potongan jaringan diletakkan dalam pelat 24 sumuran, satu potong tiap sumuran,

dengan bagian berlendir (Wharton’s jelly terletak di bawah.

23

Gambar 2. Pemrosesan tali pusat

Gambar 3. Sel mulai tumbuh keluar dari eksplan (sprouting)

24

Saat meletakkan jaringan jangan sampai terbalik, karena bila terbalik kemungkinan

tumbuh lebih kecil. Bila tidak ingin meletakkan terbalik, jaringan dapat disayat sejajar, dan

bagian yang dilapisi amnion dibuang. Kemudian, tiap jaringan diberi medium komplit sedikit

untuk menjaga jaringan agar tidak kering. Dapat juga, jaringan diinkubasi dulu dalam inkubator

selama kurang lebih 30 menit, agar agak melekat, baru ditambahkan medium komplit agak

banyak, akan tetapi harus dijaga, jumlah medium jangan terlalu banyak, agar jaringan tidak

terapung. Bila jaringan terapung, maka sel tidak dapat tumbuh keluar (sprouting).

Kemudian, pelat berisi jaringan tali pusat diletakkan dalam inkubator dengan suhu

37C, dengan CO2 5%. Tiap hari pelat diobservasi untuk melihat apakah ada yang

terkontaminasi, kering atau mulai tumbuh. Bila ada yang terkontaminasi, maka jaringan

diangkat, medium disedot den dilakukan dekontaminasi sumur yang terkontaminasi dengan

memberi alkohol 70%, kemudian disedot sampai kering. Bila ada yang hampir kering,

ditambah medium komplit dan bila ada yang mulai tumbuh (Gambar-3) dicatat, sehingga dapat

dipantau lebih teliti, dan bila ada bagian yang konfluens 90% dipanen.

Panen SPM

SPM yang sudah konfluens 90% mediumnya disedot, dicuci dengan PBS pH 7,4, dan

diberi TrypLE Select 150 -300 mikroliter, diinkubasi dalam inkubator selama 3-5 menit.

Kemudian diamati di bawah mikroskop inversi, bila sel sudah tampak membulat semua,

diketuk perrlahan dasar pelatnya, sehingga sel terlepas. Bila ada yang belum terlepas,

diinkubasi kembali selama dua menit, diamati lagi, apakah sel sudah membulat dan lepas atau

belum. Bila belum, inkubasi dapat diulang sampai sel terlepas semua. Bila ada yang belum

terlepas, pelepasan dapat diperrcepat dengan menyedot TrypLE Select, dan menyiramkan

kembali ke sumur berisi sel, dan diresuspensi. Saat sel terlepas, suspensi sel dipindah ke dalam

tabung ependorf, atau tabung 5 mL, bila banyak sumur yang dipanen. Bila banyak sumur yang

dipanen, hasil panen dapat dimasukkan ke dalam satu tabung 5 mL. Sumur yang sudah dipanen,

kemudian diberi medium komplit sebanyak volume TrypLE Select, dan dicuci, kemudian

medium pencuci tadi dimasukkan ke dalam tabung berisi suspensi sel, untuk menetralkan

TrypLE Select.

Suspensi sel sebanyak 10 microliter diambil, dicampur dengan Trypan biru dengan

volume sama, diletakkan dalam kamar hitung, kemudian dihitung jumlah sel yang hidup dan

yang mati. Sumur yang telah dipanen, bila terdapat sisa sel, atau bila eksplan masih melekat,

dapat diberi medium komplit dan dikultur kembali, untuk dipanen berulang, sampai SPM tidak

25

tumbuh lagi. Hasil panen dapat dikultur kembali (pasase), disimpan beku (kriopreservasi),

dianalisis karakternya, atau digunakan untuk penelitian ataupun uji klinik (bila dilakukan pada

lab berstandar GMP, dan menggunakan bahan GMP grade)`

Pasase dapat dilakukan berulang-ulang. Sel hasil isolasi disebut sebagai P0, bila

dipasase, akan menjadi P1, P2, P3 dst. Pasase dapat dilakukan berulang-ulang, tetapi ada

batasnya. Sel tidak lagi dapat dipasase bila sudah mengalami penuaan (aging), yang dapat diuji

dengan uji senesens menggunakan pewarna beta galaktosidase.

Pasase SPM

Pasase SPM dilakukan dengan mengkultur kembali dengan taburan sel (seeding)

sebanyak 5000 sel/cm2, bila sel adalah sel segar hasil panen. Akan tetapi, taburan harus

dilipatgandakan 2-3x jumlah biasa, apabila sel adalah hasil thawing sesudah kriopreservasi.

Seeding harus dilakukan dengan merata supaya semua bagian mengalami konfluensi yang

kurang lebih sama. Untuk petri atau pelat dengan sumuran, agar seeding merata, dilakukan

resuspensi berkali-kali, dan suspensi sel dijatuhkan merata di seluruh lapangan. Kemudian

didiamkan sekitar 5 menit di dalam BSC agar sel mengendap, dan perlahan dipindahkan ke

dalam inkubator. Perhatikan jangan sampai terjadi turblensi. Untuk flask, agar seeding merata,

dilakukan gerakan angka 8, yang dapat dilakukan di dalam inkubator. Sel yang ditanam

kemudian diamati untuk melihat apakah ada kontaminasi, apakah sel sudah melekat, dan

apakah sel sudah konfluens dan dapat dipanen. Bila sel sudah melekat, sebaiknya medium

diganti untuk menghilangkan TrypLE Select.

Penggantian medium

Untuk penggantian medium, wadah dikeluarkan dari inkubator. Saat membuka

inkubator, jangan lupa menggunakan masker, agar kuman dari pernafasan tidak masuk ke

inkubator. Wadah disemprot alkohol 70% dan diletakkan dalam BSC. Medium disedot dengan

hati2, jangan sampai melukai sel yang sedang tumbuh, dan medium komplit segar dimasukkan.

Untuk wadah besar, memasukkan medium komplit ke wadah sebaiknya langsung dari filter,

supaya terjamin kesterilannya. Mengganti meddium pada P0, bila kultur tampak kotor, sebelum

memasukkan medium komplit, kultur dapat dicuci dengan PBS pH 7,4.

26

Analisis (karakterisasi) SPM

SPM bersifat melekat pada plastik wadah kultur, berbentuk fibroblastik (Gambar-4),

mengekspresikan marka permukaan SPM, yang dapat diidentifikasi dengan flowsitometri, dan

dapat berdiferensiasi menjadi osteosit, kondrosit dan adiposit. SPM minimal harus

mengekprseikan CD73, CD90 dan CD105 (>95%) menurut ISCT. Ketiga marka permukaan

ini juga dimiliki oleh fibroblas. Akan tetapi, SPM asal tali pusat (Wharton’s jelly) juga

mengekpresikan marka pluripotensi, yaitu Oct4, Sox, dan NANOG. Selain itu, SPM juga

positif SSEA3/4 dan GD2. Pada tali pusat, terdapat sel punca yang berada didaerah subamnion,

yang bila dikultur dengan medium eptitelial, akan menghasilkan sel punca pensekresi musin,

yang disebut sebagai mucin secreting cord lining epithelial cells (MucCLEC), yang mirip

dengan sel punca limbal (yang digunakan untuk kelainan kornea) karena mengekspresikan

AGCG2 dan p61 yang merupakan marka permukaan sel punca limbal.

Gambar 4. Morfologi fibroblastik (A). Sebagai perbandingan, (B) adalah morfologi epiteloid.

27

Uji tambahan SPM

Selain uji di atas, ada pula uji tambahan yang dapat meramalkan hasil terapi sel punca,

seperti: uji pembentukan koloni sesudah thawing, uji senesens, pemeriksaan kariotip, dan

berbagai uji kemampuan SPM sesuai dengan hasil kerja yang diharapkan, misalnya: bila

diberikan pada graft versus host disease perrlu diuji kemampuan imunomodulasinya, bila

diberikan pada infark miokard atau stroke, perlu diuji kemampuan angiogenesisnya, dan bila

diharapkan memberi efek parakrin, perlu diperiksa profil sekretomnya.

Penutup

Untuk jaringan tali pusat, cara isolasi dengan cara eksplan multipanen adalah cara

yang mudah dan ekonomis, serta hasilnya sesuai dengan kriteria yang telah ditetapkan oleh

ISCT. Akan tetapi, agar pemberian SPM memberikan hasil yang baik, diperlukan berbagai uji

tambahan.

DAFTAR PUSTAKA

1. Pawitan JA et al. Int J PharmTech Res 2014;6(4):1202-8.

2. Budiyanti E. Tesis Magister Biomedik, Universitas Indonesia, Jakarta, 2014.

3. Noviyanti. Tesis Magister Biomedik. Universitas Indonesia, Jakarta, 2015.

4. Pawitan JA. Int J PharmTech Res 2016;9(8):214-20.

28

BAB 4

FLOW CYTOMETRY: CELL ANALYSIS AND SORTING

Evah Luviah, M. Biomed

A. How the history begins (historical perspective)

Flowsitometri merupakan hasil kombinasi teknologi yang berasal dari berbagai

konsep. Flowsitometri didedikasikan untuk para peneliti dibidang biologi maupun medis untuk

mempelajari populasi sel atau sel tunggal secara akurat.1,2

Flow cytometry, meliputi 3 istilah yaitu flow = fluid (aliran), cyto = cell (sel), dan

metry = measurement (pengukuran) sehingga flow cytometry dapat diartikan sebagai suatu

sistem untuk mengukur dan menganalisis multi karakteristik dari suatu partikel tunggal,

biasanya berupa sel yang terdapat pada cairan (atau berupa suspensi) yang dialirkan untuk

kemudian dilewatkan pada pancaran sinar tertentu (laser beam) dan dikonversikan dalam

bentuk algoritma pada komputer.1,2

Sejarah ditemukannya flowsitometri tidak terlepas dari penemuan-penemuan berbagai

disiplin ilmu. Satu abad setelah ditemukannya mikroskop cahaya oleh Anthony van

Leeuwenhoek, ditemukan prinsip formasi droplet oleh Lord Rayleigh pada tahun 1879.

Beberapa puluh tahun setelahnya Moldavan (1934) mengaplikasikan sistem fluidik untuk

menghitung sel secara otomatis melalui tabung kapiler pada mikroskop yang dilengkapi

apparatus fotoelektrik yang terkonjugasi dengan lensa okuler. Prinsip yang serupa dengan

modifikasi kemudiaan dipatenkan dan dikomersialisasikan oleh Wallace Coulter pada tahun

1949 sebagai alat automatic particle counter. Tahun 1953, Crosland-Taylor menggunakan

prinsip laminar flow sebagai chamber untuk menghitung sel secara automatic. Penemuan ini

kemudian menjadi prinsip dasar hydrodynamic focusing yang telah banyak digunakan pada

mesin flowsitometer saat ini. 3-5

Penemuan Lord Rayleigh tahun 1879 mengenai formasi droplet yang tidak beraturan

tanpa adanya gaya dukungan eksternal terhadap aliran fluidik ini kemudian dimanfaatkan oleh

Richard Sweet (1965) untuk membuat mesin printer dengan memberikan muatan elektrostatik

pada droplet dan mengarahkan droplet sesuai input sinyal menggunakan lempengan bermuatan.

Di saat yang sama, saat terjadi perang dingin, Mack Fulwyler sedang memonitori produk-

produk makanan yang terkontaminasi bahan nuklir yang tersebar di udara (atmospheric nuclear

weapon). Mack Fulwyler ingin mengetahui apakah terdapat perbedaan populasi sel darah

29

merah pada seseorang yang telah memakan makanan terkontaminasi bahan nuklir dengan yang

tidak terkontaminasi (normal). Mack Fulwyler kemudian menggabungkan penemuan Lord

Rayleigh dan Richard Sweet untuk membuat mesin sel sortir pertama. Mesin flowsitometer

dan sel sortir berikutnya kemudian semakin berkembang seiring bertambahnya penemuan

fluorokrom saat itu.

Orang pertama yang mendesain mesin flowsitometri berbasis fluorescens adalah

Wolfgang Göhde (1968) dan telah dijual secara komersial. Sementara itu, Lou Kamentsky and

Myron Melamed menggunakan alat (rapid cell spectrophotometer/RCS) untuk membedakan

sel normal dan sel kanker menggunakan prinsip kemampuan sel terhadap absorpsi dan

penyebaran (scattered) cahaya untuk melihat konten DNA dan ukuran sel.6-11 Alat RCS

tersebut merupakan sebuah prototipe yang digunakan oleh Leonard Arthur Herzenberg sebagai

model sistem untuk memisahkan sel yang dilabeli fluorokrom terang (fluorescin) dan redup

(rhodamine) menggunakan laser argon. Saat itu, Herzenberg yang seorang imunologis bekerja

sama dengan Cesar Milstein menemukan antibodi monoclonal akan sangat membantu untuk

membedakan sel satu dengan lainnya. Leonard A. Herzenberg membuat sebuah tim peneliti

yang berasal dari berbagai interdisiplin (fisika, imunologi, dan computer science) termasuk

Richard Sweet untuk membuat sebuah instrument yang mampu mengidentifikasi serta men-

sortir sel menggunakan marka permukaan sel yang mampu dideteksi oleh antibodi

berfluorokrom secara cepat dan akurat. Tidak lama setelahnya (1970) mesin yang selama ini

dikenal fluorescens-activated cell sorting (FACS) ditemukan untuk pertama kalinya dan mesin

FACS pertama yang dibuat ini dipajang di Museum Smithsonian dan Leonard Arthur

Herzenberg kemudian dikenal sebagai The Father of Flow cytometry.11,12

Istilah flowsitometri dahulu dikenal sebagai “pulse cytophotometry” yang kemudian

istilah ini berganti menjadi “flow cytometry” pada tahun 1976. Konsep alat flowsitometer

awalnya adalah sebuah sel sortir yang terkadang kemampuan alat flowsitometer untuk men-

sortir sel dihilangkan karena beberapa pekerjaan rutin di laboratorium tidak melakukan sortir

sel. Namun demikian, istilah fluorescens-activated cell sorting (FACS) masih digunakan oleh

Beckton Dickinson flow cytometers.11,12

30

B. Konsep tiga sistem utama pada flowsitometri

1. Sistem fluidik

Sistem fluidik flowsitometer dirancang untuk menghantarkan sel dalam aliran

tunggal yang teratur ke area titik interogasi (interrogation point) sehingga hanya satu

sel tunggal yang melewatinya dalam satu waktu tertentu. Terdapat sistem laminar flow

(streamline flow) yang memungkinkan dua aliran yang memiliki karakteristik berbeda

mengalir secara paralel dan stabil yang dimensinya dapat ditentukan oleh rasio velositas

dan viskositas kedua aliran tersebut. Teknik untuk mengontrol kedua aliran ini disebut

sebagai hydrodynamic focusing. Sel diinjeksikan ke tengah menuju interrogation point

yang di sekelilingnya dialirkan cairan yang berperan sebagai ‘sheathed fluid’. Kedua

aliran ini dialirkan oleh tekanan udara yang terdapat pada mesin.1,2,13,14

2. Sistem optik

Setelah hydrodynamic focusing, tiap partikel akan melewati laser beam. Laser

(Light Amplification by Stimulated Emission of Radiation) merupakan sumber energi

foton (cahaya) yang sering digunakan dalam flowsitometer. Laser memproduksi sinar

dengan panjang gelombang tunggal dalam satu atau lebih frekuensi yang berbeda

(koheren), yang berarti, semua energi foton yang dihasilkan dapat diarahkan dan

difokuskan ke spot tertentu.1,2,13,14

Sinar yang dipancarkan dengan arah sudut > 20o disebut forward scatter (FSC),

sedangkan sinar yang dipancarkan dengan arah sudut mendekati 90o disebut side scatter

(SSC). Sinar FSC dan SSC kemudian ditangkap oleh detector dan disebut FSC dan SSC

channel. Forward scatter dapat merepresentasikan ukuran partikel sedangkan side

scatter dapat merepresentasikan kompleksisitas relatif sel atau partikel seperti

granularity dan struktur internal.1,2,13,14

Pengukuran sinar fluorescens yang dipancarkan oleh sel atau partikel dikontrol

oleh filter optikal yang dapat mem-blok maupun mentransmisikan sinar tersebut.

Terdapat tiga tipe filter optic yang digunakan yaitu long pass filter yang dapat dilewati

oleh panjang gelombang yang memiliki cutoff lebih tinggi, short pass filter, dapat

meneruskan sinar dengan panjang gelombang yang memiliki cutoff lebih rendah, dan

band pass filter yaitu filter yang dapat mentransmisikan sinar dengan panjang

gelombang spesifik sesuai rentangnya.1,2,13,14

31

3. Sistem elektronik

Sinar-sinar yang dihasilkan tersebut kemudian ditangkap oleh detector biasanya

berupa fotodioda (Photo Multiplier Tube). Sinyal yang ditangkap dibaca menjadi

sebuah tegangan. Saat partikel atau sel memasuki spot laser beam, output PMT yang

berupa tegangan (voltage) akan mulai naik (muncul) dan akan mencapai posisi puncak

saat partikel berada di tengah-tengah spot laser beam. Tegangan yang dihasilkan dapat

dikonversikan sebagai fungsi waktu. Setelah partikel lewat, maka PMT akan kembali

ke posisi baseline. Saat tegangan yang dihasilkan dari awal hingga akhir dari satu

partikel disebut sebagai ‘event’. Tidak semua yang melewati laser beam dapat dianggap

sebuah event, karena setiap partikel, debu, debris yang masuk akan terekam oleh

detector, oleh karena itu, dibutuhkan suatu parameter tertentu dan level ‘threshold’.

Sinyal-sinyal dari detector yang berupa tegangan akan dikuantifikasi oleh perangkat

lunak tertentu sehingga dapat direpresentasikan dalam bentuk grafik yang dapat

dianalisis dan kemudian diinterpretasikan.1,2,13,14

Gambar 1. Sistem fluidik flowsitometer.13

C. Aplikasi flowsitometri 1. Analisis komponen sel : DNA, RNA, protein, phenotyping: expression of membrane

and/or intracellular antigens. 2. Analisis fungsi sel : ionic flows (calcium,…), modification pH, variation in membrane

or mitochondrial potential, programmed cell death (apoptosis), cytokines, enzymatic activities, siklus sel, proliferasi sel.

3. Analisis transfeksi sel : GFP, FITC, dll. 4. Minimal residual disease (MRD), dll.

32

D. Tipe spesimen yang dapat diaplikasikan menggunakan flowsitometer 1. Sampel darah 2. Sumsum tulang (bone marrow) aspirates 3. Fine needle aspirates 4. Body fluids 5. Solid tissue biopsy like spleen, thymus yang sebelumnya telah terproses menjadi

suspensi sel.

E. Komponen – komponen alat BD FACS ARIA III

Gambar 2. Bagian – bagian dasar alat flowsitometer FACS ARIA III.13

Gambar 3. Bagian sample loading port flowsitometer FACS ARIA III. 13

33

Gambar 4. Fluidic carts flowsitometer FACS ARIA III.

Gambar 5. Sort collection chamber.13

34

Gambar 6. Posisi drawer tertutup (kiri), posisi drawer terbuka (kanan). 13

Gambar 7. Komponen laser dan filter BD FACS ARIA III.13

35

DAFTAR PUSTAKA

1. Shapiro HM. Practical Flow cytometry. 4th edition. New Jersey: John Wiley& Sons; 2003.

2. Givan AL. Flow cytometry: first principle. 2nd Edition. Canada: John Wiley & Sons; 2001.

3. Taylor PJC. A Device for Counting Small Particles suspended in a Fluid through a Tube. Nature. 1953 Jan;171:37–38.

4. Moldavan A. Photo-electric technique for the counting of microscopical cells. Science. 1934 Aug 24;80(2069):188-9.

5. Marshall D. The Coulter Principle: Foundation of and Industry. JALA. 2003; 8:72-81. 6. Fulwyler MJ. Electronic separation of biological cells by volume. Science.

1965;150:910-911. 7. OpenStaxCollege BC Campus’. Applications of electrostatics [Internet]. Diakses

dari:https://opentextbc.ca/physicstestbook2/chapter/applications-of lectrostatics/#import-auto-id2680305. Diakses tanggal 17 Agustus 2018.

8. Osborne GW. Recent Advances in Flow Cytometric Cell Sorting. Methods in cell biology. 2011; 102: 533-556. Doi:10.1016/B978-0-12-374912-3.00021-3. 533-556

9. Totowa: M. G. Macey ©Humana Press Inc. 2007; 257-276. Doi: 10.1007/978-1-59745-451-3_11.

10. Osborne GW. A Method of Quantifying Cell Sorting Yield in ‘‘Real Time’’. Cytometry Part A. 2010. 77A: 983-989

11. Herzenberg LA, Parks D, Sahaf B, Perez O, Roederer M, Herzenberg LA. The history and future of the fluorescens activated cell sorter and flow cytometry: a view from Stanford. Clinical Chemistry. 2002; 48(10):1819–1827.

12. Dangl JL, Lanier LL. Founding father of FACS: Professor Leonard A. Herzenberg (1931–2013). PNAS, 2013;110(2): 20848–20849. Doi:10.1073/pnas.1321731111.

13. BD FACS ARIA III User’s Guide. San Jose: Beckton, Dickinson & Company; 2012. 14. Davies D. cell sorting by flow cytometry. Flow Cytometry: Principles and

Applications.

36

BAB 5

PROTOKOL

A. KULTUR SEL PUNCA MESENKIMAL

BAHAN

Adapun bahan medium kultur untuk sel punca mesenkimal adalah sebagai berikut (tabel 1).

Tabel 1. Medium Kultur

No. Reagen Medium komplit Medium kriopreservasi 1. Anti bakteri (100U/mL) V V 2. Anti fungi (2500ng/mL) V V 3. Antikoagulan V V 4. Glutamax V - 5. Serum V V 6. Medium basal V V

NOTE: Filter medium dengan filter 0.22 µm dan tempatkan pada wadah steril.

B. CARA KERJA

Prosesing kultur primer Tali Pusat

Tali pusat sepanjang 5 cm di cuci dengan 0.5% povidine iodine. Setelah itu dibilas dengan

phosphate buffer saline pH 7.4 . Jika diperlukan pembuluh darah arteri dan vena dipisahkan

dari jaringan tali pusat. Setelah itu jaringan di cacah dengan ukuran 2-5 mm di dalam medium

komplit. Masing-masing potongan jaringan ditempatkan dalam well plate (24 well) masing-

masing 1 potong. Tambahkan satu tetes medium komplit pada setiap well untuk mencegak

kekeringan. Well plate di inkubasi dalam 370C, 5% CO2. Kultur diobservasi setiap hari

menggunakan mikroskop inverted.

Gambar 1: Prosesing kultur primer. 1. Pencucian tali pusat; 2. Plating eksplan

1 2

37

Prosesing kultur

Prosedur mengganti medium

1. Siapkan medium kultur komplit yang sudah steril (lihat tabel 1). Pembuatan medium

komplit harus fresh dan banyaknya disesuaikan dengan kebutuhan kultur untuk hari itu

atau hari berikutnya, maksimal 1 minggu.

2. Keluarkan kultur sel dari incubator CO2 yang akan diganti medium.

3. Sedot dan buang medium dalam wadah kultur sel.

4. Cuci dengan phosphate buffer saline pH 7.4 (jika diperlukan).

5. Masukkan medium komplit steril ke wadah kultur sel.

6. Masukkan kembali wadah kultur sel ke dalam inkubator CO2.

Prosedur panen sel, sub kultur, dan kriopreservasi

1. Siapkan medium kultur komplit yang sudah steril. Pembuatan medium komplit harus

fresh dan banyaknya disesuaikan dengan kebutuhan kultur untuk hari itu atau hari

berikutnya, maksimal 1 minggu.

2. Keluarkan kultur sel dari inkubator CO2 yang akan dipanen.

3. Sedot dan buang medium dalam wadah kultur sel.

4. Cuci dengan phosphate buffer saline pH 7.4.

5. Masukkan enzim disosiasi (dapat menggunakan tripsin/EDTA konsentrasi 0.025%,

0.05% atau 0.25%) (Ikebe et al., 2014) untuk sel yang dikultur pada well 12, 15-20 tetes

untuk TC Flask 25 atau 1.5-2 mL jika menggunakkan TC Flask 75, atau yang terpenting

adalah seluruh permukaan sel terendam. Homogenkan

6. Inkubasi selama 5 menit dalam incubator 37oC/5% CO2.

7. Jika sel sudah lepas, masukkan medium komplit steril fresh ke wadah kultur sel dengan

volume dua kali lipat dari volume enzim disosiasi yang ditambahkan

8. Sentrifugasi suspensi sel.

9. Buang supernatan,

9.1 Sub kultur

- Pelet ditambahkan medium komplit steril. Homogenkan.

- Hitung sel

- Tanam sel ke dalam wadah kultur dengan kepadatan 4000-5000 sel/cm2.

9.2 Kriopreservasi

- Pelet ditambahkan medium krio. Homogenkan

- Hitung sel

38

- Tambahkan cryoprotectant ke dalam suspensi sel. Resuspensi

- Masukkan suspensi sel ke dalam tabung krio

- Beri label pada tabung krio dengan keterangan asal sumber, pasase, tanggal krio.

- Masukkan tabung krio ke dalam mister frosty dan simpan ke dalam freezer -

800C, sebelum dipindahkan ke dalam cryotank.

Prosedur Hitung Sel

1. Sebanyak 10 µL suspensi sel dicampur dengan 10 µL trypan blue. Homogenkan.

2. Sebanyak 10 µL campuran suspensi sel dan trypan blue dimasukkan ke dalam

hemositometer melalui tepi kaca penutup

3. Letakkan hemositometer di bawah mikroskop dengan perbesaran 100x

4. Sel yang berada di kotak yang telah ditentukan (Gambar 2) dihitung. Sel yang tidak

berwarna berarti sel hidup sedangkan sel yang berwarna biru berarti sel mati.

4.1 Jumlah sel yang diperoleh dihitung dengan menggunakan rumus:

a. Sel/mL = (rata-rata jumlah sel tiap kotak/5) x faktor pengencer x 104

b. Sel total = (sel/ml) x volume suspensi sel yang diambil 10 µl

4.2 Kepadatan sel dihitung setelah mendapatkan jumlah sel menggunakan rumus:

% sel hidup = (sel hidup/(sel hidup + sel mati)) x 100 %

5 Bersihkan hemositometer dan kaca penutup setelah digunakan dengan alkohol 70 %

dan air deion.

Gambar 2. Hemositometer (Wiley and sons, Inc). Kaca penutup diletakkan diatas

hemositometer. “Load cell suspension” tempat memasukkan suspensi sel. Hitung sel

dikotak bertanda 1,2,3,4 dan 5.

39

C. KARAKTERISASI SEL PUNCA MESENKIMAL

UJI DIFERENSIASI TIGA JALUR: Kondrosit, Osteosit dan Adiposit

BAHAN

Medium Diferensiasi 3 Jalur

Medium diferensiasi berupa Kit StemPro Osteogenesis/Chondrogenesis and Adipocyte

Differentiation (ThermoFisher Scientific, USA) yang terdiri atas medium basal dan suplemen,

kemudian ditambahkan dengan kombinasi 100 unit/ml penicillin G sodium dan 100 µg/ml

streptomycin sulfate (Life Technologies Cat No. 15140), serta 2.5 µg/ml amphotericin (Life

Technologies Cat No. 15290). Suplemen diferensiasi dibuat aliquot untuk mencegah

dilakukannya siklus freeze-thawing berulang. Medium diferensiasi dibuat sesaat sebelum

digunakan, tidak untuk digunakan berulang.

Larutan pewarna diferensiasi

Pewarna adiposit

1. Stok larutan Oil red O, yaitu Oil red 0.5% dalam isopropanol (O1391, Sigma Aldrich)

atau apabila Oil red O tersedia dalam serbuk (O0625), terlebih dahulu dilarutkan

dalam isopropanol 100% dengan konsentrasi 0.5% (5 gr/100 mL). Buat larutan siap

pakai dengan cara mencampurkan 2 bagian dH2O dengan 3 bagian stok Oil Red O,

biarkan campuran selama 1 jam, kemudian saring dengan syringe filter 0.22 µM.

2. Simpan stok larutan Oil Red O dalam wadah gelap, suhu ruang.

3. Larutan siap pakai Oil Red O harus dihabiskan saat itu juga, sedangkan larutan stok

Oil Red O dapat digunakan hingga 6 bulan

Pewarna osteosit

1. Serbuk Alizarin red S dilarutkan dalam dH2O sebanyak 2% (2 gr/100mL), stir,

kemudian adjust pH dengan 0.1% ammonium hidroksida (NH4OH) atau 1 N NH4OH

hingga pH mencapai 4.2 (diukur dengan pH meter), larutan kemudian disaring dengan

syringe filter 0.22µM.

2. Larutan disimpan dalam wadah tertutup dan suhu ruang.

3. Larutan dapat digunakan selama kurang dari 1 bulan, apabila larutan sudah lebih dari

1 bulan, adjust pH kembali dengan 0.1% NH4OH.

40

Pewarna kondrosit

1. Serbuk Alcian Blue dilarutkan dalam HCl 0.1 N dengan konsentrasi 1% (1 gram/100

mL). Larutan disaring dengan menggunakan syringe filter 0.22µM.

Larutan 0.1 N HCl dapat dibuat dengan melarutkan 100µL HCl pekat (10 M) dalam

9.9 mL dH2O.

2. Simpan larutan dalam wadah tertutup, suhu ruang. Larutan dapat digunakan dalam

jangka waktu yang cukup panjang.

CARA KERJA

Uji Diferensiasi Tiga Jalur: Kondrosit, Osteosit dan Adiposit

1. Sel Punca mesenkimal dikultur hingga 80% konfluen (sekitar 4 hari) dalam kondisi

37oC, 5% CO2

2. Setelah 80% konfluen, ganti medium pertumbuhan dengan medium diferensiasi

khusus osteosit/kondrosit dan adiposit.

3. Kultur diferensiasi dilakukan selama 14-21 hari, dalam kondisi 37oC, 5% CO2

4. Medium kultur diferensiasi diganti 3 kali dalam seminggu

5. Setelah proses kultur selesai, kemudian dilanjutkan dengan proses fiksasi dan

pewarnaan

Pewarnaan Diferensiasi 3 Jalur

1. Sedot media dan buang.

2. Sel dibilas PBS 1X sebanyak 2X.

3. Tambahkan larutan fiksasi (formolsaline 10% atau 4% paraformaldehyde) ke wadah

kultur sampai sel terendam, inkubasi pada suhu ruang selama 60 menit.

4. Untuk diferensiasi osteosit, kultur sel diwarnai dengan 2% alizarin red S pH 4,1 – 4,3,

diinkubasi selama 20 menit pada suhu ruang, kondisi gelap.

5. Untuk diferensiasi kondrosit, kultur sel diwarnai dengan 1% Alcian blue (dalam 0,1

N HCl), diinkubasi selama 1-2 jam atau overnight pada suhu ruang, kondisi gelap.

6. Untuk diferensiasi adiposit, setelah fiksasi, kultur sel kemudian direndam 60%

isopropanol sesaat, sedot kembali isopropanol, kemudian kering anginkan. Kemudian

dilanjutkan dengan pewarnaan menggunakan larutan siap pakai Oil Red O, diinkubasi

selama 5-10 menit pada suhu ruang, kondisi gelap.

41

7. Sel kemudian dibilas dengan dH2O sebanyak 3 – 4 kali.

8. Sel diamati di bawah mikroskop inverted.

Hasil Pewarnaan Uji Diferensiasi

Pewarnaan matriks ekstraseluler kondrosit (GAG, asam hyaluronat, kondroitin sulfat) dengan Alcian Blue

Pewarnaan deposit kalsium dengan Alizarin red

Pewarnaan droplet minyak dengan Oil Red O

42

UJI MARKA PERMUKAAN MSC DENGAN FLOW CYTOMETRY Preparasi sel untuk pemeriksaan ekspresi marka permukaan MSC

Sel punca yang sudah konfluens dipanen dan dicuci dengan PBS lalu disentrifugasi. Sel

kemudian dihitung dan sisanya digunakan untuk sitometri alir. Sel dimasukkan ke dalam

tabung 5 ml dan dicuci dengan buffer DPBS 1x dan disentrifugasi 500xg selama 5 menit,

pencucian dilakukan sebanyak 2x. Kemudian sel ditambahkan antibodi terhadap molekul

permukaan selama 30 menit pada suhu ruang dalam kondisi gelap yang didalamnya sudah

mengandung marka positif cocktail CD90, CD73, CD105 dan marka negatif cocktail CD34,

CD45, CD11b, CD19, dan HLA-DR. Selesai inkubasi, sel dicuci dengan buffer BD Fasc flow

dan disentrifugasi 500xg selama 5 menit sebanyak 2x, kemudian dianalisis menggunakan alat

flowsitometer.

Tabung 5 ml diberi label :

Untuk kompensasi:

Tabung A : sel + FITC mouse anti-human CD 90

Tabung B : sel + PE mouse anti-human CD44

Tabung C : sel + PerCP-Cy™5.5 Mouse Anti-Human CD105

Tabung D : sel + APC Mouse anti-Human CD73

Pembacaan sampel:

Tabung E : sel saja

Tabung F : sel + positive and negative Isotype Control cocktail

Tabung G : sel + Positive and negative cocktail

Adapun urutan pembacaan pada alat yaitu:

1. Tabung yang berisi sel saja (tabung E) à untuk setting alat

2. Tabung F (isotype control cocktail (+/-)

3. Kompensasi :

Tabung A (FITC-CD90)

Tabung B (PE-CD44)

Tabung C (PerCP-Cy™5.5 –CD105)

Tabung D (APC – CD73)

4. Tabung G ( (+/-) cocktail)

43

UJI PROLIFERASI MSC DENGAN FLOW CYTOMETRY

Protokol di bawah ini adalah protokol dari instruksi manual Invitrogen Click-It Alexa Fluor

488 EdU cell Proliferation assay kit (Click-It Cell Proliferation Assay (Life Technologies,

Carlsbad-USA).

A. Cek komponen EdU assay

Sebelum memulai preparasi, pastikan komponen-komponen yang diperlukan dalam

eksperimen ini tersedia. Tabel 1 adalah komponen yang telah tersedia dalam kit.

Tabel 1. Komponen yang tersedia dalam kit

No. Deskripsi Komponen Jumlah Konsentrasi Storage Keterangan 1 EdU A 10 mg - 4oC Store at -20oC for 1 yr after

diluting 2 Alexa Fluor 488 picolyl azide

(Cat. C10632) B 130 µL DMSO

solution 4oC

3 Dimethylsulfoxide (DMSO) C 4.5 mL - 4oC 4 Click-iT fixative D 5 mL 4% PFA

dalam PBS 4oC

5 Click-iT saponin-based permeabilization & wash reagent

E 50 mL 10X 4oC Pengenceran harus dibuat fresh sesuai volume yang dibutuhkan

6 Copper protectant F 0.5 mL 100 mM 4oC 7 Click-iT EdU buffer additive G 400 mg - 4oC Store at -20oC for 1 yr after

diluting

Komponen yang tidak tersedia di dalam kit

1 Serum (BSA, FBS, FCS, dll.) 2 PBS atau DPBS atau TBS 3 Deionized water 4 Flow tube 5 mL

B. Preparasi:

Sebelum memulai preparasi, pastikan sel telah siap dan sedang dikultur setidaknya 24 jam

sebelum dilakukan EdU assay.

a. Keluarkan reagen dari refrigerator, biarkan dalam suhu ruang.

b. Buat konsentrasi EdU menjadi 10mM dengan menambahkan 4 mL DMSO (komponen

C) ke tabung berisi EdU, homogenkan. EdU terlarut dapat disimpan dalam freezer -

20oC selama 1 tahun. DMSO dapat diganti PBS 1x.

c. Siapkan 500 mL (atau secukupnya) 1X Click-iT™ saponin-based permeabilization &

wash reagent (komponen E ) dengan menambahkan 50 mL komponen E ke 450 mL

44

PBS dengan 1% BSA. Komponen yang telah diencerkan dapat bertahan selama 6 bulan

dan dapat bertahan 1 tahun dalam bentuk konsentrat 10x dalam suhu 2-8oC.

d. Tambahkan 2 mL deionized water ke vial Click-iT EdU buffer additive (komponen G)

untuk membuat 10x concentrated komponen G. Komponen G terlarut dapat disimpan

di -20oC selama satu tahun.

*Saat dilakukan eksperimen, buat 1x komponen G dengan cara menambahkan

akuabides sesuai dengan perbandingan 1:10 (komponen G : Volume total).

C. Prosedur kerja:

1. Tambahkan EdU ke medium kultur hingga konsentratsi 10 µM dan homogenkan.

Inkubasi selama 1 – 2 jam dalam incubator CO2. Makin sedikit EdU yang ditambahkan

semakin lama waktu inkubasi dibutuhkan. Inkubasi sel dengan EdU dapat dilakukan 24

jam dengan menambahkan 0.1 µL EdU/mL medium kultur sel.

2. Selesai inkubasi, panen sel, cuci sel 1 kali dengan PBS (+ 1% serum).

*Pada tahap ini, jika diinginkan, sel dapat ditambahkan antibodi marka permukaan atau

internal membran dan ikuti prosedur sesuai petunjuk manual reagen antibodi yang

digunakan.

3. Tambahkan 100 µL click-it fixative (komponen D) ke pellet sel, homogenkan.

4. Cuci sel dengan 3 mL PBS (+ 1% serum), sentrifugasi 500xg, 5 menit.

5. Tambahkan 100 µL Click-iT saponin-based permeabilization & wash reagent (1x) yang

telah disiapkan sebelumnya, homogenkan, inkubasi 15 menit.

6. Buat cocktail reaksi Click-iT sesuai petunjuk tabel 2 di bawah ini :

Tabel 2. Volume reaksi koktail Click-iT Plus.

No. Deskripsi 1 (µL)

2 (µL)

5 (µL)

10 (µL)

1 PBS 438 875 2190 4380

2 Copper protectant (komponen F) 10 20 50 100

3 Fluorescent dye picolyl azide (komponen B) 2.5 5 12.5 25

4 (1x) Reaction buffer additive (komponen G) 50 100 250 500

Total volume 500 1000 2500 5000

*Koktail Click-iT Plus ini harus dibuat fresh dan baiknya segera dicampurkan ke sampel dalam hitungan waktu 15 menit setelah dicampur.

7. Tambahkan 500 µL koktail Click-iT Plus ke tabung berisi sel (prosedur no.5),

homogenkan. Total volume reaksi per tabung atau per sampel adalah 600 µL.

45

8. Inkubasi selama 30 menit, RT, dalam kondisi gelap.

9. Cuci sel dengan 3 mL Click-iT saponin-based permeabilization & wash reagent (1x)

(komponen E).

10. (Optional). Tambahkan Ribonuclease A ke tiap tabung dan homogenkan.

11. (Optional). Tambahkan reagen DNA staining seperti PI atau 7AAD dan ikuti prosedur

sesuai petunjuk pada manual reagen DNA staining tersebut.

12. Sampel siap dianalisis menggunakan flowsitometer.

46

PEMILAHAN SEL (SORTING)

A. Preparasi pemilahan sel (sorting)

1. Sebelum menyalakan mesin, pastikan facsflow, DI water, ethanol, Facsclean,

Facsrinse telah terisi penuh dan mencukupi untuk pengoperasian alat di hari itu.

2. Nyalakan mesin dan dan lakukan start up.

3. Pasang Nozzle tip dengan benar dan pastikan untuk memasang nozzle yang sesuai

setingan dan sesuai aplikasi yang diinginkan. Ukuran Nozzle yang dipilih setidaknya 3

kali lipat lebih besar dari ukuran sel. Makin besar ukuran nozzle disarankan untuk

sorting sel-sel yang rentan terhadap stres.

Tabel 1. Setingan penggunaan nozzle tip

Nozzle size (µM)

Tekanan (Psi) Drop drive freq. (kHz)

Gap Accudrop beads threshold (events/sec)

70 70 87 5-6; 6-10 1500-3000 85 45 45-47 8-9 800-2000

100 20 30-32 10-12; 10-18 600-1500 130 10 14 11-13 400-1200

Keterangan: Nilai setingan di atas bergantung pada kondisi alat saat itu.

4. Lakukan start up dengan memposisikan cursor pada menu “Cytometer” à pilih

“Fluidic start up”, ikuti langkah-langkah yang ditampilkan pada layar (window dialog

box)

B. Stream set up

5. Setelah start up selesai, nyalakan stream dengan meng-klik tombol silang pada “break

off window”, tunggu hingga stream menyala dan stabil sampai ±3 menit.

6. Apabila perlu, buka “sort block access door”, perhatikan stream secara manual dan

pastikan stream berbentuk lurus dan jatuh tepat pada bagian tengah “waste drawer”.

7. Sesuaikan posisi “break off point” dengan cara mengatur amplitudo (lihat tabel 1).

Lakukan koreksi nilai stream hanya jika diperlukan.

8. Masukkan current value “drop 1” dan “gap” ke kotak target value (kotak sebelah kiri)

pada “break off window”.

9. Aktifkan “sweet spot”.

10. Tunggu stream menyala 1 – 20 menit atau sampai stream stabil.

47

C. Test the drop deflection

11. Klik tombol “voltage” pada “side stream window”. Pastikan stream tidak berubah dan

posisi tetap di tengah.

12. Klik “test sort”. Pastikan posisi stream membelok dan terbagi sesuai posisi stream yang

diaktifkan (side stream). Geser voltage sliders ke kanan dan ke kiri untuk memastikan

“deflection plates” bekerja dengan baik. Contoh: geser kedua voltage slider posisi

terluar menjadi 90% deflection point dan 45% pada kedua stream bagian tengah.

13. Apabila stream telah stabil, kembalikan semua ke posisi semula, matikan voltage.

D. Adjusting the drop charge pattern (drop delay determination)

Manual drop delay set up

14. Buka “experiment” baru, buka “new specimen” dan “new tubes”, beri nama tubes

“accudrop delay setting”.

15. Klik “Laser tab” pada “Cytometer window”, ubah “window extension” menjadi 0.00.

48

16. Buat “scatter plot” FSC vs SSC pada “global worksheet”, buat rectangle gate. Seperti

contoh di bawah ini:

17. Buka menu “sort layout” pada “experiment”. Double click. Kemudian pada kotak

“device” pilih “2 tube”, pada kotak “precision” pilih “Initial”, pada kotak “target events”

pilih “continues”, pada kotak “save sort report” pilih “save all”. “save conflicts” dan

“index sorting” dapat diceklis bila diperlukan. Untuk memilih populasi mana yang ingin

disorting, klik kanan pada kotak “left” à “add” P1. Bagian “Right” dapat dikosongkan.

18. Siapkan 1 ml larutan facsflow pada tabung falcon 5 ml dan teteskan 1 tetes accudrop

reagen pada tabung tersebut, homogenkan, pasang pada sample loading port.

Accudrop reagen dalam Facsflow 0.5 – 1 ml yang tersisa masih dapat digunakan hingga

1 minggu ke depan dengan penyimpanan di 4oC, kondisi gelap.

Accudrop merupakan reagen berisi beads yang dilengkapi komponen tertentu untuk

dapat terbaca oleh sistem AccuDrop pada alat. Sistem AccuDrop terdiri dari red diode

laser, filter block, dan CCD camera.

49

19. Posisikan pointer ke tube “drop delay setting” klik “load”.

20. Klik “Parameter tab” pada “Cytometer window”, sesuaikan posisi beads accudrop

terdapat pada area gateing population dengan meng-klik tanda panah ke atas dan ke

bawah pada plot FSC vs SSC.

21. Klik “sort” pada sorting window, jika muncul pesan dialog box untuk membuka “waste

drawer” pilih “cancel”.

22. Nyalakan “voltage”, klik “optical filter”, geser “voltage slide” ke kanan dan ke kiri

intensitas side stream 100% jatuh ke kotak sebelah kiri. Tekan tombol “CTRL” dan

arahkan panah cursor ke nilai “drop delay” pada “side stream window”. Saat mencapai

100% tunggu beberapa saat hingga stabil.

Automatic drop delay set up Untuk menentukan “drop delay” secara manual, dapat meng-klik tombol “Auto drop

delay” pada “side stream window”, maka akan muncul “auto delay dialog box” seperti

di bawah ini, klik “Start run” dan tunggu hingga muncul pesan berikutnya. Nilai drop

delay pada kotak yang tersedia akan otomatis terisi oleh nilai drop delay dengan

intensitas side stream tertinggi dan penentuan drop delay otomatis akan terhenti dengan

sendirinya dan secara otomatis “precision” akan berubah ke “fine tune”.

50

23. Pada “sort lay out view”, ubah “precision” ke “fine tune”.

24. Lanjutkan optimasi nilai “drop delay” dengan nilai increment yang lebih kecil, hingga

intensitas side stream mencapai >95%.

25. Setelah mendapatkan nilai “drop delay” yang tepat dan stabil, lakukan tes sorting.

E. Sorting test

26. Pasang tabung flow 5 ml kosong pada “collection device”.

27. Nyalakan “voltage”, dan klik “test sort” pada “side stream window”.

28. Geser “voltage slider” hingga mendapatkan 4-way side stream.

29. Pada “sort lay out window”, klik tombol “waste drawer” untuk membuka.

30. Buka “sort block access door” untuk melihat side stream secara manual, dan sesuaikan

“stream” agar masing-masing “stream” jatuh tepat di tabung.

31. Apabila telah sesuai, tutup “waste drawer” dan matikan “voltage”.

51

F. Sample sorting

32. Ganti tabung 5 ml yang terpasang dengan tabung 5 ml baru yang berisi 1 -2 ml PBS

untuk mengkoleksi sampel dan pasang pada “collection device”

33. Buka spesimen baru dan tube baru serta arahkan cursor ke tube baru tersebut, beri nama

sesuai nama sampel.

34. Pada “sort lay out”, bagian “left” atau “right” window tentukan populasi yang

diinginkan.

35. Pasang tabung berisi suspensi sel yang sudah diwarna dan telah dianalisis sebelumnya

pada “sample loading port”.

36. Klik “load” pada “acquisition dashboard”.

37. Posisikan “sample rate” ke angka 1-2.

38. Nyalakan “voltage”.

39. Buka “waste drawer” dan klik “sort”.

G. After the sort

40. Stop sorting dengan meng-klik tombol “sort” dan klik “unload” tabung sampel.

41. Jika ingin mengecek hasil sorting, dapat ke menu “sort à sort report”.

42. Eksport file FCS dan simpan di database dengan cara klik kanan folder “experiment à

save FCS file”.

43. “Load” tabung berisi FACSClean dan biarkan running selama 5 menit dengan “sample

rate” di angka 10-11.

44. “Load” tabung berisi FACSRinse dan biarkan running selama 5 menit dengan “sample

rate” di angka 10-11.

45. “Load” tabung berisi DI Water dan biarkan running selama 5 menit dengan “sample

rate” di angka 10-11.

46. “Unload” tabung, matikan “stream”.

52

H. Prepare for shutting down

47. Klik menu “Cytometer à Fluidic Shutdown”, ikuti langkah-langkah pada “dialog box”

yang tampil pada layar.

48. Klik menu “File à Quit”

49. Matikan instrument.

50. Matikan computer.

51. Masukkan Nozzle tip yang digunakan ke dalam tabung 5 ml berisi 1-2 ml DI Water,

sonikasi selama 10 menit. Selesai sonikasi, teteskan alkohol ke bagian lubang nozzle

tip di atas tisu kering dan bersih, kering-anginkan nozzle tip. Simpan kembali nozzle

ke kotak wadah.

52. Buka “sort block access door”, bersihkan “deflection plates” dengan alcohol 70%

diikuti dengan DI Water.

53. Bersihkan beberapa bagian lain instrument dengan Ethanol 70%, misalnya bagian

“sample loading port” & “collection tube area”.

54. Buang limbah cair dari tanki waste ke wadah khusus dan beri label wadah limbah

simpan di ruang washing & disposal dan kontak tim K3L Lab.

I. Hal-hal yang perlu diperhatikan sebelum sorting:

• Pastikan fluidic sistem ok dan fluidic cadangan cukup

• Pastikan sampel sel tidak clumping à doublet discrimination perlu dilakukan sebelum

running sampel untuk sorting. Bila perlu, DNAse dapat ditambahkan ke sampel sel

sebelum sorting untuk mencegah “cell clumping”.

• Pastikan CST baseline dan performance OK

53

DAFTAR PUSTAKA BD FACS ARIA III User’s Guide. San Jose: Beckton, Dickinson & Company; 2012. Carvalho AM, Yamada ALM, Golim MA, Alvarez LEC, Jorge LL, Conceicao ML, Deffune E,

Hussni CA, Alves ALG. Characterization of mesenchymal stem cells derived from equine adipose tissue. Arq.Bras.Med.Vet.Zootec. 2013; 65(4): 939-45

Cortes Y, Ojeda M, Araya D, Duenas F, Fernandez MS, Peralta OA. Isolation and multilineage differentiation of bone marrow mesencymal stem cells from abattoir-derived bovine fetuses. BMC Veterinary Research. 2013; 9:133. http://www.biomedcentral.com/1746-6148/9/133

criteria for defining multipotent mesenchymal stromal cells. The International Society for Cellular Therapy position statement. Cytotherapy. 2006;8(4):315-317.

Deskins DL, Bastakoty D, Saraswati S, Shinar A, Holt GE, Young PP. Human mesenchymal stromal cells: Identifying assay to predict potency for therapeutic selection. Stem Cell Translational Medicine. 2013;2: 151-8

Dominici, M., Blanc, K.L., Mueller, I., Cortenbach, I.S., Marini, F.C., Krause, et al. Minimal Human MSC Analysis Kit. Technical data sheet. Canada: Beckton, Dickinson & Company;

2015 Manual instruction data sheet EdU Click-iT Plus 488 Alexa Fluor (Cat. C10632). Life

Technologies; Carlsbad, USA: 2016. Pawitan JA, Kispa T, Mediana D, Goei N, Fasha I, Liem IK, Wulandari D. Simple production

method of umblical cord derived mesenchymal stem cell using xeno-free materials for translational research. J.Chem.Pharm.Res. 2015; 7(8): 652-6

54

PENUTUP

Demikianlah modul ini kami buat untuk memberikan pemahaman dasar mengenai

aspek biologi, cara pemrosesan, dan contoh aplikasi klinis dari sel punca mesenkimal. Kami

berharap buku ini bermanfaat untuk para peneliti, mahasiswa, dan masyarakat ilmiah yang

tertarik untuk melakukan penelitian dasar mengenai sel punca mesenkimal.

55

56

57

58

59