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UNIVERSIDAD AUTÓNOMA DEL ESTADO DE MÉXICO
FACULTAD DE CIENCIAS AGRÍCOLAS
EFECTO DE Beauveria bassiana Y Metarhizium anisopliae COMO BIOCONTROLADORES DEL BARRENADOR DE LAS RAMAS DEL
AGUACATERO (Copturus aguacatae Kissinger)
JENY MICHUA CEDILLO
MODALIDAD: TESIS
ASESORES:
Dr. OMAR FRANCO MORA Dr. ÁLVARO CASTAÑEDA VILDÓZOLA
MARZO 2011
CAMPUS UNIVERSITARIO “EL CERRILLO”, EL CERRILLO PIEDRAS BLANCAS, TOLUCA, MÉX.
T E S I S
Q U E C O M O R E Q U I S I T O P A R C I A L P A R A O B T E N E R E L T Í T U L O D E I N G E N I E R O A G R Ó N O M O F I T O T E C N I S T A P R E S E N T A
iii
ÍNDICE CONTENIDO PAG.
AGRADECIMIENTOS i
DEDICATORIAS ii
ÍNDICE iii
LISTA DE FIGURAS iv
RESUMEN viii
ABSTRACT x
I. INTRODUCCIÓN 1
II. OBJETIVOS 3
III. HIPÓTESIS 4
IV. REVISIÓN DE LITERATURA 5
4.1. Aguacate 5
4.1.1. Antecedentes 5
4.2. Plagas cuarentenarias 6
4.2.1. Copturus aguacatae 6
4.2.1.1. Antecedentes 6
4.2.1.2. Distribución 7
4.2.1.3. Taxonomía 7
4.2.1.4. Descripción general 7
4.2.1.5. Ciclo biológico 9
4.2.1.6. Hábitos 10
4.2.1.7. Daños 11
4.2.1.8. Control químico 12
iv
4.2.1.9. Control cultural 12
4.2.1.10. Control biológico 13
4.3. Muestreo de Copturus aguacatae 13
4.3.1. Distribución del barrenador en el dosel del árbol 13
4.3.2. Consideraciones en el muestreo 14
4.4. Entomopatógenos 14
4.4.1. Beauveria bassiana 16
4.4.1.1. Morfología 17
4.4.1.2. Taxonomía 17
4.4.1.3. Espectro de acción 17
4.4.2. Metarhizium anisopliae 18
4.4.2.1. Morfología 18
4.4.2.2. Taxonomía 18
4.4.2.3. Espectro de acción 19
4.5. Control de calidad y patogenicidad de Metarhizium anisopliae 19
4.5.1. Tamaño de partícula 19
4.5.2. Viabilidad de conidias 20
4.5.3. Contenido de humedad de Metarhizium anisopliae. 20
4.6. Enemigos naturales de Copturus aguacatae Kissiger 20
4.6.1. Parasitoides 20
V. MATERIALES Y MÉTODOS 21
5.1. Área de estudio 21
5.2. Muestreo de larvas y adultos de Copturus aguacatae 21
v
5.3. Aplicación de entomopatógenos 22
5.4. Diseño experimental 23
5.5. Análisis de datos 23
VI. RESULTADOS Y DISCUSIÓN 24
6.1. Porcentaje de infestación 24
6.2. Cinética de la población 24
6.3. Larvas y pupas 26
6.4. Adultos 27
6.5. Aplicación de Entomopatógenos 27
6.5.1. Efecto de los biocontroladores en los estados de desarrollo de C. aguacatae 28
6.6. Otros enemigos naturales 32
VII. CONCLUSIONES 33
VIII. SUGERENCIAS
34
IX. BIBLIOGRAFÍA 35
X. APÉNDICE
37
vi
LISTA DE FIGURAS
Figura 1. Adulto de Copturus aguacatae sobre rama de aguacatero. 10
Figura 2. Ciclo biológico de Copturus aguacatae Kissinger. 11
Figura 3. Población de Copturus aguacatae en un huerto de aguacate ´Hass´ en
Malinalco, México, 2010. Los datos son la media de cuatro ramas ± error estándar.
24
Figura 4. Temperatura y humedad relativa en San Sebastián, Malinalco. 2010.
Figura 5. Determinación de las etapas fenológicas y fluctuación poblacional de Copturus
aguacatae en San Sebastián, Malinalco. 2010.
25
25
Figura 6. Numero de larvas de C. aguacatae por rama en un huerto comercial de
aguacate ´Hass´ en Malinalco, México, 2010. Los datos son la media de cuatro ramas. 26
Figura 7. Numero de pupas de C. aguacatae por rama en un huerto comercial de
aguacate ´Hass´ en Malinalco, México, 2010. Los datos son la media de cuatro ramas. 26
Figura 8. Número de adultos de C. aguacatae por rama en un huerto comercial de
aguacate ´Hass´ en Malinalco, México, 2010. Los datos son la media de cuatro ramas. 27
Figura 9. Individuos por rama de C. aguacatae después de la aplicación de
entomopatógenos en un huerto de aguacate ´Hass´ en Malinalco, México, 2010. Los
datos son la media de cuatro ramas ± error estándar.
28
Figura 10. Individuos de C. aguacatae después de una aplicación de entomopatógenos. 29
Figura 11. Individuos de C. aguacatae después de dos aplicaciones de
entomopatógenos.
29
Figura 12. Número de individuos en la segunda aplicación de M. anisopliae y B.
bassiana
30
Figura 13. Número de adultos encontrados en el muestreo al follaje previo a la tercera
aplicación.
30
Figura 14. Número de oviposiciones detectadas en brotes, posterior a la tercera
aplicación
31
Figura 15. Numero de larvas encontradas por tratamiento en el muestreo 17. 31
Figura 16. Infestación por C. aguacatae en árboles de aguacate tratados con
entomopatógenos. Los datos son la media de 20 árboles ± error estándar.
32
vii
FIGURAS DEL APÉNDICE
Daños de Copturus Aguacatae Kissinger 37
1a.Daños de Copturus aguacatae 37
1b.Rama disectada con galerías de C. aguacatae K. 37
1c.Daños en rama por larva de Copturus aguacatae K 37
1d.Savia cristalizada en rama y tronco ocasionada por barrenador de ramas Copturus
aguacatae Kissinger
37
1e.Pupa en rama 37
1f. Adulto de Copturus aguacatae emergiendo de rama 37
Estadios Biológicos de Copturus aguacatae Kinssinger 38
2a. Larva de Copturus aguacatae 38
2b. Oviposiciones 38
2c. Larva de primer instar 38
2d. Larva de segundo instar 38
2e. Larva de tercer instar 38
2f. Larva de cuarto instar 38
2g. Larva de quinto instar 38
2h. Pupa 38
2i. Imagio 39
2j. Adulto 39
2k. Hembra 39
2l. Macho. 39
Enemigos naturales de Copturus aguacate 39
3a.Adulto parasitado por Beauveria bassiana 39
3b. Parasitoide de Copturus del género Urosigalphus 39
3c. Larva infectada por microorganismos 39
viii
EFECTO DE Beauveria bassiana Y Metarhizium anisopliae COMO BIOCONTROLADORES DEL BARRENADOR DE LAS RAMAS DEL AGUACATERO (Copturus aguacatae Kissinger)
RESUMEN Jeny Michua Cedillo. Ingeniero Agrónomo Fitotecnista. Universidad Autónoma del Estado de México. Facultad de Ciencias Agrícolas
Asesores: 1 Dr. Omar Franco Mora 2 Dr. Álvaro Castañeda Vildózola
1. Universidad Autónoma del Estado de México. Facultad de Ciencias Agrícolas. Laboratorio de Horticultura. Campus Universitario El Cerrillo Piedras Blancas Mpio. De Toluca, Méx. Código Postal 50200. Tel. (fax) 2-96-55-29 y 2-96-55-31. ofrancom@uaemex.mx 2. Universidad Autónoma del Estado de México. Facultad de Ciencias Agrícolas. Insectario.Campus Universitario El Cerrillo Piedras Blancas Mpio. De Toluca, Méx. Código Postal 50200. Tel.(fax) 2-96-55-29 y 2-96-55-31. acastanedav@uaemex.mx
El umbral económico de C. aguacatae Kissinger no esta adecuadamente determinado para
el estado de México. Para determinar el grado de infestación de dicha plaga, a partir del mes de
febrero de 2010 se realizaron 16 muestreos en una huerta de aguacate 'Hass' en la localidad de San
Sebastián, municipio de Malinalco. Se buscó observar la eficiencia de los hongos entomopatógenos
Metarhizium anisopliae y Beauveria bassiana como biocontroladores del insecto en estudio. Se
determinó el número de instares de los que consta el ciclo biológico del insecto y la duración de cada
uno de estos. El intervalo en el que se realizaron los muestreos fue de 15 días, para diferenciar los
instares de la larva y determinar cuál es el periodo de emergencia del adulto. De las ramas
colectadas se realizaron disecciones y extracción de larva para realizar una gráfica de incidencia del
insecto. Posteriormente, al encontrar adultos se procedió a realizar la primera aplicación de los
entomopatógenos B.bassiana y M.anisopliae, en junio, realizando aplicaciones de refuerzo, durante
julio y agosto, con un intervalo de 30 días. Con los datos de temperatura y humedad relativa se
correlacionó a las poblaciones del insecto obteniendo una mayor incidencia en el mes de mayo, junio
y mediados de julio respecto a los adulto. En el caso de larva, se detectó mayor infestación en el
mes de febrero, la cual disminuyo para volver a incrementarse en abril. Los resultados en cuanto a
las aplicaciones de entomopatógenos no mostraron diferencias estadísticas significativas, sin
embargo, se puede notar el control de instares fenológicos de Copturus aguacatae en relación con el
testigo. En Michoacán el mayor número de individuos se presenta en el mes de abril, mientras que
en el estado de México el máximo de infestación se estableció en el mes de febrero y marzo. En
cuanto al número de generaciones, en Michoacán se reporta una generación, con presencia de
larvas en todo el año mientras que en el estado de México existe una generación, sin embargo no
hay presencia de larvas durante todo el año, este estadio se manifestó con una duración de 9 meses
a partir de octubre hasta la segunda quincena de junio. El efecto de los entomopatógenos no se notó
ix
considerablemente al inicio del ciclo, sin embargo aunque esto no sucedió, si hubo control por parte
de los hongos, esto pudo corroborarse por el número de individuos encontrados por rama, y por los
adultos momificados dentro de la rama. Se sugiere dar seguimiento al ciclo biológico, hasta el mes
de febrero de 2011 y determinar en ese mes el efecto y la eficiencia de los biocontroladores.
PALABRAS CLAVE: coleóptera, control biológico, entomopatógeno
x
EFFECT OF Beauveria bassiana AND Metarhizium anisopliae ON Copturus aguacatae (Kissinger) A INSECT ATTACKING AVOCADO BRANCHES
ABSTRACT
Jeny Michua Cedillo. Ingeniero Agrónomo Fitotecnista. Universidad Autónoma del Estado de México. Facultad de Ciencias Agrícolas
Asesores: 1 Dr. Omar Franco Mora 2 Dr. Álvaro Castañeda Vildózola
1. Universidad Autónoma del Estado de México. Facultad de Ciencias Agrícolas. Laboratorio de Horticultura. Campus Universitario El Cerrillo Piedras Blancas Mpio. De Toluca, Méx. Código Postal 50200. Tel. (fax) 2-96-55-29 y 2-96-55-31. ofrancom@uaemex.mx 2. Universidad Autónoma del Estado de México. Facultad de Ciencias Agrícolas. Insectario.Campus Universitario El Cerrillo Piedras Blancas Mpio. De Toluca, Méx. Código Postal 50200. Tel.(fax) 2-96-55-29 y 2-96-55-31. acastanedav@uaemex.mx
The economic threshold of C. aguacatae Kissinger is not properly determined for the state of
Mexico. In this work, an avocado 'Hass' orchard of avocado located in San Sebastian, Malinalco was
studied from February to October 2010 in order to determine the percentage of infestation of this
insect. Then, it was tested the efficiency of M. anisopliae and B. bassiana as biocontrol agents of C.
aguacateae. On the other hand, it was determined the insect's life cycle and the duration of each of
these stages. Sampling was performed every each 15 days. Branches were cut to determine the
incidence of the insect. Then, at first observations of adults, an application of B. bassiana and/or M.
anisopliae was performed, that is June; after that two more applications, in July and August, were
done. With the data of temperature, relative humidity, the insect populations was correlated. Higher
adult presence was observed in May, June and mid July but larvae were found specially in February,
falling in March and increasing again in April. Applications of biocontrol did not show statistical
differences, however, it was noted some control of C. aguacatae in relation to the control. In
Michoacán, most individuals were present in April, while in the state of Mexico, the peak of infection
was established in February and March. In Michoacán it is reported a generation, with the presence
of larvae throughout all the year, whereas in the state of Mexico, there is a generation, but no larvae
are present throughout the complete year; this stadium is expressed with a duration 9 months from
October until the second half of June. Complete effect of the application of B. bassiana and M.
anisopliae might be determined from February 2011 as the cycle of C. aguacatae will present the
maximum population.
KEY WORDS: beetle, biological control, entomopathogenic.
1
I. INTRODUCCIÓN
En la actualidad el aguacate (Persea americana Mill) es considerado uno de los principales
alimentos del hombre. Es un producto rentable que genera ingresos a los productores, es por eso
que desde hace algunos años se han hecho plantaciones extensas, debido a las posibilidades que
brindan los mercados extranjeros, lo que repercute en la economía del productor. Sin embargo,
existen situaciones que el productor difícilmente puede manejar, entre ellas el manejo de plagas y
enfermedades, que no sólo limitan el rendimiento, también la calidad de la cosecha.
En el Estado de México los principales productores de aguacate son: Coatepec Harinas
(1192.8 has), Tenancingo (450 has), Almoloya de Alquisiras (352 has), Villa Guerrero( 267 has),
Temascaltepec (413 has), Donato Guerra (315.81 has),Villa de Allende (205.33 has), Malinalco (69
has), Ixtapan del Oro (305.1 has), etc. De los cuales la mayoría recibe atención de campañas
fitosanitarias a excepción de Malinalco, Tenancingo y Almoloya de Alquisiras. La fruta se
comercializa en los mercados de Tenancingo, Texcaltitlán, Toluca, Distrito Federal, Puebla, Morelos
y Michoacán, siendo las principales variedades la criolla, Hass y Fuerte (Díaz, 2008).
Recientemente el municipio de Malinalco ha sobresalido en la producción de aguacate, este
cultivo está considerado, como uno de los principales productos que aportan ingresos para los
pequeños productores, quienes consiguen una buena comercialización en los principales mercados
de los alrededores, siempre y cuando se cuente con una buena calidad del fruto. Sin embargo la
calidad de este producto se ve afectado por daños causados por plagas y enfermedades (Severo,
2008).
Entre las plagas de mayor incidencia en el cultivo de aguacatero, se encuentra el barrenador
de las ramas (Copturus aguacatae Kissinger). El impacto de este coleóptero se refleja en la calidad
del fruto y la disminución en la cantidad de frutos repercutiendo así en los ingresos de los
productores. Su efecto se hace patente desde que el barrenador inicia la infestación de las ramas.
Para su control se realizan aplicaciones químicas, que en varias ocasiones no dan resultado, lo que
provoca que el productor aumente sus costos de producción.
El barrenador de las ramas es una de las plagas más importantes del cultivo del aguacatero
en México, ello debido a su carácter cuarentenario, lo cual limita la producción y exportación de la
2
fruta. No obstante la importancia que se le atribuye, se han realizado pocas investigaciones
relacionadas con esta plaga; entre las que destacan una morfología externa y algunos estudios de
su biología en el laboratorio y en campo. Dichos estudios muestran divergencias en su ciclo
biológico incluso en la misma zona de estudio. Sin embargo, hasta la fecha no se ha realizado un
estudio detallado de campo de este insecto y por lo tanto, no se conoce con precisión su biología y
comportamiento, lo cual se traduce en la falta de elementos básicos para formular estrategias más
eficientes para su manejo (Gasca, 2000).
El control biológico de insectos plaga ha avanzado muy lentamente como parte importante
de programas de control integrado; este control pretende mantener a las poblaciones de insectos
plaga en un nivel en el que el daño económico sea mínimo. La exitosa inducción de
entomopatógenos para el control de insectos depende de la biología y características tanto de los
insectos hospederos, los microorganismos parásitos y del ambiente. Los hongos afectan
preferentemente a los insectos plaga de los cuales fueron aislados y son de baja o nula
patogenicidad al hombre y a los animales domésticos, por lo que pueden usarse sin peligro para
proteger los cultivos contra el ataque de plagas (Gallegos et al., 2003). Por lo tanto, se plantea la
necesidad de buscar una estrategia de manejo integrado que pueda incorporarse a los sistemas
productivos para disminuir el impacto de esta plaga y que al mismo tiempo no tenga repercusiones
en el ambiente. En el presente trabajo se evaluó a dos microorganismos con uso potencial en el
control de C. aguacatae.
3
II. OBJETIVOS
2.1. Objetivo general
Comparar el control de Beauveria bassiana y Metarhizium anisopliae sobre las poblaciones del
barrenador de las ramas del aguacatero
2.2. Objetivos específicos
Determinar las condiciones ambientales y el tiempo de emergencia del adulto del barrenador de las
ramas del aguacate en el Estado de México
Determinar la eficiencia de Beauveria bassiana y Metarhizium anisopliae sobre Copturus aguacatae
en estado adulto
4
III. HIPÓTESIS
Tanto Beauveria bassiana como Metarhizium anisopliae son eficientes biocontroladores del
barrenador de las ramas del aguacatero.
5
IV. REVISIÓN DE LITERATURA
4.1. Aguacate 4.1.1. Antecedentes
El aguacate que se produce en México, es una fruta que ha sido restringida por varias
décadas para su comercialización en fresco en E.U. Sin embargo se ha logrado sortear el principal
argumento que se oponía a su introducción en ese país y esto se ha dado a través de cuatro
municipios del estado de Michoacán (Uruapan, Tancítaro, Salvador Escalante y Peribán). El
aguacate mexicano tiene una gran posibilidad en el mercado estadounidense dados su calidad y
sanidad, dos aspectos fundamentales para mantener la posición de exportador a ese país
(ASERCA, 2010).
El cultivo del aguacatero fue establecido hace poco más de 30 años en diversos municipios
del Estado de México, principalmente en Coatepec Harinas. Inicialmente el cultivar Fuerte fue el
predominante; sin embargo, está siendo desplazado por el cultivar Hass, debido a su precio,
cualidades de sabor, vida de anaquel y tolerancia a ciertas plagas y enfermedades (ASERCA, 2010).
En la década de los 50, la superficie se incrementó en un 61% y la producción en un 98%;
en esa época iniciaron los trabajos de introducción de cultivares y selección de materiales locales en
esta especie por el Ing. Salvador Sánchez Colín, en Ixtapan de la Sal, Estado de México. En 1958 el
estado de Michoacán tenía registradas 923 ha de aguacate principalmente de tipos criollos. Más
tarde, surgió la necesidad de tener cultivares de mejor calidad, rendidores y con características
comerciales; los primeros cultivares introducidos fueron: Fuerte, Bacon y Zutano, caracterizados por
sus cultivares de mediana calidad al carecerse de conocimientos sobre propagación de plantas de
aguacate (Mijares y López, 1998)
A nivel mundial, México es el principal país productor de aguacate y es seguido por
Indonesia, Estados Unidos de América y Chile. En México, Michoacán es el principal estado
productor, con una superficie promedio de 94,714 ha que representan el 84% del total nacional, le
siguen en orden de importancia los estados de Morelos con 2,514 ha (2.2%), Nayarit 2,769 ha
(2.4%), Puebla 2,193 ha (1.9%) y México 1,917 ha (1.6%) y otros con el 7.9% restante (INIFAP,
2008).
6
4.2. Plagas cuarentenarias
Dentro de las plagas cuarentenarias del aguacatero el CESAVEM (2007) menciona las
siguientes:
� Barrenadores pequeños de la semilla del aguacatero: Conotrachelus aguacatae Barber y C.
persea Barber (Coleóptera: Cuculionidae).
� Barrenador grande de la semilla del aguacatero: Heilipus lauri Boheman (Coleóptera:
Cuculionidae).
� Barrenador de ramas del aguacatero: Copturus aguacatae Kissinger (Coleóptera: Cuculionidae).
� Palomilla barrenadora de la semilla: Stenoma catenifer Walsingham (Lepidoptera: Elachistidae).
4.2.1. Copturus aguacatae
4.2.1.1. Antecedentes
El barrenador de las ramas del aguacatero, ha tomado gran importancia en los últimos años,
debido al impacto económico que tiene en los ingresos del productor. Los focos de infestación lo
constituyen plantaciones de árboles criollos que generalmente reciben poca atención; su presencia
es constante, y dado que las aplicaciones de productos insecticidas son frecuentes, sus daños no
han aumentado. Actualmente tiene una amplia distribución en el Estado de México (Díaz, 2008).
El primer estudio documentado del barrenador de ramas del aguacatero fue realizado por
Gandara y Riquelme en 1913 en el estado de Morelos, quienes, equivocadamente, atribuyeron sus
daños a Heilipus lauri. Hasta el año de 1945 se le reconoció como un problema real para los huertos
de aguacatero (Gasca, 2000). Este insecto es nativo de México, pero solo se ha encontrado
atacando al aguacatero y requiere de éste para su total desarrollo; su distribución se confina a
regiones donde existen estos árboles. Se localiza en todas las plantaciones de México, afectando las
diferentes variedades de aguacate que existen. A pesar de la importancia que reviste esta plaga,
aún es escasa la literatura científica que se refiere a la biología, comportamiento, factores bióticos y
abióticos del ambiente que lo afectan.
7
4.2.1.2. Distribución
El área aguacatera afectada por el barrenador de las ramas esta comprendida por Morelos,
Michoacán, Puebla, Estado de México, Querétaro, Guerrero, Nayarit y Oaxaca. (Gasca, 2000). En el
Estado de México se han detectado zonas con baja infestación en los municipios de Malinalco,
Tenancingo, Coatepec Harinas, Ixtapan del Oro, Temascaltepec, Ocuilan, Villa de Allende y Donato
Guerra (CESAVEM, 2007).
4.2.1.3. Taxonomía
Familia: Curculionidae
Subfamilia: Zigopinae
Género: Copturus
Especie: Copturus aguacatae Kissinger
4.2.1.4. Descripción general
Los huevos son de forma oval, miden 0.5 mm de longitud y 0.3 mm de ancho, recién puestos
son translúcidos, pero algunas horas después toman una coloración blanco perla. El corión es
delgado, transparente y casi liso. Las larvas son de tipo curculioniforme, de color blanco lechoso, su
longitud varía de 1 a 12 mm dependiendo del instar en el que se encuentren. La cápsula cefálica
está retraída en el prototórax, con la pigmentación más oscura en los márgenes. Línea eclicial bien
definida: la sutura coronal se extiende desde el punto medio dorsal hasta el área facial de la cabeza
en donde se bifurca para formar dos brazos frontales que son ligeramente sinuados. Presenta un par
de ocelos ovales, transparentes cerca del final de los brazos frontales y del margen anterior de la
cápsula cefálica. Antena de dos artejos. Mandíbulas gruesas, cónicas, sin mala y con dos dientes.
Tergo protorácico esclerosado con la parte posterior más elevada y cubierta con pequeñas escamas,
lateralmente presenta un espiráculo grande y ovalado. Mesotórax y metatórax con dos pliegues
dorsales, denominados predorso el primer pliegue y protodorso el segundo. Escleritos pleurales y
esternón bien delimitado y provisto de sedas cuyo número, tamaño y disposición es característica.
Primer segmento abdominal con tres pliegues dorsales. Segmentos abdominales II al VII con cuatro
8
pliegues: el primer pliegue es lateral, el segundo dorsal, el tercero y cuarto dorsolaterales.
Segmentos VIII y IX sin pliegues dorsales. Todos los segmentos abdominales presentan sedas en
número, tamaño y disposición característica.
Las pupas miden de 5 a 8 mm de largo y de 2 a 2.5 mm de ancho la superficie dorsal es
convexa y la ventral más o menos plana; inicialmente son de color blanco cremoso y posteriormente
cambian a color beige claro. Su cabeza está cubierta casi totalmente por las manchas oculares. El
rostrum llega hasta las coxas metatorácicas. Antenas acodadas, escapo dirigido hacia las manchas
oculares; funículo sin segmentación visible; mandíbulas pequeñas, no esclerosadas. El protórax es
trapezoidal, el mesotórax y el metatórax son rectangulares. Patas con fémures y tibias plegados, con
la parte distal de las tibias dirigidas hacia la línea media del área esternal. El primer segmento
abdominal es ancho y convexo en su área esternal; los segmentos abdominales II al VII son más
angostos, menos convexos y decrecen gradualmente (Gasca, 2000).
Adultos de cuerpo romboidal, miden 3.7 a 5.0 mm de longitud y de 2.0 a 2.5 mm de anchura
de color negro a negro rojizo, con pequeñas escamas de color blanco, rojo, naranja y negro, que le
dan tonalidades pardo rojizas. Las hembras son más grandes que los machos. Cabeza fuertemente
esclerosada y ocupada casi en su totalidad por los ojos; el rostrum es notablemente curvo y los
escrobos o fosas antenales ocupan un tercio de su longitud. Ojos piriniformes, con la parte más
ancha hacia la superficie dorsal, colocados en su posición anterolateral. Mandíbulas carentes de
mola, trífidas, aserradas con dientes cónicos del mismo tamaño, curvados hacia la parte posterior.
Las antenas se insertan distalmente en el primer tercio basal del rostro; funículo de siete artejos,
maso antenal de 4 artejos. Pronoto grande de forma trapezoidal ligeramente constreñido. El borde
posterior del pronoto es sinuado con una pequeña prolongación media posterior en contacto con el
scutellum. Pleuritas triangulares con el margen anterior sinuado, con un espiráculo oval. Trocánter
triangular. Fémur grande, alargado, grueso, sinuado, con un diente en el borde inferior y con el ápice
casi terminado en punta. Tibia un poco más corta que el fémur, ensanchada en su parte apical, con
una proyección fuerte y curvada colocada en el borde externo. Tarso de cinco segmentos, tercer
tarsómero bilobulado con un cojinete de sedas en la superficie ventral, el cuarto es pequeño y el
quinto angosto con dos uñas curvadas y divergentes. Presentan un canal posternal de forma casi
triangular entre las coxas. Mesonoto casi triangular, mesopleura sin espiráculos; coxas de forma y
9
tamaño semejantes a las protorácicas pero más separadas; mesoternon trapezoidal, su borde
anterior es la tercera parte de la anchura del metasternón. Metanoto rectangular, convexo, menos
esclerosado que el mesonoto. Coxas alargadas, convexas, con escasas escamas de color blanco en
la superficie; el fémur es una cuarta parte más grande que los anteriores, con una quilla delgada en
su cara externa y con un diente en la inferior; tibia semejante a las anteriores, pero poco más
grandes. Metasternón fuertemente convexo, más o menos rectangular y muy esclerosado, con dos
procesos espiciformes en la parte posterolateral. Elitros triangulares, ligeramente alargados, más o
menos planos dorsalmente con el ápice agudo; cuando están en reposo se unen por medio de
bordes de acoplamiento, el del elitro izquierdo es alargado y acanalado a todo lo largo y en el se
aloja el elitro derecho que es redondeado y más angosto que el izquierdo. Las escamas de los
élitros son de color rojo-naranja y blancas, más pequeñas que el resto de las escamas del cuerpo.
Terguitos abdominales poco esclerosados, de tamaño decreciente: el terguito I es menos ancho que
el II y presenta espiráculos más pequeños que en el resto de los segmentos. Solo los seis primeros
segmentos presentan espiráculos. Placas pleurales y esternales fusionadas en los primeros cinco
segmentos. Quinta placa pleura-esternal trapezoidal, con los bordes laterales y apical más o menos
gruesos y planos. En los machos, los bordes laterales son más gruesos y planos; en las hembras
estos bordes son más delgados. En las hembras el perfil lateral del abdomen es fuertemente curvo.
En los machos, los primeros esternitos son fuertemente curvos y los tres últimos están colocados en
un plano casi horizontal (Gasca, 2000).
4.2.1.5. Ciclo biológico
A los adultos se les observa caminando durante el día a lo largo de las ramas y hojas. Las
hembras ovipositan principalmente en los brotes tiernos, aunque en algunos casos de infestaciones
severas, también llegan a barrenar ramas gruesas de dos años o más, y en casos esporádicos los
troncos. El periodo de incubación de los huevos dura de 10 a 12 días. Las larvas pasan por cinco
estadios en un periodo de 108 a 117 días. La pupación tiene una duración de 17 a 19 días, y esta se
lleva a cabo dentro de los túneles o galerías de las ramas, de donde posteriormente emergen los
adultos. Adicionalmente se presenta un estado de pre-imago adulto que dura de 5 a 8 días, en el
cual completa su pigmentación y consistencia. Los adultos presentan un periodo de maduración
sexual de 29 a 36 días, el tiempo promedio por generación es de 169 a 192 días. El ciclo biológico
10
de este coleóptero varía según la región, en Morelos se presenta con una duración de 200 días,
donde el periodo de incubación dura de 10 a 12 días, la fase de larva dura 120 días con cinco
estadios, cada uno con una duración de 20 a 24 días aproximadamente, la pupa dura 15 días,
preimagio 8 días y el adulto 45 días. En Michoacán, el ciclo biológico de este insecto tiene una
duración de 169 a 192 días, con la siguiente descripción: periodo de incubación de 10 a 12 días,
periodo larval de 108 a 117 días, pupa de 17 a 19, preimago de 5 a 8, preoviposición de 29 a 36,
longevidad máxima en hembras 48 días y en machos 42 días. En el estado de Puebla existe la
presencia de una generación al año, la cual inicia a principios de junio. En Oaxtepec, Morelos se
presentan dos, la primera generación se presenta a principios de mayo y mediados de julio, la
segunda en noviembre, esta última en condiciones de laboratorio. Mientras que en otro reporte, se
indica que en Amacuzac y Yautepec, la presencia de adultos se observa desde mayo hasta
noviembre, huevos de julio a enero, presencia de larvas todo el año y las pupas se encontraron de
mayo a julio, con traslapo de generaciones en noviembre y diciembre. En Tétela del Volcán los
adultos se presentan de junio a febrero y el traslapo de generaciones se observa en septiembre,
octubre y noviembre. En Michoacán, la primera generación ocurre de principios de junio hasta
mediados de septiembre y la segunda de finales de diciembre a principios de marzo (Figura 1)
(Gasca, 2000).
Figura 1. Adulto de Copturus aguacatae sobre rama de aguacatero. Fuente: INIFAP. 2008.
4.2.1.6. Hábitos
Los adultos son de hábitos diurnos, caminan con frecuencia sobre las ramas con
movimientos rápidos y nerviosos, se alimentan de hojas tiernas de aguacatero ocasionándoles
11
raspaduras en el haz y en el envés. Las hembras maduras copulan entre los 10 a 15 días siguientes
sobre las ramas tiernas principalmente. Para hacer la puesta, la hembra horada con el rostro por
debajo de la cutícula y entre esta y la epidermis deposita el huevecillo con el oviscapto a la entrada
del orificio; después, ayudándose con el rostrum lo introduce hasta el fondo de la horadación. La
capacidad máxima de postura por hembra es de ocho huevecillos que pueden ser puestos en grupos
o aisladamente. No es fácil detectar el huevecillo, sin embargo es fácil localizar las oviposituras por
las horadaciones características que realiza la hembra principalmente en brotes tiernos (Gudiño y
García, 1990).
Para pupar, la larva construye una cámara al final de su galería, en la cual entra en un
estado prepupal que dura aproximadamente 10 días; la pupa puede encontrarse en posición
paralela, inclinada o vertical a la longitud de la rama (Gasca, 2000).
Figura 2. Ciclo biológico de Copturus aguacatae Kissinger. Fuente: Realizada con datos
propios 2010.
4.2.1.7. Daños
Este coleóptero oviposita en la corteza de las ramas, preferentemente en las expuestas a los
rayos solares, por lo que además de los daños de sol, las ramas son perforadas y se forma una gran
12
cantidad de galerías que construyen las larvas en la madera al alimentarse de está. Dichos daños,
provocan que la fruta cuajada en la punta del brote se pierda al romperse la rama por su propio peso
(Gallegos, 1990; Rodríguez, 1982).
En ramas gruesas y troncos las larvas no penetran más de 2 cm de profundidad en un
volumen de daño que no es mayor de 4 cm3. Las ramas afectadas presentan savia por la perforación
inicial de entrada, dicha savia se cristaliza en el exterior y aumenta conforme la larva continúa
alimentándose; posteriormente las ramas se defolian y tiran la flor y en caso de tener frutos, se
rompen por el peso o por vientos fuertes o debido a las maniobras de manejo del cultivo (CESAVEM,
2006).
4.2.1.8. Control químico
Este método de control se puede utilizar para el control de larvas o adultos, de barrenadores
del hueso (Conotrachelus aguacate, C. persea, Heilipus lauri y Stenoma catenifer). Para el caso de
que la aplicación se realice para el control de adultos, ésta consiste de aspersiones foliares de los
insecticidas: malathión a razón de 1 l ha-1 o parathión metílico 1.5 l ha-1 y adherente 1 l ha-1, acorde a
lo establecido en la guía de plaguicidas autorizados de uso agrícola. Considerando que los adultos
viven hasta 90 días, se deben realizar aplicaciones durante éste periodo, teniendo como base los
resultados de muestreo que indiquen la presencia de éste estado de biológico de la plaga. A los 15
días después de realizar la aplicación, se debe realizar el muestreo de adultos, para definir cuantas
aplicaciones son necesarias, en función del insecticida a aplicar (CESAVEM, 2006).
También pueden hacerse aplicaciones al suelo para eliminar o combatir a los adultos
durante la época de emergencia de estos y así evitar que vuelvan a ovipositar. Para lo anterior, se
puede utilizar parathión metílico en polvo 3% a dosis de 70 kg ha-1, cubriendo el área de goteo de los
árboles con presencia de este insecto (CESAVEM. 2006).
4.2.1.9. Control cultural
Consiste en podar y quemar las ramas con indicios de daños. Se ha encontrado que los
niveles poblacionales son más altos en huertos descuidados y estos se convierten en focos de
infestación para huertos aledaños (CESAVEM, 2006).
13
4.2.1.10. Control biológico
El control de barrenadores de ramas del aguacatero, se puede realizar a través de la
aplicación de hongos entomopatógenos, cuando existan condiciones de humedad relativa superior a
80%, temperaturas entre los 18ºC y 25ºC y la existencia de insectos adultos, para lo cual se podrán
utilizar los hongos entomopatógenos Beauveria bassiana o Metarhizium anisopliae. Previo a la
aplicación de los hongos entomopatógenos, se recomienda realizar un riego (CESAVEM, 2006).
Para lograr efectividad en el control de adultos de barrenador de ramas (Copturus
aguacatae), se recomienda realizar la aplicación de los hongos entomopatógenos Beauveria
bassiana o Metarhizium anisopliae, en la época de emergencia de adultos o si se aplica a larvas, las
aplicaciones deben ser directamente a las ramas (CESAVEM. 2006).
4.3. Muestreo de Copturus aguacatae
El muestreo tiene una gran diversidad de aplicaciones en el manejo integrado de plagas.
Generalmente el muestreo se aplica cuando se requiere aplicar atributos específicos sobre una
aplicación en una población objetivo, ya que resulta impráctico medirla en su totalidad. También es
recomendable cuando se desea asociar a dichas estimaciones valores de precisión, exactitud y
reproductibilidad lo que les confiere un carácter absoluto o comparativo. En el manejo de plagas es
común también el monitoreo, el cual se caracteriza por permitir realizar estimaciones de atributos en
una dimensión espacio-temporal. Esencialmente, las mediciones tienen un carácter relativo y no se
asocian con valores de confiabilidad estadística. El muestreo del barrenador de las ramas (C.
aguacatae) adquiere una gran importancia ya que estas son plagas de importancia cuarentenaria por
el Departamento de Agricultura de E.U.A. (Téliz y Mora, 2007).
4.3.1. Distribución del barrenador en el dosel del árbol
Otro aspecto importante del hábito de esta plaga, con implicación en el muestreo, lo
constituye la distribución de los insectos en el dosel del árbol. En frutales es común el muestreo de
ciertos sectores del árbol, principalmente en cuatro puntos cardinales de la altura media de la copa,
para estimar atributos de infestación o daño. Sin embargo, el conocimiento de que ciertos sectores
14
del árbol, tanto vertical como radialmente puede permitir mejorar los sistemas de muestreo. En el
caso del barrenador de las ramas se ha demostrado que prefiere los sectores suroeste y noroeste de
la copa del árbol independiente del grado de infestación. La distribución en el dosel, podría depender
de la altura de los árboles y otras consideraciones de manejo así como la latitud y longitud por la
inclinación de los rayos solares. Se reporta que para el estado de Puebla, la distribución del daño
del barrenador de las ramas del aguacate tuvo mayor intensidad en la mitad superior del árbol con
mayor preferencia en el orden siguiente: este > oeste> sur> norte (Téliz y Mora, 2007).
4.3.2. Consideraciones en el muestreo
Los atributos espacio-temporal de las poblaciones de barrenador y las características de la
distribución en el dosel del árbol tienen implicaciones importantes en el sistema de muestreo. El
muestreo aleatorio presupone homogeneidad espacial, no garantiza la estimación de la densidad
poblacional y el daño de C. aguacatae con una precisión y exactitud aceptable cuando el objetivo del
muestreo esta dentro del ámbito regulatorio. En general, un tamaño de muestra de 10 árboles por
hectárea, usualmente recomendado bajo este método de muestreo, no es adecuado en un escenario
de agregación (Téliz y Mora, 2007).
La metodología de muestreo del barrenador de las ramas del aguacatero empleada hasta el
momento ha sido establecida bajo un criterio de muestreo simple aleatorio, lo que supone la
uniformidad de las especies. Sin embargo, los métodos de muestreo dependen del comportamiento
espacio-temporal de la población en estudio, para lo cual se necesita conocer los atributos
espaciales de esta plaga y su efecto en el muestreo (Téliz y Mora, 2007).
4.4. Entomopatógenos
El uso de enemigos naturales como los entomopatógenos ha recibido la mayor atención en
la última década debido a la concientización adquirida por los gobiernos, industria y pueblo en
general sobre los peligros inminentes del deterioro ambiental, provocando una presión en el uso de
métodos de control más benévolos hacia nuestro entorno, como lo es el control biológico (Gallegos
et al., 2003).
15
Los hongos entomopatógenos inician una infección cuando la espora se pone en contacto
con el cuerpo del insecto. Al germinar la espora, esta emite un tubo germinativo que atraviesa el
integumento del insecto e invade su interior, colonizando diversos órganos; como consecuencia el
insecto muere, su cuerpo se endurece y, al cabo de varios días, se observa un crecimiento
algodonoso que sale de sus articulaciones. Los insectos mueren por el ataque del hongo infectan,
por contacto, a otros insectos sanos y, si el ambiente es favorable para el desarrollo del hongo, la
enfermedad se disemina rápidamente a toda la población causando una epizotia (Gallegos et al.,
2003).
Cuando se habla de control biológico de la plaga es necesario conocer el ciclo biológico para
determinar cuál es la etapa de aplicación del hongo, además de saber cuales son las condiciones
climáticas a las que se adapta el entomopatógeno. Los hongos entomopatógenos pueden vivir en el
suelo por periodos variables. Los principales Deuteromycetes, como M. anisopliae y B. bassiana,
luego de parasitar a los insectos pueden permanecer colonizando al cadáver durante un periodo
relativamente largo a la espera de un nuevo hospedero (Gallegos et al., 2003).
Por lo general, los hongos entomopatógenos causan la muerte del hospedero debido a
deficiencia nutricional o invasión o digestión de tejidos o liberación de toxinas. Solo unas pocas
especies son capaces de invadir a través de heridas en el intertegumento (Fusarium, Mucor,
Penicillium). Las especies entomopatógenas usualmente penetran la cutícula del hospedero y
algunas veces invaden un espacio, ya sea la cavidad bucal o los espiráculos. Es frecuente que las
infecciones sean iniciadas por esporas o conidios (Zygomicotyna, Deuteromycotyna), aunque en
Mastigomycotina y Ascomycotina las zoosporas y ascosporas son las responsables (Gallegos et al.,
2003).
El desarrollo de la micosis puede ser separado en tres fases:
1. Adhesión y germinación de la espora sobre la cutícula del insecto.
2. Penetración en el hemocele.
3. Desarrollo del hongo, lo cual generalmente provoca la muerte del insecto.
La mayor parte de los conidios difícilmente conseguirán sobrevivir por más de tres meses en
los diferentes tipos de suelo. Sin embargo, existen algunas estructuras de resistencia que pueden
ser responsables de una mayor permanencia en el medio (Gallegos et al., 2003).
16
El desarrollo de los hongos entomopatógenos, en particular de los Deuteromycetes, puede
ser dividido en 10 etapas. De manera general el desarrollo de la micosis es de la siguiente forma:
1. Comienza por la adhesión al tegumento.
2. Germinación de los conidios o esporas sobre éste.
3. Penetración a través de la cutícula del insecto.
4. Multiplicación del hongo en el hemocele.
5. En ciertos hongos o cepas se producen toxinas.
6. Muerte del insecto.
7. El hongo coloniza todo el interior del hospedero.
8. El micelio sale hacia el exterior pasando a través del tegumento.
9. Esporulación sobre la superficie del insecto.
10. Diseminación del hongo en el ambiente.
Cada uno de estos pasos son importantes no solo para provocar la muerte del hospedero,
sino también para la posterior diseminación en el hábitat.
4.4.1. Beauveria bassiana
Este hongo es conocido por su amplio rango de hospederos y distribución geográfica, su
patogenicidad se ha probado contra varias especies de insectos que cualquier otro hongo. En el
pasado, este hongo se distribuyó como Boverín para el control del escarabajo de la papa
(Leptinotarsa decemlineata). B. bassiana se ha encontrado atacando a la broca del café
(Hypothenemus hamperi).
El hongo B. bassiana se observa como una capa de micelio blanco algodonoso que
envuelve al insecto, con granulaciones pequeñas del mismo color. Se describe a este hongo en
medio de cultivo como una colonia blanca de apariencia algodonosa y esponjosa, en la que denotan
pequeñas esferas (como aspecto de nieve) de color crema pálido en la parte inferior. Otra
característica de estos hongos entomopatógenos es que pueden ser capaces de iniciar epizootias a
densidades altas y bajas de hospedero (Gallegos et al., 2003).
17
4.4.1.1. Morfología
B. bassiana es un entomopatógeno imperfecto con hifas separadas y estructuras
reproductivas denominadas conidióforos, sobre las cuales se desarrollan conidios. El micelio ramifica
para formar conidióforos simples e irregulares que terminan en vértices con forma de racimos; la
base de la célula es globosa o abultada con un adelgazamiento en el área de inserción de los
conidios, de 2 a 3 µm o 2 a 2.5 µm y esterigmas curvados en forma irregular o dispuestos en forma
de zigzag. Es un hongo que presenta hifas bien septadas y conidióforos en densos racimos,
esterigmas alternados en zigzag alargados en su extremo distal, y conidios globosos o subglobosos
(ovales) de 2-3 µm por 2-2.5 µm de diámetro de color blanco globoso (Gallegos et al., 2003).
4.4.1.2. Taxonomía
Reino: Mycetae
División: Amastigomicotina
Subdivisión: Deuteromycotina
Clase: Deutermycetes
Subclase: Hypomycetes
Familia: Moniliaceae
Género: Beauveria
Especie: Beauveria bassiana
4.4.1.3. Espectro de acción
Es un hongo con amplio espectro de acción, que puede atacar a los insectos en estado de
huevecillo, larva, pupa e imago, donde generalmente son susceptibles a la micosis del mismo, puede
utilizarse en hortalizas, frutales y diversos cultivos. Dentro de los insectos que controla se
encuentran dípteros, coleópteros, lepidópteros, hemípteros, homópteros y algunas plagas del suelo
(Phyllophaga sp.) (Gallegos et al., 2003).
18
4.4.2. Metarhizium anisopliae
Perteneciente a la familia de la Moniliaceae, el género Metarhizium , es muy conocido por
provocar en los insectos la “muscardina verde”, llamada así por el color olivo de sus esporas.
Durante la germinación de las esporas se forma el tubo germinativo, pudiendo ser dos. El micelio
crece formando los conidióforos en el transcurso de la semana para la formación de las esporas. El
color de las esporas es blanco en un principio, cambiando a un color verde olivo a medida que crece.
La formación de las esporas es en cadena; al final de los conidióforos se forman las esporas,
continuando hasta que la cadena de esporas es formada. Las esporas varían en tamaño de 5 a 7 µm
de longitud y 2.3 a 3.7 µm de ancho. Crece bajo temperaturas óptimas de 24 a 26ºC y su rango para
el desarrollo normal es de 10 a 30ºC. Con un pH para su crecimiento normal de 4.7 a 10, crece bien
en materia orgánica. Aunque el crecimiento y la fructificación son afectados por los rayos solares,
sus esporas pueden mantenerse en condiciones secas hasta tres años.
4.4.2.1. Morfología
Produce conidióforos ramificados, las esporas son alargadas y se forman en cadenas. La
conidia más joven es la de la base del conidióforo. En cada conidióforo se forma una cadena de
conidias biseptada, las cuales crecen densas y adheridas, son esporas alargadas. Las conidias son
blancas cuando son jóvenes y de color verde oscuro conforme van madurando. El tamaño permite
diferenciar las especies de género: M. anisopliae con dos variedades. Metarhizium anisopliae var
anisopliae forma conidias cilíndricas de color verde por lo general truncadas en ambos extremos,
ovales, de tamaño comprendido entre 3.5 y 9.0 µm de largo. Metarhizium anisopliae var major
(Johnston) produce conidias entre 9.0 y 18.0 µm de largo. Este hongo habita en todo el mundo
debido a su alta capacidad de adaptación a las diferentes condiciones ambientales y causa
enfermedad en forma natural a más de 200 especies de insectos en diferentes órdenes (Gallegos et
al., 2003).
4.4.2.2. Taxonomía
Reino: Mycetae
División: Amastigomicotina
Subdivisión: Deuteromycotina
19
Clase: Deutermycetes
Subclase: Hypomycetes
Familia: Moniliaceae
Género: Metarhizium
Especie: Metarhizium anisopliae
4.4.2.3. Espectro de acción
M. anisopliae es un organismo cosmopolita, de gran adaptabilidad, que puede ser utilizado
en gran variedad de cultivos, como hortalizas, frutales, cítricos, pastizales, caña de azúcar, cultivos
básicos, cultivos industriales, entre otros, y en ellos combate una gran variedad de insectos de los
órdenes coleóptera, homóptera, hemíptera, lepidóptera, ortóptera, etc (Gallegos et al., 2003).
.4.6. Control de calidad y patogenicidad de M. anisopliae
El control de calidad constituye un factor clave, ya que además de garantizar un buen
rendimiento, verifica que el producto obtenido sea de alta calidad y se evita la pérdida de materiales
y reactivos. El control de calidad de los hongos entomopatógenos se realizan sobre el formulado
final establecido por Fábila y Nolasco en 2007. Este proceso se lleva a cabo mediante la evaluación
del rendimiento en número de conidias por gramo de polvo cosechado y la viabilidad de las conidias
que representa el porcentaje de germinación viable, otros factores que se consideran son el tamaño
de partícula y el contenido humedad (Fábila y Nolasco, 2007).
4.6.1. Tamaño de partícula
Para el insecticida formulado a base de conidios del hongo entomopatógeno M. anisopliae,
se deben obtener partículas compatibles con el equipo de aplicación de ultra bajo volumen, el cual
requiere una partícula menor a 118 µm. El tamaño de partícula se obtiene al realizar la extracción
de conidios en forma manual, utilizando dos tamices, el primer tamiz de 300 µm y el segundo de 100
µm para así separar las partículas más grandes del primer tamiz y de esta manera se obtuvo el
tamaño de partícula es menor a 118 µm (Fábila y Nolasco, 2007).
20
4.6.2. Viabilidad de conidias
Las esporas de este hongo son organismos vivos por lo que su viabilidad o proporción de
conidias vivas disminuye con el tiempo. De las muestras analizadas por Fábila y Nolasco, se observo
un porcentaje de germinación mayor al 80%, parámetro internacionalmente aceptable en el control
biológico. Esto indica en términos generales, que la muestra esta dentro del rango de germinación
aceptable para propiciar enfermedades a las plagas que se pueden convertir en epizootias a gran
escala. La viabilidad de conidias puede disminuir en un periodo corto, si no se les da un buen
manejo en el almacén antes de la aplicación en campo (Fábila y Nolasco, 2007).
4.6.3. Contenido de humedad de M. anisopliae.
Para este producto el contenido de humedad es esencial en el crecimiento, reproducción y
liberación de esporas; sin embargo las conidias almacenadas a altos porcentajes de humedad
relativa, generalmente reducen su viabilidad en corto tiempo, el producto tiene un contenido de
humedad del 11.41% (Fábila y Nolasco, 2007).
4.7. Enemigos naturales de C. aguacatae Kissinger
4.7.1. Parasitoides
Se tiene registro de la presencia de una gran diversidad de himenópteros: Eupelmus sp.
(Eupelmidae), Euderus sp. (Eulophidae), Eurydinoteloides sp. (Pteromalidae), Erythmellus sp.
(Mymaridae), Oncophanes sp. (Braconidae) y Prosierola bicarinata (Brues) (Bethylidae) (Huerta et al.
1990); aunque poco se ha realizado para evaluarlos como agentes de control. El género
Urosigalphus Ashmead comprende especies de avispas que se especializan en parasitar
curculiónidos, con una amplia distribución en México (20 especies). En algunos estudios, se realizó
la descripción de Urosigalphus avocadoae, “como parasitoide de larvas de barrenadores del
aguacate”, pero sin detallar la identidad específica del huésped. Sólo se reporta en dos localidades,
San pedro, Montes de Oca (Costa Rica) y Ciudad Victoria, Tamaulipas (Hernández et al., 2009). En
Coatepec Harinas, Estado de México este mismo autor lo menciona.
21
V. MATERIALES Y MÉTODOS
5.1. Área de estudio
El Municipio de Malinalco se localiza al sur del estado de México, a los 19º 57´07´´ de latitud
norte y a los 99º 33´06´´ de longitud oeste, y un altitud de 1750 m. Limita al norte con los municipios
de Joquicingo y Ocuilan, al sur con Zumpahuacán y el Estado de Morelos; al este con el municipio
de Ocuilan y el Estado de Morelos; al oeste con los municipios de Tenancingo y Zumpahuacán.
El estudio se realizó en una huerta de aguacate ‘Hass’, con una superficie de 2.5 ha,
ubicada en la comunidad de San Sebastián, Malinalco a los 18° 59´31´´ de latitud norte y a los 99°
29´10´´ longitud oeste, con una altitud de 2144 m. La huerta produce bajo condiciones de temporal y
está formada por 288 árboles de los cuales 75 cuentan con 3 años de edad, 60 se ubican entre 4 y 6
años y los restantes cuentan con 10 años de edad con una altura de entre 2 y 4 m y presenta alta
incidencia de daños causados por barrenador de las ramas (aproximadamente entre 85 y 90%). El
clima predominante es semicálido, subhúmedo con lluvias en verano, con una temperatura media
anual de 20ºC, la máxima promedio es de 34.8ºC y la mínima promedio de 17.1ºC; la precipitación
pluvial es de 1177 mm, la máxima incidencia de lluvias se tiene en los meses de junio, julio y agosto
con un promedio de 250 a 260 mm. La incidencia de heladas es baja. El suelo más frecuente es el
feozem háplico, en la serranía predomina el suelo litosol, aprovechable para la silvicultura y la vida
silvestre (Severo, 2008).
Se instaló un data logger (HOBO) para determinar factores ambientales como temperatura y
humedad relativa, a partir de mayo hasta agosto, y se determinó la influencia de estos factores con
las poblaciones de barrenador. Este tomaba la temperatura por día en intervalos de una hora en un
periodo de 82 días, en total se tomaron datos de 84 días.
5.2. Muestreo de larvas y adultos de Copturus aguacatae
El muestreo que se realizó, está basado en el manual operativo del CESAVEM 2006 bajo las
siguientes condiciones:
22
De cada árbol se seleccionaron 4 ramas, una en cada punto cardinal (Norte, Sur, Este y
Oeste), preferentemente ramas de 1.5 y 2.0 cm de diámetro. Las ramas a seleccionadas fueron las
que estuvieron expuestas a los rayos solares. Se muestrearon 4 ramas de la parte superior, medio e
inferior del dosel del árbol.
Las ramas seleccionadas, se inspeccionaron visualmente y solo en caso de haber
observado sobre éstas savia cristalizada, o cualquier otro síntoma parecido al ocasionado por los
barrenadores de ramas del aguacate, se realizaron disecciones en la madera para determinar la
presencia o ausencia de algún estado biológico de la misma. En su caso se contabilizó el número de
inmaduros y adultos encontrados. Con el hecho de encontrar una rama infestada, se consideró el
árbol infestado (CESAVEM, 2006).
El porcentaje de infestación se calculó con base en la siguiente formula:
Infestación= (No. de árboles infestados / No. de árboles muestreados) * 100
El muestreo para barrenadores de ramas se realizó durante 8 meses a partir de febrero de
2010. Los muestreos se realizaron quincenalmente. Se inspeccionó el ciclo biológico del barrenador
para hacer las aplicaciones de entomopatógenos en la fase programada.
5.3. Aplicación de entomopatógenos
Previo a la aplicación y con el objetivo de tener una referencia del producto aplicado, se
consultaron los datos del análisis de las cepas de M. anisopliae realizadas en el CESAVEM, de los
cuales se citan los más importantes; concentración de 1.3 x 1012 esporas por dosis formulada.
Considerando que la concentración de conidias, es el parámetro de referencia para determinar la
virulencia de este hongo entomopatógeno, la viabilidad dentro de este sistema de producción fue de
88.6% con un contenido de humedad promedio de 11.41%, lo cual, de acuerdo a la literatura (Fábila
y Nolasco, 2007), el producto posee las características adecuadas para la aplicación.
Se realizaron tres aplicaciones de los bicontroladores, la primera se realizó en el mes de
junio, posteriormente en julio y agosto. Dicha aplicación se realizó con mochila manual utilizando un
23
adherente a una dosis de 1 ml L-1 para dispersar mejor las partículas del hongo, se utilizaron
boquillas de abanico y la dosis de los hongos manejada fue de 30 g para una capacidad de 15 L y 42
para 21 L.
5.4. Diseño experimental
Se empleó un sistema de bloques completamente al azar con cuatro tratamientos y cinco
árboles por repetición; los cuales consistieron en la aplicación de Beauveria bassiana, Metarhizium
anisopliae, Metarhizium anisopliae con Beuveria bassiana y el testigo.
5.5. Análisis de datos
Con el fin de conocer las diferencias entre tratamientos, se realizó el análisis de varianza
para medir la eficiencia de los hongos sobre larva y adultos de C. aguacatae. Posteriormente se
compararon las medias, el error típico y la desviación típica mediante la prueba de Tukey (α =
0.05%), estas pruebas se realizaron con el programa SPSS.
24
VI. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
6.1. Porcentaje de infestación
En total se muestrearon 288 árboles al inicio del ciclo para determinar la infestación total de
huerto, de estos se identificaron 47 libres de barrenador por lo que se obtiene el siguiente resultado:
Infestación= ( 241 ) * 100 = 83.68% = 87%
288
Este dato sugiere la alta presencia de C. aguacatae en la región. En otros estudios, se han
reportado incidencias del coleóptero durante todo el año, incluso se han llegado a encontrar adultos
en el mes de noviembre, alternándose con las siguientes generaciones.
6.2. Cinética de la población
Sin discriminar el estadio del insecto, de febrero a julio de 2010, se observó una mayor
presencia de C. aguacatae, en estado larvario en los primeros meses, es decir, febrero, marzo y abril
(Figura 3).
2010
feb20 marzo14 abril2 abril17 mayo1 mayo16 mayo29 junio13 junio26
Ind
ivid
uo
s p
or
ram
a
0
2
4
6
8
10
12
14
Figura 3. Población de Copturus aguacatae en un huerto de aguacate ´Hass´ en Malinalco,
México, 2010. Los datos son la media de cuatro ramas ± error estándar.
25
En los meses de mayor presencia de adultos de C. aguacatae, se observa una temperatura
de 23º y una humedad relativa de 65 y 70% (Figura 4). Los datos anteriores indican que la mayor
población de insecto ocurre a humedades relativas altas, mayores a 65% y temperatura mayor a
20°C.
Fecha (mes-semana)
5-1 5-2 5-3 5-4 6-1 6-2 6-3 6-4 6-5 7-1 7-2 7-3 7-4 7-5
Tem
pe
ratu
ra (
°C
)
Hum
edad R
ela
tiva (
%)
20
60
70
Humedad relativa (%)
Temperatura (°C)
Figura 4. Temperatura y humedad relativa en la comunidad de San Sebastián, Malinalco, 2010.
La fluctuación poblacional por los estadios biológicos de C. aguacatae se muestra en la Figura 5.
0
2
4
6
8
10
12
20feb.
14mar.
2 abr. 17abr.
1may.
16may.
29may.
13jun.
26jun.
11jul.
30jul.
7ago.
23ago.
5sep.
18sep.
3 oct. 17oct.
Fechas de muestreo muestreo
Num
ero de individu
os
Larva Pupa Adulto Oviposiciones
Figura 5. Determinación de las etapas fenológicas y fluctuación poblacional de C. aguacatae
en San Sebastián, Malinalco. 2010. Los datos son la media de 20 árboles.
26
6.3. Larvas y pupas
Respecto al estadio larvario de C. aguacatae se registraron datos durante todo el periodo de
monitoreo, sin embargo la presencia de larvas varió entre las fechas de muestreo, mientras en
febrero se presento una infestación alta, a partir del mes de marzo hasta abril la incidencia de larvas
fue menor, posteriormente en los meses siguientes empezó a disminuir el porcentaje hasta el mes
de mayo en donde se presentaron las primeras pupas del barrenador (Figura 6).
0
2
4
6
8
10
12
20 feb. 14 mar. 2 abr. 17 abr. 1 mayo. 16 may. 29 may. 13 jun. 26 jun.
Fecha de muestreo
Larvas en rama
Figura 6. Número de larvas de C. aguacatae por rama en un huerto comercial de aguacate
´Hass´ en Malinalco, México, 2010. Los datos son la media de cuatro ramas.
0
1
2
3
4
5
6
7
8
9
17 abr.
1 may.
16 may.
29 may.
13 jun.
26 jun.
11 jul.
30 jul.
7 ago.
23 ago.
5 sep.
18 sep.
3 oct.
17 oct.
Fecha de muestreo
Pupas en ra
ma
Figura 7. Número de pupas de C. aguacatae por rama en un huerto comercial de aguacate
´Hass´ en Malinalco, México, 2010. Los datos son la media de cuatro ramas.
27
6.4. Adultos
Se observo la emergencia de adultos en el mes de junio donde se registró el punto más alto
de la infestación.
0
2
4
6
8
10
12
14
13 jun. 26 jun. 11 jul. 30 jul. 7 ago. 23
ago.
5 sep. 18 sep. 3 oct. 17 sep.
Fecha de muestreo
Ad
ult
os
en
ra
ma
Figura 8. Número de adultos de C. aguacatae por rama en un huerto comercial de aguacate
´Hass´ en Malinalco, México, 2010. Los datos son la media de cuatro ramas.
Como se observa en las Figuras 6, 7 y 8, la larva se presenta principalmente en febrero,
marzo y abril, cambiando a pupa en los meses de mayo y junio, en este último es cuando se observa
a los adultos. De acuerdo al comportamiento del adulto, el control químico ó biológico debe
programarse a inicios de junio, julio y principios de agosto.
6.5. Aplicación de entomopatógenos
Estadísticamente no se obtuvieron diferencias para el control de Copturus aguacatae por la
aplicación de biocontroladores. En los cuatro tratamientos se observó un descenso en la población
de julio a septiembre y un posterior incremento en octubre, considerando que en octubre se
registraron las primeras oviposiciones. (Figura 9).
28
2010
julio11 agosto7 septiembre5 octubre17
Indiv
idu
os p
or
ram
a
0.0
0.5
1.0
1.5
2.0
2.5
3.0
Metarhizium anisopliae (Ma)
Beauveria bassiana (Bb)
Ma + Bb
Sin aplicación
Figura 9. Individuos por rama de C. aguacatae después de la aplicación de entomopatógenos
en un huerto de aguacate ´Hass´ en Malinalco, México, 2010. Los datos son la media de cuatro
ramas ± error estándar.
Como se aprecia en la Figura 9, la población de C. aguacatae disminuyó de manera natural
de julio a septiembre, lo cual parece implicar que el periodo de mayor presencia de este insecto es
en julio. En Michoacán, C. aguacatae también se presenta con mayor intensidad en dichos meses
de acuerdo a lo reportado por Gasca (2000). Para la aplicación de B. bassiana y M. anisopliae,
disminuyó la incidencia en agosto, mientras que la combinación de ambos presentó sus mejores
efectos hasta septiembre y octubre.
Al realizar un porcentaje del control a partir de la primera aplicación se encontró que aunque
estadísticamente no hubo diferencias, un mayor porcentaje de árboles tratados con M. anisopliae y
B. bassiana no tuvieron presencia de C. aguacatae.
6.5.1. Efecto de los biocontroladores en los estados de desarrollo de C. aguacatae
De acuerdo al desarrollo del insecto, en los muestreos posteriores a la aplicación de
entomopatógenos, se presentaron, larvas, pupas y adultos. Quince días después de la primera
aplicación se obtuvieron los siguientes resultados (Figura 10).
29
0
1
2
3
4
5
6
7
Núm
ero de individu
os
Larvas Pupas Adultos
Estadio
M. anisopliae B. bassiana BbMa Testigo
Figura 10. Individuos de C. aguacatae después de una aplicación de entomopatógenos.
Posterior a la segunda aplicación de los biocontroladores se tuvieron los resultados
expresados en la Figura 11, los cuales indican que la aplicación de Beauveria fue efectiva para
controlar adultos y pupas, sin embargo en relación al testigo no hubo control de larvas.
0
1
2
3
4
5
6
Núm
ero de individu
os
Larva Pupa Adulto
Estadio
M. anisopliae B. bassiana MaBb Testigo
Figura 11. Individuos de C. aguacatae después de dos aplicaciones de entomopatógenos.
Cabe mencionar que dentro de los muestreos se encontró un adulto infestado por B.
bassiana, lo cual justifica la susceptibilidad del insecto. Posterior a la segunda aplicación se realizó
el muestreo para determinar larvas, pupas o adultos infestados, encontrándose solo un adulto,
30
además se realizaron las primeras inspecciones para determinar si ya existía oviposición en brotes o
ramas intermedias y se obtuvo lo siguiente:
0
0.5
1
1.5
2
2.5
3
Núm
ero de individu
os
Huevo Larva Pupa Adulto
Estadio
M. anisopliae B. bassiana MaBb Testigo
Figura 12. Número de individuos en la segunda aplicación de M. anisopliae y B. bassiana
De la misma manera que en el muestreo posterior a la primera aplicación se encontró otro
adulto parasitado por B. bassiana. La tercera aplicación se realizó el 23 de agosto, durante esta se
realizó un muestreo al follaje para determinar el número de adultos, encontrándose un adulto en el
tratamiento de MaBb y tres en el testigo. Dichos insectos no presentaron síntomas de infección por
entomopatógenos.
0
0.5
1
1.5
2
2.5
3
Núm
ero de individu
os
Adulto
Estadio
M. anisopliae B. bassiana MaBb Testigo
Figura 13. Número de adultos encontrados en el muestreo al follaje previo a la tercera
aplicación.
31
Posterior a la última aplicación se realizó el muestreo numero 15 y se obtuvieron los
siguientes resultados:
0
1
2
3
4
5
6
7
Núm
ero de individu
os
Oviposiciones
Estadio
M. anisopliae B. bassiana MaBb Testigo
Figura 14. Número de oviposiciones detectadas en brotes, posterior a la tercera aplicación
Cabe mencionar que durante el muestreo número 16, realizado el 2 de octubre, no se
detectaron síntomas de barrenador, debido a la incidencia de las lluvias. Sin embargo en el
muestreo 17 efectuado el 16 de octubre, los daños fueron más visibles encontrándose el siguiente
número de individuos por tratamiento:
0
1
2
3
4
5
6
7
8
9
Núm
ero de larvas
Tratamientos
M. anisopliae B. bassiana MaBb Testigo
Figura 15. Número de larvas encontradas por tratamiento en el muestreo 17 realizado el 16 de
octubre de 2010.
32
Finalmente, al realizar un porcentaje del control por árbol, a partir de la primera aplicación se
encontró que aunque estadísticamente no hubo diferencias, un mayor porcentaje de árboles tratados
con M. anisopliae y B. bassiana no tuvieron presencia de C. aguacatae (Figura 16).
Metarhizium(M) Beauveria (B) M+B Sin aplicación
Porc
enta
je d
e c
ontr
ol
0
20
40
60
80
100
Figura 16. Infestación por C. aguacatae en árboles de aguacate tratados con
entomopatógenos. Los datos son la media de 20 árboles ± error estándar.
Es importante continuar con la evaluación de M. anisopliae y B. bassiana ya que los datos
sugieren cierto control de C. aguacatae, y retomando párrafos anteriores, es recomendable realizar
el monitoreo del barrenador de las ramas en los meses de enero a abril de 2011.
6.6. Otros enemigos naturales
Durante los muestreos, se encontró un total de siete larvas de una avispa parasitoide de las
larvas de C. aguacatae. La especie se encuentra en proceso de indentificación, pero de acuerdo a
antecedentes previos, en el Estado de México, posiblemente el parasitoide sea Urosigalphus
avocadoae (Hymenoptera: Braconidae) reportado en Coatepec Harinas, Estado de México
(Hernández et al. 2009).
33
VII. CONCLUSIONES
Se determinó un alto porcentaje de infestación de la plaga en San Sebastián, Malinalco, obteniendo
un 87% del total de los árboles.
Existe presencia de larvas a partir de octubre hasta julio, encontrando en cada rama más de 4
individuos, con una duración aproximada de 288 días.
El periodo de pupación se lleva a cabo a partir de la segunda quincena de abril hasta la segunda
quincena de julio, considerando un lapso de 20 a 25 días para pasar al estado de adulto.
En el municipio de Malinalco se presenta una generación al año, con la siguiente descripción:
Huevo u oviposición: agosto-septiembre
Larva: octubre-julio
Pupa: mayo-agosto
Adulto: mayo-agosto
Los síntomas característicos del daño hecho por larva se ven afectados durante la época de lluvias,
haciendo más difícil la detección de la larva.
Los daños varían de acuerdo a las siguientes características de la rama: diámetro y longitud de la
rama y el número de larvas por rama.
De acuerdo a la aplicación de entomopatógenos, no existe diferencia estadística significativa, sin
embargo se pueden hacer comparaciones entre los tratamientos, teniendo mayor eficiencia en las
aplicaciones de los hongos por separado.
Existen parasitoides de C. aguacatae, que afectan principalmente el estado larvario del insecto, el
estado fenológico del parasitoide también se identifico como larva.
34
VIII. SUGERENCIAS
Se sugiere tomar los datos de la población de dicho barrenador en los meses de mayor incidencia en
2011, con el fin de tener el ciclo completo y determinar correctamente el efecto de estos hongos
entomopatógenos.
Se recomienda a los productores utilizar estos productos biológicos con la finalidad de obtener
niveles de control de C. aguacatae permanente y evitar el uso excesivo de pesticidas agrícolas.
Se sugiere realizar aplicaciones semanales y quincenales para tener un mayor número de esporas
en el cultivo para que el impacto sobre la plaga sea aun mayor
Para futuras evaluaciones se recomienda usar cepas más virulentas diferentes a las usadas en el
presente estudio.
Para aplicaciones posteriores realizar y evaluar formulaciones diferentes a las ya establecidas
comercialmente.
35
IX. BIBLIOGRAFÍA.
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2010 (citado 2010-03-19) p. 2. Disponible en Internet:
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Comité Estatal de Sanidad Vegetal del Estado de México (CESAVEM). 2006. Manual Operativo.
Estado de México. 55 p.p.
Comité Estatal de Sanidad Vegetal del Estado de México (CESAVEM). 2007. Manual Operativo.
Estado de México. 37 p.p.
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del aguacatero. (En Línea).2008. (Citado 2009-03-11) pp. 3-5. Disponible en Internet:
http://www.cesavesin.gob.mx/memoria/organicos/AGUACATE_ORGANICO_EN_MEXICO.pdf
Díaz, P. M. A. 2008. Campaña Manejo Fitosanitario del Aguacate. Comité Estatal de Sanidad
Vegetal del Estado de México (CESAVEM).
Fábila, M. L., y Nolasco, V.P. 2007. Producción masiva del hongo entomopatógeno Metarhizium
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Estado de México. Tesis de Licenciatura. U.A.E.M. Facultad de Ciencias Agrícolas, El Cerrillo
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Gasca, C. L. 2000. Ensayos con trampas adhesivas de color y monitoreo de Copturus aguacatae
Kissinger, en Ziracuaretiro, Michoacán. Tesis de Maestría. Colegio de Postgraduados. Instituto de
Fitosanidad, Montecillo, Texcoco, p. 5 -11
36
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Gallegos, E.R. 1990. Algunos Aspectos del Aguacate y su Producción en Michoacán. UACh,
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Gudiño, J.L.M. Y M.A. García G. 1990. Biología y hábitos del barrenador de ramas y del tronco de
aguacate (Copturus aguacatae Kissinger) en la región de Uruapan, Michoacán. Tesis de
Licenciatura. UMSNH: Facultad de Agrobiología “Presidente Juárez”. Uruapan, Michoacán. p. 28-72.
Hernández F. L. M., Saavedra A.M., Urías L. M. A., López A. J. G. 2009. Registro de Urosigalphus
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(Coleoptera: Curculionidae) en México. Acta Zoológica Mexicana 25 (3): 159-161.
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(Consulta: 11 de marzo de 2009)
http://www.avocadosource.com/Journals/CICTAMEX/CICTAMEX_1998/cictamex_1998_22-32.pdf
Rodríguez, S.F. 1982. El Aguacate, Editorial AGT, México, D.F., p. 136.
Severo, S. J. J. 2008. Plan de desarrollo municipal 2006-2009 de Malinalco. H. Ayuntamiento de
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huertos de aguacate "Hass" de Nayarit, México. Agricultura Técnica en México, 34 (4): 431-441.
37
X.APÉNDICE
1a.Daños de Copturus aguacatae
1b.Rama disectada con galerías y larvas de
C. aguacatae K. 1c.Daños en rama por larva de Copturus
aguacatae K.
1d.Savia cristalizada en rama y tronco ocasionada por barrenador de ramas Copturus aguacatae Kissinger (Urías y Salazar. 2008.)
1e. Pupa en rama
1f.Adulto de Copturus aguacatae
dentro de la rama
38
Estadios Biológicos de Copturus aguacatae
2a. Larva de Copturus aguacatae 2b. Oviposiciones en brotes tiernos de
Copturus aguacatae
2c. Larva de primer instar 2d. Larva de segundo instar
2e. Larva de tercer instar 2f. Larva de cuarto instar
2g. Larva de quinto instar 2h. Pupa
39
2i. Imagio 2j. Adulto
2k. Hembra 2l. Macho.
Enemigos naturales de Copturus aguacate
3a.Adulto parasitado por Beauveria bassiana 3b. Parasitoide de Copturus del genero
Urosigalphus
3c. Larva infectada por microorganismos
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